Name: 폴리비닐 알코올 스폰지 모델 주입 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-04-18T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 23 s
Description: 배우세요 생쥐의 상처 치유를 모델링하는 폴리비닐 알코올 스폰지 주입 기법을. 수화, 이식, 치료제 주입 및 분석을 통해 생물학적 과정을 정량적으로 연구할 수 있습니다.

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PPY로 재향 군인의 업무 장점 보너스, 건강의 국립 연구소 (NIH) 부여 R01-HL088424가 제공하는 자금.

1. 스폰지 준비 <ol><li> 0.9 % (W / V) 수성 나트륨 염화물 용액에 밤새 교반하여 수산화 스폰지. </li><li> 그들을 autoclaving으로 충분 스폰지를 소독. 121 25 분 75 ML, 압력솥 ° C.에 대한 </li></ol> 참고 : 아래 설명에 따라 치료와로드 스폰지는 선택 사항입니다. <ol start="3"><li> 멸균 악기와 멸균 후드에 핀셋을 사용하여 솔루션에서 한 스펀지를 데리러. 족집게로 스펀지를 짜내와 스펀지에서 가능한 한 많은 솔루션을 제거하는 진공 팁을 사용합니다. 스폰지 사이의 공간을 남길 신중하다고, 조직 배양 접시에 스폰지 아웃 wrung를 놓습니다. 다중 잘 플레이트는 다른 치료를 구분하는 데 사용할 수 있습니다. </li><li> 직접 스폰지의 중심쪽으로 치료 솔루션을 피펫. 솔루션 스펀지에 저장 후 피펫 팁에 스펀지에서 부드럽게 아래로 누르면,이 스폰지가 솔루션을 흡수하는 데 도움이됩니다. 참고 : 6mm우리가 고용되는 2.75 mm 두께의 스폰지에 의해 직경이 25 μL의 최대를 개최하실 수 있습니다. </li><li> 모두 스폰지가로드되면 그들이 마우스에 이식되기 전까지는, 그들에 플레이트가 얼음에 저장할 수 있습니다. </li></ol> 2. 수술 <ol><li> 적절하게 동물을 마취하고 사전 emptive 진통을 관리할 수 있습니다. 전체 절차는 동물 당 약 20 분 정도 지속됩니다. 와 산소 분당 30g 마우스 1.5 리터 들어 Isoflurane 1.5 %가 마취를 유도하고 유지하는 데 사용됩니다. 동물은 더 이상 핀치 반사 검사, 부정사 위치 코 콘의 장소에 응답하지 않습니다 때. 흉곽 아래에 더 낮은 복부 측면에 공간 1 인치 1 인치 면도 전기 면도기를 사용합니다. 컷 머리카락 청소를 닦아주십시오. </li><li> 70 % 알콜 뒤에 betadine으로 청소하여 면도 영역을 소독. 이 betadine 알콜 클렌징 세 번 반복합니다. </li><li> 피부를 개최하는 것은 가르 쳤지만, 수직 절개에게 1.5-2 배 디아를 만들기 위해 메스를 사용하여스폰지의 미터 뱃속을 건드리지 않게 조심하는, 삽입되어야합니다. </li><li> 피부의 가장자리를 잡고 핀셋을 사용하여 천천히 Metzembaum 가위를 사용하여 절개 부위의 양쪽에 근육으로부터 피부를 분리 시작합니다. 주머니가 뒷다리에 마우스의 너비에 걸쳐 및 흉곽에서 이동해야합니다. </li><li> 측면에서 곤란하여 동물에 배치하는 최초의 스펀지를 데리러 핀셋을 사용합니다. 그것은 상단과 하단에서 개최 있도록 직선 핀셋으로 스펀지를 전송합니다. </li><li> 피부의 가장자리를 잡고 스펀지가 삽입 수 있도록 그것을 해제하기 위해 핀셋을 사용합니다. 천천히 스펀지 그것이 조직을 만진 후에는 이동 어려울 것이다로서 아래 피부 또는 근육을 만지는 피하려고 스폰지를 삽입합니다. 모든 스폰지에 대해 반복합니다. </li><li> 일단 모든 스폰지는 장소는 절개를 닫습니다, 두 세 봉합 삽입되었습니다. 함께 절개의 양쪽을 잡고 수투어를 스레드로 족집게 한 켤레를 사용피부의 두 레이어를 통해 다시. 피부 가장자리를 닫습 충분 최초로 크랭크를 조이십시오. 한 번 더가 다른 방향으로, 꽉 매듭을 당기는이 시간부터 던져 가진 사각형 매듭를 마칩니다. 그런 다음 봉합합니다 (그림 2)를 끝내고 두 개 더 스퀘어 매듭 묶는. 전체 절개를 닫습 추가 봉합를 놓습니다. 기타 상처 본딩 방법 등 dermabond, 상처 클립이나 스테이플로 사용할 수 있습니다. </li><li> 마취 시스템에서 동물을 제거하고 의식이 재개되는 동안 모니터링합니다. 동물 신속 ambulating 시작하고 수술 모바일로 돌아합니다. 그들이 충분한 음식과 물을 도달할 수 있다고 확신합니다. 일부 moistened 음식은 회복에 도움을 새장 바닥에 게재될 수 있습니다. 고통 또는 불편의 흔적을 매일 동물을 지속적으로 모니터하고, 감염, 염증, 그리고 dehiscence의 절개 사이트를 확인하십시오. 