Name: 에 대한 마이크로 미터 프로브의 원격 자기 발동 현장에서 3D 매핑 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-05-02T13:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 42 s
Description: 배우세요 자기 입자를 이용한 E. coli 바이오필름의 점탄성 특성 측정 방법입니다. 이 기술은 바이오필름 구조를 손상시키지 않고 3D 공간 분포에서 기계적 이질성을 분석하여 미생물 생물막의 물리적 특성을 연구하는 데 활용됩니다.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

이 작품은 국립 회사 직원에서 교부금 라 공들인, PIRIbio 프로그램 Dynabiofilm와 CNRS 학제 간 리스크 프로그램에서 붓다가 지원하는 부분에 있었다. 우리는 E.를 제공하기 위해 원고와 크리스토프 Beloin의 비판적 읽기 필립 Thomen 감사합니다 이 연구에서 사용 된 대장균 균주.

1. 박테리아 문화와 서스펜션 준비 <ol><li> , Lysogeny 국물 (LB) 한천 플레이트에서 갓 식민지를 선택 LB 액체 배지를 100 μ g / ml의 암피실린 및 7.5 μ g / ml의 테트라 사이클린을 포함하는 5 ㎖에 접종하고에 37 ° C에서 5 ~ 6 시간 동안 그것을 품어 플랫폼을 흔들어. </li><li> 그런 다음, 최소 배지 (M63B1)는 0.4 %의 포도당과 같은 항생제의 농도와 보충 5 ㎖의 세균 배양의 100 μ 리터를 추가합니다. 흔들리는 플랫폼에서 37 ° C에서이 갓 희석 문화 밤새 품어. </li><li> 배양 16 시간 후, 5 ㎖ M63B1, 0.4 % 포도당에 하룻밤 문화 μL (100)를 추가합니다. 0.5 OD까지 흔들리는 플랫폼으로 37 ° C에서 튜브를 유지에 도달합니다. 서스펜션은 biofilm 형성에 대한 실험 채널에 주입 한 다음 준비가되어 있습니다. </li></ol> 2. 자기 입자 제조 <ol><li> 10 ㎕의 자성 입자를 타고 -2.8 μ m 직경 - 재고하고 세척은 자기 샘플 랙의 도움으로 190 ㎕의 최소 배지에서 3 배. </li><li> 5 × 6 구슬 / ㎖로 입자 농도를 조정합니다. 일반적으로 세척 비드 용액을 50 ㎕의 0.4 % 포도당과 M63B1의 추가 950 μ L와 혼합된다. </li></ol> 3. 채널 준비 및 바이오 필름 성장 <ol><li> 채널 장착 <ol><li> 2 개의 8 cm 긴 조각을 얻을 10cm 긴 두 개의 사각형 (800 μ의 M 측 길이) 붕규산 유리 모세관을 잘라. </li><li> 첫 번째 반으로 잘라 - 개 - 2 개 cm 간격 1cm 오버행으로 양쪽 끝의 그림 1과 (그래서 슈퍼 접착제라고 함) 속효성 시아 노 아크릴 레이트 접착제를 사용하여 두 개의 유리 슬라이드에있는 두 개의 모세관 조각을 붙입니다. </li><li> 전체 셋업하고 상기 채널 접속에 필요한 필요한 튜빙 압력솥. </li><li> 모든 살균 물질에서 수집층류 후드 : I) 장착 된 채널 및 트랩 1, II) 튜브 및 커넥터, ⅲ) 두 개의 버블 트랩 - 거품 필터는 일반적으로 아동의 물방울 수유 (트랩 1), 집에서 만든 버블 트랩을 보호하는 데 사용 큰 직경의 4 cm 길이 튜브 (함정 2)로, IV) 클램프, V) M63B1, 0.4 % 포도당 및 VI) 폐기물 병 가득 30 ML 주사기. </li><li> 폐기물 병에 주사기 펌프, 소아 거품 필터, 집에서 만든 거품 트랩, 모세관 (그림 1, 패널 B), 튜브에 의해 제어 50 ㎖ M63B1 주사기 : 다음과 같은 순서로 루어 잠금 연결 관 또는 접합와 전체 설치를 연결합니다. 그 후 약 10 ㎖ / 시간, 실험 속도보다 더 높은 속도로 주사기 펌프를 켜기, 멸균 M63B1, 0.4 %의 포도당으로 설정을 입력합니다. 조심스럽게 추적하고 회로의 모든 거품을 제거합니다. </li><li> 10 ~ 15 분 동안 시스템을 통해 매체의 흐름; 동시에 절에서 OD 0.5에서 세균 현탁액 1 ㎖를 혼합2.2 절에서 제조 세정 비드 용액 1 ㎖와 함께 1.3. </li><li> 전후의 모세 혈관 : 첨부 (하지만 닫지 마십시오) 두 위치에서 튜브에 클램프. 흐름을 끕니다. </li><li> 튜브를 잡고 돌보는 것은 공기의 유입을 방지하기 위해 종료 1 ML의 주사기를 사용하여 집에서 만든 버블 트랩 후 모세 혈관에 세균 비드 혼합물을 소개합니다. 튜브를 다시 연결하고 클램프를 닫습니다. </li><li> 두 번째 모세관에 대해 동일한 절차를 반복하고 거품에 대한 모든 튜브를 확인합니다. </li><li> 현미경 장치를 이동하고 정착 모세관의 표면에 부착하는 박테리아를 사용하려면 15 ~ 20 분 동안 방치한다. 약간 높은 수준에서 폐기물 용기와 현미경 무대에 모세관을 설치합니다. 현미경 옆에있는 카운터 위에 주사기 펌프를 배치합니다. 거품을 캡처 할 모세관 비행기보다 약간 높은 모세관 전에 버블 트랩을 올립니다. </li></ol></li><li> 바이오 필름 촉진제WTH <ol><li> 일반적으로 24 또는 48 시간이 실험에서 - 주사기 펌프의 유량을 조정하고 흐름을 시작, 생물막은 이제 필요한 기간 동안 모세관 표면에 개발할 것이다. </li><li> 모세관 바닥면에 초점 샘플 이미지의 시간 경과 기록을 시작 -이 이미지의 보통 취득 주파수 / 분 적절히 생물막 성장을보고합니다. 이 비디오 모니터의 생물막 성장 후 제어 (동영상 1, 2에서 추출 및 3 참조). </li></ol></li></ol> 4. 