2013년 6월 12일
단핵구 유래 대 식세포는 타고난 면역 시스템의 중요한 세포입니다. 여기, 우리는 사용하기 쉬운 설명 체외에서 모델. 기울기 원심 분리, 부정적인 비드 격리 및 특정 세포 배양 조건 사용하여 단핵구 유래 대 식세포는 표현형 및 기능 연구에 생성 할 수 있습니다.
다음 실험의 전반적인 목표는 인간 말초 혈액에서 단핵구를 분리하고 다른 대식세포 분극 유형으로 구별하는 것입니다. 이는 먼저 밀도 구배 원심분리를 통해 인간 말초 혈액 단핵 세포를 분리함으로써 달성됩니다. 두 번째 단계로, 순수 CD 14 양성 단핵구를 얻기 위해 음성 비드 분리를 수행합니다.
다음으로, 단핵구는 특이적으로 편광된 대식세포를 유도하기 위해 특정 조건에서 배양됩니다. 궁극적으로, 배양 조건에 따른 대식세포 분극 마커의 차등 발현은 정량적 PCR에 의해 결정될 수 있습니다. 이 방법은 대식세포가 서로 다른 편광 유형에 대한 분화를 해부하는 데 도움이 될 수 있습니다.
죽상동맥경화증과 같은 염증성 질환에서 매우 중요한 기능입니다. 지원자로부터 팔뚝 정맥에서 30ml의 전혈을 채취한 후 혈액을 두 개의 비폴리스티렌 50ml 원뿔형 튜브로 골고루 나눕니다. 그런 다음 각 튜브의 혈액을 PBS 10ml로 희석합니다.
다음으로, 각 튜브에 있는 25ml의 전혈과 PBS에 25ml의 히스토 팩을 추가하고 히스토 팩과 혈액이 섞이지 않도록 주의합니다. 그런 다음 400Gs와 실온에서 휴식 없이 30분 동안 튜브를 원심분리합니다. 스핀 후 먼저 플라즈마 층을 흡입한 다음 불투명한 계면층을 새로운 50ml 튜브로 이동합니다.
20ml의 PBS와 CDTA로 계면에서 250G 및 섭씨 4도에서 5분 동안 세포를 세척합니다. 그런 다음 상등액 소생을 버린 후 펠릿을 10 밀리리터의 PBS 플러스 CDTA에 현탁시키고 10 초 동안 와류로 세포를 잘 혼합합니다. 이제 200 마이크로 리터의 세포 현탁액을 300 마이크로 리터의 PBS 플러스 EDTA와 500 마이크로 리터의 트라이 암 블루로 희석합니다.
10제곱미터당 약 200-500개의 세포를 얻기 위해 혈구 분석기는 120Gs에서 10분 동안 세포를 3회 회전시켜 음성 분리를 시작합니다.두 번째 세척 후 펠릿을 9ml의 멸균수에 3초 동안 현탁시킵니다. 그런 다음 세포를 세척하고 한 번 더 세운 후 10 XPBS의 1 밀리리터를 추가하고 밀리리터 당 7 개의 세포의 5 배 10에서 쉬운 세트 버퍼로 희석합니다. 이제 섭씨 4도에서 10분 동안 세포를 단핵구 농축 칵테일 밀리리터당 50마이크로리터로 배양합니다.
배양 와류의 마지막 순간 동안 cept monocyte enrichment beads는 30초 동안 구슬을 만듭니다. 그런 다음 비드 1밀리리터당 50마이크로리터를 세포에 추가하고 비드를 세포 현탁액에서 5분 더 배양합니다. 두 번째 배양 후 세포 용액 부피를 최대 2.5ml까지 가져옵니다.
더 많은 eep 버퍼를 사용하면 용액이 이제 갈색으로 나타납니다. 다음으로, 튜브를 eep 자석에 넣고 실온에서 2분 30초 동안 사용합니다. 비드 결합 세포가 달라붙을 기회를 가지면 비결합 단핵구가 포함된 버퍼를 새로운 멸균 튜브에 붓습니다.
