Name: 트립신 다이제스트 프로토콜 마우스 모델의 망막 혈관을 분석하는 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-06-13T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 3 s
Description: 배우세요 트립신 다이제스트 방법을 사용하여 마우스 망막 혈관을 분석하는 기술입니다. 이 방법은 혈관 네트워크를 명확하게 시각화하여 당뇨병성 망막병증 등의 병리 연구에 활용됩니다.

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이 작품은 부분적으로 NIH RO1-EY019951 (AAF), 실명 예방 일리노이 학회 (JCC, AAF), 실명 (RPB)를 방지하는 연구에서 안과에 무제한 자금, NY 및 RPB 의료 학생 친목 부여에 의해 지원되었다 (JCC).

1. 망막 준비 <ol><li> 마우스 눈을 명백히. 한 손으로 사용하면 눈이 볼 수 있도록 눈 뚜껑을 엽니 다. 다른 손으로, 곡선 포셉 (곡선에 직면 위쪽)를 사용하여 궤도의 우수하고 열등한 측면에 압력을 세계 돌출 될 때까지. 부드럽게 눈의 후방 측면에서 집게를 닫고 눈을 명백히하는 연속 동작으로 들어 올립니다. </li><li> 중립 10 %가 최소 24 시간 동안 포르말린에 눈을 고정합니다. </li><li> 작은 페트리 접시에 PBS 용액에 넣어 눈. </li><li> 큰 눈물을 유발하지 않도록주의하면서 현미경으로 조심스럽게 망막을 해부하다. 해부 가위로 각막 초기 상처를합니다. 그런 다음, 바로 집게로 잘라 내기 영역을 잡고, 각막을 제거 각막과 공막의 국경을 따라 잘라 가위를 사용합니다. 주의 공막 멀리 시신경으로 망막 맥락막 껍질, 고급 곡선과 직선 집게를 사용. 이 단계는 인내심이 필요합니다신속하게 망막을 해제하면 눈물을 초래할 수 있습니다. 렌즈와 망막 16 일부터 초과 아이리스와 이물질을 제거합니다. </li></ol> 2. 물은 씻는다 <ol><li> 24 잘 접시에 물 (최소 45 μm의 필터로 여과 약 500 μL)와 커버 장소 망막. </li><li> , 매 30 분 - 1 시간 이상 4-5 번 물을 변경할 수 있습니다. </li><li> 실온에서 부드럽게 흔들어 물에 하룻밤 둡니다. </li></ol> 참고 :이 혈관에서 신경 망막 층을 분리하는 데 도움이로 세척 단계는 매우 중요합니다. 3. 트립신 다이제스트 <ol><li> 37 0.1 M 트리스 버퍼 (산도 7.8)의 3 % 트립신 (Difco 1:250)의 솔루션 ° C없이 흔들림에 부드러운로 물과 부화 망막을 제거합니다. 조직이 붕괴의 징후 (약 1.5 시간)를 보여주는 시작할 때 트립신 다이제스트가 완료됩니다. 참고 : 빠른 동요를 피해야이 혈관을 손상시킬 수 있으므로. </li><li> 조심스럽게 망막에 손이 닿지 않도록 현미경을 사용하여 잘 분리에 트립신 아웃 피펫. 4.3 단계에서 현미경 혈관을 조작 할 때이 초과 트립신은 나중에 사용할 수 있습니다. </li></ol> 4. 혈관을 분리 <ol><li> 망막에 정수 된 물을 추가합니다. 그런 다음, 필요한 경우 가위를 사용하여 집게로 내 경계 막 벗기는 시도합니다. 5 분 동안 가벼운 동요 동요. 조심스럽게 망막 손상을 방지하기 위해 현미경으로 물을 피펫. </li><li> 부착 망막 조직에서 혈관의 무료 네트워크를 돕기 위해 물 세척 (5 분마다)를 반복합니다. 세척 후 물에 남아있는 파편 거의가있을 때 물 세척이 완료됩니다. </li><li> 해부 현미경 하에서 조심 조작은 현재 혈관의 네트워크까지 더 무료로 필요합니다. 아래의 순서 나 공업에서 사용될 수있는 몇 가지 유용한 기술이 있습니다ividually 기술 선호도에 따라 원하는 결과를 달성하기 위해 : <ol class="lalpha"><li> 200 μL 피펫을 사용하여 조심스럽게 교반을 일으키는 원인이 혈관에 물을 불고, 아래로 인접한 혈관에 물을 피펫. </li><li> 200 μL 피펫 사용하여 피펫의 코트 벽을 돕기 위해 아래 트립신을 피펫. 그런 다음 조심스럽게 비 혈관 조직을 무너 뜨리는 데 도움이 한 번 용기 전체 네트워크를 피펫 아래. 참고 : 오히려 혈관 네트워크의 가장자리보다 시신경에 피펫 팁을 중심으로하여도 끝까지 고집에서 혈관을 방지 할 수 있습니다. </li><li> 부드럽게 비 혈관 구성 요소를 꺼 내려 물 밖으로 미세 집게로 혈관을 올립니다. </li><li> 위의 단계가 작동하지 않으면 조직을 분해하는 데 도움이, 그리고 몇 분 동안 37 ° C에서 배양 망막에 트립신을 추가합니다. 그런 다음, 트립신을 제거하고 단계 4.1-4.3를 반복합니다. </li></ol></li></ol> &lt;강해&gt; 참고 : 코트 트립신의 혈관 (예 : 피펫 팁, 집게)과 접촉하는 모든 악기에 있는지 확인합니다. 이 장비에 혈관의 부착을 방지하는 데 도움이됩니다. 5. 혈관을 시각화 <ol><li> 깨끗한 슬라이드에 물 한 방울을 넣습니다. 200 μL 피펫이나 집게를 사용하여 물에 소화 혈관을 전송할 수 있습니다. 확인 혈관 평면 마운트는 전개된다. 물의 표면 장력은 이제 투명한 혈관 네트워크를 전개하는 데 도움이됩니다. 조직이 전개되지 않는 경우, 추가 물을 추가하고 부드럽게 전개 촉진하기 위해 슬라이드를 흔들어. </li><li> 종이 타월을 피펫 또는 사용하여 매우 느리게 과잉의 물을 제거합니다. </li><li> 슬라이드가 완전히 건조하도록 허용합니다. </li><li> PAS / 헤 마톡 실린이나 H &amp; E 염색 하나를 사용하여 해당 프로토콜을 통해 슬라이드를 얼룩. 참고 : PAS / 헤 마톡 실린은 혈관 벽 세포의 핵을 식별하는 데 유용합니다, H &amp; E는 D에 유용합니다RBC의 emonstration뿐만 아니라. </li><li> (글라스를 덮고 퍼 마운트로 봉입이 매체를 장착) 탈수 및 마운트합니다. </li></ol>