자기 족집게 설치 <ol><li> 수동으로 제어 XYZ 미세 조작기의 자기 족집게 나사 상대적으로 모세관에 핀셋의 위치를​​ 조정하기 위해 현미경 무대에 미세 조작기를 나사. 적절한 자기장 변화가 관측 영역에 생성되어 있는지 확인하기 위해 그림 2와 핀셋을 놓습니다. </li><li> 핀셋 T 연결한다O 전력 증폭기를 통한 함수 발생기는 24 초 영 신호 (4)의 시퀀스를 제공하는 신호 동기화를위한 20 초 후 시야 광 셔터로 전송 트리거 직류의 16 초의 제 시간의 40 초주기를 생성 그림 3에서와 같이 이벤트. 주 :이 두 가지 작업은 모세관 설치 및 측정 시작 사이 언제든지 달성 될 수있다. 그림 4의 개요 스케치를 실험을 참조하십시오. </li></ol> 5. 크리프 곡선 취득 <ol><li> 좌측의 자극과 같은 관찰 필드 모세관의 좌측 에지의 에지를 가지고 현미경 스테이지의 XY 이동 제어를 사용하고 있습니다. (도 2 참조)을 각각의 모세관 에지에 의해 정의 된 x-및 y-축의 교차점과 폴 피스의 에지 분석 참조의 원점을 가라. </li><li> 미세 초점 C를 이용하여 모세관의 수직 위치를 조정현미경 위치 ontrol의 노브를 누릅니다. 일반적으로 첫 번째 검사 평면이 μ 4-7 간의 M 모세관 바닥 위에 있습니다. 비디오 1은 공간 참조의 원점은 왼쪽 상단이 (XY) 필드에 해당. </li><li> 전류 발생기와 동시에 전환하여 섹션 4.2 및도 3에 설명 된 이벤트를 40 초 시퀀스를 트리거 수동 비디오 하나의 화상 취득 시퀀스를 발생시킨다. </li><li> 필요한 영상을 획득하는 등 왼쪽에있는 현미경 단계의 250 μ m 번역에 의해 이웃 오른쪽 필드에 모세관을 이동하고 슬라이스 2의 비디오 2를 생성하는 섹션 5.3로 작동합니다. 250 × 250 μ 평방 미터의 일반적으로 3 ~ 4 필드는 비행기를 변경하고 새로운 평면에 동일한 작업을 반복하기 전에 X 축을 따라 수집됩니다. </li></ol> 6. 힘 교정 <ol><li> 이중 증류수 190 μ L과 2 × 10 9 입자 / ㎖에서 자성 입자의 10 μL와 글리세롤의 39.8 g을 혼합하여 글리세롤 용액을 제조하고이 혼합물을 실험 채널을 채우고 현미경 스테이지에 배치 바이오 필름 샘플에 대하여 기술 된 바와 같이. </li><li> 4 절에 표시된대로 자기 족집게를 설치 한 후, 5.4 절에 표시된대로 자기의 힘을 적용하고 보정 파일을 도출하기 위해 모세관에있는 각각의 단일 입자 속도 (V)와 위치를 추출하는 시​​간 경과 이미지를 확인합니다. 이 파일은 스톡스 법에 따라 모세 혈관의 분석 영역에서의 위치의 함수로 적용된 힘을 포함해야합니다, F = 6πRηv (R : 입자의 반경). </li></ol> 7. 분석 <ol><li> 섹션 5에 나타낸 바와 같이 획득 된 영상의 모든 스택의 각 프레임에서 입자의 위치와 텍스트 파일을 구하는 &quot;입자 추적&quot;소프트웨어를 사용합니다.저기서g 화상 스택 포착 주파수는, 시간의 함수로서 입자 변위 (예를 들어도 5와 비디오 4)를 산출한다. </li><li> 힘 교정 파일을 사용하여 준수 곡선을 변위 곡선 변환 (- J (t) - 재료의 총 준수를 시간의 함수로) 준수의 공식에 따라 : <img alt="" fo:content-width="1in" src="/files/ftp_upload/50857/50857eq1.jpg" width="106" /> 이는 재료 변형의 관계를 제공하고 이전 Schnurr 및 동료 (19)에 의해 제정 된대로 비압축성 균질 점탄성 매체에 매립 반경 R의 프로브 입자 스트레스를 적용 하였다. </li><li> 점탄성 재료에 대한 일반 햄버거 모델에 크리프 컴플라이언스 곡선을 조정하고 점탄성 매개 변수, J 0을 도출, J 1, η 0, 각 입자에 대한 η 1 ( <strong&gt; 그림 6) 버거 &#39;공식에 따라 : <img alt="" fo:content-width="2in" src="/files/ftp_upload/50857/50857eq2.jpg" width="169" /> 참고 :이 현상 학적 분석은 이전과 같은 거시적 인 레올 로지 데이터에게 20-22를 해석하는 바이오 필름 ​​등의 생물학적 물질을 포함한 물질의 광범위한 사용되어왔다. </li></ol>

<ol><li>Hall-Stoodley, L., Costerton, J. W., Stoodley, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bacterial+biofilms%3A+from+the+natural+environment+to+infectious+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Bacterial biofilms: from the natural environment to infectious diseases.</a> Nat Rev Microbiol. 2, 95-108 (2004).</li>
<li>Donlan, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biofilms%3A+microbial+life+on+surfaces%5BTitle%5D)+AND+%22Emerg+Infect+Dis%22%5BJournal%5D)">Biofilms: microbial life on surfaces.</a> Emerg Infect Dis. 8, 881-890 (2002).</li>
