Name: 비접촉식 유전을 통해 라벨이없는 분리 및 세포의 농축 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-09-03T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 38 s
Description: 배우세요 비접촉식 유전영동법(cDEP)을 이용한 라벨 없는 세포 분리 및 농축 기법을 생물물리학 및 미세유체학 연구에 적용하는 방법을. 이 기술은 세포의 고유한 전기적 특성을 기반으로 무손상 정렬이 가능합니다.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

지원이 작품은 국립 과학 부여 번호 EFRI 0938047에서 재단 및 중요한 기술 및 응용 과학의 버지니아 공대 연구소 (ICTAS)에 의해 부분적으로 지원되었다. 저자는 MOSE-L 세포의 자신의 종류의 선물 박사 에바 Schmelz의 박사 폴 로버츠 감사의 말씀을드립니다. 저자는 그녀의이 문서를 편집하고 실험을 준비하는 그녀의 도움을 세포 배양, Caitlan Swaffar에 대한 지원, 그리고 모든 Bioelectromechanical 시스템 실험실 구성원 안젤라 앤더슨을 인정합니다.

1. 개요 : 프로토 타입 cDEP 미세 유체 소자의 제조 <ol><li> 실리콘 웨이퍼에 원하는 채널 디자인 (그림 1) (그림 2) 에칭, 포토 레지스트와 깊은 반응 이온 에칭 (DRIE)를 사용하여 이전에보고 절차 (22)를 따르십시오. 웨이퍼로부터 마이크로 디바이스의 방출을 향상시키기 위해 테프론의 얇은 층을 증착. </li></ol><img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/50634/50634fig1.jpg" /> 그림 1. 낮은 주파수 연속 정렬 장치의 개략도. 샘플 채널이 실행은 왼쪽에서 오른쪽으로 100 μm의 톱니 긴축 500 μm의 폭이다. 유체 전극 채널의 두 쌍 각각 소스 및 싱크 전극을 구성하고, 20 μm의 두께 PDMS 장벽으로 샘플 채널로부터 분리된다. <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/50634/50634fig2.jpg" /> 그림 2. Fabr와cDEP 장치의 가스화 공정. (a) 60 초를 들면, UV 광을 선택적 cDEP 장치 형상의 마스크 패턴을 통해 노광 된 포토 레지스트와 반응한다. (b) 포토 레지스트 현상 제를 사용하여 제거된다. (c) 깊은 반응성 이온 에칭 (DRIE) 50 ㎛ 깊이의 특징을 에칭하고, 70 ° C에서 테트라 메틸 암모늄 하이드 록 사이드 (TMAH) 25 % 웨트 에칭으로 5 분간하는 데 사용은 측벽 거칠기를 줄이기 위해 사용된다. (d) 테프론 코팅에서 디바이스 방출을 향상시키기 위해 첨가 웨이퍼. (E)은 PDMS는 가스를 제거 후 재사용 가능한 웨이퍼 스탬프에 붓고 100 ° F. (F) PDMS는 웨이퍼에서 제거에 45 분 동안 경화된다. PDMS와 깨끗한 유리 슬라이드를 2 분 동안 공기 플라즈마에 노출과 함께 결합된다. <ol start="2"><li> 파급을 방지하기 위해 알루미늄 호일로 웨이퍼를 감싸십시오. 약 20 분 동안 에이전트, 드 가스를 경화 엘라스토머 10:1 비율의 폴리 디메틸 실록산 (PDMS)을 혼합및 상기 웨이퍼 상에 붓는다. 열은 100 ° C에서 45 분 동안 스탬프의 테플론 코팅의 손상을 방지합니다. 장치가 냉각 할 수 있습니다. </li><li> 냉각 한 후, 알루미늄 호일을 제거하는 수술 블레이드를 사용하여 PDMS를 손질하고, 튜브의 크기에 적합한 무딘 주먹을 사용하여 채널의 입구 / 출구에 액세스 구멍을 펀치. 여기서, 1.5 mm 무딘 펀치가 사용됩니다. </li><li> 각각의 물과 비누 린스, 에탄올, DI 물, 공기와 건조를 사용하여 유리 현미경 슬라이드를 청소합니다. 스카치 매직 테이프를 사용하여 PDMS 장치를 청소합니다. 채널이 깨끗한 지 확인하기 위해 현미경으로 확인한다. 2 분 동안 공기 플라즈마에 슬라이드와 PDMS 장치를 노출합니다. 단단히 장치와 슬라이드 (그림 3) 사이에 공기 거품의 형성을 방지, 유리 슬라이드에 장치의 채널 측면을 누릅니다. </li></ol><img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/50634/50634fig3.jpg" fo:content-width="6in" fo:src="/files/ftp_upload/50634/50634fig3highres.jpg"/> 그림 3. </st룽&gt; (A) 실리콘 웨이퍼의 우표 제작, 샘플 각각 녹색과 붉은 식용 색소, 가득 유체 전극 채널 (B) 완성 된 PDMS 유리 장치 중 포토 리소그래피에 사용되는 마스크. 치수는 그림 1을 참조하십시오. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/50634/50634fig3highres.jpg" target="_blank">큰 그림을 보려면 여기를 클릭하십시오</a> . 2. DEP 버퍼에 세포 현탁액을 준비 <ol><li> &quot;DEP 버퍼&quot;라고한다 낮은 전도성을 준비 (100 μS / cm) 버퍼 (8.5 % 자당 [W / V], 0.3 % 포도당 [W / V], 0.725 % RPMI [W / V]) . 16 </li><li> 3 × 106 세포 / ml에서 DEP 버퍼 셀 서스펜드. 여기에, 암 말기 마우스 난소 표면 상피 (MOSE-L) 세포가 사용됩니다. </li></ol> 참고 : 트리 판 블루 염색 배제 법에 의해 세포 생존 분석을 생존력의 경미한 감소를 보였다5 시간 후 실온에서 DEP 완충액 초기 단계 MOSE (MOSE-E) 세포 (95.1-91.6 %에서). 그것은 생존에 비슷한 약간의 감소는 세포가 장기 버퍼 DEP에 저장되지 것을 나타냅니다 MOSE-L 세포에 발생하는 것으로 예측된​​다. <ol start="3"><li> 그러한 효소 - 활성화 된 칼 세인 AM로, 형광 막 투과성 염료를 사용하여 세포를 염색. </li><li> 염색 된 세포 현탁액의 전도도를 측정한다. 전도도는 약 100 μS / cm이어야한다. 전도율 측정이 너무 크면, 6 세포 / ㎖ X 10 세에서 DEP 버퍼에, 아래에 resuspend을 샘플을 회전 및 전도도 측정을 반복한다. </li></ol> 3. cDEP 미세 유체 칩을 넣기 <ol><li> 30 분 동안 진공 마이크로 유체 칩을 놓습니다. </li><li> 한편, 마이크로 유체 칩이 위치 할 현미경 단계에 주사기 펌프의 거리에 걸쳐 유연한 튜브의 조각을 잘라. 