Name: 마이크로 계산된 Tomography 이미징을위한 준비로서 역행 관류 및 마우스 관상 Vasculature의 작성 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-02-10T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 16 s
Description: 학습하세요 마우스 관상혈관을 방사선 불투과성 염료로 관류하여 미세 CT 영상화를 준비하는 방법을. 심혈관 질환 연구에서 혈관 구조를 정밀하게 시각화할 수 있습니다.

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우리는 프로토콜 박사 마이클 Simon 씨의, 닥터 킵의 Hauch, 그리고 일반적인 토론을위한 그들의 실험실의 두 구성원들의 초기 실험 용 박사 켈리 스티븐스 감사드립니다. 이 작품은 NIH 보조금 HL087513 및 P01 HL094374에 의해 지원입니다.

1. 시작하기 전에 준비 <ol><li> 각각 PBS에서 Vasodilator 버퍼 (4mg / L Papaverine + 1g / L은 PBS에 아데노신) 또는 4 % Paraformaldehyde (PFA)로 압력 재관류 장치의 각 측면을 채웁니다. </li><li> 1:100 헤파린의 0.1 ML (5000U/ml 주식)로 작성하고 최대 베벨과 함께 ~ 120도 각도로 바늘을 벤딩하여 1/2cc 인슐린 주사기를 (영구적으로 연결된 29G ½ &quot;바늘로) 준비합니다. 수행 0.3 ML 포화 KCl 용액으로 가득 한 ML의 주사기 (26G ½ &quot;바늘로)와 동일. </li></ol> 2. 가슴을 노출하고 대동맥을 cannulating <ol><li> 선택의 마취제를 사용하여 마우스를 마취. (우리는 케타민을 / Xylazine 혼합물의 과다 사용합니다. 130 밀리그램 / kg 케타민을와 염분의 8.8 밀리그램 / kg Xylazine의 IP 주사) </li><li> 해부 트레이, 복부 측면까지에 anesthetized 마우스를 핀. 중간선 절개로 복강을 열고 피부를 철회장기를 노출합니다. 후부 베나 카바 (PVC)의 영역을 폭로 한쪽으로 창자를 이동합니다. </li><li> PVC로 헤파린 용액을 주사. 당신은 바늘을 추출로 누출되는 것을 방지하고 PVC 벽의 혈전 및 밀봉 때까지 몇 초 동안 누르고있는 솜 스쳐지나 작은 주걱과 바늘 구멍을 포괄합니다. 마우스 순환에 걸쳐 분산하기 위해 헤파린을위한 2-3분 기다립니다. </li><li> 당신이 고동 치는 심장을 관찰할 수 있도록 격막과 흉곽 해부. 천천히 심장 체포 때까지 PVC에 KCl 용액을 주입. </li><li> 피임기구의 지역 앞부분은 그대로두고, 격막 및 소비세 마우스 후부 부분 아래의 모든 장기를 제거합니다. 심장에 근위 부분은 후속 단계에서 찾을 수 있도록 쉽고 피임기구 근처 PVC 이발하는데 신중하다고, 횡경막을 제거합니다. </li><li> 대동맥의 컷 끝을 찾습니다. 대동맥 아래 앞부분 몇 mm 아프로 6-0 꼰 실크 봉합사 중 하나 긴 길이를 놓으십시오m 봉합이 다시 자체 배로되는 등 컷 끝. 대동맥 아래에서 봉합사의 2 가지가되도록 반으로이 더 이상 봉합 잘라. 대동맥 (그림 1A, B)의 절단 끝에 angiocatheter를 넣고 제자리에 angiocatheter 잡고 밖으로 새어에서 대동맥 내의 백 압력을 방지하기 위해 이중 매듭으로 각 봉합을 묶어. </li></ol> 3. 관류 및 Microfil 분사 <ol><li> 압력 재관류 장치 (그림 2)에 angiocatheter를 연결하고 100-110 mmHg의 운전 압력으로 관류 장치를 펌핑하여 vasodilator 버퍼 (그림 1C)와 혈관을 perfusing 시작합니다. 버퍼가 액체를 확보하여 coronaries 통해 perfusing되었는지 확인 더블은 PVC에서 종료됩니다. 