<li>Costerton, J. W., Stewart, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Battling+biofilms%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+American%22%5BJournal%5D)">Battling biofilms.</a> Scientific American. 285, 74-81 (2001).</li>
<li>Branda, S. S., Vik, S., Friedman, L., Kolter, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biofilms%3A+the+matrix+revisited%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Biofilms: the matrix revisited.</a> Trends Microbiol. 13, 20-26 (2005).</li>
<li>Flemming, H. C., Wingender, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+biofilm+matrix%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Microbiol%22%5BJournal%5D)">The biofilm matrix.</a> Nat Rev Microbiol. 8, 623-633 (2010).</li>
<li>Costerton, J. W., Stewart, P. S., Greenberg, E. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bacterial+biofilms%3A+a+common+cause+of+persistent+infections%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Bacterial biofilms: a common cause of persistent infections.</a> Science. 284, 1318-1322 (1999).</li>
<li>Stewart, P. S., Franklin, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physiological+heterogeneity+in+biofilms%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Physiological heterogeneity in biofilms.</a> Nat Rev Microbiol. 6, 199-210 (2008).</li>
<li>Stoodley, P., Lewandowski, Z., Boyle, J. D., Lappin-Scott, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+deformation+of+bacterial+biofilms+caused+by+short-term+fluctuations+in+fluid+shear%3A+an+in+situ+investigation+of+biofilm+rheology%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnology+and+bioengineering%22%5BJournal%5D)">Structural deformation of bacterial biofilms caused by short-term fluctuations in fluid shear: an in situ investigation of biofilm rheology.</a> Biotechnology and bioengineering. 65, 83-92 (1999).</li>
<li>Klapper, I., Rupp, C. J., Cargo, R., Purvedorj, B., Stoodley, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Viscoelastic+fluid+description+of+bacterial+biofilm+material+properties%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol+Bioeng%22%5BJournal%5D)">Viscoelastic fluid description of bacterial biofilm material properties.</a> Biotechnol Bioeng. 80, 289-296 (2002).</li>
<li>Korstgens, V., Flemming, H. C., Wingender, J., Borchard, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Uniaxial+compression+measurement+device+for+investigation+of+the+mechanical+stability+of+biofilms%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+microbiological%22%5BJournal%5D)">Uniaxial compression measurement device for investigation of the mechanical stability of biofilms.</a> Journal of microbiological. 46, 9-17 (2001).</li>
