2013년 6월 7일
압력 myography에서 혈관의 손상 작은 세그먼트는 두 개의 작은 캐 뉼러에 장착하고 적절한 내강 압력으로 가압. 여기, 우리는 마우스 3의 혈관 이완 반응을 측정하는 방법을 설명 회 주문 장간막 동맥 1 - / - 압력 myography를 사용하여 마우스.
다음 실험의 전반적인 목표는 생리학적 조건에 가까운 생리학적 조건에서 체외에서 마우스 저항성 동맥의 실시간 혈관 반응성을 결정하는 것입니다. 이는 용기의 작은 부분을 두 개의 마이크로 캐뉼러에 장착하고 생리적 내강 압력으로 유지함으로써 달성됩니다. 그런 다음 혈관을 알파 원 수용체 작용제인 페닐에프린으로 수축시켜 혈관을 확장하는 약물의 능력을 연구합니다.
수축된 혈관에 아세틸콜린을 투여하면 내피 의존 메커니즘을 통해 실시간으로 팽창하는 능력을 평가합니다. 결과는 아세틸콜린에 대한 반응으로 내강 직경의 백분율 변화를 보여주고 SGC 알파 1 결핍이 내피 의존성 혈관 확장 장애를 초래한다는 것을 확인합니다. 와이어 마모 조영술과 같은 기존 방법과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은 압력 마모 조영술이 큰 전도 혈관보다 혈압 항상성을 유지하는 데 더 관련이 있는 작은 미세 혈관의 특성화를 허용한다는 것입니다.
이 방법은 거대 저항성 혈관이 중요한 역할을 하는 고혈압과 같은 심혈관 분야의 핵심 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 펜토바르비탈로 쥐를 안락사시키는 것부터 시작한다. 이제 복강을 열고 장간막 조직을 해부하기 시작합니다.
이제 제3차 장간막 동맥을 확인하고 결합 및 지방 조직에서 분리하십시오. 미세혈관 수준에서 동맥과 정맥을 구별하는 것은 혈관에 혈액이 없을 때 문제가 됩니다. 따라서 온전한 동물에서 이 작업을 수행하는 것이 좋습니다.
다음으로, 2-3mm 길이의 3차 장간막 동맥 부분을 잘라 더미가 들어 있는 접시에 넣습니다. PSS 버퍼. 동맥 분절에는 분기가 없어야 합니다.
흡입구 및 배출구 밸브를 통해 캐뉼라를 힙으로 부드럽게 채워 myo 챔버를 준비합니다 PSS 용액 10밀리리터 주사기에서 과도한 압력은 캐뉼라에 연결된 깨지기 쉬운 변환기를 손상시킬 수 있습니다. 캐뉼러를 단단히 채운 후 두 밸브를 모두 닫습니다. 이제 분리된 동맥 분절을 챔버로 옮기고 혈관의 한쪽 끝을 오른쪽 캐뉼라에 장착합니다.
주사기를 사용하여 미세한 나일론 봉합사 가닥으로 조심스럽게 묶고 입구 밸브를 통해 용기에 힙 용액을 채웁니다. 이제 용기의 다른 쪽 끝을 왼쪽 캐뉼라에 장착하고 나일론 봉합사로 캐뉼라를 용기에 고정합니다. 챔버에 최대 10ml의 힙 용액을 채웁니다.
주사기를 사용하여 입구 밸브를 통해 힙 용액을 부드럽게 밀어 누출 여부를 확인합니다. 이제 챔버를 비디오 카메라 아래에 놓습니다. 산소를 시작하고 입구 밸브가 닫힌 상태에서 챔버를 섭씨 37도까지 가열하고 첫 번째 힙 용액 저장소의 P one 튜브에 연결합니다.
튜브에 거품이 없을 때까지 거품과 용액이 튜브를 통과하도록 합니다. 그런 다음 밸브를 엽니다. 튜브 P 2로 챔버의 왼쪽 밸브에 연결합니다.
압력 조절기에서 나오는 경우 전체 시스템에 기포나 누출이 없는지 확인하십시오. myo 인터페이스 패널 또는 소프트웨어의 압력 메뉴로 이동하여 흐름을 끄는 동안 펌프를 켭니다. 프로그램을 열고 수집을 클릭합니다.