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	 <a target="_blank" href="http://jaxmice.jax.org/strain/001800.html">http://jaxmice.jax.org/strain/001800.html</a> (2012).</li>
</ol>

저자는 그들이 더 경쟁 재정적 이익이 없다는 것을 선언합니다.

트립신 다이제스트는 망막의 혈관을 평가하는 표준 방법입니다. 불행히도, 기술적으로 도전하고 정확하게 수행이되지 않을 경우, 시료 손실의 높은 비율이 발생할 수 있습니다. 또한, 절차는 안과 질환의 일반적으로 사용되는 유전자 동물 모델에서이 기술의 적용을 제한 할 수있는 마우스에서 특히 어렵습니다. 이 논문은 마우스 눈에 효과적이고 지속적으로 절차를 수행하는 방법에 대한 지침을 제공합니다. 프로토콜 몇 가지 중요한 단계가 있습니다. 첫째, 망막 혈관 네트워크가 그대로 유지되도록하기 위해, 어떤 큰 눈물을 피하기 위해 조심스럽게 해부하는 것이 중요합니다. 이 트립신 소화 후 쉽게 분리를 용이하게 혈관에서 시신경 층 분리하는 데 도움이 둘째, 여과수의 망막을 세척하는 것은 하룻밤 중요합니다. 이 과정을 촉진 수있는 하나의 수정은 1 %의 세 배에 망막을 배치하는 것톤 X-100은 1 ~ 2 시간 동안 여과 물에 혼합. 그런 다음, 트립신 다이제스트 물 일련의 후 같은 날 수행 할 ...