회복에 어떤 합병증이 발견되면 적절한 조치를 취할 것입니다. </li></ol> 3. 옵션 분사 <ol><li> 원하는 솔루션 스폰지를 삽입하려면 먼저 마우스에 투여하는 물질의 양을 결정한다. 물질은 주사 부피가 덜 절반 이상 총 볼륨 스펀지를 저장할 수 있습니다 있도록 집중해야합니다. </li><li> 주사 (우리가 28 G 바늘을 사용하는 마우스의 경우)에 대한 주사기를 준비합니다. </li><li> 마취하에 주사를받을 수있는 동물을 놓습니다. </li><li> 동물이 더 이상 핀치 테스트에 응답 없을 때 주사가 주어질 수 있습니다. </li><li> 주사는 스펀지의 중심에서 45 ° 각도로 철저한 피부에 바늘을 밀어주고합니다. 다음은 절반 정도의 길을 갈 스펀지로 바늘을 밀어의 두께를 통해. 목표는 스펀지의 정확한 중심으로 주입하는 것입니다. </li><li> 바늘은 스펀지에 있는지 확인하려면 천천히 수직으로 바늘을 올린다. 바늘은 스펀지에 있으면 스펀지는 바늘로 이동합니다. </li><li> 천천히 스펀지로 주입하고 바늘을 제거합니다. 주사가 필요한 여러 스폰지가있는 경우는 주입된 유체의 일부가 주사의 이전 사이트에서 밀쳐됩니다 가능성이 있습니다. </li></ol> 4. 스폰지 제거 참고 : 스폰지 제거하는 동안 추가주의 스펀지를 처리​​할 수 있습니다. 수술 도구와 스펀지를 관통하지 않도록하고 주변 조직 주위에 주요 동맥을 피하는하여 스펀지로 과도한 출혈을 방지. <ol><li> 동물 euthanized되면​​ 족집게를 사용하고 절개가 스펀지를 닫으 만드는 피부를 개최하여 스펀지를 제거합니다. </li><li> 주변 캡슐에서 스폰지를 조심스럽게 분리<html> ND는 스폰지를 둘러싼 여분의 조직을 수확하지 마십시오. 이러한 약물 전달이나 morphometry 등 assays 들어, 적은 정확성은 절단이 필요합니다. </li></ol> 5. 대표 결과 제거 스폰지가 수행됩니다 분석의 종류에 따라 서로 다른 조건 하에서 저장할 수 있습니다. sectioning 내용 검색 스폰지 같은 최적 절삭 온도 (-10 월) 화합물로 오해해서 중간에 내장할 수 또는 파라핀 블록 (그림 3A와 B)에 삽입하고 sectioning위한 포르말린 10 % 배치. 스펀지는 직경이 절반을 가로질러로 잘라 (그림 4A와 B) 표면을 줄일 임베디드 때 sectioning을위한 최상의 결과를 얻을 수 있습니다. 스펀지의 전체 너비가 존재할 수 있도록 스폰지의 섹션 촬영하여야한다. 그림 3A 두 개의 스폰지를 보여주고, 왼쪽 스폰지는 내장형 / sectioned 잘못하고 오른쪽 스폰지가 제대로 처리되었습니다되었다. 엔트 &quot;&gt; 처리를위한 준비까지 분석을 위해, 스폰지는 Eppendorf 튜브에 넣어 수 있으며, -20 ° C에 저장된 RNA와 정량적 실시간 PCR 분석 스폰지가 Eppendorf 튜브, 플래시 냉동으로 배치하고에 저장해야합니다 때문이다. - 또한 80 ° C.는 그러한 QIAGEN에서 RNAlater와 같은 RNA의 방부제는, 높은 온도에서 안전한 보관을위한 RNA를 안정화하는 데 사용할 수 있습니다. 상처 유체는 관 위에 스폰지를 쥐어하여 수집하고,로부터 유체를 함께 풀링 수 대표 샘플을 얻기 위해 여러 스폰지. 같은 fibroblast, macrophages와 lymphocytes와 같은 라이브 세포는 역시 스폰지에서 추출 할 수 있습니다. 동물의 탈퇴 후, 스폰지는 세포의 원하는 유형에 대한 적절한 매체에서 개최 될 수 있습니다. 스폰지가 있습니다 물리적 (점잔 빼는 즉) 또는 효소 (예 : collagenase) 방법으로 세포를 공개 처리됩니다. <img alt="1 그림." src="/files/ftp_upload/3885/3885fig1.jpg" /> 그림 1. Dehydra세 가지 크기의 테드 PVA 스폰지 디스크. <img alt="그림 2." src="/files/ftp_upload/3885/3885fig2.jpg" /> 그림 2. 수평 상처 넷 PVA 스폰지의 위치를 보여주는 마우스 상처 - 치유 모델의 이미지. <img alt="그림 3." src="/files/ftp_upload/3885/3885fig3.jpg" /> 그림 3. 4X에 (A) H &amp; E 염색법과 sectioned 파라핀 임베디드 스폰지의 10X시 (B) Trichrome의 염색법. <img alt="4 그림." src="/files/ftp_upload/3885/3885fig4.jpg" /> 4 그림. () 직경을 따라 반으로 스폰지 컷의 이미지. (B) PVA 스폰지의 절반, 10 년에 측면을 줄일 임베디드.