<li>Cense, A. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+properties+and+failure+of+Streptococcus+mutans+biofilms%2C+studied+using+a+microindentation+device%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+microbiological+methods%22%5BJournal%5D)">Mechanical properties and failure of Streptococcus mutans biofilms, studied using a microindentation device.</a> Journal of microbiological methods. 67, 463-472 (2006).</li>
<li>Shaw, T., Winston, M., Rupp, C. J., Klapper, I., Stoodley, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Commonality+of+elastic+relaxation+times+in+biofilms%5BTitle%5D)+AND+%22Physical+Review+Letters%22%5BJournal%5D)">Commonality of elastic relaxation times in biofilms.</a> Physical Review Letters. 93, (2004).</li>
<li>Towler, B. W., Rupp, C. J., Cunningham, A. B., Stoodley, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Viscoelastic+properties+of+a+mixed+culture+biofilm+from+rheometer+creep+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Biofouling%22%5BJournal%5D)">Viscoelastic properties of a mixed culture biofilm from rheometer creep analysis.</a> Biofouling. 19, 279-285 (2003).</li>
<li>Lau, P. C., Dutcher, J. R., Beveridge, T. J., Lam, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Absolute+quantitation+of+bacterial+biofilm+adhesion+and+viscoelasticity+by+microbead+force+spectroscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+journal%22%5BJournal%5D)">Absolute quantitation of bacterial biofilm adhesion and viscoelasticity by microbead force spectroscopy.</a> Biophysical journal. 96, 2935-2948 (2009).</li>
<li>Poppele, E. H., Hozalski, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micro-cantilever+method+for+measuring+the+tensile+strength+of+biofilms+and+microbial+flocs%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+microbiological+methods%22%5BJournal%5D)">Micro-cantilever method for measuring the tensile strength of biofilms and microbial flocs.</a> Journal of microbiological methods. 55, 607-615 (2003).</li>
<li>Aggarwal, S., Poppele, E. H., Hozalski, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+testing+of+a+novel+microcantilever+technique+for+measuring+the+cohesive+strength+of+intact+biofilms%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnology+and+bioengineering%22%5BJournal%5D)">Development and testing of a novel microcantilever technique for measuring the cohesive strength of intact biofilms.</a> Biotechnology and bioengineering. 105, 924-934 (2010).</li>
<li>Guélon, T., Mathias, J. -D., Stoodley, P. Biofilm Highlights. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGu%C3%A9lon%2C+T+%22Series+on+Biofilms+%28eds+Hans-Curt+Flemming%2C+Jost+Wingender%2C+%26+Ulrich+Szewzyk%29%22">Series on Biofilms (eds Hans-Curt Flemming, Jost Wingender, & Ulrich Szewzyk)</a>. 5, Springer. Berlin Heidelberg. (2011).</li>