여기에, 튜브의 6 인치 길이필요합니다. 주사기 끝을 바늘에 맞추기 튜브. </li><li> 관의 단면적에 의해 수집 대상 샘플 볼륨을 분할함으로써 출구 호스 위해 필요한 길이를 추정한다. 이 튜브의 길이를 필요로 자른다. </li><li> 주사기로 세포 현탁액을 그립니다. 기포가 튜브 또는 주사기에 위치하고 있지 않은지 확인합니다. </li><li> 진공에서 칩을 제거하면, 채널에 갇혀있는 공기 방울을 방지하기 위해 신속하게 배출 튜브 프라임 샘플 채널을 삽입합니다. 장벽을 절연 박막 (20 μm의) 파열을 방지하기 위해 프라이밍 때 장벽이 파열없이 5 ㎖ / 시간에 가까운 일정한 처리량을 견딜 수있는 것으로 확인되었습니다 불구하고 조심스럽게 주사기를 누릅니다. </li><li> 주요 전극 채널에 신속하게 각 유체 전극 채널의 하나의 콘센트에 빈 피펫 팁을 배치합니다. 로다 민 B의 소량을 함유하는 PBS 200 μl를 피펫 부드럽게 전극 채널의 대향 단부에 유체를 도입하는 탭. 부드러운 압력을 유지로다 민 B와 PBS는 눈에 띄게 빈 피펫 팁의 끝을 진행 할 때까지. 각 전극 채널에 대해 반복합니다. 로다 민 B는 찬란 유체 전극 채널을 시각화하는 데 사용됩니다. </li><li> 프라이밍 한 후, 피펫 팁 저수지에서 로다 민 B의 피 거품 형성과 PBS 각 피펫 팁 저수지를 채우고, 위아래로 부드럽게 피펫 팅에 의해 눈에 보이는 거품을 제거합니다. 출구 튜브를 분리하고 적절하게 폐기, 다음 대상 볼륨을 수집하는 새로운 출구 튜브 저수지를 삽입합니다. </li></ol> 4. cDEP 칩을 사용하여 세포의 특성화 크로스 오버 주파수 <ol><li> 디지털 카메라 (그림 4)가 장착 된 거꾸로 현미경의 무대에 칩을 놓습니다. </li></ol><img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/50634/50634fig4.jpg" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/50634/50634fig4highres.jpg"/> 그림 4. </stroNG&gt; () cDEP 실험에 대한 전체 실험 장치. cDEP 칩은 거꾸로 현미경의 플랫폼에 있습니다. 카메라가 녹화를 위해 이미지를 컴퓨터로 전송합니다. 주사기 펌프는 일정한 유입 흐름을 유지한다. 함수 발생기는 고전압 증폭기에 의해 승압하고 와이어 전극에 의해 cDEP 칩에 접속되어 신호를 생성한다. 오실로스코프는 칩에 전송되는 신호를 모니터링합니다. (b)는 cDEP 칩과 유체 및 전자 연결 상세도. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/50634/50634fig4highres.jpg" target="_blank">큰 그림을 보려면 여기를 클릭하십시오</a> . <ol start="2"><li> 주사기 펌프에 주사기를 장착하고 유체 전극 채널 저수지에 와이어 전극을 삽입합니다. </li><li> 주사기 펌프와 주사기 사이 좋은 접촉을 보장하기 위해 1 ㎖ / 시간을 통해 유체를 펌프. 시각적으로 방해받지 않고 세포의 흐름과 거품이나 누수의 유무를 확인하기 위해, 채널 길이를 검사한다. 빨강0.005 ㎖ / 시간에 UCE 유량. 주 : 1 ㎖ / 시간의 31,35의 높은 처리량은 다른 형상의 장치에 달성되었다. </li><li> 안전을 위해, 함수 발생기, 고전압 증폭기 및 오실로스코프에 전원을 공급하고, 원하는 전압과 주파수를 조정하여 부품을 시험한다. 다음은 이러한 매개 변수는 200 V, 20 kHz에서입니다. 적절한 성능, 전원 오프의 검증에. 고전압 앰프에 전극을 연결합니다. 참고 :이 실험에 사용 된 높은 전압에서 전자 제품을 작동 할 때 적합한 전기 안전 절차를 준수하십시오. </li><li> 흐름을 지속적으로 달성되면, 원하는 주파수에서 원하는 전압을 적용합니다. 이 실험에서, 전압은 5 ~ 60 kHz에서의 주파수에서 200 V RMS입니다. </li><li> 화상 처리 기술이 채널에서 세포 분포를 정량화 및 크로스 오버 주파수를 특성화한다 (단계 5)와 세포 반응의 기록 비디오 파일. 이 작업을 수행하려면,일정한 전압을 유지하고 체계적으로 주파수를 변경. 실험뿐만 아니라 무작위 실험적인 실행 사이의 시작과 끝에서, 임의의 전기장을인가하지 않고 세포의 분포를 제어 셀 분포를 기록한다. 세포 (여기서, 5 분) 모니터링 위치로 입구로부터 유동에 필요한 시간의 양을 추정한다. 새로운 주파수를 설정 한 후, 다음 (여기에서 세포 분포의 2 분 영상) 촬영을 시작,이 시간을 기다립니다. </li></ol> 5. 특성화 크로스 오버 주파수에 대한 이미지 처리 <ol><li> 전산 스크립트를 사용하여, 상대적으로 Y-위치 (Z-방향 채널의 수직 깊이이고, Y 방향은 채널 폭이며, x-방향은 채널 길이)를 결정하기 위해 프레임의 각 비디오 프레임을 분석 각 형광 셀 또는 입자의 하류 채널에서 높은 DEP 힘의 영역에서 X 좌표를 지정했습니다. 상대적 표시의 그래프를 만들기tribution. </li><li> 제어 분포의 중심선과 각 전압 및 주파수 분포의 중심선을 비교한다. 주어진 전압 및 가변 주파수를 위해, 중심선이 제어의 y-위치와 일치 크로스 오버 주파수를 결정한다. </li></ol> 6. 셀 정렬 또는 심화 학습을 수행 할 수있는 실험을 변화 <ol><li> 3 × 106 입자 / ml의 농도로 전체 DEP 버퍼의 원하는 혼합물을 중단. 여기에,이 혼합물은 DEP 버퍼에 4 μM의 형광 구슬 MOSE-L 세포입니다. cDEP 장치를 준비하기 이전에 설명 된 단계를 수행합니다. </li><li> 혼합물로부터 세포를 풍부하게 정렬하거나, 표적 세포의 크로스 오버 주파수 및 앞서 설명한 배경 입자를 결정한다. 입자의 집단이이 대향 D에서 DEP 힘을 경험할 수 있도록 표적 세포 및 배경 입자의 두 개의 크로스 오버 주파수 간의 주파수에서 실험 운항irections. MOSE-L 세포와 4 μm의 구슬을 정렬하려면, 11.90 ± 0.63 kHz에서 위의 마이크로 디바이스를 운영하고 있습니다. 최근 Salmanzadeh 외. (33)에 의해보고 MOSE L-세포의 첫번째 교차 주파수 </li><li> 정렬 된 샘플의 내용을 수집, 출구 입구에 장갑의 손가락을 배치하고 부드럽게 튜브에 잡아 당 겼에 의해, 대상 볼륨을 수집에 배출 튜브를 제거합니다. 추가 분석을 위해 저수지에 수집 대상 볼륨을 부어 주 :. 다른 샘플 복구 방법은 칩에 영구 저장소를 연결하고 간단한 피펫 팅하여 샘플을 제거 포함 할 수 있습니다. </li></ol>