망막의 혈관을 시각화하는 등 당뇨 망막 병증 등 다양한 안과 질환의 메커니즘을 해부하는 매우 중요한 방법입니다. 그것은 하나의 microaneurysms, 모세 혈관 변성 및 혈관 주위 세포 손실 8,9 등 초기 혈관 이상을 평가할 수 있습니다. 지금까지, 망막 혈관을 분석하기 위해 개발 된 여러 가지 기술이 있었다. 다양한 염료의 혈류가 혈관을 강조하기 위해 사용되었지만, 모두 비슷한 한계를 공유했습니다. 선박 1 파열 및 손상 위험이 높은 압력에서 제공하지 않는 주사는 거의 전체 망막 혈관을 강조합니다. 형광 표지 된 G의 B4 isolectin (; I21413, Invitrogen의, 복합 알렉사 플 루어 594 1:100 희석)와 혈관 내피 세포의 면역 염색 및 망막 평면 마운트하면 혈관의 전반적인 구조를 강조하지만, 모세 혈관의 상세한 시각화, 기저막과 혈관 주위 세포없이 할 수 있습니다 . 그것은에 의해 관찰되었다혈관 정기 산 쉬프 (PAS) 또는 헤 마톡 실린과 에오신 (H &amp; E) 염색을 10으로 망막의 평면 마운트 염색에 의해 강조 할 수 Friedenwald. 그러나 염색은 혈관에 비 특이뿐만 아니라 비 혈관 조직을 강조 어려운 혈관을 차별화하고 있습니다. 1960 년대에, 코간와 쿠와 바라보다 쉽게 망막 1 혈관성 구성 요소를 소화하여 망막 혈관을 시각화 한 트립신 다이제스트 기술을 개발했다. 그 이후, 트립신 다이제스트 망막 2-5의 혈관을 분석하는 황금 표준 방법이되었다. 그러나, 그것은 혈관을 분리 할 수​​있는 다른 대체 기술이 기술되었다 것을주의하는 것이 중요합니다. 삼투 용해의 사용은 혈관을 분리하고 조직 11,12의 생화학 적 연구를 허용하는 데 사용되었지만, 절차는 해부학 적 연구를위한 주요 방법으로 사용되지 않았습니다. 조직의 인쇄 방법은있다미세 혈관의 큰 세그먼트를 분리하는 데 사용하고 혈관 13 electrotonic 구조를 연구 할 수있는 기능을 할 수 있습니다. 이론적으로,이 기술은 또한 혈관의 품질이 높은대로, 해부학 적 변화를 연구하는 데 사용할 수 있습니다. 그러나 그것은 단지 혈관의 전체 네트워크 세그먼트를 분리 할 수​​ 있습니다. 이러한 방법 트립신 다이제스트를 대체 할 수 있지만, 그것은 서로 다른 장점과 단점을 가지고 있으며이 점에서 보완하는 것이 중요하다. 트립신 다이제스트 방법은 기술적으로 도전하고 지속적으로 6,7 수행하기가 어렵습니다. 또한, 그것은 하나의 욕망 망막 6,7의 전체 혈관 구조를 보존하는 경우 특히 트립신 다이제스트, 마우스 모델에 특히 어렵다는 것을 지적하고있다. 과제 요구 (1) 혈관뿐만 아니라 비 혈관 조직 모두의 손실을 일으키는 원인이되는 망막의 이상 소화, (2)에 따라 소화를 포함의 혈관 침대의 손상, 비특이적 염색으로 이어지는 혈관의 비 혈관 조직 (3)별로 분리로 이어질 돌 수 있었다 광범위한 기계적 박리. 몇몇 원고는 이러한 문제를 강조, 그러나 아무도 그들에게 14,15을 극복하기 위해 상세하고 일관된 프로토콜을 제공했다. 이 원고는 특히 어려운 단계를 처리에 대한 구체적인 팁 마우스 및 쥐의 망막에 트립신 다이제스트를 수행하는 방법을 자세히 설명하는 단계별 방법을 소개합니다. 개략도는 그림 1에 표시됩니다.