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</ol>

우리는 공개 할게 없다.

<p class="jove_content"&gt; 상처 치유의 스폰지 모델은 여러 유사 콘텐츠를 가지고, 그것은 인간과 스폰지 포함하여 다양한 종류로 진행 될수 있습니다하면 dorsally 심어하실 수 있습니다<sup&gt; 1,2,8</sup&gt;. 인간과 다른 생물의 연구 내용은 스폰지는 캡슐되지 않도록 스펀지를 방지 및 제거의 용이성을 허용하도록 다공성 실리콘 튜브에 삽입해야 할 수 있습니다<sup&gt; 4,8</sup&gt;. 스펀지 주입의 위치는 원하는 결과와 기술자의 기술을 바탕으로 변경할 수 있습니다. 등 부분의 이식은 복부 임플란트가 복강까지 절단의 가능성으로 인해 더 어렵습니다 동안 스폰지는 피부 아래에 이동할 수 있습니다. 약물 전달이 여러 주사에 대한 필요성을 제거, 상수 및 제어가되도록 스폰지는 카테터와 함께 설정할 수 있습니다<sup&gt; 9</sup&gt;. 작게, 관형 스폰지도 주사 바늘을 통해 주입 수<sup&gt; 8</sup&gt;. 스펀지 &#39;조성은 폴리비닐 알코올에 국한되지 않습니다. 그들은 독점적으로 여러 물질이나 함께 준비할 수<sup&gt; 7</sup&gt;.</p&gt;<p class="jove_content"&gt; 그것은 스펀지 준비하고 일관성과 적절하게 이해 될 수있는 동물의 배치에 대한 중요합니다. 스폰지가 시트에서 절단하는 경우 그들은 comparability 비슷한 무게이어야합니다. 스펀지가 셀 또는 치료를로드하는 경우 각 스펀지에 배치 금액은 정확해야합니다. 치유 과정은 머리가 증가로부터 거리로 줄어 듭니다 동물과 치유의 스폰지의 배치 위치에 따라 다를 수 있습니다<sup&gt; 1,10</sup&gt;.</p