<ol><li>Butler, M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aButler%2C+M+%22Cell+culture+and+upstream+processing%22">Cell culture and upstream processing</a>. , Taylor & Francis. (2007).</li>
<li>Pratt, E. D., Huang, C., Hawkins, B. G., Gleghorn, J. P., Kirby, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rare+Cell+Capture+in+Microfluidic+Devices%5BTitle%5D)+AND+%22Chemical+Engineering+Science%22%5BJournal%5D)">Rare Cell Capture in Microfluidic Devices.</a> Chemical Engineering Science. 66, 1508-1522 (2011).</li>
<li>Salmanzadeh, A. D., Davalos, R. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+rare+cells+through+their+dielectrophoretic+signature%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Membrane+Science+and+Technology%22%5BJournal%5D)">Isolation of rare cells through their dielectrophoretic signature.</a> Journal of Membrane Science and Technology. 3, e112(2013).</li>
<li>Bonner, W. A., Hulett, H. R., Sweet, R. G., Herzenberg, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescence+activated+cell+sorting%5BTitle%5D)+AND+%22The+Review+of+Scientific+Instruments%22%5BJournal%5D)">Fluorescence activated cell sorting.</a> The Review of Scientific Instruments. 43, 404-409 (1972).</li>
<li>Adams, J. D., Kim, U., Soh, H. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multitarget+magnetic+activated+cell+sorter%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">Multitarget magnetic activated cell sorter.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 105, 18165-18170 (2008).</li>
<li>Chabert, M., Viovy, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+high-throughput+encapsulation+and+hydrodynamic+self-sorting+of+single+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Microfluidic high-throughput encapsulation and hydrodynamic self-sorting of single cells.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 3191-3196 (2008).</li>
<li>Di Carlo, D., Irimia, D., Tompkins, R. G., Toner, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Continuous+inertial+focusing%2C+ordering%2C+and+separation+of+particles+in+microchannels%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Continuous inertial focusing, ordering, and separation of particles in microchannels.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 104, 18892-18897 (2007).</li>
<li>Di Carlo, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inertial+microfluidics%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Inertial microfluidics.</a> Lab Chip. 9, 3038-3046 (2009).</li>
<li>Grover, S. C., Skirtach, A. G., Gauthier, R. C., Grover, C. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+single-cell+sorting+system+based+on+optical+trapping%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomed.+Opt%22%5BJournal%5D)">Automated single-cell sorting system based on optical trapping.</a> J. Biomed. Opt. 6, 14-22 (2001).</li>
<li>Lin, S. C. S., Mao, X. L., Huang, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surface+acoustic+wave+%28SAW%29+acoustophoresis%3A+now+and+beyond%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Surface acoustic wave (SAW) acoustophoresis: now and beyond.</a> Lab Chip. 12, 2766-2770 (2012).</li>
<li>Pethig, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Review+Article-Dielectrophoresis%3A+Status+of+the+theory%2C+technology%2C+and+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Biomicrofluidics%22%5BJournal%5D)">Review Article-Dielectrophoresis: Status of the theory, technology, and applications.</a> Biomicrofluidics. 4, (2010).</li>
<li>Gascoyne, P. R. C., Wang, X. B., Huang, Y., Becker, F. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dielectrophoretic+separation+of+cancer+cells+from+blood%5BTitle%5D)+AND+%22Ieee+T.+Ind.+Appl%22%5BJournal%5D)">Dielectrophoretic separation of cancer cells from blood.</a> Ieee T. Ind. Appl. 33, 670-678 (1997).</li>
<li>Pohl, H. A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPohl%2C+HA+%22Dielectrophoresis+%3A+the+behavior+of+neutral+matter+in+nonuniform+electric+fields%22">Dielectrophoresis : the behavior of neutral matter in nonuniform electric fields</a>. , Cambridge University Press. (1978).</li>
<li>Salmanzadeh, A., Davalos, R. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+rare+cells+through+their+dielectrophoretic+signature%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Membrane+Science%22%5BJournal%5D)">Isolation of rare cells through their dielectrophoretic signature.</a> Journal of Membrane Science. , Under-review (2012).</li>
<li>Markx, G. H., Talary, M. S., Pethig, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Separation+of+Viable+and+Nonviable+Yeast+Using+Dielectrophoresis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Separation of Viable and Nonviable Yeast Using Dielectrophoresis.</a> J. Biotechnol. 32 (94), 29-37 (1994).</li>
<li>Flanagan, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unique+dielectric+properties+distinguish+stem+cells+and+their+differentiated+progeny%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Unique dielectric properties distinguish stem cells and their differentiated progeny.</a> Stem Cells. 26, 656-665 (2008).</li>
<li>Labeed, F. H., Coley, H. M., Thomas, H., Hughes, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+multidrug+resistance+reversal+using+dielectrophoresis+and+flow+cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Assessment of multidrug resistance reversal using dielectrophoresis and flow cytometry.</a> Biophys. J. 85, 2028-2034 (2003).</li>
<li>Hoettges, K. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dielectrophoresis-activated+multiwell+plate+for+label-free+high-throughput+drug+assessment%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Dielectrophoresis-activated multiwell plate for label-free high-throughput drug assessment.</a> Anal. Chem. 80, 2063-2068 (2008).</li>
<li>Lapizco-Encinas, B. H., Simmons, B. A., Cummings, E. B., Fintschenko, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Insulator-based+dielectrophoresis+for+the+selective+concentration+and+separation+of+live+bacteria+in+water%5BTitle%5D)+AND+%22Electrophoresis%22%5BJournal%5D)">Insulator-based dielectrophoresis for the selective concentration and separation of live bacteria in water.</a> Electrophoresis. 25, 1695-1704 (2004).</li>
<li>Davalos, R. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Performance+impact+of+dynamic+surface+coatings+on+polymeric+insulator-based+dielectrophoretic+particle+separators%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Bioanal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Performance impact of dynamic surface coatings on polymeric insulator-based dielectrophoretic particle separators.</a> Anal. Bioanal. Chem. 390, 847-855 (2008).</li>
<li>Gallo-Villanueva, R. C., Rodriguez-Lopez, C. E., Diaz-De-La-Garza, R. I., Reyes-Betanzo, C., Lapizco-Encinas, B. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+manipulation+by+means+of+insulator-based+dielectrophoresis+employing+direct+current+electric+fields%5BTitle%5D)+AND+%22Electrophoresis%22%5BJournal%5D)">DNA manipulation by means of insulator-based dielectrophoresis employing direct current electric fields.</a> Electrophoresis. 30, 4195-4205 (2009).</li>
<li>Shafiee, H., Caldwell, J. L., Sano, M. B., Davalos, R. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contactless+dielectrophoresis%3A+a+new+technique+for+cell+manipulation%5BTitle%5D)+AND+%22Biomed+Microdevices%22%5BJournal%5D)">Contactless dielectrophoresis: a new technique for cell manipulation.</a> Biomed Microdevices. 11, 997-1006 (2009).</li>
<li>Park, K., Suk, H. J., Akin, D., Bashir, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dielectrophoresis-based+cell+manipulation+using+electrodes+on+a+reusable+printed+circuit+board%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Dielectrophoresis-based cell manipulation using electrodes on a reusable printed circuit board.</a> Lab Chip. 9, 2224-2229 (2009).</li>
<li>Jen, C. P., Maslov, N. A., Shih, H. Y., Lee, Y. C., Hsiao, F. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Particle+focusing+in+a+contactless+dielectrophoretic+microfluidic+chip+with+insulating+structures%5BTitle%5D)+AND+%22Microsyst+Technol%22%5BJournal%5D)">Particle focusing in a contactless dielectrophoretic microfluidic chip with insulating structures.</a> Microsyst Technol. 18, 1879-1886 (2012).</li>
<li>Hughes, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((AC+electrokinetics%3A+applications+for+nanotechnology%5BTitle%5D)+AND+%22Nanotechnology%22%5BJournal%5D)">AC electrokinetics: applications for nanotechnology.</a> Nanotechnology. 11, 124-132 (2000).</li>
<li>Pethig, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dielectrophoresis%3A+Status+of+the+theory%2C+technology%2C+and+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Biomicrofluidics%22%5BJournal%5D)">Dielectrophoresis: Status of the theory, technology, and applications.</a> Biomicrofluidics. 4, 022811(2010).</li>
<li>Pethig, R. Ch. 4. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPethig%2C+R+%22BioMEMS+and+Biomedical+Nanotechnology%22">BioMEMS and Biomedical Nanotechnology</a>. Ferrari, M. auro, Ozkan, M. ihrimah, Heller, M. ichael J. . 4, Springer. US. 103-126 (2007).</li>
<li>Shafiee, H., Sano, M. B., Henslee, E. A., Caldwell, J. L., Davalos, R. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+isolation+of+live%2Fdead+cells+using+contactless+dielectrophoresis+%28cDEP%29%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Selective isolation of live/dead cells using contactless dielectrophoresis (cDEP).</a> Lab Chip. 10, 438-445 (2010).</li>
<li>Salmanzadeh, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dielectrophoretic+differentiation+of+mouse+ovarian+surface+epithelial+cells%2C+macrophages%2C+and+fibroblasts+using+contactless+dielectrophoresis%5BTitle%5D)+AND+%22Biomicrofluidics%22%5BJournal%5D)">Dielectrophoretic differentiation of mouse ovarian surface epithelial cells, macrophages, and fibroblasts using contactless dielectrophoresis.</a> Biomicrofluidics. 6, (2012).</li>
<li>Salmanzadeh, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+prostate+tumor+initiating+cells+%28TICs%29+through+their+dielectrophoretic+signature%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Isolation of prostate tumor initiating cells (TICs) through their dielectrophoretic signature.</a> Lab Chip. 12, 182-189 (2012).</li>
<li>Salmanzadeh, A., Sano, M. B., Shafiee, H., Stremler, M., Davalos, R. V. Isolation of Rare Cancer Cells from Blood Cells Using Dielectrophoresis. EMBC 2012., Annual International IEEE Engineering in Medicine and Biology Society, Aug 28-Sep 1, San Diego, , (2012).</li>
<li>Sano, M. B., Caldwell, J. L., Davalos, R. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modeling+and+development+of+a+low+frequency+contactless+dielectrophoresis+%28cDEP%29+platform+to+sort+cancer+cells+from+dilute+whole+blood+samples%5BTitle%5D)+AND+%22Biosens.+Bioelectron%22%5BJournal%5D)">Modeling and development of a low frequency contactless dielectrophoresis (cDEP) platform to sort cancer cells from dilute whole blood samples.</a> Biosens. Bioelectron. 30, 13-20 (2011).</li>
<li>Salmanzadeh, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Investigating+Dielectric+Properties+of+Different+Stages+of+Syngeneic+Murine+Ovarian+Cancer+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biomicrofluidics%22%5BJournal%5D)">Investigating Dielectric Properties of Different Stages of Syngeneic Murine Ovarian Cancer Cells.</a> Biomicrofluidics. , (2013).</li>
<li>Salmanzadeh, A., Sano, M. B., Shafiee, H., Stremler, M. A., Davalos, R. V. Engineering in Medicine and Biology Society (EMBC), 2012 Annual International Conference of the IEEE, , 590-593 (2012).</li>
<li>Sano, M. B., Salmanzadeh, A., Davalos, R. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multilayer+contactless+dielectrophoresis%3A+Theoretical+considerations%5BTitle%5D)+AND+%22Electrophoresis%22%5BJournal%5D)">Multilayer contactless dielectrophoresis: Theoretical considerations.</a> Electrophoresis. 33, 1938-1946 (2012).</li>
<li>Millet, L. J., Park, K., Watkins, N. N., Hsia, K. J., Bashir, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Separating+beads+and+cells+in+multi-channel+microfluidic+devices+using+dielectrophoresis+and+laminar%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Separating beads and cells in multi-channel microfluidic devices using dielectrophoresis and laminar.</a> J. Vis. Exp. (48), e2545(2011).</li>
<li>Henslee, E. A., Sano, M. B., Rojas, A. D., Schmelz, E. M., Davalos, R. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+concentration+of+human+cancer+cells+using+contactless+dielectrophoresis%5BTitle%5D)+AND+%22Electrophoresis%22%5BJournal%5D)">Selective concentration of human cancer cells using contactless dielectrophoresis.</a> Electrophoresis. 32, 2523-2529 (2011).</li>
<li>Salmanzadeh, A., Shafiee, H., Davalos, R. V., Stremler, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+mixing+using+contactless+dielectrophoresis%5BTitle%5D)+AND+%22Electrophoresis%22%5BJournal%5D)">Microfluidic mixing using contactless dielectrophoresis.</a> Electrophoresis. 32, 2569-2578 (2011).</li>
</ol>