<table><tbody><tr><td colspan="4">REAGENTS</td></tr><tr><td>10% 중성 완충 포르말린</td><td>Fischer Scientific</td><td>SF100-4</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin (1:250)</td><td>Amresco</td><td>0458-50G</td><td>0.1 M Tris TRIZMA base에서 3% 트립신 만들기</td></tr><tr><td></td><td>Sigma</td><td>T1503-1KG</td><td>0.1 M Tris 버퍼 만들기 (pH 7.8 @ 37 &deg; C)</td></tr><tr><td>TRIZMA</td><td>Sigma</td><td>T3253-500G</td><td></td></tr><tr><td>Steritop 멸균 진공 병</td><td>Millipore</td><td>SCGPS05RE</td><td>여과수</td></tr><tr> 생성<td colspan="4">EQUIPMENT</td></tr><tr><td>Dissecting microscope</td><td></td><td></td><td>망막을 잘 시각화할 수 있는 모든 현미경이 적합합니다. (24mm의 작동 거리에서 10배면 충분함)</td></tr><tr><td>스트레이트 가위</td><td>Fine Science Tools</td><td>15024-10</td><td>절삭 날 : 8mm; 팁 직경 : 0.2 mm; 10cm</td></tr><tr><td>스트레이트 펜치 (Inox)</td> <td>Dumont # 5</td><td>11252-20</td><td>Biologie 팁; 0.05 x 0.02 mm; 11cm</td></tr><tr><td>곡선 셉트 (Dumostar)</td> <td>Dumont # 7</td><td>11297-10</td><td>Biologie 팁; 0.07 x 0.04 mm; 11.5 cm</td></tr><tr><td>Dubnoff Metabolic Shaker Incubator</td><td>Precision Scientific</td><td>BDG59442</td><td>Shaker 옵션</td></tr><tr><td>24 웰 디쉬</td><td>Falcon</td><td>353047</td><td></td></tr><tr><td>현미경 슬라이드</td><td>폭스바겐</td><td>82027-132</td><td></td></tr></tbody></table>

트립신 다이제스트 프로토콜 마우스 모델의 망막 혈관을 분석하는

Trypsin Digest Protocol to Analyze the Retinal Vasculature of a Mouse Model

트립신 다이제스트는 망막 혈관 1-5 분석하는 황금 표준 방법입니다. 이것은 망막의 비 혈관 구성 요소의 소화 한 후 상호 혈관 채널의 2 차원 평면 마운트를 작성하여 복잡한 3 차원 망막 혈관과 모세 혈관의 전체 네트워크를 시각화 할 수 있습니다. 이것은 하나의 같은 microaneurysms 등 다양한 병리학 적 혈관 변화, 모세 혈관 변성 및 혈관 주위 세포 비율에 비정상적인 내피 세포를 연구 할 수 있습니다. 그러나, 메소드는 때문에 유전자 조작 6,7의 용이성의 망막을 연구하는 데 가장 널리 사용되는 동물 모델이 있고, 특히 생쥐에서, 기술적 도전이다. 마우스의 눈에서는 망막 혈관의 전반적인 구조를 유지하면서 완전히 비 혈관 구성 요소를 제거하는 것이 특히 어렵습니다. 지금까지, 세부 사항에 트립신 다이제스트 기술을 설명 문학의 부족이 난마우스를 명. 또한 어려운 단계의 문제를 해결에 대한 도움말을 제공하는 동안이 원고 마우스 망막에 트립신 다이제스트의 자세한 단계별 방법을 제공합니다.

