Name: 형광 공 초점 Videomicroscopy를 사용하여 종양 혈관의 생체 내 이미징 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-09-11T14:30:00.000+00:00
Duration: 5 min 8 s
Description: 배우세요 형광 공초점 비디오현미경을 활용한 종양 미세혈관 생체 내 이미징 방법을 통해 기능성 모세혈관 밀도와 혈관 투과성을 정량화하고 암 연구에서 표적 치료 효과를 평가하는 기술을 익히세요.

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1. 조영제의 제조 <ol><li> FITC-덱스 트란 70 kDa의 경우, 주사 투여 량은 500 ㎎ / ㎏ (FITC-덱스 트란 10 ㎎ 20 g의 무게 마우스에 생리 식염수 0.1 ㎖에 희석)입니다. </li><li> 에이전트는 빛에 너무 오래 노출되어서는 안된다. 표백을 방지하기 위해, 그것은 알루미늄 호일로 튜브를 포함하는 것이 좋습니다. </li></ol> 2. 마취 <ol><li> 마우스는 자일 라진의 1:4 혼합물의 복강 내 주사하여 마취 (Rompun 2 %, 바이엘, 뿌뛰, 프랑스)와 케타민 (ketamine을 500 년 Virbac, 카 로스, 프랑스), 각각 66 ㎎ / ㎏과 264​​ ㎎ / ㎏ 20g의 마우스. </li></ol> 3. 관심있는 기관의 준비 <ol><li> 우리는 (피하 종양에 예를 들어,) 그 위치에 마우스를 면도. 동물의 머리는 종종 흰색 자동 형광입니다. 때 블랙, 그것은 빛을 흡수한다. </li><li> 이미지에 표시 할 기관이 직면 한 피부를 절개. 그것은 피 흘리고 때까지 기다리는 것이 중요합니다G 그렇지 않으면 혈액에서 새어 이미지를 오염시킬 것이다, 조영제를 주입하기 전에 중지되었습니다. </li></ol> 4. 획득 <ol><li> 조영제는 정맥 또는 꼬리 정맥 하나를 통해 주입 하였다. 형광 조영제의 부재하에 관찰 된 장기 또는 더 작은 배경 신호 없다. </li><li> 프로브는 묘화되는 장기의 전방에 배치 하였다. 우리의 연구에서, 이것은 종양이었다. </li><li> 레이저는 종양을 조명하고 모세 혈관의 형광을 볼에가되었습니다. </li><li> 종양은 모세 혈관의 네트워크를 시각화하기 위해 기록하는 동안 매우 느린 운동에 프로브를 이동하여 수동으로 탐구했다. 그것은 꾸준한 손을 유지하는 것이 중요하고,이 기술은 약간의 경험이 필요합니다. 본 연구에서는 첫 번째 단계는 기능 모세 혈관 밀도의 정량화를 허용했다. </li><li> 두 번째 단계는 시간이 지남에 따라 동적 취득했다. 본 연구의 경우, 우리는 70 kDa의 FITC-덱스 트란을 사용. 대부분의 정상 장기에 침입 누설은 없습니다 만, 종양이 있습니다. (우리의 경우에서와 같이) 시간에 따른 동일한 위치의 이미지를 얻기 위해서는, 그 영역에 프로브를 유지하는 시스템을 설정하는 것이 중요하다. 이는 프로브를 보유하는 핸드 지원을 사용하여 수행하고, 프로브의 팁 초음파 겔의 비트 배치 순서 하였다. 기록 전에, 시간은 종양과 접촉하여 배치 프로브 안정화 쓰였다. 위치가 확보되자 인해 마우스의 호흡에 대한 최소한의 움직임이 있었다. 레이저는 모세관 누출의 존재를 검출하기 위해 20 분 동안 3 30 초마다 이미지를 기록하기 위해 설정되었다. 그것은 조영제 표백을 줄이기 위해 각각의 기록에 사이가되었습니다. </li><li> 우리의 실험에서, 마우스는 종양의 조직 학적 분석을위한 절차의 단부에 희생되었다. </li></ol>