최소 3 분 동안 perfuse 계속 또는 PVC를 종료 유체는 분명까지. (perfusing하면서 다음 단계를 계속합니다.) </li><li> 갈비와 핀 뒤로 (또는 제거) 가슴을 노출하는 ribcage 해부. 일단 노출, CA 수심장이 거즈의 버퍼 젖은 부분에서 마음에 버퍼의 방울을 쥐어 의해 말리면 않도록 reful. 대동맥 아치를 폭로 thymus을 치워. 액체를 보장하기 위해 6-0 꼰 실크 봉합사를 사용하여 세 가지 주요 대동맥 가지를 Ligate 것은 오히려 이러한 큰, 낮은 저항 혈관 (그림의 1D)를 통해보다 coronaries 통해 우회합니다. </li><li> 15 분동안 정착액과 함께 마음을 Perfuse 후 최소한 2 분 동안 Vasodilation 버퍼와 린스. 한편, 주사 후 심장 (그림 1E) 밖으로 유출 Microfil을 방지하기 위해 양쪽 앞부분 베나 Cavae을 ligate. 장소 PVC 및 대동맥 주위 봉합하지만, 충전 후 때까지 그들을 조여하지 않습니다. </li><li> Microfil을 준비합니다 (시약의 테이블에서 지정한)와 1 ML의 주사기에 그 파일을로드합니다. 카테터를 (Microfil 주사기로 관류 관에서 전환할 때 기포의 도입을 방지하기 위해있는만큼) 충당하기 위해 충분한 물을 절개 트레이를 채웁니다. 재관류 AP의 연결을 해제카테터의 paratus하고 준비된 Microfil에 주사기를 연결합니다. </li><li> 관상 동맥의 좋은 충전합니다 (무화과 1 층, 3A) 분명 때까지 대동맥으로 Microfil을 주사 : 동맥 먼저 작성되며, 다음 Microfil는 Microfil의 색상과 조직 플러시으로서 모세 혈관에 &quot;누설&quot;합니다. 일단 정맥쪽에, Microfil의 소수성 자연은 작은 혈관에서 나온다로서 초기에는 독립된 분야로 표시하기 위하여 그것을 일으 킵니다. 연속 열이 혈관을 가득 채우고 때까지 Microfil을 주입 계속합니다. Microfil이 혈관 내에서 지속되면 완전 충전이 분명있을 것이고, 그것은 PVC로 종료됩니다. </li><li> 충전이 완료되면 신속하게 이전에 혈관 밖으로 Microfil을 짜면 심장 조직의 탄성 특성을 방지하기 위해 PVC와 대동맥 주위에 배치했습니다 봉합을 조입니다. </li><li> (해부 트레이에서 물에 젖었 서부 유럽 표준시 거즈로 마음을 커버)은 밖으로 건조를 방지하고, Microfil가 polymerized 때까지 그것이 실온에서 약 1 시간 동안 앉아 알려주세요. 같은 리프팅이나 심장의 뒤쪽에 채워 선박의 초기보기를 얻기 위해 시도에 마음을 돌려 같은 중합 과정 동안 마음에 어떤 외부 압력을 피하십시오. 이것은 Microfil에서 봐야 원인, 심장보다 탄성 영역으로 일부 선박에서 Microfil를 당겨 수 있습니다. </li><li> 마음을 제거하고 4에서 하룻밤 4% PFA에 게시 - 수리 ° C. 그렇다면 4 ° C.에 70 % 에탄올에 저장 심장 vasculature 이제 μCT 이미징을위한 준비가되었습니다. </li></ol> 4. 대표 결과 효과적 Microfil 의해 perfused되는 선박은 선박에 걸쳐 지속 깨지지 Microfil (그림 3A)를해야합니다. 관상 혈관의 작성의 범위는 눈으로에서 재판받을 수 있으며, 정맥은 epicardially 18에 위치하고 있으며, 쉽게 (그림 3A, 화살촉) 관찰 수 있으며, 동맥,이것은 18보다 intramyocardial있는 심장의 표면 (그림 3A, 화살표)를 통해도 볼 수 있습니다. 심장 조직은 모세 혈관의 매우 높은 밀도를 가지고로서 모세관 충전은 또한 분명하다, 따라서, 언제 모세 혈관 채우기는 심장 조직 Microfil의 색상 (그림 3A, 별표)로 플러시됩니다. 따라서 작성하는 데 실패하는 혈관 네트워크는 Microfil의 부족 (그림 3B, C)로 인해 눈에 띄게 될 것이다. Microfil의 소수성 자연이 그 자체로 계약 가득한 혈관 내에서 &quot;휴식&quot;을 일으키는 원인이되므로 Microfil (그림 3B 관련 별표)에 불연속은 종종 나타납니다. 