성공적인 절차의 최종 제품은 그림 2-4에서와 같이 아키텍처, PAS / 헤 마톡 실린이나 H &amp; E 염색을하거나, 유지와 마우스 망막 혈관의 네트워크 전체의 평면 마운트입니다. 그림 3과 같이 내피 세포와 혈관 주위 세포의 감별법을 볼 수 있습니다. 망막 내피 세포의 핵은 타원형 또는 길쭉한하고 혈관 벽 내에 완전히 거짓말. 혈관 주위 세포의 핵은 작고, 구형, 밀도 얼룩 일반적으로 모세관 벽을 따라 돌출 위치에 있습니다. 트립신 다이제스트는 당뇨병 동물 모델에서 혈관 병리를 분석하는 일반적인 절차입니다. 같은 microaneurysms, 혈관 주위 세포 유령 (혈관 주위 세포 손실 증거), 무세 포성 모세 혈관과 모세 혈관 변성 등의 병리 혈관 병변을 설명하고 있습니다. 그림 4는 DB / DB 마우스에서 볼 모세 혈관 변성 유형에 대한 모델의 예를 보여줍니다<html> 당뇨...

트립신 다이제스트 망막 혈관을 분석하기 위해 가장 일반적으로 사용되는 방법 중 하나입니다. 이 원고는 혈관의 전반적인 구조를 유지하면서 기술을 최적화하고 비 혈관 조직을 제거 키 변경 등 세부 방법을 설명합니다.

Trypsin digest is the gold standard method to analyze the retinal vasculature 1-5. It allows visualization of the entire network of complex ...