<ol><li>Folkman, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fundamental+concepts+of+the+angiogenic+process%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Mol+Med%22%5BJournal%5D)">Fundamental concepts of the angiogenic process.</a> Curr Mol Med. 3 (7), 643-651 (2003).</li>
<li>Laemmel, E., Genet, M., Le Goualher, G., Perchant, A., Le Gargasson, J. F., Vicaut, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibered+confocal+fluorescence+microscopy+%28Cell-viZio%29+facilitates+extended+imaging+in+the+field+of+microcirculation.+A+comparison+with+intravital+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vasc+Res%22%5BJournal%5D)">Fibered confocal fluorescence microscopy (Cell-viZio) facilitates extended imaging in the field of microcirculation. A comparison with intravital microscopy.</a> J Vasc Res. 41 (5), 400-411 (2004).</li>
<li>Charnley, N., Donaldson, S., Price, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+angiogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Imaging angiogenesis.</a> Methods Mol Biol. 467, 25-51 (2009).</li>
<li>Faye, N., Fournier, L., Balvay, D., Taillieu, F., Cuenod, C., Siauve, N., Clement, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamic+contrast+enhanced+optical+imaging+of+capillary+leakage%5BTitle%5D)+AND+%22Technol+Cancer+Res+Treat%22%5BJournal%5D)">Dynamic contrast enhanced optical imaging of capillary leakage.</a> Technol Cancer Res Treat. 10 (1), 49-57 (2011).</li>
<li>Kurose, I., Kubes, P., Wolf, R., Anderson, D. C., Paulson, J., Miyasaka, M., Granger, D. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhibition+of+nitric+oxide+production.+Mechanisms+of+vascular+albumin+leakage%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Inhibition of nitric oxide production. Mechanisms of vascular albumin leakage.</a> Circ Res. 73 (1), 164-171 (1993).</li>
<li>Faye, N. F. L., Balvay, D., Thiam, R., Orliaguet, G., Clement, O., Dewachter, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Macromolecular+capillary+leakage+is+involved+in+the+onset+of+anaphylactic+hypotension%5BTitle%5D)+AND+%22Anesthesiology%22%5BJournal%5D)">Macromolecular capillary leakage is involved in the onset of anaphylactic hypotension.</a> Anesthesiology. , (2012).</li>
<li>Faye, N., Fournier, L., Balvay, D., Thiam, R., Orliaguet, G., Clement, O., Dewachter, P. Macromolecular Capillary Leakage Is Involved in the Onset of Anaphylactic Hypotension. Anesthesiology. 117 (5), 1072-1079 (2012).</li>
<li>Tozer, G. M., Kanthou, C., Baguley, B. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disrupting+tumour+blood+vessels%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Cancer%22%5BJournal%5D)">Disrupting tumour blood vessels.</a> Nat Rev Cancer. 5 (6), 423-435 (2005).</li>
<li>Ntziachristos, V., Schellenberger, E. A., Ripoll, J., Yessayan, D., Graves, E., Bogdanov, A., Josephson, L., Weissleder, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualization+of+antitumor+treatment+by+means+of+fluorescence+molecular+tomography+with+an+annexin+V-Cy5.5+conjugate%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Visualization of antitumor treatment by means of fluorescence molecular tomography with an annexin V-Cy5.5 conjugate.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 101 (33), 12294-12299 (2004).</li>
<li>Cuccia, D. J., Bevilacqua, F., Durkin, A. J., Merritt, S., Tromberg, B. J., Gulsen, G., Yu, H., Wang, J., Nalcioglu, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+quantification+of+optical+contrast+agent+dynamics+in+rat+tumors+by+use+of+diffuse+optical+spectroscopy+with+magnetic+resonance+imaging+coregistration%5BTitle%5D)+AND+%22Appl+Opt%22%5BJournal%5D)">In vivo quantification of optical contrast agent dynamics in rat tumors by use of diffuse optical spectroscopy with magnetic resonance imaging coregistration.</a> Appl Opt. 42 (16), 2940-2950 (2003).</li>
</ol>

우리는 공개 아무것도 없어.