혈관 내의 압력이 심장에서 혈관 출구 포인트의 타이 오프 적정을 통해 유지하는 경우이 &quot;휴식&quot;이 감소될 수있다. 다른 불연속은 microfil 내의 기포로 인해 발생할 수 있습니다. 재관류 AP에서 전환할 때 공기의 도입을 방지하기 위해 angiocatheter이 완전히 물에 빠져들되어 있는지 확인<html> Microfil 주사기로 paratus. 공기 방울이 도입되면, 그것은 종종 거품이 관상 동맥 혈관의 통해 밀고 나가는 때까지 Microfil 재관류를 계속하여 간단하게 제거할 수 있습니다. 혈관 침대 부분 (그림 3B, 화살표)가 차단되는 경우 혈관 네트워크는 완전히 채울 수 없습니다. 헤파린은 혈전의 형성을 억제하지만, 가끔 막혀 여전히 이전 절차, 기타 알려지지 않은 요인으로 인해를 시작으로 불완전하게 헤파린 재관류로 인해 발생할 수 있습니다. 차단이 발생하면 혈관 채우기를 완료하기 위해 차단을 dislodging위한 방법은, 우리의 지식,이 없습니다. 너무 작은 압력 Microfil 모든 혈관 침대와 모세관 네트워크 (그림 3C)에 강제되지 않습니다 충전 중에 사용하는 경우 불완전한 충전도 발생할 수 있습니다. 반대로, 너무 많은 압력은 모세 혈관은 (그림 3D) 주변 조직에 Microfil을 터뜨릴하고 extravasate시킬 수 있습니다. files/ftp_upload/3740/3740fig1.jpg &quot;고도 =&quot;그림 1 &quot;/&gt; 1 그림. Microfil 재관류 제도의 개요. () 대동맥과 PVC는 다이어프램의 약 수준에서 잘라 있습니다. (B) 오름차순 대동맥은 angiocatheter로 cannulated있다. (D) 대동맥 아치 오프 세 가지 주요 지점은 출혈도 잡았하는 동안 (C) Vasodilation 버퍼는 압력 재관류 장치 (사진에 없음)에 의한 혈관,를 통해 perfused됩니다. 모두 앞쪽에 베나의 Cavas은 출혈도 잡았하는 동안 (E) 4% PFA는 coronaries 통해 perfused됩니다. 그것은 PVC에서 종료 관찰되기 전까지 (F) 주사기를 사용하여 Microfil는 coronaries 통해 perfused됩니다. <img src="/files/ftp_upload/3740/3740fig2.jpg" alt="그림 2"/> 그림 2. 관류 장치가. 두 Erlenmeyer의 flasks, Vasodilation 버퍼 또는 4퍼센트 PFA 하나 가득 각각은 입사하고 sidearms에 연결된 튜브를 통해 압력됩니다. 시스템의 펌핑 매뉴얼을 통해 가압전구 및 압력 게이지는 모니터링 및 압력의 유지를 허용하도록 flasks 중 하나에 연결됩니다. 작은 튜브가 고무 stoppers 통해 아래 각 플라스크에 액체로 확대. 압력이 작은 튜브 밖으로 각 플라스크에서 sidearms 펌프 유체으로 ​​들어갔다. 튜브 그러면 한 번에 하나의 플라스크에서 흘러 유체 있습니다 꼭지에 병합. <img src="/files/ftp_upload/3740/3740fig3.jpg" alt="그림 3"/> 그림 3. Microfilled 하트를 드셔보세요. () 잘 채워진다 선박은 (있는 경우) Microfil에서 봐야을 몇 가지게 될 것이며, 심장 조직이 채워진 모세관 (별표 및 C 비교)에 의한 Microfil의 물들어 색이 될 것입니다. 두 동맥 (화살표 - 왼쪽 앞부분 내림차순 동맥)과 정맥 (화살촉 - 왼쪽 관상 정맥)은 심장 표면을 통해 볼 수 있습니다. (B) 완전한 마이크를 방해 일부 선박의 microfil에서 봐야 (별표)뿐만 아니라 막혀있는 마음침투력을 rofil. 차단된 혈관은 혈액이 재관류 과정에서 밖으로 플러시되지 않았습니다으로, 빨강 (화살표) 남아 있습니다. 불완전하게 가득 차 있었다 혈관과 (C) 심장. 조직은 Microfil가 모세 혈관으로 침투하지 않은 나타내는 Microfil의 노란 색깔에 찍은되지 않았습니다납니다. (D) 마음이 어디 Microfil가 주변 조직 (화살표)으로 누출 원인, 채우는 동안 모세관 파열.

