2013년 1월 9일
우리는 라이브 세포 영상 현미경에 대한 방법을 설명 칸디다 알비 칸스 phagocytosis. 이 방법은 대 식세포 마이그레이션, 인식, engulfment과 phagosome 성숙의 단계 별 분석을 사용하고 phagocytosis의 소설 측면을 알 수있다.
이 절차의 전반적인 목적은 인간 진균 병원균인 칸디다 알비칸스(Candida albicans)의 식세포작용(phagocytosis)을 연구하기 위해 라이브 셀 비디오 현미경 검사 실험을 수행하는 것입니다. 이것은 하룻밤 사이에 칸디다 알비칸스(candida albicans)에서 첫 번째 배양에 의해 이루어지므로 고정상에 들어갑니다. 다음 단계는 J 7 74 대식세포를 35mm 유리 바닥의 이미징 접시에 플레이트하고 밤새 배양하는 것입니다.
다음 날, 칸디다 알비칸스(candida albicans)는 pH에 민감한 Zi로 염색되고 대식세포의 산성 소기관은 리소 트래커 레드(liso tracker red)를 사용하여 염색됩니다. 마지막 단계는 J 7 7 7 4 대식세포가 칸디다 알비칸스(candida albicans)와 함께 배양되는 식세포작용(Phagocytosis) 분석 동영상을 만드는 것입니다. 궁극적으로 결과 비디오는 대식세포 이동 인식, 삼킴 및 FGA 영역 성숙에 대한 단계적 태평양 분석을 보여줄 수 있습니다.
면역 세포 화학과 같은 기존 방법에 비해 이 기술의 주요 장점은 라이브 비디오 현미경을 사용하여 관찰된 차이를 영향을 받을 수 있는 이동, 삼킴 및 식체 성숙과 같은 개별 단계로 분해할 수 있다는 것입니다. 차등적으로, 이 방법은 캐나다 Acan의 식세포작용에 대한 통찰력을 제공할 수 있습니다. 또한 다른 병원체, 수지상 세포 및 호중구를 포함한 식세포와 같은 다른 시스템에 적용할 수 있습니다.
이 배양은 SC 마이너스 U 한천 플레이트의 고급 준비를 필요로 합니다. 그들은 냉장 보관할 수 있으며, 섭씨 영하 80도에서 저장된 글리세롤 스톡에서 CI 4 플러스 CLP 10 균주 인 칸디다 알비칸 혈청형을 SC U 한천 플레이트에 줄무늬를 그리는 것으로 시작합니다. 일반적으로 48시간 동안 군체가 형성될 때까지 섭씨 30도에서 플레이트를 배양합니다.
이 시점에서 플레이트는 사용할 준비가 될 때까지 섭씨 4도에서 보관할 수 있습니다. 이제 단일 콜로니를 선택하고 200RPM으로 설정된 로커에서 섭씨 30도에서 하룻밤 동안 5밀리리터, SCU 또는 미디엄으로 배양합니다. 이것은 고정상 칸디다 알비칸스를 생성합니다.
pH 7.4에서 990마이크로리터의 PBS에 하룻밤 배양한 칸디다 알비칸스 10마이크로리터를 추가하고 혈구분석기를 사용하여 세포 계수를 수행하여 암흑 실온에서 10분 동안 Zi를 사용하여 1억 개의 칸디다를 염색하는 식세포작용 분석 중에 칸디다 알비칸스를 시각화합니다. 다음으로, PBS에서 칸디다 알비칸스를 세 번 세척하여 결합되지 않은 피지를 제거하고 3000배 G에서 5분 동안 칸디다 원심분리기를 세척합니다. sup natant를 제거하고 PBS Reese 1ml에 펠릿을 다시 현탁시킵니다.
PBS의 최종 펠릿을 마이크로리터당 100만 개의 세포 농도로 현탁시킵니다. 이 프로토콜을 위해 플라스크에서 5%의 이산화탄소를 섭씨 37도의 DMEM에 보충한 75cm 정사각형 조직 배양 플라스크에 J 7 7 4 0.1 대식세포의 배양을 준비했습니다. 대식세포를 폐기하여 50ml Falcon tube Centrif로 옮깁니다.
대식세포를 600배 G로 5분 동안 사용하여 세포 구개를 얻습니다. supinate를 제거하고 전쟁 전 보충 된 DM dmm 10 밀리리터에 펠릿을 다시 현탁시킵니다. 이제 혈세포 분석기를 사용하여 세포를 계수하고 2밀리리터의 보충된 DMM 배지와 함께 35mm 유리 기반 이미징 접시에 100만 개의 세포를 플레이트
화합니다.섭씨 37도에서 하룻밤 동안 접시를 배양하고 다음날 5%의 이산화탄소로 접시를 배양합니다. 이미징하기 전에 보충된 DMM 배지를 1마이크로몰의 Liso tracker red DND 99 및 DMM과 동일한 보충제를 포함하는 2ml의 예열 이산화탄소 독립 배지로 교체합니다. 현미경 설정에는 섭씨 37도로 가열된 반전 스테이지와 환경 챔버, 선택한 염색에 대한 여기 방출 필터가 포함되어야 합니다.