본 실험 절차의 전반적인 목적은 망막 혈관 네트워크를 분리하는 것입니다. 우선 분리된 망막을 여러 번 물로 세척하여 이를 수행합니다. 두 번째 단계에서는 망막의 크기에 따라 37°C의 trypsin에서 약 1시간에서 1시간 30분 동안 소화시킵니다.다음으로, 추가적인 수세와 현미경 하의 박리 과정을 통해 혈관계를 분리합니다. 최종적으로 미세동맥류, 모세혈관 퇴행 및 비정상적인 내피세포 대비 기생충 비율과 같은 병리적 혈관 변화를 시각화할 수 있습니다. 따라서 망막 평면 표본(retinal flat mount) 제작과 같은 기존 방법 대비 try and digest 방식의 주요 장점은 전체 혈관 네트워크를 매우 선명하게 확인할 수 있다는 점입니다.일반적으로 이 방법은 기술적으로 까다롭고 일관되게 수행하기 어렵기 때문에, 처음 접하는 사람들은 어려움을 겪게 됩니다. 혈관 분리 단계는 말로만 배워서는 익히기 어렵기 때문에 이 방법에 대한 시각적 시연이 매우 중요합니다. 이는 당뇨망막병증과 같은 일부 질환을 포함하여 망막 혈관 생물학 연구를 수행하는 모든 실험실에서 매우 가치 있는 도구이며, 본 기술의 시연은 저희 실험실의 유능한 의대생인 Jonathan Chow가 진행하겠습니다.적출한 마우스의 안구를 10% 중성 완충 포르말린으로 24시간 동안 고정한 후, 안구를 페트리 접시에 넣고 소량의 물로 덮어줍니다. 해부 가위를 사용하여 각막에 조심스럽게 초기 절개를 하여 해부를 시작합니다. 그 다음, 직선 핀셋으로 절개 부위를 잡은 상태에서 가위를 이용해 각막과 공막의 경계를 따라 절개하여 각막을 제거합니다.다음으로, 미세한 곡선형 및 직선형 핀셋을 사용합니다. 공막과 맥락막을 망막에서 천천히 조심스럽게 벗겨내어 시신경 방향으로 이동시킵니다. 그런 다음 신경 망막층을 혈관으로부터 분리하기 위해 수정체와 과잉 홍채 및 망막의 잔해물을 제거합니다.24-웰 플레이트의 각 웰에 45 µm 필터링된 물을 약 500 µL씩 넣고 망막을 웰에 배치한 다음, 실온에서 4~5시간 동안 부드럽게 흔들어 줍니다. 이때 물은 30~60분마다 교체합니다. 실온에서 부드럽게 흔들어 주며 망막을 밤새 물로 계속 세척합니다. 다음 날, 물을 제거하고 3% trypsin을 첨가한 후, 현미경으로 관찰하여 웰 내에 잔해물이 없는지 확인합니다. 혈관이 부착되는 것을 방지하기 위해, 조직을 37 °C에서 1~1.5시간 동안 부드럽게 흔들거나 흔들지 않은 상태로 배양합니다.조직이 붕괴되기 시작하면 플레이트를 현미경 스테이지 위에 올린 다음, 망막을 피해 조심스럽게 트립신을 제거하여 혈관계를 분리합니다. 먼저, 핀셋을 사용하여 망막에 여과수를 첨가합니다.얇고 투명한 층으로 보이는 내경계막을 벗겨냅니다. 플레이트를 가볍게 흔들어 줍니다. 5분 후, 플레이트를 다시 현미경 스테이지 위에 놓고, 망막 조직에 부착된 혈관 네트워크를 분리하는 데 도움이 되도록 망막에 손상을 주지 않으면서 주의 깊게 물을 교체합니다.마지막 세척 후 물에 잔해물이 거의 또는 전혀 남아 있지 않을 때까지 시연한 대로 망막을 세척합니다. 일반적으로 혈관이 없는 조직을 모두 제거하는 것이 이 절차에서 가장 까다로운 부분입니다. 혈관 네트워크의 분리를 용이하게 하기 위해, 망막을 조작하기 전 모든 도구와 trypsin을 담가두는 것이 중요한 팁이며, 다음의 기술들을 순차적으로 또는 개별적으로 사용할 수 있습니다.이렇게 하면 조직이 장비에 부착되는 것을 방지하는 데 도움이 됩니다. 200 µL 마이크로 피펫 팁에 준비된 trypsin을 코팅한 후, 망막 혈관 옆에서 혈관 방향으로 물을 조심스럽게 위아래로 피펫팅하여 가볍게 흔들어 줍니다. 비혈관성 조직이 여전히 중앙에 남아 있다면, 시신경 부위에 trypsin이 코팅된 마이크로 피펫 팁을 대고 전체 혈관 네트워크를 조심스럽게 위아래로 피펫팅하여 비혈관성 조직의 분해를 돕습니다.마지막으로, 미세 핀셋을 사용하여 혈관계를 물 밖으로 부드럽게 들어 올려 부착된 비혈관 성분들을 제거할 수 있습니다. 최종 결과물은 파편이 없는 온전한 망막 혈관 네트워크여야 합니다.