<table border="1"><tbody><tr><td> 자재 명칭 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td><td> 댓글 </td></tr><tr><td> PVA 스폰지 </td><td> Medtronic </td><td> CF120 </td><td> 스펀지의 크기와 공극률은 실험에 의존 </td></tr><tr><td> 메스 블레이드 크기 15 </td><td> 중간 BD </td><td> 371,115 </td><td></td></tr><tr><td> Metzembaum 가위 </td><td> 써모 과학 </td><td> 79-211 </td><td></td></tr><tr><td> Hemostat의 집게 </td><td> 파인 과학 도구 </td><td> 13004-14 </td><td></td></tr><tr><td> 니들 홀더 </td><td> 파인 과학 도구 </td><td> 12004-16 </td><td></td></tr><tr><td> 5-0 나일론 봉합사 </td><td> Ethilon </td><td> 698 </td><td></td></tr><tr><td> 10월 compouND </td><td> 조직 - 테크 </td><td> 4583 </td><td></td></tr></tbody></table>

폴리비닐 알코올 스폰지 모델 주입

The Polyvinyl Alcohol Sponge Model Implantation

상처의 치유는 많은 세포 유형, 성장 요인과 1-3 화합물을 포함하는 복잡한, 다단계 프로세스입니다. 생체내에서 이루어 때이 때문에 복잡성 때문에, 상처 치유 연구는 가장 포괄 있습니다. 생체내 incisional, excisional, 죽은 공간을 포함한 급성 상처 치유를 공부하는 데 사용할 모델 및 화상 많은가 있습니다. 죽은 공간 모델은 상처 조직 형성과 물질의 효과를 연구하는 데 사용되는 인공, 다공성 임플란트입니다. 일반적으로 사용되는 죽은 공간 모델 중 일부는 폴리비닐 알코올 (PVA) 스폰지, 스틸 와이어 메쉬 실린더, 확장 polytetrafluoroethylene (ePTFE) 재료 및 Cellstick 1,2 등이 있습니다. 각 죽은 공간 모델은 재료의 조성과 주입 방법을 기반으로 자체적인 제한 사항이 있습니다. 스틸 와이어 메쉬 실린더 모델은 주입 후 침투 지연 위상을 가지고 있으며, 과립 조직 형성 begi 전에 오랜 금액을 필요로NS 1. 상처 치유의 나중 단계는 최고의 ePTFE 모델 1,4를 사용하여 분석하고 있습니다. Cellstick은 일반적으로 인간의 수술 상처를 연구에 사용되며 유체 2를 입었의 실리콘 튜브 모델 내부의 셀룰로오스 스폰지입니다. 시간과 그것이 짐승 5의 대형 세포 반응을 일으키는 이물 반응을 자극하기 시작하기 때문에 PVA 스펀지는 급성 연구로 제한됩니다. 다른 재료와는 달리, PVA 스폰지는 삽입 및 제거, 불활성 및 비 생분해성 물질로 만들어진 아직 histological 분석 2,5 대한 sectioned 될만큼 부드러워요하기 쉽습니다. 상처에서는 PVA 스폰지를 치료하는 것은 과립 조직 형성을 분석하는 데 매우 유용 콜라겐 증착, 상처 유체 구성, 그리고 치유 과정 1,2,5에 대한 물질의 효과. 상처 치유의 속성의 광범위한 연구에서의 사용뿐만 아니라, PVA 스폰지는 또한 연구의 많은 다른 유형에 사용되었습니다. 그것은 H같은 종양 angiogenesis, 약물 전달 및 줄기 세포 생존과 engraftment 1,2,6,7를 조사하기 위해 활용되었습니다. 가장 큰 alterability 사전 광범위한 사용 및 재현성 결과, PVA 스폰지는 많은 연구 1,2를위한 이상적인 모델입니다. 여기서는 준비, 이식 및 상처 치유의 마우스 모델에서 PVA 스폰지 디스크 (그림 1)의 검색에 대해 설명합니다.

마약, 성장 요인 및 / 또는 상처 수리의 동물 모델에서 조작 세포의 효과를 분석하는 유용한 도구가 설명되어 있습니다. 이 기술은 구현 및 포함하고 원하는 치료를하며 excised하고 분석할 수 있도록 플랫폼을 제공하기 위해 폴리비닐 알코올 (PVA) 스폰지의 속성을 활용합니다.