종양 미세 혈관의 연구는 종양의 성장, 보급 및 치료 1에 대한 응답의 병태 생리를 이해하는데 필수가되고있다. 광학 영상은 형광 조영제를 이용하여 모세 혈관을 관찰 및 형태학 (기능 모세관 밀도) 및 기능 (인덱스 누설) 파라미터를 정량화하는 데 사용할 수있는 기술 중 하나이다. 우리는이 연구에 사용 된 형광 현미경 영상은 장점과 한계를 모두 가지고 있습니다. 하나의 장점은 사용되는 조영제의 크기를 선택할 수있게되고있다. 여기에, 70-kDa의 FITC-덱스 트란과 실험의 시작 부분에있는 내피 장벽을 통해 누출은 우리가 사이 좋은 대조 혈관의 초기 형태 (비틀림, 무정부 네트워크, 등.) 관찰 할 수있는 최소한의했다 용기 및 간질 08 및 지연 후에, 관측으로 20 분에 걸쳐 조영제의 누설. 평면 (Xy)의 해상도는 우리가 대신 대부분의 다른 영상 기법 (MRI, CT, 초음파, PET ...)와 같은 거시적 인 수준으로...

혈관 신생은 기존 혈관으로부터 새로운 혈관의 형성을 포함하는 복잡한 과정 일이다. 동맥, 모세 혈관, 세정맥과 구성 조직의 미세 혈관의 병리학 적 변화는,, 암, 염증, 당뇨병과 같은 질병의 넓은 범위에 연루되어있다. 정량적 미세 혈관의 구조와 기능을 평가하는 방법을 개발하는 것이 필수적이다. 영상은 실시간 및 생체 내에서, 비 - 또는 마이크로 - 침습적 방식으로 미세 혈관의 연구를 가능하게하고, 동일 동물이 경시 반복 측정. 현재 동적 조영 증강 (DCE) 영상 (3)은 일반적으로 조직의 미세 혈관을 평가하는 데 사용됩니다. 동적 조영 증강 영상은 시간이 지남에 따라 정맥 주사 추적의 생체 분포를 따르는 기술이다. 이번 인수에서 정량적 매개 변수는 조직의 혈관 신생을 반영 추출 할 수 있습니다. DCE 영상대부분 CT, MRI 또는​​ 초음파로 사용되어왔다. 그러나 이러한 영상 기술은 특정 실험 장치의 사용과 그 이외의 해상도가 가장 자주 거시적 남아 있기 때문에, 미세 혈관의 직접적인 관찰을 허용하지 않는다. 이 논문에서, 우리는 fibered 촛점 videomicroscopy으로, 동적 조영 증강 광학 이미징을 사용하여 미세한 규모 및 생체 내에서 종양 혈관을 연구하기 위해 제안한다. 우리는 그 분자량 및 조직의 내피 세포의 특성을 연구 4에있어서, 간질로 내피 장벽을 통한 혈관 누수 또는 내에서만 남아 고분자 조영제 (FITC-덱스 트란) 사용. 이 누출 및 간질에 축적에 의해, 제대로 혈관을 서술하여 모두 미세 혈관 구조의 연구는, 모세 혈관 투과성을 허용했다.

<table><tbody><tr><td>인슐린 serynge Myjector 1ml 29G</td><td>Terumo Europe</td><td>BS-05M2913</td><td></td></tr><tr><td>플루오레세인 이소티오시아네이트-덱스트란 70 kDa </td><td>Sigma-Aldrich</td><td>01619HH</td><td>식염수에 희석된 100 mg/mL </td></tr><tr><td>Fibered confocal videomicroscopy</td><td>Cellvizio - MaunaKea Technologies</td><td></td><td></td></tr><tr>LEICAFCM1000 Leica Microsystems<td>용 교정 및 세척 키트</td><td></td><td>LSU-488</td><td>4 &deg에 저장; C</td></tr><tr><td>Probe ProFlexTM Z</td><td>MaunaKea Technologies</td><td></td><td></td></tr><tr><td>모자이크 소프트웨어</td><td>MaunaKea Technologies</td><td></td><td></td></tr><tr><td>선박 감지 소프트웨어</td><td>MaunaKea Technologies</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

형광 공 초점 videomicroscopy를 사용하여 종양 혈관의 생체 내 이미징

In vivo Imaging of Tumor Angiogenesis using Fluorescence Confocal Videomicroscopy