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마우스는, 워싱턴 대학의 기관 동물 케어 및 사용위원회에 의해 건강의 미국 국립 연구소 (NIH 발행 번호 85-23으로 출판 실험실 동물의 관리 및 이용 안내에 따라 승인된 방법으로 처리되었습니다 ) 1996 개정.

심장 조직은 매우 높은 신진 대사 수요를 가지고 있으며, 따라서 관상 vasculature에 의해 전달되는 혈액의 영양분과 산소의 지속적인 공급이 필요합니다. 선박 협착과 막힘으로 인해 관상 동맥 기능을 감소 관상 혈관, 환자는 조직 hypoxia와 국소 빈혈을 초래할, 그리고 심근 경색과 심장 근육에 치유할 수없는 손상에 대한 위험에 영향을받는 환자를 넣을 수 있습니다. 이러한 혈관의 질병 상태에 대한 이해가 필요하고, 관상 혈관을 공부하는 능력에 중요한 것은 vasculature의 시각화입니다. 여기서는 radiopaque 소재로 vasculature를 작성하여 전직의 생체내 이미징을위한 murine 관상 vasculature을 준비하기위한 방법을 제시한다. 이 프로토콜은 특히 모세 혈관을 포함한 모든 관상 동맥 혈관의 완전한 충전과 이후 시각화를 보장하기 위해 설계되었습니다. 모든 모세 혈관을 완전히 충전, 충전 agen을 보장하려면t, Microfil은...