상처 치유는 많은 세포 유형, 성장 인자 및 화합물이 관여하는 복잡한 다단계 과정입니다1-3. 이러한 복잡성으로 인해 상처 치유는 ...

본 절차의 전체적인 목표는 폴리비닐 알코올 스펀지를 사용하여 마우스의 상처 치유 모델을 구현하는 것입니다. 이를 위해 먼저 스펀지를 수화시키고 이식 가능하도록 충전합니다. 그다음, 스펀지를 마우스의 복근과 피부 사이의 포켓에 삽입합니다.이식 후, 각 스펀지에 치료제를 주입할 수 있습니다. 마지막 단계는 마우스에서 스펀지를 제거하는 것입니다. 최종적으로, 절편 제작, 염색 및 정량 분석을 수행하여 상처 치유 과정의 변화와 차이를 관찰할 수 있습니다.이 방법은 상처 치유에 대한 통찰을 제공할 수 있을 뿐만 아니라, 종양 혈관 신생, 약물 전달, 이식된 세포의 생존 및 생착과 같은 다른 연구 분야에도 적용될 수 있습니다. 먼저 0.9% 수성 염화 나트륨 용액에서 밤새 교반하여 스펀지를 수화시킵니다. 그 다음, 수화된 스펀지 현탁액 75 milliliters를 121 degrees Celsius에서 25분 동안 오토클레이브합니다.스펀지를 멸균하려면, 오토클레이브 멸균된 스펀지 용액을 멸균 후드 내에 둡니다. 그 다음 멸균 핀셋을 사용하여 스펀지 하나를 집어 핀셋으로 짠 후, 진공 팁을 사용하여 스펀지에서 용액을 가능한 한 많이 제거합니다. 이제 짜낸 스펀지를 조직 배양 플레이트에 놓되, 스펀지 사이에 공간을 두도록 주의하며, 처리 용액을 스펀지 중앙에 직접 피펫팅합니다. 그다음 피펫 팁으로 스펀지를 가볍게 눌러 스펀지가 용액을 잘 흡수하도록 합니다.모든 스펀지가 로딩되면, 스펀지를 마우스에 이식할 때까지 플레이트를 얼음에 보관합니다. 꼬집기 반사 검사로 진정 상태를 확인한 후, 마우스를 앙와위로 눕혀 노즈콘에 고정하는 것으로 시작합니다. 그런 다음 전기 면도기를 사용하여 마우스의 갈비뼈 아래쪽 하복부에서 1 x 1 인치 면적의 털을 제거합니다.이후 절단된 털을 닦아내어 해당 부위를 깨끗하게 합니다. 제모한 부위를 Betadine으로 멸균한 후 70% alcohol로 소독합니다. 다음으로, 피부를 팽팽하게 잡습니다.메스로 삽입할 스펀지 직경의 1.5배에서 2배 길이로 수직 절개합니다. 이때 체강까지 절개되지 않도록 주의하십시오. 핀셋을 사용하여 피부 가장자리를 잡습니다.그런 다음 Metzenbaum 가위를 사용하여 절개 부위 양측의 피부를 근육에서 천천히 분리합니다. 포켓을 마우스의 너비 전체와 흉곽에서 뒷다리까지 확장합니다. 이제 핀셋으로 측면을 집어 동물에게 삽입할 첫 번째 스펀지를 집어 올립니다.그 다음 스펀지를 일자 핀셋으로 잡아 위아래에서 고정합니다. 다음으로, 다른 핀셋을 사용하여 피부 가장자리를 잡고 들어 올린 뒤, 피부나 아래쪽의 근육에 닿지 않도록 주의하며 스펀지를 천천히 삽입합니다. 모든 스펀지를 삽입한 후, 핀셋으로 절개 부위의 양측을 함께 잡고 피부의 두 층을 관통하여 봉합사를 통과시킵니다.피부 가장자리가 닫힐 정도로만 첫 번째 매듭을 조인 후, 반대 방향으로 한 번 더 매듭을 지어 정사각형 매듭(square knot)을 완성합니다. 이때는 매듭을 단단하게 잡아당깁니다. 그 다음, 봉합을 마무리하기 위해 정사각형 매듭을 두 번 더 묶습니다.절개 부위 전체를 폐쇄하기 위해 추가 봉합을 실시합니다. 마지막으로, 동물을 마취 시스템에서 분리하고 의식이 회복될 때까지 모니터링합니다. 마우스는 빠르게 보행하기 시작하며 수술 전의 가동성을 회복해야 합니다.먼저 주사기에 필요한 용액을 채우고 28 gauge 바늘을 주사기에 연결합니다. 그 후 발가락 꼬집기(toe pinch)를 통해 진정 상태를 확인한 다음, 바늘이 스펀지 내에 위치하도록 스펀지 중앙의 피부를 통해 45도 각도로 동물에게 바늘을 찌릅니다. 바늘을 천천히 수직으로 들어 올립니다.바늘이 스펀지 내에 위치하면 스펀지가 바늘과 함께 위로 이동합니다. 그런 다음 물질을 스펀지에 천천히 주입하고 바늘을 제거합니다. 동물을 희생시킨 후, 핀셋으로 피부를 잡고 원하는 스펀지 근처를 절개합니다.마지막으로, 제거한 스펀지 주변의 추가 조직이 함께 채취되지 않도록 주의하며 주변 캡슐에서 스펀지를 조심스럽게 분리합니다. 스펀지는 수행할 분석 유형에 따라 서로 다른 조건에서 보관할 수 있습니다. 절편 제작의 경우, 회수한 스펀지를 OCT compound와 같은 동결 매질에 매립하거나, 본 h and e 염색 스펀지 사례와 같이 파라핀 블록 매립 및 절편 제작을 위해 10% formalin에 넣어 보관할 수 있습니다.그리고 이렇게 염색된 trireme 스폰지의 절편 제작 시, 여기에서 보여주는 것과 같이 스폰지를 직경 방향으로 반으로 자른 후 절단면이 아래로 가도록 임베딩했을 때 가장 좋은 절편 결과를 얻을 수 있습니다. 여기서 입증된 바와 같이, 스폰지 절편은 이 그림과 같이 스폰지의 전체 너비가 모두 포함되도록 제작해야 합니다. 왼쪽의 스폰지는 절편의 오른쪽 가장자리를 따라 조직 경계가 파손된 것으로 보아 임베딩 또는 절편 제작이 잘못되었으며, 반면 오른쪽의 손상되지 않은 스폰지는 올바르게 처리되었습니다.이 영상을 시청한 후, 생쥐의 상처 치유를 연구하기 위해 폴리비닐 알코올 스펀지를 준비, 이식, 주입 및 제거하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

