Name: 의 이스케이프 문제의 Optogenetic의 자극 Drosophila melanogaster (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-01-25T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 3 s
Description: 학습하세요 Drosophila melanogaster에서 광유전학적 자극을 이용한 도주 행동 분석 방법입니다. Channelrhodopsin2로 특정 뉴런을 활성화하여 시각엽의 위협 감지 신경회로를 연구할 수 있습니다.

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이 작품은 스탠포드 딘의 휄로 십 (SEJdV), 건강 감독 개척자 상 국립 연구소 (TRC DP0035350), 일행 재단 학술의 상 (TRC)와 R01 EY022638 (TRC)에 의해 재정 지원되었다.

1. Channelrhodopsin의 파리를 생성 <ol><li> 선택한 Gal4 드라이버 크로스 UAS-ChR2 파리, 우리는 광 엽의 Foma-1 뉴런에 표시됩니다 G105-Gal4를 사용합니다. </li><li> 푸른 빛의 자극에 대한 시각적 반응의 가능성을 제거하려면 두 플라이 라인 아 + norpA 배경에 있습니다. </li><li> 최종 결과 : w + norpA, G105-Gal4/UAS-ChR2 + </li><li> 어른 eclose을 날아 후 행동 분석을 수행하기 전에 3 일 동안 10 μM 모든 횡단 망막 (ChR2에 필요한 공동 요소)와 빛으로부터 보호와 함께 보충 신선한 음식,에 선택한 여자를 넣어. </li></ol> 2. 10 μM 올 횡단 망막 강화 식품을 <ol><li> 20 MM은 망막하기 위해 95 % 에탄올의 17.6 ML의 모든 횡단 망막의 100 밀리그램을 분해. 모든 트랜스 - 망막은 항상 빛으로부터 보호하세요. </li><li> 전자 레인지에서 표준 cornmeal이 나는 음식을 녹여, 따뜻한 터치까지 시원 보자. </li><li> 20 MM 50 μl를 혼합플라이 식품의 10 ML 병에 모든 횡단 망막. </li><li> 튜브는 냉각과 빛으로부터 보호 하세. </li></ol> 3. 장비 <ol><li> Pipet 도움말 : 표준 1,000 μl pipet 팁은 ~ 2.25 mm의 구멍 직경을 만들어, 끝 가까이에 절단됩니다. </li><li> 플랫폼 (그림 1 참조). <ol><li> Delrin베이스는 17cm X 25cm는 ¼ &quot;NPT 냉각수 호스 커넥터에 맞게 각 모서리의 나사 구멍 건설되었습니다. </li><li> Delrin로 만든 수직 홀더는,베이스의 중심에 부착되어 있습니다. 전체 크기는 X 40mm X 65mm (폭 X 깊이 X 높이) 25mm입니다. 10mm 폭 홈은 맨 아래에 엄지 나사과 함께 홀더의 길이를 실행합니다. 플랫폼 홀더의 상단에 부착, 25mm X 40mm 홀더의 홈과 정렬 3.5 mm 직경의 구멍 X 10mm.입니다 </li></ol></li><li> LED 배열 (그림 1 참조). <ol><li> 냉각수 호스의 네 팔은 ~ 18cm 길이, 플랫폼 BAS에 부착된다냉각수 호스 커넥터를 사용하여 전자. 냉각수 호스는 구조 지원으로 만 사용되며 냉각 목적으로 사용되지 않습니다. </li><li> 제대로 간격 그루브는 각 팔의 끝 부분에 부착 히트 싱크를 각 팔을 뿌리고 냉각수의 마지막 작품으로 절단됩니다. </li><li> 파란색 LED가 반란군 트라이 스타는 사전 컷 열 접착 테이프를 사용하여 각 히트 싱크에 장착되어 있습니다. Carclo 18 ° 트라이 렌즈는 각각의 트라이 스타에 부착되어 있습니다. </li><li> LED 트라이 스타는 BuckPuck DC 드라이버와 같은 지정된 전원 공급 장치에 유선 수 있습니다. 우리는 각 BuckPuck이 시리즈의 두 트라이 별 전원과의 설정을 준비하고 있습니다. </li><li> 네 가지의 조명은 700에서 트라이 별 LED mA은 우리의 플랫폼에 713 W / m 2 조사량이 나왔고. </li></ol></li><li> 카메라 : 카메라는 작은 삼각대에 장착하고 플랫폼의 상단에 중점을두고 있습니다. </li></ol> 4. 행동 분석 <ol><li> 간단히 얼음에 파리가 마취시키다. </li><li> 종료 테이프를 사용하여, pipet 팁에서 개별의 파리를 삽입둘 다 끝의 끝납니다. </li><li> 파리는 awoken하고 적극적으로 pipet 팁을 답사 한 후, 테이프를 제거하고 수직 홀더의 홈에 pipet를 놓습니다. 나비 나사는 장소에 pipet 팁을 확보하고 팁의 바닥을 닫습니다하는 데 사용됩니다. </li><li> 파리가 pipet 팁을 (일반적으로 30-60 초) 탐구으로 파리가 플랫폼으로 끝에서 나온다는 전에 카메라 녹화를 시작합니다. </li><li> 파리가 플랫폼에 등장 후, 1-2 seco를 기다렸는데, 파란색 LED가 켜십시오. 파리가 비행을 시작 할 때까지 수동으로 시간을 측정하는 타이머를 사용합니다. </li></ol>

