Name: 마우스와 인간의 대장 조직에서 주요 근육 섬유 모세포의 분리 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-10-12T19:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 59 s
Description: 배우세요 마우스와 인간 대장 조직에서 주요 근육 섬유 모세포를 분리하는 방법을. 효소 처리와 면역조직화학 염색을 통해 세포를 검증하는 이 기술은 위장관 질환 연구에 필수적입니다.

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이 작품은 JY에 건강 그랜트 5KO8DK085136-02의 국립 연구소에 의해 지원되었다.

1. 콜론 조직을 얻기 마우스 이론적 근거 및 연구의 목적을 자세히, 동물 실험을 수행 할 수있는 프로토콜 제출 및 동물 연구 감독의 우리의 기관 사무실에 의해 승인되었습니다. <ol><li> 자궁 경부 전위 다음에 흡입 이소 플루 란으로 마우스를 안락사. </li><li> 복부 정중선 절개를 멀리 소장을 철회하고 콜론을 확인합니다. 옆으로 방광과 자궁 (있는 경우)를 후퇴와 치골을 식별하고 직장을 노출 미세 가위로 잘라. </li><li> 대장의 떨어져 직장의 지느러미 장간막을 해부하고 항문에서 맹장에 콜론을 동원하고, 소장에서 대장을 분리를 절개. </li><li> 얼음처럼 차가운 인산염 완충 생리 식염수 (PBS)의 표본을 놓습니다. </li><li> 얼음처럼 차가운 PBS로 10 ML의 주사기를 입력하고 콜론 OPE를 절단 한 후, 그 내용을 취소 여러 번 루멘 콜론을 플러시N 길이 방향 가위를 사용. </li><li> 얼음처럼 차가운 PBS의 20 ML을 포함하는 50 ML 원뿔 관에 콜론을 배치합니다. 콜론은 특정 방향으로 배치 할 필요가 없습니다. 유체가없는 입자상 물질을 취소 할 때까지 PBS를 대체​​하여 대장을 씻으십시오. </li></ol> 사람의 이 조직뿐만 아니라 잠재적 위험과 혜택에 대한 평가를 얻기의 중요성을 자세히 설명, 수술 환자의 인체 조직을 얻을 수있는 프로토콜을 제출하고, 인간 연구 보호 프로그램의 우리의 기관의 사무실에 의해 승인되었습니다. <ol><li> 대장 외과 의사와 연구 협력은 연구를위한 인간의 조직을 얻을 수있을 필요가있다. 인간의 대장 조직을 얻을 수있는 프로토콜 제출 및 기관 검토위원회의 승인을 받아야한다. </li><li> 서면 동의서는 이전의 수술로 환자로부터 얻어진다. </li><li> 의사는 스탠드에 결장 절제술을 수행합니다ARD 패션. 결장 환자에서 제거되면, 시료는 즉시 병리로 이동합니다. 병리학 적 평가를 위해 필요하지 대장 벽의 전층 섹션에서 0.5이 제공되며, 즉시 얼음처럼 차가운 PBS에 배치됩니다. 이 시료는 대장 장간막을 포함하지 않아야하고, 지방의 존재가 소화 과정에 영향을 미칠 것이기 때문에 epiploic 부속기는도 제거해야한다. </li></ol> 2. 상피 세포를 발가 벗기다 <ol><li> 50 ML 원뿔 관에 HBSS 5 ㎜ EDTA (실온) 25 ㎖에서 전체 마우스의 결장을 품어. 15 분 동안 37 ° C의 동요 노천탕 (250 RPM)에서 원뿔 튜브를 놓습니다. 15 분 후, 조심스럽게 액체를 부어 5 ㎜ EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산) 25 ㎖로 튜브를 리필, 5 씻어 총 반복합니다. 인간의 콜론, 병리학에서 대장 벽의 ½ 인치 스트립을 획득 한 후 네 개의 동일한 크기의 조각으로 가위로 결장을 잘라. 