광섬유 번들 Fibered 공 초점 형광 생체 촬상 형광 공 초점 현미경과 같은 원리를 사용한다. 이 광섬유를 통해 원위치 요소에 형광을 자극 한 후 동일한 광섬유를 통해 방출 된 광자의 일부를 기록 할 수있다. 광원은 섬유 다발 내의 요소를 통해 여기 광을 전송하고 샘플을 통해 스캔과 같은, 화소에 의해 화상의 화소를 다시 레이저이다. 이것은 스캔이 전용 ​​이미지 프로세싱 소프트웨어와 조합함으로써, 매우 빠르고 같이, 12 프레임 / 초의 주파수 실시간 화상을 얻을 수있다. 우리는 공 초점 형광 videomicroscopy 장치를 이용하여 정량적으로 모세관 형태와 기능을 특성화하는 기술을 개발했다. 우리의 실험에서 첫 번째 단계는 모세관 네트워크를 시각화하는 종양의 사분면에서 5 초 영화를 기록하도록 하였다. 모든 영화는 (소프트웨어를 사용하여 처리 된 ImageCell, 선택 직경 (우리의 경우 10 ㎛)의 주위에 혈관의 자동 분할을 수행 마우나 케아 기술, 파리, 프랑스). 따라서, 우리는 전체 혈관 영역과 화상의 전체 영역 사이의 비율이다 &#39;기능적 모세관 밀도&#39;정량화 있었다. 이 파라미터는 보통 병리 도구를 사용하여 측정 된, 미세 혈관 밀도에 대한 대리 마커이었다. 두 번째 단계는 간질로 모세관 벽을 통해 고분자 조영제의 누출을 정량화하기 20 분에 걸쳐 종양의 영화를 기록하는 것이었다. 혈관 그 이상의 간질에서 신호 강도의 비를 측정함으로써, &#39;인덱스 누설&#39;모세관 투과성에 대한 대리 마커로서 작용 얻었다.

수집 된 데이터를 사용하여, 우리는 양적으로 미세 혈관을 반영하는 다른 매개 변수를 분석 할 수 있습니다. 우리는 공부 생체 fibered 공 초점 형광 videomicroscopy 시스템 (Cellvizio, Maunakea 기술, 파리, 프랑스 2), 고분자 형광 조영제 주입 후 형광 염료 - 덱스 트란 (사용 BALB-c 마우스에 이식 대장 종양의 말초 혈관 네트워크 70 kDa의 (시그마 - 알드리치 (Sigma-Aldrich) 생 캉탱 Fallavier 호텔, 프랑스)와 각각 488 ㎚, 520 ㎚의 여기 및 방출 파장 (우리의 이미징 시스템과의 호환성을 위해)의 분자량 FITC-덱스 트란). 우리의 실험에서 첫 번째 단계는 모세관 네트워크를 시각화하는 종양의 네 사분면 각각에 5 초간의 동영상을 기록했다. 종양의 혈관이 허용 대표적인 샘플링. 모든 영화는 소프트웨어 (ImageC...

이 논문에서는 동적 조영 증강 형광 videomicroscopy를 사용하여 생체 내에서 종양의 미세 혈관을 분석하는 방법을 제시한다. 두 정량적 파라미터를 획득 하였다 : 기능성 종양 혈관을 반영 모세관 밀도 및 내피 벽 leakiness 반사 인덱스 누설.

형광 공 초점 Videomicroscopy를 사용하여 종양 혈관의 생체 내 이미징

Fibered confocal fluorescence in vivo imaging with a fiber optic bundle uses the same principle as fluorescent confocal microscopy. It can excite ...