인간 perivascular 줄기 세포는 (PSCs) mesenchymal 줄기 세포 (MSCS)와 유사한 골격 조직 재생을위한 소설 줄기 세포 클래스입니다. PSCs는 표준 지방 흡입 절차 동안 조달 지방 조직에서 FACS (형광 활성 세포 분류)에 의해 격리 수 있습니다 다음, 뼈 형성을 달성하기 osteoinductive 비계와...

뼈 재생을위한 인적 Perivascular 줄기 세포의 이용

이 프로토콜은의 고립을 설명 지방 - 파생 lipoaspirate과 골격 재생을 평가하는 4mm 중요한 크기 calvarial 결함의 생성의 stromal 세포를.

Lipoaspirate에서 수확 지방 - 파생 Stromal 셀을 사용하여 임계 크기 Calvarial 결함 모델의 수리

근원:오션 E. 클라크1, 로미 A. 돕1, 톰 헤이셀1, 조앤 L. 포더길1, 다니엘 R. 닐21리버풀 대학교, 2 던디 대학교이 비디오는 카테터 관련 요로 감염을 시뮬레이션하기 위해 요로 카테터의 내부 표면을 모방하는 3D 프린팅 실리콘 코팅 장치의 사용을 보여줍니다.

카테터 관련 요로 감염을 모델링하기 위한 3D 프린팅 실리콘 코팅 장치

이 비디오에서는, 우리는 그들의 기능을 개선하고 세포의 이동을 제어하는​​ 다공성 금속 임플란트에 대한 수정 방법을 보여줍니다. 기술은 3D 및 기저막의 생산은 2-D에서 세포의 움직임을 제어하는​​ 모방에서 세포의 움직임을 제어하는​​ 기공 그라디언트의 개발을 포함한다. 또한, 혈액 단백질의 분석을 통해 생체의 모니터링 임플란트 통합을위한 HPLC 기반 방법이 설명되어 있습니다.