한 50 ML 원뿔 튜브에 조각 두 개를 놓고별도의 50 ML 원뿔 관에 결장 조직의 나머지 두 조각을 배치합니다. 그런 상술 한 바와 같이, HBSS 5 ㎜ EDTA 25 ㎖로 배양 및 세척을 수행합니다. </li><li> 얼음처럼 차가운 PBS의 20 ML에 두 번 콜론을 씻어. </li><li> RPMI-5 20 ㎖, 디스 파제 10 U, 및 콜라게나 D 2000 U (실내 온도)를 포함하는 새로운 50 ML 원뿔 튜브에 마우스 대장 조직을 놓습니다. 인간의 대장 조직의 경우, 디스 파제와 콜라의 양의 두 배 (20 U의 디스 파제, 4000 U 콜라게나 D)를 사용합니다. </li><li> (수평으로 배치하는 경우, 너무 많은 통기 및 세포 손상이) 수직 방향 37 ° C의 동요 노천탕에서 튜브를 놓습니다. 최대 60 분 동안 250 rpm으로 흔들어. 디스 파제 및 콜라게나 D에 노출 된 후, 대장 조직을 소화하기 시작하고 대장 조직 힘줄보고 시작합니다. 이것은 일반적으로 약 30 분 소요됩니다. 콜론이 모양이되면, 효소에서 콜론을 제거합니다. </li><li> 조직을 파괴하기 위해 위아래로 2-4 회를 각각의 튜브를 흔들어. 피5 분 탁상 원심 분리기 (4 ℃)에서 200 XG에서 조직을 ellet. 조심스럽게 뜨는을 부어 버린다. </li></ol> 3. 근섬유의 분리 및 문화 <ol><li> 10 ㎖의 ACK 용해 완충액 (47 ° C)를 첨가하여 각 펠렛을 재현 탁. 다시 원심 분리기 5 분 (4 ℃) 200 XG에서, 부어 상층 액을 버린다. </li><li> 피펫으로 10 ㎖의 RPMI-5를 추가하여 각 펠렛을 재현 탁. </li><li> 100 밀리 TC 처리 접시에 10 ㎖ 피펫을 사용하여 70 μm의 메쉬 스트레이너를 통해 세포 현탁액 (5 ㎖)의 절반을 전달합니다. 그런 다음 RPMI-5의 추가 15 ML을 추가합니다. 다른 100mm의 TC 처리 접시에 세포 현탁액의 나머지 5 ㎖로 반복합니다. 하나의 마우스 결장 따라서 두 개의 100mm의 TC 처리 된 요리를 얻을 것입니다. 인간의 대장 조직의 하나 ½ 인치 스트립은 네 개의 100 mm의 TC 처리 된 요리의 총을 얻을 것입니다. </li><li> 37 ° C에서 10 % CO 2 배양기에서 조직 배양 접시를 놓고 배양 조건은 동일 F 아르또는 마우스와 인간의 기본 세포. </li><li> 3 시간 후, 부드럽게 HBSS의 두 가지 변화에 비 부착 세포를 씻어. 파편 부동 부드럽게 씻어해야합니다. 부착 세포는 상피 세포, 대식 세포와 근육 섬유 모세포로 구성된다. 일주일 후 파종 만 분할을 근육 섬유 모세포, 대식 세포와 상피 세포는 첫 번째 통과 후 senesce. 신선한 RPMI-5를 추가하고 세포 배양에서 세포를 성장. </li><li> 세포는 5 분 동안 트립신 처리하여 계대하고 2:1 분할됩니다. </li></ol> 약어 HBSS : 행크의 균형 소금 솔루션, RPMI-5 : 로즈웰 파크 기념 연구소 매체, ACK : 암모늄 - 염화 칼륨, FCS : 태아 혈청, TC 처리 : 조직 배양 처리 솔루션 ACK 용해 버퍼 - (4.15 g NH 4 망할 CIA, 0.5 g의 KHCO 3, 18.6 mg의 나 2 EDTA, 400 ML의 H 2 O, 1 N HCl로 7.2-7.4로 산도를 조정). 필터 steriliz전자에서 0.2 μm의 필터와 매장을 통해 4 ° C. RPMI-5 - (500 ㎖ 만드는 : 454.5 ML RPMI, 25 ㎖의 FCS, 5 ㎖ 200 밀리미터 L-글루타민, 5 ㎖ 1 M HEPES, 산도 7.4, 5 ㎖를 100 mM의 피루브산 나트륨, 5 ㎖ 100X 펜 연쇄상 구균, PBS 500 ㎖의 50 mM의 B-ME).