다음 실험의 전반적인 목적은 공초점 형광 비디오 현미경 시스템을 사용하여 생쥐 결장종양 모델의 미세혈류를 정량화하는 것입니다. 이를 위해 먼저 조영제를 정맥 주사하고 종양 미세혈관의 영상을 촬영합니다. 그 후 종양의 네 구역을 이미지화하여 기능적 모세혈관 밀도를 정량화합니다.다음으로, 혈관에서 조직 간질로 조영제가 이동하는 과정을 관찰하여 내피벽 투과성을 반영하는 모세혈관 누출 지수를 정량화합니다. 최종적으로, 종양 모델 간의 차이나 표적 치료 후의 변화를 감지하기 위해 종양 혈관의 형태적 및 기능적 특성을 정량화할 수 있습니다. 이러한 동적 조영제 강화 광학 영상 기법을 통해 종양 미세 순환 분석이 가능합니다.이 방법은 모세혈관의 밀도와 투과성을 정량화함으로써 종양 혈관의 구조와 기능을 반영합니다. 이 방법은 종양 생리학에 대한 통찰을 제공할 뿐만 아니라, 아나필락시스 쇼크, 염증, 심혈관 질환 및 당뇨병과 같은 다른 시스템에도 적용될 수 있습니다. 먼저 마취된 마우스의 관심 부위를 제모하는 것으로 시작하십시오.출혈이 멎으면 영상화할 장기 방향으로 피부를 절개하십시오. 기능적 모세혈관 밀도를 정량화하기 위해 조영제를 주입합니다. 먼저 영상화할 장기 앞에 프로브를 배치하십시오.다음으로 장기를 조사하는 레이저를 켭니다. 그 후 손을 일정하게 유지하면서, 형광 모세혈관 네트워크가 시각화됨에 따라 프로브를 천천히 이동하며 기록합니다.시간 경과에 따른 동적 획득을 안정화하려면, 프로브 팁에 초음파 젤을 소량 바른 후 프로브를 수동 지지대에 놓으십시오. 프로브를 대상 장기에 접촉시킨 후, 프로브를 고정합니다. 위치가 확보되면, 모세혈관 누출 여부를 감지하기 위해 레이저가 20분 동안 30초마다 3장의 이미지를 기록하도록 설정하십시오.관심 장기의 4개 사분면 각각에서 5초 분량의 영상을 촬영한 후, 조영제의 퇴색을 줄이기 위해 각 촬영 사이에 레이저를 끕니다. 모세혈관 네트워크 과정을 시각화하기 위해 적절한 소프트웨어를 사용하여 영상을 분석하며, 기능적 모세혈관 밀도(전체 혈관 면적과 전체 이미지 면적의 비율)를 정량화하기 위해 선택한 직경을 기준으로 이미지 내 혈관들의 자동 분할을 수행합니다. 그런 다음 모세혈관 누출 여부를 감지하기 위해 수행한 동적 획득 데이터에서 0, 5, 10, 20분 시점에 모세혈관 내에 3개의 관심 영역(ROI)과 간질 내에 3개의 관심 영역을 설정합니다. 마지막으로 세 개의 서로 다른 모세혈관과 인접한 간질 영역 내의 신호 강도를 평균 내어 누출 지수 백분율을 계산합니다.이 공식에서 IP는 혈관 주변 또는 간질 강도이고 II는 혈관 내 강도이며, 이에 따라 기능적 모세혈관 밀도 파라미터는 일반적으로 병리 도구를 사용하여 측정하는 미세혈관 밀도의 대리 마커가 됩니다. 여기에서 획득한 이미지의 유형과 혈관 분할 결과의 예시가 제시되어 있습니다. 이 예시에서 기능적 모세혈관 밀도는 36%로 측정되었습니다. 이 이미지들에서는 주입 후 0, 5, 10, 20분 시점에서 누출 지수가 1.47인 간질 내 조영제 누출의 예시가 나타나 있습니다.각 이미지에서 혈관은 주입 직후 고신호 선형 구조로 나타납니다. 간질에서는 신호가 관찰되지 않습니다. 그러나 시간이 경과함에 따라 대조제가 비정상적인 종양을 통해 간질로 누출되는 것을 관찰할 수 있습니다.혈관 내피 장벽 관련 경험이 있어야 이 절차를 숙달할 수 있습니다. 하지만 일단 숙달되면, 적절하게 수행했을 때 30분 이내에 기술을 완료할 수 있습니다.

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연구

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Medicine

의학

우리는 조류 배아 모델 동적, 실시간 intravital 이미지를 사용하여 인간의 xenografted 종양의 vasculature에 nanoparticle의 국제화를 수치 소설 접근법을 제시한다.

Intravital 이미징을 사용하여 실시간으로 종양의 Nanoparticle의 이해 평가

이 비디오는 마우스 종양 이종 이식 모델에서 생체 내 항체 국소화를 위한 형광 이미징 방법을 보여줍니다. 그것은 피부 아래에 고체 이종 이식편을 생성하기 위해 마우스에 종양 세포를 주입하는 것을 포함합니다. 후속 형광 항체 주입은 종양 이종이식 세포 내에서 향상된 형광 신호를 통해 특정 국소화를 확인합니다.