<html><table border="1"><tbody><tr><td> 시약의 이름 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td><td> 댓글 </td></tr><tr><td> 한 ML의 주사기 </td><td> <a href="http://www.bd.com/" target="_blank">Becton 디킨슨</a> </td><td> BD-309602 </td><td></td></tr><tr><td> 영구적으로 연결된 29G ½ &#39;바늘과 1/2cc 인슐린 주사기 </td><td> <a href="http://www.bd.com/" target="_blank">Becton 디킨슨</a> </td><td> BD-309306 </td><td></td></tr><tr><td> 2 &quot;X 2&quot;거즈 패드 </td><td> Med101store.com </td><td> SKU 2,208 </td><td></td></tr><tr><td> 24G 잡았다 &quot;Angiocath IV 카테터 </td><td> <a href="http://www.bd.com/" target="_blank">Becton 디킨슨</a> </td><td> BD-381112 </td><td></td></tr><tr><td> 26G ½ &quot;게이지 바늘 </td><td>여윈 &quot;&gt; Becton 디킨슨 </td><td> BD-305111 </td><td></td></tr><tr><td> 아데노신 </td><td> <a href="http://www.sigmaaldrich.com/" target="_blank">시그마</a> </td><td> A9251 </td><td> 1g / Vasodilation 버퍼를위한 PBS에서 L (Papaverine 포함) </td></tr><tr><td> 각도 Graefe의 집게 </td><td> <a href="http://www.finescience.com/" target="_blank">파인 과학 도구</a> </td><td> 11052-10 </td><td></td></tr><tr><td> 면과 스쳐 applicators : 6 &quot;이외의 멸균 </td><td> <a href="http://www.cardinal.com/" target="_blank">추기경 건강</a> </td><td> C15055-006 </td><td></td></tr><tr><td> 곡선 외과 가위 </td><td> <a href="http://www.finescience.com/" target="_blank">파인 과학 도구</a> </td><td> 14085-09 </td><td></td></tr><tr><td> 해부 입체경 및 광원 </td><td> <a href="http://www.nikon.com/" target="_blank">니콘</a> </td><td> NA </td><td> NA </td></tr><tr><td> 해부 트레이, 11.5 X 7.5 인치 </td><td> <a href="http://www.coleparmer.com/" target="_blank">콜 - Parmer</a> </td><td> 요 - 10915-12 </td><td> 마우스를 아래로 달아 위해 타르로 가득 </td></tr><tr><td> 파인 곡선 집게 </td><td> <a href="http://www.aesculapusa.com/" target="_blank">Aesculap</a> </td><td> FD281R </td><td> 게 2 </td></tr><tr><td> 헤파린 5000 U / ML 주식 </td><td> <a href="http://www.apppharma.com/" target="_blank">APP 제약 LLC</a> </td><td> NDC 63323-047-10 </td><td> 물에 1:100 희석 </td></tr><tr><td> KCl </td><td> <a href="http://www.fishersci.com/" target="_blank">어부</a> </td><td> P217 </td><td> H2O의 포화 용액 </td></tr><tr><td> Ketamin (Ketaset), 100 밀리그램 / ML 주식 </td><td> 포트 닷지, 오버랜드 파크, 캔사스, 미국 </td><td> NDC 0856-2013-01 </td><td> 0.9 % s에 Xylazine과 함께, 130 밀리그램 / kg 체중으로 혼합일직선으로하다 </td></tr><tr><td> Microfil </td><td> <a href="http://www.flowtech-inc.com/" target="_blank">흐름 테크</a> </td><td> MV-122 (노랑). 기타 색 옵션도 사용할 수 있습니다. </td><td> 경화 요원의 부피에 의해 10 %, 중량으로 1:1 섞는다. 그것이 잘 혼합한지 단지 분사하고, 소용돌이 전에 준비 </td></tr><tr><td> 비 멸균 봉합해 : 6 대 0으로 꼰 명주실 </td><td> <a href="http://www.harvardapparatus.com/" target="_blank">하버드 장치</a> </td><td> 723,287 </td><td></td></tr><tr><td> Papaverine </td><td> <a href="http://www.americanregent.com/" target="_blank">미국 리젠트 주식 회사</a> </td><td> NDC 0517-4010-01 </td><td> 4mg / Vasodilation 버퍼를위한 PBS에서 L (아데노신 포함) </td></tr><tr><td> Paraformaldehyde </td><td> <a href="http://www.sigmaaldrich.com/" target="_blank">시그마</a> </td><td> P6148 </td><td> 4 % 용액의 준비 </td></tr><tr><td> 관류 장치 </td><td></td><td></td><td> 그림 2 참조 </td></tr><tr><td> 봄 가위 </td><td> <a href="http://www.finescience.com/" target="_blank">파인 과학 도구</a> </td><td> 15018-10 </td><td></td></tr><tr><td> Xylazine (Anased), 20 밀리그램 / GL 주식 </td><td> <a href="http://www.lloydlab.com/" target="_blank">로이드 실험실</a> </td><td> 나다 # 139-236 </td><td> 0.9 %의 식염수에 Ketamin과 8.8 밀리그램 / kg 체중으로 혼합 </td></tr></tbody></table>

마이크로 계산된 tomography 이미징을위한 준비로서 역행 관류 및 마우스 관상 vasculature의 작성

Retrograde Perfusion and Filling of Mouse Coronary Vasculature as Preparation for Micro Computed Tomography Imaging