이제 용기, 루멘, 용기 직경 및 벽 두께의 모니터링 및 분석이 가능합니다. 내강 압력을 점차적으로 높이려면 P 하나의 압력을 선택하고 일련의 오름차순 압력을 입력합니다. 5mm에서 60mm의 수은 용기 값은 압력이 증가하는 동안 때때로 뒤틀리거나 뒤얽히므로 수직 또는 세로 마이크로 포지셔너를 사용하여 그에 따라 장력 또는 변형을 조정하십시오.
압력이 60mm이고 수조가 섭씨 37도가 되면 평형 기간 동안 최소 45분과 최대 1시간 동안 용기를 평형을 이룹니다. 예열 힙으로 수조 용액을 한 번 교체하십시오. 이제 동맥 단면이 평형을 이루었으므로 섭씨 37도에서 10ml의 염화칼륨 탈분극 용액을 바르십시오.
평활근은 완전히 탈분극되고 최대 수축을 달성합니다. 안정적인 수축을 얻은 후 10분 간격으로 3회 힙 용액으로 욕조를 헹굽니다. 이제 혈관의 생존 능력과 내피의 무결성을 확인하십시오.
먼저, 페닐에프린을 첨가하여 혈관을 미리 수축시켜 리터당 음의 5몰을 처리합니다. 안정된 수축이 얻어지면, 마지막 아세틸콜린 투여 후 리터당 10에서 음으로, 9에서 10에서 음수 5몰까지 용량을 순차적으로 추가하여 누적 농도 혈관 확장 반응 곡선을 수행합니다. 10분 간격으로 세 번 준비물을 듬뿍 헹굽니다.
이제 기록된 추적에서 리터당 2밀리몰의 EGTA를 포함하는 칼슘이 없는 PSS를 적용하여 수동 루멘 직경을 결정합니다. 모든 매개변수를 계산하는 데 사용되는 각 용량 반응에 대한 루멘 직경을 측정합니다. 아세틸콜린 이완 반응을 작용제와 칼슘이 없는 완충액을 사용한 치료와 비교하여 페닐에프린으로 인한 수축으로 인한 내강 직경을 각각 얼마나 변경했는지에 대해 표현합니다.
상태 압력 근조영술은 야생형 및 SGC 알파 1 녹아웃 마우스에서 분리된 장간막 저항 동맥에서 아세틸콜린에 대한 반응으로 혈관 이완을 연구하는 데 사용되었으며, S 6 및 블랙 6 배경에서 페닐에프린으로 사전 수축되었습니다. SGC 알파 원 결핍은 연구된 마우스의 유전적 배경에 관계없이 혈관 이완을 유도하는 아세틸콜린의 능력 감소와 관련이 있었습니다. 그러나, SGC Alpha one null 마우스의 내피 의존성 이완은 검은색 6 배경보다 S six 배경에서 더 현저하게 손상되었다.
이러한 발견은 내피 의존성 이완에 대한 혈관 구조의 민감도 감소가 SGC Alpha one 녹아웃 마우스의 변형 특이적 고혈압에 기여할 수 있음을 시사합니다. 일단 숙달되면 이 기술을 적절하게 수행하면 1-2시간 내에 완료할 수 있습니다. 이 절차 외에도 컨포칼 현미경 검사와 같은 다른 방법을 생명 혈관에 동시에 수행할 수 있습니다. 예를 들어, 이를 통해 기저 신호 전달 메커니즘을 식별하는 데 도움이 될 수 있는 세포 내 철 농도를 측정할 수 있습니다.
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이 기사는 압력 미오그래피를 사용하여 마우스 장간막 동맥의 혈관 이완 반응을 측정하는 방법을 설명합니다. 이 기술은 거의 생리적 조건에서 혈관 반응성을 실시간으로 평가할 수 있게 합니다.
Pressure myography enables functional assessment of small resistance arteries under near-physiological conditions, providing mechanistic insights into vascular reactivity relevant to hypertension and endothelial dysfunction. This approach supports target validation by quantifying endothelium-dependent vasorelaxation in disease models, aiding preclinical de-risking of vascular therapies. The technique bridges in vitro findings with in vivo vascular behavior, informing portfolio decisions in cardiovascular discovery programs.
Positioned in early discovery, pressure myography supports hypothesis testing in vascular biology and feeds into lead identification by providing quantitative reactivity data for compound screening.