<ol><li>Venken, K., Simpson, J., Bellen, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+manipulations+of+genes+and+cells+in+the+nervous+system+of+the+fruit+fly%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Genetic manipulations of genes and cells in the nervous system of the fruit fly.</a> Neuron. 72, 202-230 (2011).</li>
<li>Gordon, M., Scott, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Motor+control+in+a+Drosophila+taste+circuit%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Motor control in a Drosophila taste circuit.</a> Neuron. 61, 373-384 (2009).</li>
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<li>Zhang, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Red-shifted+optogenetic+excitation%3A+a+tool+for+fast+neural+control+derived+from+Volvox+cateri%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Red-shifted optogenetic excitation: a tool for fast neural control derived from Volvox cateri.</a> Nature Neuroscience. 11, 631-633 (2008).</li>
</ol>

관심 없음 충돌이 선언 없습니다.

<html> 우리는 밝은 푸른 빛으로 파리를 도보로 자유롭게 수영하여 도망가는 방법을 optogenetic 자극을 보여주고 있습니다. 이 접근 방식은 쉽게 자유롭게 도보로 파리에서 다른 행동을 조사하도록 구성 할 수 있으며, 단순히 우리가 더 큰 영역 사용되는 LED 배열을 기와 지붕으로 더 큰 플랫폼으로 확장 할 수 있습니다. 사용자가 재단사, 우리가 설명 저렴한 카메라, 또는 기타 사용 가능한 카메라 시스템 중 하나를 할 수 사용하여 이미지의 프레임 속도와 공간 해상도는 관심의 동작에 맞게 인수했습니다. 파란색 LED가 카메라뿐만 아니라 ChR2의 활성화를 위해 조명을 제공하는 LED가, 조명 된 후에 또한, 우리의 영상은 시간으로 제한됩니다. 이 우리의 행동에 대한 충분하지만, 이전의 LED 조명에 파리의 위치 나 운동 기록해야하는 경우, 카메라의 적절한 필터링과 결합 적외선 범위에서 신호를 제공하는 추가 광원이 통합 될 수 있습니다. _content는 &quot;&gt; Optogenetics 널리 신경 활동을 조...