vasculature의 시각화는 여러 질병 상태를 이해를 위해 점점 더 중요 해지고 있습니다. 여러 기법 이미징 vasculature을 위해 존재하지만, 몇몇 작은 혈관의 1,2를 포함 해상도로 확대하면서 전체적으로 혈관 네트워크를 시각화 할 수 있습니다. 또한 많은 혈관 주조 기법 예제 3-5의 자세한 분석을 방지, 주변 조직을 파괴. 이러한 문제를 circumvents 한 가지 방법은 마이크로 계산된 Tomography (μCT)입니다. μCT 영상은 해상도 &lt;10 미크론에서 스캔 혈관 네트워크의 3 차원 reconstructions를 생산 할 수 있으며 (예 : 조직학 및 morphometry) 후속 분석을 위해 그대로 6-11을 조직을 떠날 수 있습니다. 그러나 전직 생체내 μCT 방법에 의한 이미징 혈관 혈관이 radiopaque 화합물로 가득해야합니다. 따라서 μCT 이미징 제작한 vasculature의 정확한 표현이 조건으로하고있다혈관의 신뢰성과 완벽한 충전. 이 프로토콜에서는 μCT 이미징을위한 준비 마우스 관상 동맥 혈관을 작성을위한 기법을 설명합니다. 두 predominate 기술은 관상 vasculature 가득 채우는 것은 존재 : Langendorff 재관류 시스템을 통해 15-17 cannulation과 역행 대동맥의 관류 (또는 대동맥 아치 해제 지점) 12-14, 또는 전직 생체내 통해 생체내 인치 여기에서 우리는 특별히 모든 선박에 대해 작성하도록 설계되었습니다 생체내의 대동맥 cannulation 방법에 대해 설명합니다. 우리 모두는 모세 혈관뿐만 아니라, 혈관 네트워크의 동맥과 정맥의 양쪽 모두를 채우기 위해 작은 혈관을 통해 perfuse 수 Microfil라는 낮은 점도의 radiopaque 화합물을 사용합니다. 혈관이 압력 관류 시스템을 사용하여 버퍼로 perfused 후 Microfil으로 가득합니다. 그 Microfil가 작은 높은 저항 혈관을 채우고 확보하기 위해 대규모 지점 emanatin ligatecoronaries로 Microfil을 산란 대동맥에서 g. 일단 충전 일부 표본 Microfil을 짜면 심장 조직의 탄성 특성을 방지하기 위해, 완료 즉시 충전 후 접근이 주요 혈관 출구 포인트를 ligate. 따라서, 우리의 기술은 완전한 관상 혈관 네트워크의 시각화을 사용, 충전 대리인의 완전한 충전과 최대 보존에 최적화되어 있습니다 - 동맥, 모세 혈관과 정맥이 비슷하다.

관상 혈관의 시각화는 심장 혈관 질병의 우리의 이해를 증진하기 위해 중요합니다. 여기에서 우리는 마이크로 계산된 Tomography (μCT) 이미징을위한 준비, radiopaque 실리콘 고무 (Microfil)로 murine 관상 vasculature을 perfusing위한 방법을 설명합니다.