박사 라파엘 Davalos의 비접촉식 유전에 대한 특허 출원을 보유하고 있습니다.

DEP는 입자의 유전 특성을 결정하고, 격리, 또는 농축 응용 프로그램을 정렬 방향으로 입자의 움직임을 지시하는 강력한 기술이다. 때문에 샘플에 직접 전극 접촉의 해로운 영향에, 다른 사람은 접촉을 피하기 위해 이전에 제시된 방법과 유사한 접근 방식을 촬영했습니다. 예를 들어, 바쉬르 외. 얇은 유리 커버 슬립에 의해 인쇄 회로 기판의 전극으로부터 분리 된 미세 유체 PDMS 장치를 사용하여 비접촉식 DEP 장치를 개발하고,이 기술은 비디오 포맷으로 제공된다. 23,36을 여기서, 우리는 단일 PDMS 기판을 사용 cDEP 칩과 유체 전극의 제조, 및 전지 및 형광 비드의 혼합물로부터 난소 암 세포를 분리하기위한 실험 프로토콜을 보여 주었다. 제시된 기법은 성공적 리브 정렬 등 복잡한 생리 학적으로 중요한 다양한 애플리케이션에 사용되어왔다E 및 사균은 28 종양 전립선 암 세포에서 세포를 개시 묽은 적혈구, 31,32 및 유방암 (37) 및 난소 암의 단계 사이에서 구별 30 암세포. 29 cDEP 또한 입자를 혼합하는 데 사용되었다. 38 선택된 애플리케이션은 제시된 간단한 기술을 이용하여, 다양한 목적은 채널 형상의 설계를 변경하는 것만으로 달성 될 수 있다는 것을 시사한다. . DEP 입자는 구형 입자 (13)의 조작을위한 마이크로에 유용 병진 유전 힘의 크기 및 전기 입자와 그 현탁 매질의 성질뿐만 아니라, 전기장의 그래디언트의 제곱에 의존한다 : <img alt="식 (1)" src="/files/ftp_upload/50634/50634eq1.jpg" /> ε의 m은 현탁 매질의 유전율이고, R은 반경입자 및 Rc는 [K (ω)]를 것은 Clausius-Mossotti (CM) 계수의 실수 부이다. CM 인자는 현탁 매질에 비해 입자의 상대적인 분극의 측정 값이며, 유전 힘의 방향을 판정한다. 그것은으로 설명되어 있습니다 <img alt="식 2" src="/files/ftp_upload/50634/50634eq2.jpg" /> 어디에 <img alt="식 3" src="/files/ftp_upload/50634/50634eq3.jpg" /> 과 <img alt="식 4" src="/files/ftp_upload/50634/50634eq4.jpg" /> 각각 입자와 매질의 복소 유전율이다. 복잡한 유전율, <img alt="식 5" src="/files/ftp_upload/50634/50634eq5.jpg" /> , 전도도 (σ)과 주파수 (ω)에 따라 달라집니다. 구형 입자의 CM 인자는 이론적으로 -0.5과 1 사이의 바인딩. CM 계수가 음수 인 경우에는 매체의 입자보다 더 극성이기 때문에 입자가 영역에서 벗어나 있기 때문에, 입자 NDEP 발생할높은 전기장 그라디언트. CM 계수가 양수이면, 입자는 매질보다 더 극성이며, 그들은 높은 전기장 구배의 영역을 향해 이동되는 pDEP을 경험한다. 이러한 세포와​​ 같은 구조에서 비균질 생물학적 입자 들어 것은 Clausius-Mossotti 계수 입자 유전율 대한 유효 값으로부터 결정될 수있다 : <img alt="식 (6)" src="/files/ftp_upload/50634/50634eq6.jpg" /> 어디에 <img alt="식 (7)" src="/files/ftp_upload/50634/50634eq7.jpg" /> 과 <img alt="식 8" src="/files/ftp_upload/50634/50634eq8.jpg" /> 각각 같은 세포질과 같은 세포의 내부, 및 세포막의 유효 복소 유전율의 복소 유전율이며. R은 셀의 반경이며, d는 세포막의 두께 (26) DEP는 현탁 입자가 발생하면유체, 유체 입자의 상대 운동은 입자에 항력을 생성합니다. 입자에 작용하는 전체 힘을 결정할 때 항력이 고려되어야한다. 여기에서 관심의 상황에서, 점성 힘이 지배하고 입자가 구형 작은, 그리고 상대적으로 낮은 속도로 이동하는 것으로 간주됩니다, 그래서 스토크 드래그 법은 항력을위한 좋은 근사값을 제공합니다 : <img alt="식 9" src="/files/ftp_upload/50634/50634eq9.jpg" /> η는 유체 점도이고, U (P)는 입자의 속도이며, U f를 또한 이동 될 수있다 유체의 속도이다. 유전 힘, 유체 및 입자 특성을 공지하고, 공지 된 유속 감안 항력 및 유전 힘 사이의 균형은 입자 속도를 추정하기 위해 해결 될 수있다. 세포 경험이 임계치 미만이어야 전단 속도하는 C에서엘 라이트 용해가 발생할 수 있습니다. 입자의 전기적 특성의 특성을 예측하고 그들이 DEP 아래를 응답하는 방법을 제어 할 필요가있다. 이 작품에서 우리는 특히 세포의 첫 번째 크로스 오버 주파수를 결정하기위한 프로토콜을 보여 MOSE-L 세포와 저주파 cDEP을 활용하고 자신의 반대 DEP 응답에 따라 폴리스티렌 비즈 MOSE-L 세포의 지속적인 정렬을 보여 주었다. cDEP 장치의 형상이 장치는 고주파 또는 저주파의 동작을 위해 설계 될 수 있도록, 전계의 공간적 기울기를 변경하고, 높은 선택성 및 특정 세포 유형의 선별 효율을 바꾸는 것이다. 부가 적으로, 고 스루풋 장치는 넓은 채널을 제조하여 개발 될 수 있으며, 병렬, (30) 또는 전극 채널이 수직으로 비교적 깊은 상하에 적층 된 다층 제조 35, 30 채널샘플 채널. 얇은 멤브레인 층 사이의 장벽을 형성한다. 폴리 메틸 메타 크릴 레이트 (PMMA) 및 폴리 카보네이트로 제조 장치와 예비 테스트 (PC) 박막 MOSE-L 세포의 DEP 반응을 증명하고있다. 현재 노력은 다층 고 처리량 장치하실하고 궁극적 플러그 앤 플레이 플랫폼을 향해 주변 시스템을 개선하기 위해 진행중이다. 제시된 기본 실험 기법에서 확장하려면 장치의 응용 프로그램 및 사양은 특성화 대 정렬, 또는 장치에 샘플 저수지 및 반 자동화 시스템을 추가하는 등의 특정 요구를 맞게 조정할 수 있습니다.