유전자 인코딩 도구의 성장 아스날이 Drosophila melanogaster 1 특정 셀의 신경 활동을 조작하기 위해 개발되었습니다. 이 도구는 온전하고 자유롭게 움직이는 동물에서 특정 뉴런의 비 침투 활성화 또는 입을 할 수 있습니다. 이 시간적으로 통제하고 빠르게 유도 할 수 있기 때문에이 중, Channelrhodopsin2 (ChR2), 빛 활성 양이온 채널, 주요 장점을 제공합니다. 경우 명시 적 ChR2은 그들이 빠르게 depolarize 3 ~ 5 높은 발사 속도를 나타내는 밝은 파란색 (470 nm 정도) 빛에 노출되는 뉴런. 자유롭게 움직이는 동물에서 특정 뉴런의 이러한 목표 활성화는 CO 2 회피 3, 코 확장 2,4, 그리고 거대한 섬유 매개 펄쩍 뛰게하다 응답 4와 같은 행위에 대한 특정 뉴런의 자족을 공개했다. 그러나, ChR2을 자극 할 필요가 강렬한 광원으로도 조합을 적용, photoreceptors을 자극시각 시스템에 togenetic 기술이 제한되었습니다. phototransduction을 impairs 돌연변이가있는 optogenetic 접근 방식을 결합하여, 우리는 파리의 광 엽의 뉴런의 특정 클러스터의 활성화가 충돌 6 방지하는 데 사용되는 탈출 행동을 유도 할 수있는 증명하고있다. 대부분 경우 모든 시각적 인 동물은 다가오는 객체와 충돌을 피하기 위해 탈출 행동을 나타냅니다. 나타난 충돌로 제시 할 때 파리를 산책하거나 고정, 멀리 다가오는 충돌 7-9에서 비행기로 이륙. 이러한 테이크 오프는 이륙과 불안정한 비행 궤적 10,11 이전 제기 날개를 특징으로하고 있습니다. 이 응답은 거대한 섬유 매개 펄쩍 뛰게하다 응답 제기 날개 앞에는되지 점프 별개이며, 일반적으로 자유 낙하 회전식 4,9의 결과. uniqu있는 광 엽, Foma-1 뉴런에 직기 민감한 뉴런의 특정 클러스터를 식별 것으로일리가 접근 객체를 인코딩 조정, 우리는 파리의 직기 이스케이프 동작에서의 참여를 조사 모색하고 있습니다. 여기 선택적으로 이러한 뉴런을 활성화하고 파리의 탈출 행동을 유도 할 수 optogenetics의 사용을 보여줍니다. 우리는 Foma-1 뉴런에 ChR2의 표현을 유도 할 Gal4-UAS 전사 활성 시스템을 사용합니다. ChR2는 cofactor는 모든 횡단 망막 필요하며이 작업은 Drosophila 중추 신경 시스템의 낮은 수준에서 발견됩니다로는 파리 &#39;의 음식에 보충해야합니다. 밝은 빛이 ChR2를 활성화하는 데 사용되는 파리는 강력한 phototactic 행동을 전시하고 있습니다 3,4으로 12 우리는 자극에 대한 시각적 반응의 가능성을 제거하기 위해 모색하고 있습니다. 이 작업을 수행하려면, 우리는 phototransduction 층계의 중요한 구성 요소 phospholipase C-β를 인코딩 norpA 유전자의 null이 allele에 대한 homozygous 돌연변이했다 동물을 사용했습니다. 이러한 돌연변이 파리의 Photoreceptors는 책임을 할 수 없습니다d는 13 불입니다. 탈출 응답의 optogenetic 자극을 테스트하기 위해, 우리는 하나의 플라이를 분리하고 밝은 푸른 빛에 목욕을해야합니다. 이 작업을 수행하기 위해, 우리는 pipet 팁에서 개별 파리 배치합니다. 하나 pipet 팁은 파리가 geotactically 팁을 걸어 그러한와 아웃 사각형 플랫폼으로 사용자 정의 홀더에 배치됩니다. 파리가 자유롭게이 플랫폼의 상단에 돌아 다닐 할 수 있습니다. 플랫폼은 플랫폼의 상단에 초점을 맞춘 네 푸른 색 LED 배열, 각 포함 3 개의 LED로 둘러싸여 있습니다. 파리가 플랫폼에 후, LED를 조명하고 있으며, 파리의 응답은 고속 카메라 6을 사용하여 기록됩니다.

<table border="1"><tbody><tr><td></td><td></td><td></td><td> 시약 </td></tr><tr><td> 망막 모든 트랜스 </td><td> 사전 과학 및 화학 주식회사 </td><td> R3041 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> 장비 </td></tr><tr><td> 열은 9.2 C / W 싱크 </td><td> Luxeonstar </td><td> LPD30-30B </td><td> 높은 30mm 사각형 X 30mm </td></tr><tr><td> Carclo 18 ° 트라이 렌즈 </td><td> Luxeonstar </td><td> 10,507 </td><td></td></tr><tr><td> 블루 반란군은 트라이 스타 Base에 LED가 </td><td> Luxeonstar </td><td> MR-B0030-20T </td><td> 470 나노 미터, 174 LM @ 700mA. </td></tr><tr><td> 700mA BuckPuck DC 드라이버 </td><td> Luxeonstar </td><td> 3021-DE-700 </td><td></td></tr><tr><td> BuckPuck 드라이버에 대한 배선 하니스 </td><td> Luxeonstar </td><td> 3021 - HE </td><td></td></tr><tr><td> 사전 컷 열 접착 테이프 </td><td> Luxeonstar </td><td> LXT-S-12 </td><td> 20mm 헥스베이스 </td></tr><tr><td> 스냅 LOC 냉각수 호스, ¼ &quot;ID </td><td> McMaster - 카 </td><td> 5307K49 </td><td></td></tr><tr><td> 스냅 LOC 냉각수 호스 커넥터 </td><td> McMaster - 카 </td><td> 5307K39 </td><td> ¼ &quot;NPT의 남자 </td></tr><tr><td> 연구소 학년 스위칭 모드 프로그램 DC 전원 공급 </td><td> BK 정밀 </td><td> 1698 </td><td></td></tr><tr><td> Exilim 카메라 </td><td> 건반 </td><td> EX-FH20 </td><td></td></tr></tbody></table>