마이크로 계산된 Tomography 이미징을위한 준비로서 역행 관류 및 마우스 관상 Vasculature의 작성

혈관 구조의 시각화는 다양한 질병 상태를 이해하는 데 있어 점점 더 중요해지고 있습니다. ...을 위한 여러 기술이 존재하지만,

본 실험 절차의 전반적인 목표는 마이크로 컴퓨터 단층촬영(micro computed tomography 또는 micro CT) 영상 촬영을 준비하기 위해 관상동맥 혈관계를 방사선 불투과성 염료로 채우는 것입니다. 먼저, 마우스의 복강을 절개하고 복부 대동맥에 캐뉼라를 삽입합니다. 그다음 혈관계에 혈관 확장 버퍼를 관류시킨 후, AFF 고정액을 관류합니다.그 후, PERFUSE 8의 흐름을 유도하고 잠재적인 누출 지점을 차단하기 위해 혈관들을 결찰합니다. 마지막으로, 관상동맥에 방사선 불투과성 염료를 채웁니다. 관상동맥 혈관망의 완전한 충전 여부는 심장의 시각적 분석 또는 마이크로 CT 영상 촬영 및 분석을 통해 평가할 수 있습니다.이 방법은 관상동맥 혈관 구조, 분지 패턴뿐만 아니라 혈관 폐쇄 및 기타 관상동맥 질환에 대한 통찰을 제공할 수 있습니다. 또한 뇌, 신장 또는 뒷다리와 같은 다른 장기 시스템의 다른 혈관 네트워크에도 적용할 수 있습니다. 혈관 결찰 단계는 학습하기 어렵기 때문에 이 방법에 대한 시각적 시연이 매우 중요합니다.혈관 해부학에 익숙하지 않은 경우, 주변 조직에서 적절한 혈관을 찾아 결찰하는 과정 또한 어려울 수 있습니다. 실험을 시작하기 전, 압력 관류 장치의 한쪽에는 혈관 확장제 완충액을, 다른 한쪽에는 PBS에 희석한 4% 파라포름알데하이드를 채웁니다. 그다음, 29게이지 0.5인치 바늘이 장착된 0.5 CC 인슐린 주사기에 1:100 헤파린 0.1 milliliters를 채웁니다.그 후 바늘의 베벨(bevel)이 위로 향하게 하여 약 120도 각도로 구부립니다. 마지막으로, 26 gauge 0.5인치 바늘이 장착된 1mL 주사기에 포화 염화칼륨 용액 0.4mL를 채우고, 방금 시연한 것과 같이 바늘을 120도로 구부립니다. 마우스를 마취하고 배면이 위로 오도록 해부 트레이에 고정시킨 후, 털이 젖을 때까지 에탄올을 뿌려줍니다.그런 다음 중앙 정중 절개를 통해 복강을 엽니다. 피부를 견인하여 장기를 노출시키고, 후대정맥(posterior vena CVA 또는 PVC)에 접근할 수 있도록 장을 한쪽으로 치웁니다. 필요에 따라 지방이나 결합 조직을 제거하고, 준비된 헤파린 용액을 PVC에 주입합니다.바늘을 뽑으면서, 누출을 방지하기 위해 면봉으로 바늘 구멍을 덮고 PVC 벽이 응고되어 밀봉될 때까지 몇 초 동안 면봉을 그대로 유지합니다. 헤파린이 마우스의 혈액 순환계 전체로 퍼질 때까지 2~3분간 기다린 후, 박동하는 심장을 관찰할 수 있도록 횡격막과 흉곽을 절개합니다.그 다음, 심장이 정지할 때까지 준비된 염화칼륨 용액을 PVC에 천천히 주입합니다. 이어서, 심장 쪽 근위부 영역을 다음 단계에서 쉽게 찾을 수 있도록 횡격막 높이 근처에서 PVC를 절단합니다. 그 후 횡격막 아래의 모든 장기를 제거하고 마우스의 후측 부분을 절제합니다.이제 대동맥의 절단단을 찾아 6-0 braided silk 봉합사를 길게 잘라 대동맥 아래, 절단단에서 수 밀리미터 전방에 두 번 접어 배치합니다. 이 긴 봉합사를 잘라 대동맥 아래에 두 가닥이 되도록 합니다. 마지막으로, 대동맥의 절단단에 카테터를 삽입하고 각 봉합사를 이중 매듭으로 묶어 카테터를 고정하고 대동맥 내부의 배압이 새어 나가지 않도록 합니다.먼저 압력 관류 장치를 카테터에 연결합니다. 그런 다음 관류 장치를 작동시켜 구동 압력을 100~110 mmHg로 맞추어 혈관에 혈관 확장제 완충액을 관류합니다. 액체가 투명해질 때까지 기다리는 동안 PVC에서 액체가 배출되는지 확인하여 완충액이 관상동맥을 통해 관류되고 있는지 확인하십시오.갈비뼈를 절개하고 흉곽을 고정하여 심장을 노출시킵니다. 심장이 노출되면, 건조를 방지하기 위해 버퍼에 적신 거즈 조각에서 심장 위로 버퍼를 몇 방울 떨어뜨립니다. 흉선을 제거합니다.대동맥궁을 노출시키기 위해 혈관을 결찰하는 과정은 이 실험 절차에서 가장 어려운 단계입니다. 초보자의 경우 대동맥궁에 연결된 혈관들을 찾는 것이 매우 까다로울 수 있으나, 혈관의 해부학적 구조를 이해하고 나면 지방 및 기타 결합 조직으로 인해 혈관이 명확히 보이지 않더라도 해당 위치에 혈관이 존재한다는 점을 신뢰하며 진행할 수 있게 됩니다. 