PBS와 EDTA로 결합되지 않은 세포를 한 번 세척하고 세포를 다중 웰 플레이트로 옮긴 다음 배양 플레이트에 6개의 세포에 10을 곱한 1밀리리터의 배양 배지를 배양 플레이트에 추가하면 용액이 희끄무레한 색으로 나타납니다. 마지막으로, 대식세포 분화를 유도하기 위해 관심 있는 실험 조건에서 6일 동안 세포를 배양합니다. 3일 후 미디어의 절반을 6일 후에 새 미디어로 교체합니다.
원하는 실험 분석을 위해 세포를 수확합니다. 상술한 프로토콜을 사용하여, 6개의 단핵구 중 약 25배는 100ml의 혈액 단핵구 순도에서 일상적으로 얻어지며, CD14에 대한 유세포 염색에 의해 결정된 바와 같이, 배양에 처음 첨가될 때 95% 이상이다. 단핵구는 처음에는 둥근 모양이며 몇 시간 내에 떠 있습니다.
그러나 그들은 접착하여 6일 후에 계란 후라이나 방추 같은 모양을 제공합니다. MCSF를 단독으로 배양하거나 마지막 24시간 동안 산화된 LDL을 첨가한 배양에서 또는 산화된 LDL에 노출되지 않은 세포의 약 80%가 프로피듐 요오드화물에 의해 결정된 대로 생존할 수 있습니다. 반면에 산화된 LDL을 이용한 염색 처리는 6일간의 배양 후 약 70%의 세포 생존율을 나타냅니다.
MCSF 흐름을 통해 세포 분석을 통해 세포가 백혈구 마커 CD 45 ro를 계속 발현하는 동안 단핵구 마커 CD 14를 하향 조절하는 것으로 나타났습니다. 세포 배양 중 대식세포 분극을 유발할 수 있는 특정 조건에 따라 성공적인 분극을 보장하기 위해 추가 마커가 필요합니다. 특정 조건은 대식세포 분극을 유발할 수 있습니다.
예를 들어, M1 편광 대식세포는 IL 6 및 TNF 알파와 같은 전형적인 마커를 발현하는 반면, M 2 편광 대식세포는 CD 36 및 CD 2 0 6을 발현하는 반면, 대식세포는 기능 실험에서 추가로 연구할 수 있습니다. 예를 들어, 형광 표지된 LDL을 사용하여 산화된 LDL의 흡수를 연구할 수 있습니다. 이 실험에서 세포는 DII로 표지된 산화된 LDL의 밀리리터당 10마이크로그램에 4시간 동안 노출되고 핵을 dpi로 다시 염색했습니다.
히스토그램은 MCSF 유도 대식세포에 의한 DII 산화 LDL 흡수의 유세포 분석을 보여주며, 회색 히스토그램은 처리되지 않은 대조 세포를 나타내고 검은색 열린 히스토그램은 나타냅니다. 발달 후 산화된 LDL 처리된 대식세포를 대표합니다. 이 기술을 통해 연구자들은 인간 대식세포의 분화와 이질성을 연구할 수 있습니다.
이를 통해 죽상동맥경화증과 같은 염증성 질환을 연구하여 새로운 질병 메커니즘과 새로운 치료 표적을 식별할
수 있습니다.전체 스크립트를 보고 수천 개의 과학 동영상에 액세스하세요
이 기사는 인간 말초 혈액에서 단핵구를 분리하고 이를 대식세포로 분화시키는 방법을 제시합니다. 이 과정은 밀도 구배 원심분리 및 음성 비드 분리를 통해 순수한 CD14 양성 단핵구를 얻고, 이를 특정 조건 하에서 분극 연구를 위해 배양하는 과정을 포함합니다.
This in vitro model provides a human-relevant system to study macrophage heterogeneity, addressing a key limitation of murine models in immunology and inflammatory disease research. By enabling the isolation and polarization of primary human monocytes, the method supports target validation and mechanistic de-risking in early discovery programs focused on innate immunity. It offers a scalable, reproducible platform for screening immunomodulatory compounds and identifying disease-relevant macrophage phenotypes.
The method fits within the discovery continuum from target identification to lead optimization, particularly for immunomodulatory and anti-inflammatory therapeutic areas.