생체 시료 농축 및 입자 정렬 후속 분석을 위해 필요한 경우가 많습니다. 1 예를 들어, 체액 희귀 세포의 분리가 암 탐지 및 개별 의학에서 중요한 응용 프로그램이 있습니다. 2,3 가장 일반적으로 사용되는 농축 기술은 형광 활성 세포 정렬합니다 (FACS 4) 자기 활성화 된 셀 (MACS), 세포를 구분하는 표현 표면 마커에 의존 5 정렬. 다른 전략은 유체 역학적으로 10 또는 관성 7,8 정렬 광학 핀셋, acoustophoresis 9, 10 및 유전 있습니다. 11,12 유전 영동은 불균일 한 전계의 존재하에 극성 입자의 운동이다. 13 DEP가 사용되어왔다 광범위한 응용, 2,14 생존, 15 세포의 생체 전기 특성을 특성화에 기초하여 셀을 정렬하는 등, (16)과 정렬세포의 생물 리 학적 특성에 유도 변화에 주입. 17,18 전통적인 DEP는 전압을인가하고이 강력한 기술이지만 불균일 전기장. (13)을 유도하는 미세 유체 채널 내에서 패터닝 된 평면 전극을 이용하여, 도전 같은 발생할 수 전극의 박리 및 전기. 절연체 계 유전 영동 (IDEP) (19)는 오염, 전극의 박리, 및 DC 전계 불균일성을 유도 패터닝 절연막 구조를 통해 전극 필드의 공간적 열화 문제를 해결하고있다. IDEP 선택적으로 라이브와 죽은 세균 세포를 분리하는 데 사용되었습니다, (19)는 세균 포자, 20, 조작 DNA, 다른 응용 프로그램 사이에 21을 격리 할 것. 종종 요구되는 높은 DC 전압의 결과로 발생할 수 있기 때문에 줄 가열 도전이 될 수 있습니다. 이러한 문제를 개선하기 위해, 비접촉식 DEP 마이크로 디바이스가 개발되고있다. 22-24 (22)가 가득 유체 전극 채널과 금속 전극의 대체 높은 전도성 용액. 이러한 유체 전극 용량 AC 전압을 통해 시료 채널에 얇은 절연 배리어를 통해 연결된다. 전극 샘플 접촉을 제거하면 전기 분해와 거품 형성, 샘플 오염, 전극의 박리 등의 DEP 기반의 방법과 관련된 문제를 줄일 수 있습니다. 이 샘플에서 세포의 생존을 지원하기 때문에 결과적으로 cDEP은 생체 시료에 특히 유용합니다. 중요한 것은, cDEP 샘플 불임을 유지 관리 할 수​​ 있습니다. 칩은 세포 배양 후드에서 제조 될 수 있으며, 실험은 금속 전극에 시료의 접촉을 요구하거나 샘플 environme에 개방 할 필요없이 수행 될 수있다NT. 간단한 저장조 멸균 샘플 회수를 용이하게하기 위해 칩 콘센트에 고정 될 수있다. 또한, 샘플 채널과 같은 생체 적합성 폴리머 재료 (PDMS)까지 유체 전극의 제조는 금속 전극의 커스텀 패터닝, 제조에 필요한 시간에 따른 높은 비용을 감소시키고, 초기 패터닝 전문 크린룸 장비에 대한 필요성을 제한 재사용 할 수있는 실리콘 웨이퍼를 스탬프. DEP에 의한 입자의 움직임은 입자와 매체뿐만 아니라, 전기장의 공간 구배의 특성에 의존한다. 입자 및 주파수 종속 인자는 것은 Clausius-Mossotti (CM) 계수라고 범위 -0.5 ~ 1의 값을 취하고, DEP 힘의 방향을 판정한다. CM 요소가 정확히 제로되는 주파수는 크로스 오버 주파수라고한다. 이은 유전 힘이 입자와 CM 인자 변경 기호에 작용되지 않는 시점입니다. 의불활성 고체 미립자에 대한 화롯불 크로스 오버 주파수가 발생하면 음에서 양으로 CM 인자의 변화가 0.01 S / M, NDEP에서 pDEP 10 근처에 존재로의 전환을 나타내는 최초의 크로스 오버 주파수의 순서에 전도성이 낮은 버퍼의 포유 동물 세포 25. - 100 kHz로하고, 크기, 형상, 세포 골격 및 세포의 막 특성에 의해 영향을 받는다. 26,27 NDEP 정권 pDEP로부터 시프트에서 제 크로스 오버 주파수는 10 메가 헤르츠의 순서에 있고 의해 영향 핵 - 세포질 비율, 세포질 전도성 및 소포체. 27 DEP 힘은 유체 유동의 존재없이 적용 할 수 있지만, 여기에서 우리는 현탁 입자의 연속적인 정렬을 달성하기 흐르는 유체를 이용한다. 유전 힘과 스토크 항력의 결합 된 영향은 입자의 병진 운동을 지시. 우리는 두 개의 주파수 범위에서 작동을위한 장치를 개발했다. 높은 주파수 0Y 장치 (100 ~ 600 ㎑의 주파수) 전립선 종양 시작 세포 (틱), 쥐의 난소 표면 상피 (MOSE) 세포, MDA-MB-231 유방암 세포로, pDEP 세포의 달성 배치 정렬을 사용하여 작동, 또는 THP에게 살 수있다 선택적으로 샘플 채널에있는 게시물을 절연에 대한 관심의 세포를 포집하여 -1 세포. 28-31 낮은 주파수 (~ 100 kHz에서) 장치는 지속적으로 작동하고, 주파수에서 작동 할 때 한 인구는 배경 인구 경험하면서 pDEP을 경험하는 NDEP는 정렬 달성하는 입자 궤도를 리디렉션 할. 32-34 선택된 저주파 장치가 적혈구로부터 암세포를 정렬 프로그레시브 MOSE 세포주의 유전 특성의 변화를 결정하고, 비 효과를 명료하게하기 위해 사용되어왔다 공격적인 MOSE 세포의 공격적인 특성을 반전에 독성 스핑 고지 치료. 또한 cDEP의 마이크로 디바이스는 현재 최대 1 ㎖ / 시간, 증가 된 처리량으로 작동하도록 설계 될 수있다R. 31,35 설명한 바와 같이, 유연성 및 제조 공정의 저비용 제시된 실험 절차는 광범위한 애플리케이션에 대한 중요한되도록 맞춤 설계된 소자 구조를 가능하게한다. cDEP의 장기 목표 후속 배양 또는 처리를위한 샘플을 회수하여, 임상 수준에서 라벨없는 셀 정렬 및 농축을 실현하는 것이다. 여기에 제시된 기술은 DEP의 접근성을 증가하는, 제조에서의 실험으로, 간단하고 저렴한 방법입니다. 우리는 특성화 및 형광 마이크로 스피어에서 난소 암 세포의 농축을 달성하기 cDEP 칩의 제조 및 실험 프로토콜을 보여준다.

<table><tbody><tr><td>폴리디메틸실록산(PDMS)</td><td>다우코닝, 미시간주, 미시건주 다우코닝</td><td>실가드 184</td><td></td></tr><tr><td>유리 슬라이드 </td><td>The Microscope Depot</td><td>76079</td><td>2x3인치 접지 가장자리</td></tr><tr><td>마이크로보어 PTFE 튜빙</td><td>Cole-Parmer Instrument Co, Vernon Hills, IL, USA</td><td>EW-06417-31</td><td>얇은 벽 20게이지, 0.032"ID x 0.056"OD, 100피트/롤</td></tr><tr><td>루어슬립 플라스틱 주사기</td><td>National Scientific 회사</td><td>S7510-1</td><td></td></tr><tr><td>바늘 끝</td><td>Howard 전자 기기</td><td>JG20-1.0</td><td>20 게이지 1.0", ID=0.025" OD=0.036"</td></tr><tr><td>D(+)-Sucrose</td><td>Fisher Scientific, Fair Lawn, NJ</td><td>S3-500</td><td></td></tr><tr><td>D(+)-포도당, 시약 ACS, 무수</td><td>Acros Organics NV, Fair Lawn, NJ</td><td>AC410955000</td><td></td></tr><tr><td>RPMI-1640 Medium</td><td>Quality Biological Inc.</td><td>112-025-101</td><td></td></tr><tr><td>Calcein AM, Molecular Probes</td><td>Invitrogen Corp. (life technologies), Carlsbad, CA, USA</td><td>C3100MP</td><td>여기 파장 488/방출 파장 516</td></tr><tr><td>Rhodamine B, O</td><td>Science Lab</td><td>SLR1465-100G</td><td>여기 파장 540/방출 파장 625</td></tr><tr><td>인산염 완충 식염수(10X)</td><td>Gbiosciences, St. Louis, MO</td><td>RC-147</td><td></td></tr><tr><td>Leica, 도립 광 현미경 </td><td>Leica Microsystems, Bannockburn, IL, USA</td><td>Leica DMI 6000B</td><td></td></tr><tr><td>Leica DFC420, 컬러 카메라</td><td>Leica Microsystems, Bannockburn, IL, USA</td><td>Leica DFC420</td><td></td></tr><tr><td>Function generator </td><td>GW Instek, Taipei, Taiwan</td>, <td>GFG-3015</td><td></td></tr><tr><td>광대역 전력 증폭기 </td><td>Amp-Line Corp., Oakland Gardens, NY, USA</td><td>AL-50HF-A</td><td></td></tr><tr><td>HFHV 출력 변압기</td><td></td><td>AL-T50-V25/300-F100K-600K</td><td></td></tr><tr><td>고전압 증폭기</td><td>Trek</td><td>Model 2205</td><td></td></tr><tr><td>USB 모듈러 오실로스코프, 100 MHz</td><td>AgilentTechnologies</td><td>U2701A</td><td></td></tr><tr><td>확장 플라즈마 클리너</td><td>Harrick Plasma</td><td>PDC-001/002 (115/230V)</td><td>공기 플라즈마</td></tr><tr><td>스카치 매직 테이프</td><td>3M</td><td></td><td>사용 가능한 너비는 충분합니다.</td></tr><tr><td>1.5 mm 펀처 </td><td>Harris Uni-Core</td><td>Z708836-25EA.25</td><td></td></tr><tr><td>% Trypsin-EDTA</td><td>Invitrogen</td><td>25200-056</td><td></td></tr><tr><td>FluoSpheres Sulfate Microspheres</td><td>Invitrogen</td><td>F8858</td><td>4.0 &mu; m, 적색 형광등 (여기 파장 580 / 방출 파장 605)</td></tr> <tr><td>AZ 9260 포토 레지스트 </td><td>AZ Electronic Materials</td><td></td><td></td></tr><tr><td>AZ 400 K 현상액</td><td>AZ Electronic Materials</td><td></td><td></td></tr><tr><td>테트라 메틸 암모늄 하이드록사이드 (TMAH) 25 % </td><td></td><td></td><td>제공 Virginia Tech 클린 룸</td></tr><tr><td>DRIE 기계를 사용한</td><td>테프론 코팅</td><td></td><td></td></tr><tr><td>적용 실리콘 웨이퍼</td><td>대학 웨이퍼</td><td>452</td><td>100mm 직경, 500 & m 두께, 단면 연마(SSP) </td></tr><tr><td>심층 반응성 이온 에칭(DRIE)</td><td>알카트렐</td><td>AMS SDE 100</td><td></td></tr></tbody></table>