<ol><li>Armaka, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenchymal+cell+targeting+by+TNF+as+a+common+pathogenic+principle+in+chronic+inflammatory+joint+and+intestinal+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">Mesenchymal cell targeting by TNF as a common pathogenic principle in chronic inflammatory joint and intestinal diseases.</a> J. Exp. Med. 205, 331-337 (2008).</li>
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</ol>

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마우스 또는 인간의 콜론을 사용하면 일반적인 방법은 비슷합니다. 이 기술은 또한 소장에서 근육 섬유 모세포를 분리하는데 사용될 수있다. 1 근육 섬유 모세포의 분리에 대한 구체적인 내용은. 마우스와 2. 인간의 대장은 아래에 설명되어 있습니다. 1. 마우스 콜론 마우스 결장 관개는 결장의 일단에 16 G 포퍼 무딘 엔드 바늘에 4를 부착함으로써 촉진된다. 세로 결장 절단 경우에도 도움이됩니다. 당신은 바늘에 결장 조직을 아코디언 수있다, 그 후에 날카로운 끝을 위로 가위의 한 끝을 배치하고 세로 엽니자를 때 가위의 가장자리에 결장 조직을 밀어 넣습니다. 2.1 단계에서, 죽은 세포에서 핵 물질이 세포의 응집을 초래할 수 있다는 것을 이해하는 것이 중요합니다. DNA 분해 효소 (50 ㎎ / ㎖)의 추가는이 문제를 해결하기 위해 사용될 수있다. <p class="jove_c...

위장관 기능의 조절은 점막층과 내부 간엽 간의 복잡한 동적 상호 작용을 수반한다. 이러한 상호 작용은 일반적으로 항상성을 유지하는 역할뿐만 아니라 병적 인 조건 1에서 질병 상태의 개발로 이어질 수 있습니다. 근육 섬유 모세포는 점막 재생, 수리 및 섬유증 2를 포함 중요한 위장관 프로세스의 수를 조절하는 세포 모집단을 둘러싼 주변 분비 방식으로 통신 상피 층 바로 아래에 위치 기질 세포의 모집단입니다. 그것이 시츄 근육 섬유 모세포의 차의 많은 특징을 공유하기 때문에 18Co 세포주 널리 근섬유의 기능을 연구하기 위해 사용되었다 인간 결장 근섬유 세포주의 예이다. 이러한 단백질 - 평활근 액틴의 발현 (α-SMA) 및 멘틴뿐만 아니라 수의 표현을 포함이러한 표피 성장 인자 수용체, 또는 라이 소포스 파티 딕산에 3,4위한 수용체로서 세포 표면 수용체. 때문에 이러한 공유 미세 구조 특성뿐만 아니라 생물학적 기능 소재 유사성 18Co 세포주는 염증성 장 질환 또는 대장 암 3,6 많은 질병 상태의 컨텍스트에서 근섬유의 기능을 연구하기 위해 광범위하게 사용되고있다. 그러나, 세포주를 사용하여 고유의 제한 문제가있다. 이러한 성장 속도와 다른 세포 집단의 상호 작용과 세포의 표현형과 생물학적 기능을 변경, 기본 세포에서 세포 라인을 차별화 시간에 유전자형 불안정이 (가) 있습니다. 세포주는 또한 그것의 사용에 큰 제한 사항입니다 GI 미시 (상피, 간질, 혈관 구성 요소)의 일반 구성 요소를 부족합니다. 따라서, 실험 세포주 연구에서 도출 된 결론은 RI를 줄이기 위해 더 검증이 필요합니다오해의 SK. 기본은 근육 섬유 모세포 세포주 7에서 식별 된 실험 결과를 확인하기 위해 인간 및 마우스 결장 조직으로부터 얻을 수있다. 이 방법은 원래 Mahida, 등. 8에 의해 설명하고, 우리의 프로토콜은 마우스와 인간의 대장 9에서 기본 근육 섬유 모세포를 분리하는 데 사용할 수있는 많은 잘 설명 된 기술 중 하나입니다. 결장 질환의 마우스 모델의 경우,이 기술들은 이웃하는 셀과 상호 작용하는 방법을 연구하거나 정상 또는 병리 GI가 10,11 처리 모두에 기여하는 주요 근육 섬유 모세포를 분리하기 위해 사용될 수있다. 이러한 기술은 면역 조직 치유, 섬유증, 및 결장 선종 및 암종의 개발 점막에 기여하는 방법을 연구하기 위해 이용 될 수있다. 주요 근육 섬유 모세포 또한 양성 (염증성 장 질환, 협착, 게실염) 또는 악성 C의 작동시 절제 한 인간 결장 조직으로부터 얻을 수있다onditions. 인간과 마우스 대장 조직에서 고립 된 차 세포​​는 세포 배양에서 성장 및 통로의 제한된 수에 활용 될 수있다.