의 이스케이프 문제의 optogenetic의 자극<em&gt; drosophila melanogaster</em

Optogenetic Stimulation of Escape Behavior in Drosophila melanogaster

유전자 인코딩 도구의 수가 증가하고 Drosophila melanogaster 1 특정 뉴런의 신경 활동의 비 침습적 조작을 허용 가능 해지고 있습니다. 이 중 최고는 밝은 빛을 사용하여 온전하고 자유롭게 움직이는 동물에서 특정 뉴런의 활성화 또는 입을 수 있도록 optogenetic 도구입니다. Channelrhodopsin (ChR2)는 푸른 빛에 의해 활성화 될 때를 표현 뉴런의 탈분극을 초래, 밝은 활성화 양이온 채널입니다. ChR2는 CO 2 회피, 코 확장 및 대형 섬유 매개 펄쩍 뛰게하다 응답 2-4과 같은 특정 행동에 대한 중요한 뉴런을 식별위한 효과적인 왔습니다. 그러나, 또한 ChR2을 자극 photoreceptors를 자극하는 데 사용되는 강렬한 광원으로,이 optogenetic 기술은 이전 영상 시스템에 사용되지 않았습니다. 여기, 우리는 데모로 phototransduction을 impairs 돌연변이로 optogenetic 접근 방식을 결합파리의 광 엽, Foma-1 뉴런의 직기에 민감한 뉴런의 클러스터의 활성화를 nstrate, 충돌을 피하기 위해 사용하는 탈출의 행동을 유도 할 수 있습니다. 우리는 phototransduction 층계의 중요한 구성 요소의 널 allele을 사용 norpA 유전자에 의해 인코딩 phospholipase C-β는 장님이 날아 렌더링하고 있으며, Foma-1 ChR2의 표현을 유도 할 Gal4-UAS 전사 활성 시스템을 사용하는 뉴런. 개별 파리는 푸른 LED가 둘러싸인 작은 플랫폼에 배치됩니다. LED가 조명 때, 시각적으로 구동 직기 - 탈출의 행동과 비슷한 방식으로, 비행으로 신속하게 이륙 이동합니다. 우리는이 기술을 쉽게 자유롭게 파리를 이동 다른 행동을 조사하도록 구성 될 수 있다고 생각합니다.

맹인 중 하나 ChR2 나 혼자 G105 드라이버 밝은 푸른 빛의 조명에 따라 이륙의 낮은 속도를 보여을 표현 이동합니다. 맹인이 테이크 오프이 파란색 빛과 조명으로 인해 자연이었다 아닌 것을 제안에 관계없이 조명 (그림 2)의 이륙 같은 속도를 전시 이동합니다. ChR2이 Foma1 뉴런으로 표현 될 때, 그러나, 푸른 빛 조명이 탈출 응답을 elicits. 테스트 파리의 50 % 이상은 조명의 1 초 이내에 이륙, 5 초 내에 75% (그림 2). 반면, 제어 파리의 10 %가 1 초 이내에 이륙, ​​5 초 내 20 %. G105 드라이버가 Foma-1 뉴런과 버섯 몸의 γ-엽에 모두 표현으로, 우리는 특별히 추가 컨트롤로 버섯 본문 (201Y-Gal4)의이 부분에 표현 드라이버를 사용했습니다. 이 파리는 (그림 2 수행 한 다른 컨트롤과 비슷한 이륙의 속도를 전시), Foma-1 뉴런의 optogenetic 활성화 탈출 응답을 e...