비접촉식 유전을 통해 라벨이없는 분리 및 세포의 농축

Label-free Isolation and Enrichment of Cells Through Contactless Dielectrophoresis

유전 (DEP)은 불균일 전기장에서 입자가 병진 운동을 겪는 편광되는 현상이며, 표면 마커 독립적 인 방식으로 미립자의 움직임을 지시 할 수있다. 전통적으로, DEP 장치 샘플 채널 패터닝 평면 금속 전극을 포함한다. 이 방법은 비용이 많이들 수 및 전문 클린 룸 환경을 필요로 할 수 있습니다. 최근 비접촉식 유전 (cDEP)라는 비접촉식 방법이 개발되었다. 이 방법은 직접 패터닝 유체 전극에 의해 전극과 샘플 사이의 접촉과 하나의 폴리 디메틸 실록산 (PDMS) 기판의 샘플 채널을 피하면서 DEP의 고전적인 원리를 활용 한 미세 입자를 정렬하고 풍성하게 디자인 된 빠른 미세 전략으로 응용 프로그램이 있습니다. 이 방법으로는 순 전계가 분리되어 도전성이 높은 액체를 포함하는 유체 전극 채널을 통해 생성된다는 것이다얇은 절연 장벽에 의해 샘플 채널. 금속 전극이 직접 샘플을 접촉하지 않기 때문에, 전기 분해, 전극의 박리 및 샘플의 오염을 방지 할 수 있습니다. 또한,이 저렴하고 간단한 제조 공정을 가능하게한다. cDEP 따라서 민감한 생물 입자를 조작하기에 적합하다. 입자에 작용하는 유전 영 힘은 장치의 형상 맞춤형 디자인으로 생성 전계의 공간 구배 있지만 셀의 극한 생물 리 학적 특성에 단지 의존한다. 따라서, cDEP 여전히 bioparticles의 특성, 농축 및 정렬을 허용하면서 가변적으로, 인구 내에서 표현 될 수있다 표면 발현 분자 생체에 따라 방지 라벨이없는 기술이다. 여기, 우리는 cDEP를 사용하여 제조와 실험의 기본을 보여줍니다. 우리는 부드러운 석판을 사용하여 cDEP 칩의 간단한 준비를 설명Y 기술. 우리는 입자 또는 세포, 유전 력이 제로하는 주파수의 크로스 오버 주파수를 특성화 실험 절차를 논의한다. 마지막으로, 우리는 난소 암 세포의 혼합물을 정렬 및 미소 구 (비즈)를 형광이 기술의 사용을 보여준다.

DEP는 전기장이있을 때 장치가 작동 확인을 위해 샘플 채널에서 질적으로 관찰해야한다. DEP의 존재를 테스트하는 한 가지 방법은 훨씬 강한 pDEP 및 NDEP이 예상되는 크로스 오버 주파수 pDEP 및 대부분의 포유 동물의 암세포 NDEP을 관찰하는 &lt;10 kHz의 사항을 지키지 (약&gt; 40 kHz에서의 값에 주파수를 조정하는 것입니다 ) 100 μS / cm의 전도도와 버퍼. 이는 불활성 미립자들은 크로스 오버 주파수보다 그 크로스 오버 주파수 이하 pDEP을 나타내고 NDEP 주목해야한다. 여기에 제시된 톱니 피쳐 형상 들어 pDEP 하부 시험 주파수에서하면서 NDEP, 진주 체인 및 채널의 톱니 피쳐 에지에서 세포 또는 입자 포커싱의 발생에 의해 지시, 높은 시험 주파수에서 셀 보여야 세포가 채널의 직선 가까이 지역에 제한 될 때 명백하다. 이러한 낮은 주파수에서, 세포리스 수때문에 일렉트로에 전자, 그래서 샘플은 적은 세포를 포함하는 나타날 수 있으며 효소 활성화 형광 염료를 사용하는 경우 볼 수 있습니다 그 사람들은 확대 또는 흐릿하게 나타날 수 있습니다. pDEP 및 NDEP이 발생하는 주파수를 확인하는 프로토콜의 설명에 따라 크로스 오버 주파수의 결정을 허용한다. 여기에 사용되는 등 MOSE-L과 같은 포유 동물의 암 세포를 위해, 우리는 60 kHz에서 (그림 5b)에서 5 kHz에서 (그림 5a)와 강력한 pDEP에 NDEP을 관찰했다. MOSE-L 세포는 17.7 ± 3.3 μm의 (N = 268 세포)의 직경을 가지고 있었고, 구슬은 4 μm의 공칭 직경이있다. 진행의 초기 단계에있는 MOSE 세포에 비해 MOSE-L 세포의 유전 특성의 전체 분석 Salmanzadeh 등. (33)에 의해 최근 연구에서 찾을 수 있습니다 pDEP 및 NDEP는 이러한 극단에서 관찰되지 않은 경우, 여러 가지 문제가 발생 될 수있다. 샘플 전도도로 인해 오염 물질 또는 세포 용해시키기에 너무 높을 수 있습니다. INSUFFICIENT 전계 인해 샘플 채널 경계 채널 부분에 전류의 전도를 방지 유체 전극 채널에 갇힌 기포로 생성 될 수있다. 비정상 흐름은 충분한 시간 동안 진공 장치를 유지하지 않거나 빨리 인해에 제대로 결합 PDMS의 박리를 진공 누설 제거에 장치를 충전하지 인한 거품, 주사기 또는 입구 관에 갇혀 거품으로 인해 발생할 수 있습니다 펌프의 작동 범위의 극단에 채널을 작성 또는 유속 때 유리 슬라이드, 과도한 힘을 배리어 막에 눈물 가해. 세포의 크로스 오버 주파수를 결정하는 것에 더하여, 본 기술은 MOSE-L 세포 및 비드의 혼합물에 의해 여기에 예시 된 혼합물을 정렬하는 데 사용될 수있다. 이 예는 MOSE-L 세포가 긍정적 인 유전 (pDEP)를 경험 주파수에서 4 μm의 구슬에 의해 전시 된 음의 유전 (NDEP)을 활용합니다. 우리는 오200 V RMS 및 10 kHz의 (그림 6a)에서 장치를 perated 그들이 NDEP을 경험으로 세포와 구슬이 모두 혼합 한 것을 관찰했다. 비즈 두 성분 (도 6b)로 혼합물의 분리를 가능 채널의 하부에 한정 동안 50 kHz에서 우리는 채널의 상부에 MOSE L-세포의 움직임을 관찰했다. <img alt="그림 5" src="/files/ftp_upload/50634/50634fig5.jpg" fo:content-width="6in" fo:src="/files/ftp_upload/50634/50634fig5highres.jpg"/> 그림 5. MOSE-L 세포의 위치는인가 전계의 주파수를 변경함으로써 조작된다. 사진은 샘플 채널에서 최종 톱니 기능에서 찍은 것으로 유체 전극 우측 모서리에 위치한다. 이들은 PBS가 채널을 시각화하는 형광을 로다 민 B를 함유로 채워진다. (a) MOSE-L 세포는 200 V RMS에서 NDEP 발생할<html> 5 kHz에서. (B) MOSE-L 세포는 200 V RMS 및 60 kHz에서 진주 체인과 pDEP을 경험한다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/50634/50634fig5highres.jpg" target="_blank">큰 그림을 보려면 여기를 클릭하십시오</a> . <img alt="그림 6" src="/files/ftp_upload/50634/50634fig6.jpg" fo:content-width="6in" fo:src="/files/ftp_upload/50634/50634fig6highres.jpg"/> 그림 6. MOSE-L 세포 (녹색) 및 4 ㎛의 비드 (레드)의 혼합물을 200 V에서 (a). 저주파 cDEP 장치의 샘플 채널에서 최종 톱니 기능을 통해 유동하고 10 kHz의 세포 및 비드를 혼합한다. 화살표는 200 V에서 (B). 희미 가능성이 낮기 때문에 주파수 조건에 죽은 세포를 게재하는 포인트와 50 kHz의 세포는 pDEP을 경험하고 채널의 기능을 가장자리로 이동, 비즈 NDEP을 경험하면서 지역의 가까이에 국한 유지 직선.p_upload/50634/50634fig6highres.jpg &quot;대상 =&quot;_blank &quot;&gt; 큰 그림을 보려면 여기를 클릭하십시오.