이 예에서는 적용된 정밀 델타 비전 코어가 사용됩니다. 먼저 현미경 히터를 켜서 제어실이 섭씨 37도까지 따뜻해지도록 합니다. 그런 다음 현미경과 컴퓨터를 켜고 이미징 소프트웨어를 로드하고 이미징 접시를 현미경 스테이지에 장착하고 초점을 조정하여 J 7 74 0.1 대식세포를 찾습니다.
투과광의 비율과 노출 시간을 조정하여 trixi 및 DIC 이미지의 모양을 최적화합니다. 이미징 접시를 제거하고 300만 마리의 fitsy stained candida albicans를 접시에 추가합니다. 시간을 기록하고 접시를 스테이지로 되돌리고, 필요한 경우 fitzy 이미지의 모양을 최적화하고, 필요한 경우 이미징 소프트웨어에서 관심 지점을 설정합니다.
이제 모든 지점에 초점이 맞춰지고 채널이 최적화되면 이미징을 시작합니다. 6시간 동안 1분마다 fitzy, trixi 및 DIC 이미지를 캡처합니다. 이 단계는 절차에서 가장 중요한 단계입니다.
현미경을 올바르게 설정하려면 시간이 걸립니다. 영화의 노출이 부족하거나 과도하거나 초점이 맞지 않으면 사용할 수 없으며 실험을 반복해야 합니다. 이 대표적인 비디오는 쥐 대식세포 세포주 J 7 : 74 0.1에 의한 칸디다 알비칸스 흡수를 보여줍니다.
6시간 동안 진행된 라이브 셀 비디오 현미경 실험에서 녹색의 칸디다 알비칸스를 pH 민감성 염료 fitsi를 사용하여 염색했으며, 이는 대식세포 식체의 산성화 과정에서 담금질되었습니다. 따라서 칸디다균이 내재화되었을 때를 확인하면서, 대식세포의 산성 구획을 적색 형광 염료로 염색했습니다. 이 실험에서 J 7 74 0.1 대식세포가 섭취한 칸디다 알비칸스의 수가 다양하다는 것을 주목하라, J 7 74 0.1 대식세포의 82%가 6시간 이내에 적어도 하나의 칸디다 알비칸 세포를 삼켰다.
대식세포 한 마리당 흡수되는 칸디다 알비칸스의 평균 수는 3.4개였지만, 흥미롭게도 대식세포는 최대 16개의 곰팡이 세포를 섭취할 수 있었습니다. 이 데이터를 통해 대식세포와 칸디다 알비칸스(candida albicans)를 인식 및 흡수 전과 중에 관찰할 수 있습니다. 칸디다 알비칸스 하이어(Candida albicans hyer)는 대식세포 내에서 계속 성장할 수 있으며, 이는 대식세포 용해를 초래할 수 있습니다.
이 동영상을 시청한 후에는 J 7 7 4 0.1 마이크로파지와 같은 세포주에서 칸디다 알비칸스를 사용하여 라이브 셀 비디오 현미경 검사 실험을 수행하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다. 두 세포 유형의 하룻밤 배양을 설정하고 phagocytosis assay를 수행할 수 있어야 하며, 이를 통해 이동 인식 및 삼킴에 대한 단계별 특이적 분석과 phagosome maturation도 수행할
수 있습니다.이 기사는 대식세포에 의한 Candida albicans의 식균작용을 연구하기 위한 생체 세포 비디오 현미경 검사 방법을 설명합니다. 이 기술은 대식세포의 이동, 인식, 섭취, 식포체 성숙의 단계별 분석을 가능하게 합니다.
Live-cell video microscopy enables stage-specific analysis of phagocytosis, providing dynamic insights into host-pathogen interactions critical for target validation in anti-infective discovery. By resolving migration, engulfment, and phagosome maturation as distinct, quantifiable events, the method supports mechanistic de-risking of immunomodulatory candidates and enhances predictive confidence in early-stage immunomodulator screening. This approach addresses a key gap in static assays that fail to capture temporal dynamics of immune cell function, thereby improving translational relevance in antifungal and immunomodulator development pipelines.
The method integrates into the discovery continuum from target hit validation through lead optimization, providing mechanistic resolution that bridges phenotypic screening and preclinical efficacy assessment.