혈관 구조를 시각화하려면, 먼저 깨끗한 슬라이드 위에 물 한 방울을 떨어뜨립니다. 그런 다음 현미경으로 확인하면서 소화된 혈관을 물 속으로 옮깁니다. VA 플랩 마운트(flap mount)가 접혀 있거나 펴져 있을 수 있는데, 혈관이 접혀 있으면 시인성이 떨어집니다.염색 시 조직이 접혀 있다면, 물을 추가로 넣고 슬라이드를 부드럽게 흔들어 펼쳐지도록 유도하십시오. 그런 다음 마이크로 파이펫을 사용하여 여분의 물을 천천히 제거합니다. 절차가 성공적으로 완료되면 마우스 망막 혈관 네트워크 전체가 평평하게 고정되며, 구조가 유지된 상태로 hematoxylin과 eosin으로 염색된 결과물을 얻을 수 있습니다.여기에 표시된 이미지에서 볼 수 있듯이, 망막 내에서 혈관내피세포와 혈관주위세포 간의 명확한 구분이 관찰됩니다. 흰색 화살표로 표시된 혈관내피세포의 핵은 타원형 또는 길쭉한 형태이며 혈관벽 내에 완전히 위치합니다. 검은색 화살표로 표시된 기생충 핵은 크기가 작고 구형이며 진하게 염색되고, 일반적으로 모세혈관벽을 따라 돌출된 위치에 있습니다.트립신 소화(Trypsin and digest)는 당뇨병 동물 모델에서 혈관 병리를 분석하는 데 사용되는 일반적인 절차입니다. 이 이미지는 제2형 당뇨병 모델인 DB DB 마우스에서 관찰된 모세혈관 퇴행의 예시를 흰색 화살표로 나타내고 있습니다. 이 절차는 마우스 망막에 최적화되었으나, 랫드 망막에서도 유사한 결과를 얻을 수 있습니다.이 이미지들에서 볼 수 있듯이 쥐(rat)의 망막은 생쥐(mouse)의 망막보다 크기 때문에 24웰 플레이트가 아닌 12웰 플레이트가 필요하다는 점에 유의하십시오. 또한 쥐 망막의 혈관망은 생쥐의 혈관망보다 덜 취약합니다. 비혈관성 조직을 최대한 많이 제거하는 것이 매우 중요합니다.잔여물이 남으면 비특이적 염색이 일어나 혈관의 시각화가 제대로 이루어지지 않습니다. 예를 들어, 이 이미지에서는 비혈관 조직이 완전히 제거되지 않은 실패 사례를 확인할 수 있습니다. 마찬가지로, 혈관의 시각화를 개선하기 위해서는 마운팅 시 망막이 펴져 있도록 하는 것이 중요합니다.이 이미지는 혈관 평면 표본 제작(vascular flat mount) 과정에서 펼치기에 실패한 사례를 보여줍니다. 이 기술적으로 까다로운 절차를 숙달하면, 절단 및 소화법(Trips and digests)은 전체 혈관 네트워크를 상세하게 시각화할 수 있는 매우 가치 있는 방법이 될 수 있습니다.마우스 안구에서 이 기술을 개선함으로써, 연구자들은 유전자 조작 마우스를 활용하여 망막 혈관계를 조절하는 다양한 경로를 연구하고, 다양한 망막 질환의 병태생리를 이해할 수 있습니다. 이를 통해 당뇨망막병증과 같은 질병의 병리를 더 깊이 이해할 수 있습니다. DVDB 마우스와 같은 마우스 모델을 연구함으로써, 궁극적으로 망막 혈관계를 표적으로 하는 새로운 잠재적 치료적 개입 방법을 찾을 수 있는 기회를 얻게 됩니다.

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연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

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망막 혈관 구조의 주위 세포는 형광 토마토 렉틴의 역궤도 주사 후 혈소판 유래 성장 인자 수용체 β로 면역 형광 염색으로 검사했습니다. 표지된 망막은 조직 제거 방법으로 추가로 처리되었으며 컨포칼 현미경으로 망막 혈관 구조를 둘러싼 주위 세포의 3차원 보기를 시각화하기 위해 전체적으로 장착되었습니다.

Immunostaining을 통한 마우스의 망막 혈관 주위 세포의 3D 시각화 

배우세요 트립신 다이제스트 방법을 사용하여 마우스 망막 혈관을 분석하는 기술입니다. 이 방법은 혈관 네트워크를 명확하게 시각화하여 당뇨병성 망막병증 등의 병리 연구에 활용됩니다.

트립신 다이제스트 프로토콜 마우스 모델의 망막 혈관을 분석하는

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