비접촉 유전 (cDEP)는 자신의 고유 유전 특성을 통해 정렬 및 입자의 농축 달성한다. 유체 전극 채널 살균 특성을 비 손상 및 생물학적 입자의 정렬에 cDEP 양복지, DEP에 대한 기존의 금속 전극을 교체합니다. 우리는 cDEP의 마이크로 디바이스를 준비하고 세포의 특성 및 정렬 실험을 수행하는 방법을 보여줍니다.

Dielectrophoresis (DEP) is the phenomenon by which polarized particles in a non-uniform electric field undergo translational motion, and can be used to ...

이 절차의 전반적인 목적은 전극을 시료에 직접 접촉시키지 않고 염료 전기영동을 이용하여 압력 구동 흐름 내에 부유하는 세포의 병진 운동을 유도하는 것입니다. 이를 위해 먼저 대상 세포를 저전도성 완충액에 부유시킵니다. 두 번째 단계로 세포 현탁액을 미세 유체 장치에 로딩하고, 전극 채널에 고전도성 액체를 주입합니다.다음으로, 준비된 장치를 고전압 전자 장치에 연결하고, 도립 현미경에 부착된 카메라로부터 전송되는 비디오를 통해 세포 운동의 주파수 응답을 기록합니다. 마지막 단계는 비디오 영상을 분석하여 세포의 전기적 특성을 정량적으로 예측하는 것입니다. 궁극적으로, 비접촉식 유전 영동법을 통해 전기적 특성이 서로 다른 세포들을 저렴하고 제작이 간편한 미세유체 장치를 이용하여 라벨 없이 손상되지 않는 방식으로 분류할 수 있음을 보여줍니다.따라서 이 방법은 살아있는 세포와 죽은 세포의 분류, 종양 개시 세포의 분리, 단계별 암세포의 분리, 그리고 유전율 특성에 따른 서로 다른 세포에 대한 약물의 효과 분석과 같은 응용 분야에 유용합니다. 형광 활성 세포 분류법(fluorescence activated cell sorting)과 같은 기존 방법과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은, 바이오마커 기반의 표지 없이 세포 고유의 생물물리학적 특성에 따라 세포를 분류하고 특성화할 수 있으며, 전극과 시료 간의 접촉을 제거함으로써 시료의 무균 상태를 유지할 수 있다는 점입니다. 저희는 기존의 유전영동 장치와 관련된 시료 오염, 전기분해, 고비용 제작 등 여러 문제점을 해결할 수 있는 기술을 개발하고자 했을 때 처음으로 이 아이디어를 떠올렸습니다.포유류 세포 분리를 위해 사용합니다. 포토레지스트와 심층 반응성 이온 식각(deep reactive ion etching)을 이용해 실리콘 웨이퍼에 원하는 채널 설계를 식각하고, 웨이퍼로부터 마이크로 장치의 박리를 용이하게 하기 위해 테플론 박막을 증착하는 기존 보고된 절차를 따릅니다. 액체가 넘치는 것을 방지하기 위해 웨이퍼를 알루미늄 호일로 감쌉니다.폴리메틸 알란 또는 PDMS를 엘라스토머와 경화제 DGAs의 비율을 10:1로 하여 약 20분 동안 혼합한 후 웨이퍼 위에 붓습니다. 그 다음, 냉각 후 스탬프의 테플론 코팅이 손상되는 것을 방지하기 위해 웨이퍼를 100 °C에서 45분 동안 가열합니다. 알루미늄 호일을 제거합니다.수술용 칼을 사용하여 PDMS를 다듬고 채널의 입구와 출구에 액세스 홀을 뚫습니다. 여기서는 튜브 크기에 적합한 둔탁한 펀처를 사용하며, 1.5 millimeter 둔탁한 펀처가 사용됩니다. 다음으로, 텍스트 프로토콜에 안내된 대로 유리 현미경 슬라이드를 세척합니다.Scotch Magic 테이프를 사용하여 PDMS 장치를 세척합니다. 현미경으로 관찰하여 채널이 깨끗한지 확인합니다. 그런 다음 슬라이드와 PDMS 장치를 2분 동안 공기 플라스마에 노출시킨 후, 장치와 슬라이드 사이에 기포가 생기지 않도록 주의하며 장치의 채널 면을 유리 슬라이드에 단단히 밀착시킵니다.텍스트 프로토콜에 설명된 대로 저전도도 완충액을 준비하며, 이를 DEP 완충액이라 칭한다. 세포를 DEP 완충액에 3 million cells per milliliter 농도로 현탁한다. 여기서는 암성 말기 마우스 난소 표면 상피 세포 또는 moss L 세포를 사용하며, 형광성 막 투과성 염료로 세포를 염색한 후 염색된 세포 현탁액의 전도도를 측정한다.전도도는 대략 100 µS/cm여야 합니다. 전도도 측정값이 너무 높으면, 샘플을 원심분리하십시오. 그 후 depth buffer로 다시 현탁하고 전도도 측정을 반복하십시오.이 프로토콜에서 가장 까다로운 부분은 전극 채널과 시료 채널 내의 기포를 방지하는 것입니다. 전극 채널의 기포는 전기적 연결을 방해할 수 있으며, 시료 채널의 기포는 안정적인 흐름을 저해할 수 있습니다. C dip 미세유체 칩을 로딩하기 전, 기포를 방지하고 안정적인 흐름을 확보하기 위해 시연된 단계들을 반드시 수행하십시오. 30분 동안 진공 상태에 두십시오.그동안 주사기 펌프에서 마이크로플루이딕 칩이 놓일 현미경 스테이지까지의 거리를 연결할 수 있도록 유연한 튜브를 자릅니다. 6인치 길이의 튜브가 필요합니다. 튜브를 주사기의 바늘 끝에 연결합니다.그런 다음 목표 수집 시료 부피를 튜브의 단면적으로 나누어 필요한 배출 튜브의 길이를 산출합니다. 계산된 길이만큼 튜브를 절단합니다. 다음으로, 세포 현탁액을 주사기로 흡입합니다.튜브나 시린지에 기포가 없는지 확인하십시오. 진공 상태에서 칩을 꺼낸 후, 배출 튜브를 삽입하고 샘플 채널을 빠르게 프라이밍하십시오. 채널 내에 공기 방울이 갇히는 것을 방지하기 위해, 프라이밍 시 시린지를 가볍게 두드리십시오.얇은 절연 장벽의 파손을 방지하면서 전극 채널을 빠르게 프라이밍하려면, 각 유체 전극 채널의 한쪽 배출구에 빈 피펫 팁을 꽂고 소량의 bromine B가 포함된 PBS 200 µL를 피펫팅한 후, 가볍게 쳐서 유체가 전극 채널의 반대쪽 끝까지 들어가게 합니다. bromine B가 포함된 PBS가 빈 피펫 팁 끝까지 육안으로 보일 때까지 부드럽게 압력을 유지하며, 각 전극에 대해 이 과정을 반복합니다. 채널 R의 bromine B는 형광 표지용으로만 사용됩니다.프라이밍 후 유체 전극 채널을 시각화합니다. 각 피펫 팁 리저버를 PBS로 채웁니다. 피펫 팁 리저버 내에 기포가 형성되지 않도록 주의하고, 보이는 기포는 피펫팅을 통해 부드럽게 위아래로 움직여 제거합니다. 배출 튜브를 분리하여 적절하게 폐기합니다.그다음 새로운 배출 튜브 저장조를 삽입하십시오. 목표 부피만큼 수집합니다. 디지털 카메라가 장착된 도립 현미경의 스테이지 위에 칩을 배치하십시오.시린지를 시린지 펌프에 장착하고 와이어 전극을 유체 전극 채널 저장조에 삽입한 후, 시린지 펌프와 시린지 사이의 접촉 상태를 확인하기 위해 유체를 1 mL/h의 속도로 펌핑합니다. 채널 길이를 육안으로 검사하여 세포의 흐름에 방해가 없는지, 기포나 누수가 없는지 확인하십시오. 그 다음 유속을 5 µL/h로 줄입니다.안전을 위해 함수 발생기, 고전압 증폭기 및 오실로스코프의 전원을 켜고 원하는 전압과 주파수로 조정하여 전자 장치를 테스트하십시오. 본 실험에서 이 파라미터는 200 volts 및 20 kilohertz입니다.허용 가능한 성능이 확인되면 전원을 끕니다. 그 다음 전극을 고전압 증폭기에 연결합니다. 흐름이 안정되면 원하는 주파수에서 원하는 전압을 인가합니다. 본 실험에서 전압은 5~60 kHz 주파수 범위에서 200 V RMS입니다.이미지 처리 기술을 사용하여 세포 반응의 비디오 파일을 기록함으로써 채널 내의 세포 분포를 정량화하고 교차 주파수(crossover frequency)를 특성화합니다. 이를 위해 전압을 일정하게 유지하면서, 실험의 시작과 끝뿐만 아니라 실험 회차 사이에 무작위로 주파수를 체계적으로 변화시킵니다. 전기장을 가하지 않은 상태의 세포 분포인 대조군 세포 분포를 기록합니다.세포가 입구에서 모니터링 위치까지 흐르고 기록이 시작될 때까지 필요한 시간인 새로운 주파수 대기 시간을 설정한 후, 텍스트 프로토콜에 설명된 대로 교차 주파수 특성 분석을 위한 이미지 프로세싱을 수행하십시오. 원하는 혼합물을 DEP 버퍼에 1mL당 총 300만 개의 입자 농도로 현탁합니다. 여기에서 이 혼합물은 DEP 버퍼 내의 moss L 세포와 4µm 형광 비드이며, 이전에 설명된 단계들을 수행합니다. CEP 장치를 준비하려면, 표적 세포와 배경 입자의 결정된 두 교차 주파수 사이의 주파수에서 실험을 운영하여 두 입자 집단이 서로 반대 방향으로 DEP 힘을 받도록 합니다.혼합 시료의 내용물을 수집하려면, 목표 부피가 수집되었을 때 장갑 낀 손가락으로 배출구를 막고 튜브를 살살 잡아당겨 배출 튜브를 제거하십시오. 수집된 목표 부피를 분석을 위해 저장조에 붓습니다. 본 실험에서 사용된 L 세포와 같은 포유류 암세포의 경우, 5 kHz에서 음의 DEP와 강한 양의 DEP가 관찰되었습니다.60 kHz에서 MOS L 세포의 직경은 17.7 ± 3.3 µm이며, 비드의 공칭 직경은 4 µm입니다. 이 기술은 세포의 교차 주파수를 결정하는 것 외에도, 여기에서 MOS L 세포와 비드의 혼합물로 예시된 것과 같이 혼합물을 분리하는 데 사용할 수 있습니다. 이 예시는 MOS L 세포가 양성 유전영동을 겪는 주파수에서 4 µm 비드가 나타내는 음성 유전영동 특성을 활용한 것입니다.장치를 200 volts RMS 및 10 kilohertz에서 작동시켰을 때, 50 kilohertz에서 음성 DEP를 경험함에 따라 여기에서 녹색으로 표시된 세포와 빨간색으로 표시된 비드가 모두 혼합되었습니다. MOS L 세포는 채널 상단으로 이동하는 반면 비드는 채널 하단부에 국한되는 것이 관찰되어, 혼합물을 두 성분으로 분리할 수 있었습니다. 이 절차에 따라, 세포의 유전적 특성이 물리적 특성과 어떻게 상관관계가 있는지와 같은 추가적인 질문에 답하기 위해 세포 배양, 면역형광 이미징 또는 생화학적 분석과 같은 다른 후속 기술을 수행할 수 있습니다.이 기술은 개발 이후, 생물학자들이 마우스 난소암 모델을 이용하여 대사산물로 인해 유도된 세포 골격의 변화가 유전체 특성과 어떻게 상관관계가 있는지를 연구할 수 있는 길을 열어주었습니다. 이 영상을 시청하고 나면, 비접촉 전기영동법을 사용하여 세포를 농축하고 분리하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