<li>Galy, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mapping+of+Bacterial+Biofilm+Local+Mechanics+by+Magnetic+Microparticle+Actuation%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+journal%22%5BJournal%5D)">Mapping of Bacterial Biofilm Local Mechanics by Magnetic Microparticle Actuation.</a> Biophysical journal. 103, 1-9 (2012).</li>
<li>Schnurr, B., Gittes, F., MacKintosh, F. C., Schmidt, C. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determining+Microscopic+Viscoelasticity+in+Flexible+and+Semiflexible+Polymer+Networks+from+Thermal+Fluctuations%5BTitle%5D)+AND+%22Macromolecules%22%5BJournal%5D)">Determining Microscopic Viscoelasticity in Flexible and Semiflexible Polymer Networks from Thermal Fluctuations.</a> Macromolecules. 30, 7781-7792 (1997).</li>
<li>Aggarwal, S., Hozalski, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+Strain+Rate+on+the+Mechanical+Properties+of+Staphylococcus+epidermidis+Biofilms%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Effect of Strain Rate on the Mechanical Properties of Staphylococcus epidermidis Biofilms.</a> Langmuir. 28, 2812-2816 (2012).</li>
<li>Towler, B. W., Cunningham, A., Stoodley, P., McKittrick, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+model+of+fluid-biofilm+interaction+using+a+Burger+material+law%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol+Bioeng%22%5BJournal%5D)">A model of fluid-biofilm interaction using a Burger material law.</a> Biotechnol Bioeng. 96, 259-271 (2007).</li>
<li>Jones, W. L., Sutton, M. P., McKittrick, L., Stewart, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemical+and+antimicrobial+treatments+change+the+viscoelastic+properties+of+bacterial+biofilms%5BTitle%5D)+AND+%22Biofouling%22%5BJournal%5D)">Chemical and antimicrobial treatments change the viscoelastic properties of bacterial biofilms.</a> Biofouling. 27, 207-215 (2011).</li>
<li>Apgar, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiple-particle+tracking+measurements+of+heterogeneities+in+solutions+of+actin+filaments+and+actin+bundles%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+journal%22%5BJournal%5D)">Multiple-particle tracking measurements of heterogeneities in solutions of actin filaments and actin bundles.</a> Biophysical journal. 79, 1095-1106 (2000).</li>
</ol>

우리는 공개 아무것도 없어.

이 자성 입자는 파종 및 원래 상태에있는 성장하고있는 바이오 필름의 점탄성 매개 변수의 현장의 3D 매핑에 사용 실험을 당겨. 이 방법은 E.의 기계적 이질 밝혀 대장균 바이오 필름은 여기에서 성장 강하게 기본적인 세포 외 기질 (extracellular matrix)의 의미와 가교의 더 정확하게 그 정도를 제안, 바이오 필름 ​​물성을 지원하는 생물막 구성 요소를 지적하는 단서를 주었다. 세균 바이오 필름의 기계적 특성 패턴의 인식은 이러한 복잡한 물질의 포괄적 인 표현을 구축하기위한 매우 중요합니다. 이러한 연구 결과는 기계적인 패턴과 같은 바이오 필름 개발을 뒷받침하는 원동력을 명확히하는 데 도움이 유전자 발현 microniches, 생물 학적 이질성을 연결하는 인과 관계를 명확하게하는 방법을 엽니 다. 지금까지 바이오 필름 메카의 문제nical 속성보기의...