<table><tbody><tr><td>시약명</td><td>회사</td><td>카탈로그 번호</td><td>코멘트 (선택 사항)</td></tr><tr><td>Dispase I</td><td>Invitrogen/GIBCO</td><td>#17105-041</td><td></td></tr><tr><td>콜라겐분해효소 D</td><td>Roche</td><td>#1 088 858</td><td></td></tr><tr><td>4 in, 16 G Popper blunt-end needle</td><td>Fisher</td><td>#14-825-16K</td><td></td></tr></tbody></table>

마우스와 인간의 대장 조직에서 주요 근육 섬유 모세포의 분리

Isolation of Primary Myofibroblasts from Mouse and Human Colon Tissue

근섬유는 많은 GI 기능에서의 중요한 역할에 대해 상당한 관심을 얻고있다 위장관 (GI) 요로의 기질 세포이다. 여러 근섬유 세포 라인은 체외에서이 세포를 연구하기 위해 상업적으로 사용할 수 있지만, 실험 세포 배양 조건에 노출 된 세포주에서의 연구 결과는 작품의 지나치게 환원 주의적 성격으로 인해 고유의 제한이 있습니다. 일차 근육 섬유 모세포의 사용은 세포주에서 확인 실험 결과를 확인하는 점에서 큰 장점을 제공한다. 동물 모델에서 기본 근육 섬유 모세포의 분리는 더 밀접하게 질병 상태가 연구되고 모방 조건에서 근육 섬유 모세포의 연구를 위해 수 있습니다. 세포가 기저 질환을 가진 환자에서 직접 오기 때문에 인간의 대장 조직에서 기본 근육 섬유 모세포의 분리는, 틀림없이 가장 관련성이 실험 데이터를 제공합니다. 우리는 u가 될 수있는 잘 확립 된 기술을 설명마우스와 인간의 대장 조직 모두에서 기본 근육 섬유 모세포를 분리 tilized. 이 고립 된 세포는 피하 장 근육 섬유 모세포와 일치하는 알파 - 평활근 액틴과 vimentin에 양성하고, 최근 desmin 음수로 특성화되었다. 주요 근섬유 세포는 세포 배양에서 성장 및 통로 한정 이상의 실험 목적을 위해 사용될 수있다.

일단 고립 된, 인간의 기본 근육 섬유 모세포는 세포 배양에서 재배하고 (유로 4까지) 통로의 제한된 수의를 통해 사용할 수 있습니다. 이 세포는 장 피하 근육 섬유 모세포 5,7와 일치 - 평활근 액틴과 vimentin에 긍정적 인 것으로 특징 및 최근 desmin 음 (그림 1A) 있습니다. 또한 특성 별 모양의 형태 (그림 1B)가있다. 주요 근육 섬유 모세포는 세포주에서 확인 실험 결과를 확인하기 위하여 사용될 수있다. 이 방법은 염증성 사이토 카인 TNF-α (10 NG / ML)은 EGF 수용체 발현의 상향 조절을 유도하고 이러한 세포 7 신호 있음을 입증하기 위해 이용되었다. 상향 조절 EGF 수용체 발현 및 신호는 처음에는 앞서 언급 한 인간의 대장 근섬유 세포 라인 18Co (그림 2)를 이용하여 발견되었다. 그림 2A, 우리는에 18Co 세포의 노출 ...

근섬유는 정상과 질병 상태 모두에서 중요한 생리 과정을 조절하는 위장관의 영향력 기질 세포이다. 우리는 마우스 및 시험 관내 실험에 이용 될 수있는 인간의 결장 조직 모두에서 일차 근육 섬유 모세포의 분리를 허용하는 기술을 설명한다.

The myofibroblast is  a stromal cell of the gastrointestinal (GI) tract that has been gaining  considerable attention for its critical role in many GI ...