모공 그라디언트, 고분자 전해질 및 그들의 간접적 인 모니터링과 금속 임플란트의 멀티 스케일 변경<em&gt; 생체 내</em

골전도성과 생체 활성을 나타내면서 두개-악안면(CMF) 뼈 결점에 맞을 수 있는 골격이 관심 대상입니다. 이 프로토콜은 융합염 템플릿을 사용하고 생체 활성 폴리도파민 코팅을 적용하기 위해 용매 주조 미립자 침출(SCPL) 방법을 사용하여 폴리카프로락톤 디아크릴레이트(PCL-DA)를 기반으로 하는 형상 기억 스캐폴드를 준비하는 방법을 설명합니다.

생리 활성, PCL 기반 &quot;셀프 피팅&quot;형상 기억 폴리머 비계의 제작

여기, 선물이 세균성 세포 생존 및 형태학 상 특성의 분석을 포함 하 여 치과 보 철물 abutments에 대 한 티타늄 및 지 르 코니 아 재료에 구두 biofilm 형성 평가 하는 프로토콜. 현장에서 모델 관련 강력한 현미경 검사 법 기술 된 구두 biofilm 분석에 사용 됩니다.

치과 임 플 란 트에 대 한 다른 자료에 구두 Biofilm 형성

큰 뼈 장애 복구에 대 한 설계 새로운 생체 재료의 수는 지속적으로 뼈 이식 수술과 관련 된 합병증을 극복 하 고 뼈 치유 향상을 목표로 확장 됩니다. 여기, 우리는 뼈 수리에 대 한 생체의 전 임상 생체 적합성 테스트를 위한 종합 전략을 제시.

뼈 재생을 위해 생체에서 생물학적 호환성 프로필

아래에 기재된 것은 자유롭게 움직이는 쥐에서 만성 전기생리학적 기록을 위해 해부학적으로 먼 뇌 영역에 걸쳐 다중 폴리머 전극 어레이를 이식하는 방법이다. 준비 및 외과 이식은 다른 종에서 사용하기 위해 이러한 방법의 적응을 안내하는 디자인 원칙에 중점을 두고 자세히 설명됩니다.

다중 유연한 폴리머 전극 어레이의 만성 이식

이 프로토콜은 스테인리스강 k-와이어 임플란트가 생물 발광 황색포도상구균 Xen36에 감염된 척추 임플란트 감염의 새로운 생체 내 마우스 모델을 설명합니다. 박테리아 부담은 생물 발광 이미징으로 종단적으로 모니터링되고 안락사 후 콜로니 형성 단위 수로 확인됩니다.

척추 임플란트 감염의 In Vivo 마우스 모델

여기서, 2개의 뮤린 상처 치유 모델이 기술되고, 하나는 세포 및 사이토카인 상처 치유 반응을 평가하기 위해 고안되고 다른 하나는 상처 폐쇄의 속도를 정량화하도록 설계된다. 이 방법은 가난한 상처 치유의 각종 양상에 의하여 기계장치를 결정하기 위하여 당뇨병과 같은 복잡한 질병 모형으로 이용될 수 있습니다.

등지성 폴리비닐 알코올 스폰지 이식 및 절제 꼬리 피부 상처 모델을 사용하여 급성 상처 치유의 평가.

줄기 세포 유래 심근 세포를 사용하여 생체 공학적으로 설계된 3차원 심장 조직은 건강한 심근과 병든 인간 심근 을 체외 에서 연구하는 동시에 천연 심장 틈새 시장의 주요 측면을 요약하기 위한 유망한 모델로 부상했습니다. 이 원고는 인간 유도 만능 줄기 세포 유래 심근세포에서 생성된 high-content engineered 심장 조직을 제작하고 분석하기 위한 프로토콜을 설명합니다.

공학적 심장 조직의 데이터 수집 및 모델 처리량을 개선하기 위한 바이오리액터 설계

배우세요 생쥐의 상처 치유를 모델링하는 폴리비닐 알코올 스폰지 주입 기법을. 수화, 이식, 치료제 주입 및 분석을 통해 생물학적 과정을 정량적으로 연구할 수 있습니다.

폴리비닐 알코올 스폰지 모델 주입

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