마우스 종양 이종이식 모델에서 항체 국소화를 위한 In vivo Fluorescence Imaging

우리는 안티 - 암 치료에 영상 응답하는 방법을...

유방암의 마우스 모델에서 종양 Microenvironment에 약물 응답의 영상을 라​​이브

소설 고해상도<em&gt; 생체 내</em종양의 성장과 치료학에 두개 내 구조물의 동적 응답을 공부하기&gt; 이미징 기술

우리는 멀티 앵글 회전 광학 영상 사포 신의 C (SAPC) dioleoylphosphatidylserine (DOPS) nanovesicles에 의해 전달 형광 마커의 생체 정량 (MAROI) 시스템을 설명합니다. 암 및 관절염 마우스 모델을 이용한 제외한 MAROI 신호 곡선 분석은 정확한 매핑 및 질병 프로세스의 생물학적 특성 규명을 위해 사용될 수 있는지 보여준다.

형광 SAPC-DOPS Nanovesicles을 사용하여 뇌 종양 및 관절염의 생체 광학 이미징

세포 외 기질은 상처 치유, 염증과 종양 발생시 상당한 개조를 겪는다. 우리는 섬유의 역학뿐만 아니라 표면 형광 또는 이광자 현미경을 사용하여 높은 공간 및 시간 해상도를 가진 메쉬 형상의 매트릭스 성분을 시각화하는 신규의 intravital 면역 형광 현미경 방식을 제시한다.

표면 형광을 가진 조직 매트릭스 구성 요소 및 두 개의 광자 현미경의 장기의 intravital 면역 형광 이미징

우리는 여기에서 동물 피험자의 세포 및 하위 세포 수준에서 생리학적 현상을 이해하기 위한 혁신적인 모드를 제공하는 FCFM(Fibered Confocal Fluorescent Microscopy) 기반 이미징 방법을 설명합니다.

화학 요법에 의한 혈관 독성 - 실시간<em&gt; 생체 내</em&gt; 선박 손상의 영상

이 프로토콜은 단일 셀 해상도 생체 내에서 실시간으로 상호 작용 다세포 장시간 경과 이미징을 수행하는 다 광자 현미경의 사용을 설명한다.

종양 미세 환경에서 실시간 다세포 역학의 확장 시간 경과 생체 내에 영상

이 프로토콜 셀 전용 형광 마커를 표현 하는 유전자 변형 생쥐의 intravital 영상을 설명 합니다. Intravital 이미징 생체 삽입형 윈도 통해 프로세스의 미세한 시각화는 가능한를 사용 하 여 고해상도 관측에 대 한 비-침략 적 방법을 제공 한다. 이 방법은 경도 과정 공부에 특히 유용 합니다.

Intravital 현미경 종양 관련 맥 관 구조를 사용 하 여 고급 등 유전자 변형 형광 생쥐 피부 집계 창 실

이 방법의 목적은 형광표지된 혈관이 있는 제브라피시 배아로 포유류 종양 세포를 이종이식에 이식함으로써 종양 혈관신생의 생체 내 모델을 생성하는 것이다. 이종이식 및 관련 혈관을 이미징함으로써, 혈관신생 반응의 정량적 측정을 얻을 수 있다.

제브라피시 종양 이종이식에서 숙주 혈관조형성 반응의 생체 내 이미징 및 정량화

Intravital microscopy 결과의 번역은 조직에 대한 얕은 깊이 침투로 인해 어려움을 겪고 있습니다. 여기에서는 직접적인 공간 상관 관계를 위해 생체 내 현미경 검사와 임상적으로 적용 가능한 이미징 양식(예: CT, MRI)을 함께 정합할 수 있는 등쪽 창 챔버 마우스 모델에 대해 설명하며, 이를 통해 생체 내 현미경 검사 결과의 임상 번역을 간소화할 수 있습니다.

중개 암 연구에서 생체 내 현미경 및 자기 공명 영상의 결합을 위한 Dorsal Skinfold Window Chamber 종양 마우스 모델

배우세요 형광 공초점 비디오현미경을 활용한 종양 미세혈관 생체 내 이미징 방법을 통해 기능성 모세혈관 밀도와 혈관 투과성을 정량화하고 암 연구에서 표적 치료 효과를 평가하는 기술을 익히세요.

형광 공 초점 Videomicroscopy를 사용하여 종양 혈관의 생체 내 이미징

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