이 절차의 전반적인 목표는 생쥐 또는 인간의 결장 조직에서 일차 근섬유아세포를 분리하는 것입니다. 이를 위해 먼저 공여자 생쥐로부터 결장을 적출하고 얼음처럼 차가운 PBS로 세척합니다. 그다음, 일련의 세척 및 효소 처리 과정을 통해 상피 세포를 제거합니다.그런 다음 상피세포 현탁액을 조직 배양 접시에 분주하고 배양합니다. 마지막으로, 비부착 세포를 세척하여 제거함으로써 근섬유모세포를 분리합니다. 최종적으로 면역조직화학 염색을 통해 일차 근섬유모세포 세포의 분리를 보여주는 결과를 얻을 수 있습니다. 해당 절차의 시연은 저희 실험실의 기술자가 담당하겠습니다.모든 실험은 캘리포니아 대학교 동물 연구 감독국(University of California Office of Animal Research Oversight)의 승인을 받았으며, 마우스는 이소플루란(isof fluorine) 흡입 후 경추 탈구를 통해 안락사시켰습니다. 먼저 복부 정중선 절개를 실시합니다. 장을 옆으로 젖혀 결장을 찾고, 방광을 외측으로 밀어낸 뒤 미세 가위를 사용하여 치골을 확인합니다.뼈를 절단하여 직장을 노출시키고, 직장과 결장에서 배측 장간막을 박리한 후 항문부터 맹장까지의 결장을 고정합니다. 그런 다음 결장을 절단하여 소장과 분리합니다. 시료를 얼음처럼 차가운 PBS에 넣습니다.얼음처럼 차가운 PBS를 10 cc 주사기에 채운 후, 결장 내강을 여러 번 세척하여 내부 물질을 제거합니다. 그런 다음 가위로 결장을 세로 방향으로 절개하여 얼음처럼 차가운 PBS 20 milliliters가 들어 있는 50 milliliter 원추형 튜브에 넣습니다. 액체가 맑아지고 입자상 물질이 더 이상 보이지 않을 때까지 PBS 교체를 계속합니다.수술 전 환자로부터 서면 동의서를 받는 것을 포함하여, 수술 환자로부터 인체 조직을 얻기 위한 프로토콜은 University of California의 인체 연구 보호 프로그램(Human Research Protection Program) 사무국에 의해 승인되었습니다. 표준 절차에 따라 수행된 결장 절제술을 통해 결장벽의 0.5인치 전층 섹션을 얻어 즉시 얼음처럼 차가운 PBS에 넣습니다. 모든 결장 장간막과 추고름돌기를 제거합니다.지방의 존재가 소화 과정에 영향을 미치므로, 마우스 결장 전체를 5 mM EDTA가 포함된 HBSS 25 mL가 담긴 50 mL 원추형 튜브에 넣고 37 °C 진탕 항온수조에서 15분

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

인간의 근육에서 유래한 주요 부착 세포 유형은 근육 세포와 섬유아세포입니다. 여기에서 세포 집단은 CD56 항원을 기반으로 하는 자기 활성화 세포 분류를 사용하여 농축됩니다. 이후 특정 항체를 사용한 면역 라벨링과 이미지 분석 기법을 사용하여 개별 세포의 세포질 및 핵 특성을 정량화할 수 있습니다.

인간의 골격근에서 기본 근육 조직 세포와 섬유 아 세포의 분리 및 정량 면역 세포 화학 특성

우리는 근섬유아세포 표현형을 가진 쥐와 인간 식도 기질 세포의 1차 배양을 생성하는 프로토콜을 제시합니다. 배양된 세포는 방추체 모양의 형태를 가지고 있으며 α-SMA 및 비멘틴을 발현하며 상피, 조혈 및 내피 세포 표면 마커가 없습니다. 특성화된 기질 세포는 상피-기질 상호 작용의 기능적 연구에 사용할 수 있습니다.

마우스 및 인간의 식도에서 근섬유 아세포의 분리

외과적 결장 종양 및 정상 조직에서 일차 인간 세포를 추출하기 위한 프로토콜이 설명되어 있습니다. 그런 다음 분리된 세포를 세포외 기질 단백질에 의해 기능화되고 형광 마이크로비드가 내장된 부드럽고 탄력 있는 기질(폴리아크릴아미드 하이드로겔)에서 배양합니다. 견인 세포 분석은 세포 수축 응력을 평가하기 위해 수행됩니다.