봉합사를 배치하는 과정에는 인내심과 정교한 손길이 필요하며, 이는 연습을 통해 충분히 숙달될 수 있는 기술입니다.그 다음, 6-0 꼬임 실크 봉합사로 세 개의 주요 대동맥 분지를 결찰하여 액체가 이 거대한 저항성 낮은 혈관이 아닌 관상동맥을 통해 흐르도록 합니다. 이어서 고정액으로 15분 동안 심장을 관류합니다. 그런 다음 혈관 확장 버퍼로 최소 2분 동안 헹굽니다.한편, 주입 후 마이크로필(microfill)이 심장에서 새어 나오는 것을 방지하기 위해 첫 번째 전대정맥을 결찰한 다음 두 번째 전대정맥을 결찰합니다. PVC와 대동맥 주위에 봉합사를 배치하되, 충전이 끝날 때까지 조이지 마십시오. 마이크로필을 준비하여 1 mL 주사기에 충전한 후, 카테터가 잠길 정도로 해부 트레이에 물을 채웁니다.이제 관류 장치를 카테터에서 분리하고 마이크로필 주사기를 연결하십시오. 대동맥에 마이크로필을 주입합니다. 마이크로필은 먼저 동맥을 채운 다음 모세혈관으로 퍼지며 조직을 마이크로필의 색으로 물들입니다.마이크로필(microfill)의 소수성 특성으로 인해 작은 혈관에서 나올 때 처음에는 독립된 구형으로 나타나는 점에 유의하십시오. 마이크로필이 혈관 내에서 연속적으로 이어지고 PVC를 통해 배출될 때 완전히 충전되었음을 알 수 있습니다. 충전이 완료되면, 심장 조직의 탄성으로 인해 혈관에서 마이크로필이 밀려나오는 것을 방지하기 위해 PVC와 대동맥 주변의 봉합사를 빠르게 조이십시오.중합 과정 동안 심장 뒷부분에 채워진 혈관을 빨리 확인하기 위해 심장을 들어 올리거나 돌리는 등 심장에 외부 압력을 가하지 않도록 주의하십시오. 그런 다음 해부 트레이의 물에 거즈를 적셔 심장을 덮어 건조해지는 것을 방지합니다. microfill이 중합될 때까지 실온에서 약 1시간 동안 그대로 둡니다.마지막으로, 심장을 적출하여 4% PFA에서 4°C로 하룻밤 동안 고정합니다. 그 후 심장을 70% ethanol로 옮겨 4°C에서 보관합니다. microfill로 효과적으로 관류된 혈관은 혈관 전체에 걸쳐 끊김 없이 연속적인 microfill이 채워져 있을 것입니다.첫 번째 그림에서 보여주는 바와 같이, 관상 혈관의 충전 정도는 육안으로 판단할 수 있습니다. 정맥은 심외막에 위치하며 화살촉으로 표시된 것과 같이 쉽게 관찰됩니다. 더 심근 내에 위치한 동맥 또한 심장 표면을 통해 보이며, 여기서는 화살표로 표시되어 있습니다.모세혈관 충전 또한 분명하게 나타납니다. 별표로 표시된 이 그림의 심장 내 모세혈관 밀집 구역을 관찰하십시오. 때로는 폐쇄로 인해 혈관상 일부의 충전이 방해받을 수 있습니다.따라서, 여기 화살표로 표시된 것처럼 마이크로필(microfill)이 채워지지 않아 혈관 네트워크가 보이지 않는 부분이 눈에 띄게 됩니다. 마이크로필에 추가적인 단절이 발생할 수 있으며, 그 예시는 별표로 표시하였습니다. 마이크로필 투여 시 압력이 너무 낮으면 마이크로필이 모든 모세혈관 네트워크로 강제로 들어가지 않아 충전이 불완전해질 수 있습니다.조직이 마이크로필의 노란색으로 물들지 않은 것을 통해 마이크로필이 모세혈관 내부로 침투하지 않았음을 알 수 있습니다. 반대로, 압력이 너무 높으면 화살표로 표시된 것과 같이 모세혈관이 파열되어 마이크로필이 주변 조직으로 유출될 수 있습니다. 이 절차를 수행할 때는 혈관이 파열되어 혈관 주형이 손상될 수 있으므로, 마이크로필을 너무 빠르게 주입하거나 과도한 압력을 가하지 않도록 주의하는 것이 중요합니다.micro CT 스캔 절차를 따릅니다. 추가적인 질문에 답하고 혈관 및 주변 조직의 특성을 더 잘 규명하기 위해 면역조직화학 분석과 같은 다른 방법들을 수행할 수 있습니다.

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연구

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의학

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마이크로 계산된 Tomography 이미징을위한 준비로서 역행 관류 및 마우스 관상 Vasculature의 작성

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