label-free-isolation-enrichment-cells-through-contactless

Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

Microfluidic 장치를 사용하여 셀 캡처

Dielectrophoresis (DEP)는 세포를 조작하는 효과적인 방법입니다. 인쇄 회로 기판 (PCB)은 microfluidic 장치 이내에 연락이없는 세포 조작을위한, 재사용 가능한 저렴하고 효과적인 전극을 제공할 수 있습니다. PCBs에 coverslips와 PDMS 기반 microfluidic 채널을 결합하여, 우리는 다채널 microfluidic 장치 내에서 구슬과 세포 조작과 분리를 보여줍니다.

멀티 채널 Microfluidic 장치에서 분리 비즈와 세포 Dielectrophoresis와 층류를 사용하여

이 프로토콜은 특정 관심 세포 유형을 분리하기 위해 desthiobiotin, streptavidin, APTES 시스템의 사용자 정의 가능한 표면 기능화를 설명합니다. 또한 이 원고는 이 프로세스의 적용, 최적화 및 검증을 다룹니다.

유리 표면 기능화를 통해 표적 세포 격리 방법

이 프로토콜은 언 바운드 입자의 효율적인 고갈과 마이크로 / 나노 입자 설계 세포를 정화하는 관성 미세 유체 기반의 버퍼 교환 전략의 사용을 설명합니다.

간섭이없는 마이크로 / 나노 입자의 세포 공학을위한 미세 유체 버퍼 교환

림프구는 적응 면역 반응의 주요 플레이어입니다. 여기에서는 in vitro 및 in vivo에서 원하는 분자의 림프구 활성화의 생리학적 기능을 결정하기 위한 림프구 정제 프로토콜을 제시합니다. 설명된 실험 절차는 대조군 림프구와 유전자 변형 림프구 간의 기능적 능력을 비교하는 데 적합합니다.

분리 및 쥐 림프구의 활성화

여기 창 자 연관 된 림프 조직 Peyer의 패치 및 배수 mesenteric 림프절을 포함 하 여 유도 사이트와 lamina propria 포함 이펙터 사이트에서 세포의 고립에 대 한 자세한 프로토콜 설명 및 작은 장 면역 시스템의 장 상피입니다.

마우스 작은 장의 면역 시스템에서 세포를 분리

고해상도 광 패터링 도구를 이용하여 세균 세포를 분리하기 위해 광분해성 하이드로겔을 사용하는 것이 보고된다. 프로세스의 필수 실험 절차, 결과 및 이점을 검토합니다. 이 방법은 이질적인 지역 사회 또는 인구에서 희귀하거나 독특한 기능을 보여주는 표적 박테리아의 신속하고 저렴한 격리를 가능하게합니다.

박테리아 스크리닝, 선택 및 격리를 위한 광분해성 하이드로겔 인터페이스

유방암 세포는 비종양 유방 상피 세포와 비교하여 다른 유전 특성을 나타냅니다. 이러한 유전 특성의 차이에 기초하여, 두 집단은 면역 요법 목적으로 분리 될 수 있다는 가설이 세워졌다. 이를 지원하기 위해 MCF-7 및 MCF-10A 세포를 분류하는 미세 유체 장치를 모델링합니다.

AC 전기영동을 이용한 비전이성(MCF-7) 및 비종양(MCF-10A) 유방암 세포 분리를 위한 미세유체 장치

여기에서 우리는 이질적인 세포주, 특히 인간 중간엽 줄기 세포(hMSC)를 특성화하기 위한 무표지 접근 방식으로 광 유도 이전기영동을 제시합니다. 이 논문은 hMSC의 본래 상태를 변경하지 않고 전기적 거동을 특성화하기 위해 광도전층이 있는 미세유체 장치를 사용하고 최적화하기 위한 프로토콜을 설명합니다.

인간 중간엽 줄기 세포의 전기적 거동을 특성화하기 위한 광 유도 이전기영동

방법 중 하나를 사용하여 인간의 치과 펄프의 줄기 세포 (hDPSCs)의 분리 및 특성...

인간 치과 펄프의 줄기 세포의 분리, 특성화 및 비교 차별화 두 가지 방법을 사용하여 영구 치아에서 파생

배우세요 비접촉식 유전영동법(cDEP)을 이용한 라벨 없는 세포 분리 및 농축 기법을 생물물리학 및 미세유체학 연구에 적용하는 방법을. 이 기술은 세포의 고유한 전기적 특성을 기반으로 무손상 정렬이 가능합니다.

비접촉식 유전을 통해 라벨이없는 분리 및 세포의 농축

더 많은 동영상 탐색