수술 조직에서 기본 인간 대장 종양 세포의 분리 및 견인 세포 계측법 부드러운 탄성 기판에 직접 배양

여기에서는 기저에 있는 크립트 베이스 세포에서 공간적으로 구별되는 쥐 결장 상피 표면 세포를 분리하는 간단한 방법을 설명합니다.

쥐 대장 점막의 이외에 Microdissection을위한 냉동 절편 방법

여기에서는 MF 표현형을 가진 동결된 위, 소장 및 결장 조직 생성 세포에서 1차 섬유아세포/근섬유아세포(MF) 배양을 분리하고 확립하는 프로토콜이 제시됩니다. 이 세포는 CD90, α-SMA 및 비멘틴을 발현합니다. MF는 효소 활성 및 사이토카인 생산을 포함한 다양한 기능 분석에 사용할 수 있습니다.

인간의 냉동 위장 표본에서 CD 90+ 섬유 아세포 / 근섬유 아세포의 분리

이 프로토콜의 목표는 콜라게나제를 사용하여 조직의 효소 소화에 의해 결장의 라미나 프로피리아에 있는 단핵 세포를 분리하는 것입니다. 이 프로토콜은 단일 핵 세포의 효율적인 분리를 허용하여 단일 세포 현탁액을 생성하여 강력한 면역 세포 증식에 사용할 수 있습니다.

콜라게나아제 E를 사용하여 뮤린 결장에서 라미나 프로프리아 단핵 세포의 분리

우리는 초보자 (예를 들어, 학생)에 의해 수행 할 수있는 쉽고 빠르고 신뢰할 수있는 방법으로 기본 성인 섬유 아아세포를 분리하는 프로토콜을 제시한다. 이 절차는 효소 조직 소화와 기계적 동요를 초음파와 결합하여 1 차 섬유 아아아를 얻습니다. 프로토콜은 특정 실험 요구 사항(예를 들어, 인간 조직)에 쉽게 적응될 수 있다.

초음파 증강 원발성 섬유아세포 분리

근세포는 다핵근화 된 myotubes를 형성하고 결국 골격 근섬유를 형성하기 위해 분화 전구세포를 증식시. 여기에서, 우리는 젊은 성인 마우스 골격 근육에서 1 차적인 근분의 능률적인 격리 그리고 문화를 위한 프로토콜을 제시합니다. 이 방법은 배양에서 근육 세포의 분자, 유전 및 대사 연구를 가능하게합니다.

마우스 골격 근 이식에서 기본 근구의 격리 및 분화

섬유아세포의 순수한 인구를 얻는 것은 상처 수선 및 섬유증에 있는 그들의 역할을 공부하는 것이 중요합니다. 여기에 기재된 상세한 방법은 면역형광, RTPCR, 형광 보조 세포 선별에 의한 순도 및 기능성의 특성화에 이어 부상을 입지 않은 마우스 하트로부터 섬유아세포 및 근섬유아세포를 분리하는 상세한 방법이며, 콜라겐 젤 수축.

성인 심장 섬유 아세포 및 근섬유 아세포의 격리 및 특성화

이 프로토콜에서, 우리는 장 지하실에서 직접 뮤린 기본 상피 결장 단층층을 생성하는 방법을 설명합니다. 우리는 투과성 필터에 컨천단층을 생성하기 위한 실험적 접근법, 스크래치 상처 치유 및 생화학 연구를 위한 컨큐리 단층, 면역 형광 분석을 위한 희소및 응수 단층층을 제공합니다.

장 내 토굴에서 뮤린 기본 결장 상피 단층의 세대

여기에서 우리는 텔로세포를 포함한 쥐의 장 중간엽을 분리하는 프로토콜을 제시합니다. 이들은 마우스 또는 인간 유래 오가노이드와의 공동 배양과 같은 여러 응용 분야에 사용하여 성장을 지원하고 원래 조직의 상황을 더 잘 반영할 수 있습니다.

쥐 장 중간엽의 분리로 텔로세포의 높은 수율

배우세요 마우스와 인간 대장 조직에서 주요 근육 섬유 모세포를 분리하는 방법을. 효소 처리와 면역조직화학 염색을 통해 세포를 검증하는 이 기술은 위장관 질환 연구에 필수적입니다.

마우스와 인간의 대장 조직에서 주요 근육 섬유 모세포의 분리

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