세균 바이오 필름은 생물학적 또는 인공 표면 1-3와 관련된 박테리아의 사회입니다. 이들은 4,5 구성물을 보호하고 안정화 다당류 풍부한 세포 외 매트릭스의 제조와 결합 접착 성장 메커니즘에 의해 형성한다. 이 바이오 필름은 표면에 붙어있는 세포를 단순히 수동적 군집 아니지만, 조직 및 동적 복잡한 생물학적 시스템. 박테리아가 바이오 필름의 라이프 스타일에 플랑크톤에서 전환하면, 유전자 발현 및 세포 생리학의 변화는 항생제에 저항을 증가뿐만 아니라 관찰 많은 지속 및 만성 감염 (6)의 원점 인 면역 방어를 호스팅하고 있습니다. 그러나 이러한 생활 구조의 제어 개발은​​ 또한 유해 폐기물 사이트의 생물학적, 공업용 또는 contamin에서 토양과 지하수를 보호하기 위해 바이오 장벽의 형성 바이오 여과 등의 산업 및 환경 응용을위한 기회를 제공ATION. 삶의 바이오 필름의 방법으로 특정 분자 기능이 점점 더 설명하는 동안, 지역 사회 개발 및 지속성을 구동 메커니즘은 불분명하다. 스캔 전기 또는 형광 현미경을 사용하여 마이크로 측정에 대한 최근의 발전을 사용하여이 살고있는 조직 구조, 화학 및 생물 학적 이질성 7 상당한 전시하는 것으로 나타났다. 그러나, 지금까지 바이오 필름의 역학은 주로 거시적으로 조사되었다. 예를 들어, 바이오 필름 ​​깃발의 관찰에 의한 유체 유량 8,9의 변화에 변형 바이오 필름 ​​조각의 일축 압축 한천 배지에서 올리거나 커버 한 후 10, 11, 환경에서 수집 된 바이오 필름의 전단과 병렬로 전송 슬라이드에 성장 플레이트 레오 미터 12,13, AFM 캔틸레버 (14) 나 전용 MICR 부착 세균 바이오 필름과 유리 구슬과 코팅을 이용하여 원자 힘 분광분리 된 바이오 필름 ​​조각 (15, 16)의 인장 강도를 측정하기위한 ocantilever 방법은 재료 (17)의 점탄성 특성에 대한 유용한 정보를 제공, 지난 10 년 동안 구현되었습니다. 그러나,이 재료는 흔히 이러한 방법에서의 경우와 네이티브 환경으로부터 제거 될 때 동일계 생물막 기계적 특성에 대한 정보가 손실 된 것으로 보인다. 또한, 균일 한 물질로서 바이오 필름의 처리는 커뮤니티 내 물성 가능한 이질성에 대한 정보를 벗어났습니다. 따라서, 구조 biofilm 형성의 역학과 같은 유전자 발현 패턴 또는 화학 그라데이션 같은 생물학적 특성의 정확한 의미는 거의 인식 할 수 없습니다. 바이오 필름 물성의 마이크로 설명으로 진행하기 위해, 새로운 전용 도구가 필요합니다. 이 논문은 달성하기 위해 생각 원래의 접근 방법의 자세한 사항생물막을 방해하고 마이크로 물질 특성의 공간적 분포의 그린 다음 기계 이질성을 사용하지 않고 현장에서 지역 기계 매개 변수의 측정. 실험의 원리는 성숙 생물막 자성 핀셋을 사용하여 원격 로딩 하였다 자성 미세 입자와 함께 성장하는 생물막의 도핑 달려. 현미경으로 몇 군데 제어 자력 응용 프로그램에서 입자 변위는 지역 점탄성 매개 변수 유도, 자신의 지역 환경을보고 각각의 입자 수 있습니다. 이 데이터에서 바이오 필름의 3D 기계 프로파일은 공간 및 환경 조건 의존성을 드러내는, 그릴 수 있습니다. 전체 실험 E. 여기에 표시됩니다 derepressed F와 같은 플라스미드를 운반하는 유전자 조작 변형에 의해 대장균 바이오 필름. 최근의 논문 (18)에 상술 결과는 그대로 생물막 기계의 내부의 독특한 비전을 제공.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Table 1: 시약 및</td></tr><tr><td>세포 자성 입자</td><td>Life technologies</td><td>14307D</td><td>Micrometric magnetic particle, 2.8 &micro; m 직경</td></tr><tr><td>암피실린 (항생제)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>A9518</td><td></td></tr><tr><td>테트라사이클린 (항생제)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>87128</td><td></td></tr><tr><td>박테리아 균주 MG1655gfpF</td><td>UGB, Institut Pasteur, France</td><td></td><td>암피실린 및 테트라사이클린에 내성이 있는 표면에서 F pili를 생성합니다.