유전자 인코딩 optogenetic 도구에서 특정 뉴런의 비 침투 조작을 수<em&gt; Drosophila</em&gt; 뇌. 이러한 도구는 해당 인증 특정 행동을 유도하거나 억제하기에 충분한 뉴런을 식별 할 수 있습니다. 여기 자유롭게 산책 파리의 대상 뉴런에 표시됩니다 Channelrhodopsin2를 활성화하기위한 방법을 제시한다.

의 이스케이프 문제의 Optogenetic의 자극<em&gt; Drosophila melanogaster</em

A  growing number of genetically encoded tools are becoming available that allow non-invasive  manipulation of the neural activity of specific neurons in ...

이 절차의 전반적인 목적은 광유전학적 자극을 사용하여 자유롭게 걷는 파리의 특정 뉴런을 활성화하여 파리 탈출 반응에 대한 관여를 테스트하는 것입니다. 이것은 먼저 모든 트랜스 망막이 보충된 음식에서 자란 적절한 유전자형의 파리로 시작함으로써 달성됩니다. 두 번째 단계는 피펫 팁에 개별 파리를 배치하는 것입니다.다음으로, 피펫 팁은 LED로 둘러싸인 맞춤형 홀더 안에 넣습니다. 마지막으로, 파리가 플랫폼에 나타나면 파란색 LED를 켜서 최종적으로 기록합니다. 이륙 시간은 파리의 시신경에 있는 민감한 뉴런이 파리의 탈출 행동에 충분하다는 것을 보여줍니다.기존 광유전학적 방법에 비해 이 기술의 주요 장점은 청색광에 대한 시각적 반응을 제거함으로써 파리의 시각 시스템에서 광유전학을 사용할 수 있다는 것입니다. 이 방법은 탈출 행동과 비행 시작에 대한 통찰력을 제공할 수 있지만 자유롭게 걷는 파리의 다른 행동에도 적용할 수 있습니다. 표준 옥수수 가루를 녹이는 것으로 시작하여 전자 레인지에 음식을 날려 넣고 만졌을 때 따뜻해질 때까지 식히십시오.한 번 호출하면 이전에 준비된 20 밀리 몰의 50 마이크로 리터를 각 바이알에 모두 혼합합니다. 그런 다음 바이알을 식히고 필요할 때까지 빛으로부터 보호하십시오. 첫 번째 교차 UAS 채널은 적절한 GAL 4를 가진 파리로 떨어집니다.드라이버 G 1 0 5. GAL 4는 시신경의 포모 1 뉴런에서 발현하기 위해 여기에 사용되었습니다. 두 선 모두 청색광 자극에 대한 시각적 반응 가능성을 없애기 위해 흰색 플러스 또는 유료 배경에서 가져와야 합니다.12-13 일 십자가 후 흰색 플러스 도 지불 G 1 0 5, GAL 4 uas. CR 두 개의 긍정적 인 파리가 얻어집니다. 성인 여성을 신선한 음식으로 옮기고, 행동 분석을 수행하기 전에 3일 동안 10마이크로몰의 모든 트랜스 망막을 보충합니다.장치의 바닥은 17cm x 25cm 크기의 폴리옥시에틸렌 조각으로 구성되며, 각 모서리에 나사 구멍이 있어 1/4인치 NPT 냉각수가 맞으며, 바닥에 부착된 호스 커넥터는 수직 폴리옥시에틸렌 조각입니다. 10mm 너비의 홈이 홀더의 길이에 걸쳐 있으며 바닥에 나비 나사가 있습니다. 플랫폼은 홀더의 홈과 정렬된 직경 3.5mm의 구멍으로 홀더 상단에 부착됩니다.약 18cm 길이의 냉각수 호스의 팔뚝은 LED의 구조적 지지대로 냉각수 호스 커넥터를 사용하여 플랫폼 베이스에 부착됩니다. 각 암의

optogenetic-stimulation-of-escape-behavior-in-drosophila-melanogaster

Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

광유전학은 빛을 사용하여 특정 옵신(optins)을 발현하도록 유전자 조작된 뉴런(neuron)을 조작할 수 있도록 합니다. 여기에서는 옵신 Channelrhodopsin2를 사용하는 초파리의 광유전학적 접근법을 설명합니다. 예제 프로토콜은 파리의 탈출 행동 뒤에 있는 신경 회로를 연구하기 위한 광유전학 분석 세트를 특징으로 합니다.

초파리 광유전학: 신경 회로를 조작하는 방법

이 비디오는 후각 감각 뉴런(ORN)의 광유전학적 자극에 대한 초파리 유충의 탐색 행동에 대한 연구를 보여줍니다. ORN에서 빛에 민감한 이온 채널을 발현하는 형질전환 초파리 유충은 행동 영역 내의 아가로스에 배치됩니다. 빛을 이용한 광유전학적 자극은 채널을 열어 양이온 유입을 일으켜 뇌로 신호 전달을 유발하고 탐색 행동이 기록됩니다.

후각 감각 뉴런의 광유전학적 자극에 반응하는 초파리 유충의 탐색 행동

준 그대로의 모터 출력의 변화 (근육 수축) 모니터링하면서 여기에 우리가 motoneuronal 활동 optogenetic 조작에 대한 프로토콜을...

세미 그대로의 레이저 조명과 신경 활동의 Optogenetic 섭동<em&gt; 초파리</em모션&gt; 유충

이 비디오 문서에서는, 우리는 초파리 비행 성인 과일의 후각에 의존 식품 검색 행동에 대한 배고픔이나 포만감의 효과를 측정 할 수있는 자동화 된 분석을 설명합니다.

먹이 찾아 돌아다 행동에 대한 단일 비행 분석에 초파리

여기에서는 스트레스를 받는 개인의 회피를 정량화하는 프로토콜을 제시합니다. 이 패러다임은 강력하면서도 사용자 친화적이며 Drosophila melanogaster의 한 종류의 사회적 상호 작용에 대한 유전자와 환경의 영향을 평가하는 데 사용할 수 있습니다.

사회 회피의 정량화에 대한 간단한 분석 초파리

자동화 추적 시스템 Flywalk는 초파리에서 냄새 유도 행동 고해상도 정량화를 위해 사용된다.

에서 냄새 유도 행동의 고해상도 정량화<em&gt; 초파리</em사용&gt;<em&gt; Flywalk</em&gt; 패러다임

이 프로토콜 분석 초파리 애벌레 동시 optogenetic 그것의 후 각 신경의 자극에 대 한 응답에서의 탐색 동작 합니다. 630 nm 파장의 빛은 빨간색 이동 채널 rhodopsin 표현 개별 후 각 신경 세포를 활성화 하는 데 사용 됩니다. 애벌레의 움직임이 동시에 추적 하 고 디지털 기록, 사용자 작성 소프트웨어를 사용 하 여 분석.

초파리 애벌레 동작 Optogenetic 후 각 신경의 자극에 대 한 응답 추적

이 프로토콜은 초파리 애벌레 광전술 행동을 조사하기 위해 빛 점 분석기를 소개합니다. 이 분석에서, 광 반점은 빛 자극으로 생성되고, 애벌레 광 회피의 과정은 적외선 광 기지를 둔 화상 진찰 시스템에 의해 기록됩니다.

초파리 애벌레 광택시 분석을 위한 빛 스팟 기반 분석

이 작품은 성인 과일 파리에서 역경 연관 학습의 분석을 허용하는 간단한 행동 패러다임을 설명합니다. 이 방법은 특정 환경 적 맥락과 감전 사이에 형성된 협회로 인해 타고난 음극식 행동을 억제하는 데 기반을 두고 있습니다.

초파리 연관적 역경 학습을 연구하는 새로운 패러다임으로서의 수동적인 회피 행동

이 논문은 CsChrimson 및 GtACR2를 활용하여 특정 뉴런을 활성화하고 침묵시키는 Drosophila melanogaster의 광유전학적 조작 방법을 제시합니다. 광유전학을 활용하여 열택 및 미각 행동을 탐구하고 이러한 과정을 제어하는 기본 신경 메커니즘에 대한 통찰력을 제공하는 네 가지 실험이 설명됩니다.

Drosophila melanogaster에서 신경 회로의 광유전학적 조작을 위한 행동 분석

학습하세요 Drosophila melanogaster에서 광유전학적 자극을 이용한 도주 행동 분석 방법입니다. Channelrhodopsin2로 특정 뉴런을 활성화하여 시각엽의 위협 감지 신경회로를 연구할 수 있습니다.

의 이스케이프 문제의 Optogenetic의 자극

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