</td></tr><tr><td colspan ="4">Table 2 : 소</td></tr><tr><td>아 관류 용</td> 모세 혈관 및 튜브 필터 <td>Prodimed-Plastimed</td><td>6932002</td><td></td></tr><tr><td>중공 광장 모세 혈</td>관 복합 <td>금속 과학</td><td>8280-100</td><td>붕규산 유리로 제조. 정사각형 0.8 mm x 0.8 mm</td></tr><tr><td>튜빙 실리콘 퍼옥사이드</td><td>VWR international</td><td>228-0512</td><td>직경 1 mm</td></tr><tr><td>튜빙 실리콘 퍼옥사이드</td><td>VWR international</td><td>228-0700</td><td>직경 3 mm</td></tr><tr><td colspan="4">Table 3: Biofilm growth</td></tr><tr><td>lysogeny Broth (LB) solution</td><td>Amresco-VWR</td><td>J106-10PK</td><td>박테리아를 성장시키는 데 사용되는 표준 매체.</td></tr><tr><td>M63B1 솔루션</td><td>박테리아</td><td>를 성장시키는 데 사용되는</td> 집에서 만든 <td></td> 표준 최소 배지.</tr><tr><td>포도당</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G8270</td><td>포도당 0.4%로 M63B1 매체를 만드는 데 사용됩니다.</td></tr><tr><td colspan="4">표 4: 전자</td></tr><tr><td>카메라 EMCCD&nbsp; &nbsp;</td><td>하마마츠</td><td>C9100-02</td><td></td></tr><tr><td>히터 컨트롤러</td><td>세계 정밀 기기</td><td>300354</td><td></td></tr><tr><td>함수 발생기</td><td>애질런트 기술</td><td>33210A</td><td></td></tr><tr><td>전력 증폭기</td><td>집에서 만든</td><td></td><td>최대 4A의 진폭을 가진 전류 신호를 제공합니다.</td></tr><tr><td>주사기 펌프</td><td>Kd Scientific</td><td>KDS-220</td><td></td></tr><tr><td>셔터</td><td>Vincent Associates</td><td>Uniblitz T132</td><td></td></tr><tr><td>자기 핀셋</td><td>집에서 만든</td><td></td><td>두 개의 전자기 극, 각각 직경 0.56mm 구리선의 2,120회 회전이 있는 구리 코일과 연자성 합금 코어(Supra50-Arcelor Mittal, 프랑스)는 <강>그림 10</강>에 표시된 청사진에 따라 정사각형 모양입니다. 두 개의 코어는 모세관의 길이를 따라 한 방향으로 자기력을 생성하기 위해 남극을 향하도록 북극을 향하도록 장착됩니다. 그림 11에서 코일 배선에 대한 세부 정보를 참조하십시오.</td></tr><tr><td colspan="4">표 5: 광학</td></tr><tr><td>도립 현미경&nbsp;</td><td>Nikon</td><td>TE-300</td><td></td></tr><tr><td>S Fluor x40 Objective (NA 0.9, WD0.3)</td><td>Nikon</td><td></td><td>이것은 생물막을 심층적으로 관찰할 수 있는 긴 작동 거리 대물렌즈입니다.</td></tr><tr><td>에피 형광 필터 : 1) 녹색 형광 : Exc 480 / 20 nm; DM 495; 엠 510/20&nbsp; 2) 적색 형광의 경우: Exc 540/25 nm; DM 565; Em 605/55</td><td>Chroma</td><td>1)#49020 2)#31002</td><td>힘 적용 시 입자 변위는 적색 형광 필터 블록을 사용하여 기록됩니다.</td></tr><tr><td colspan="4">Table 6: 이미지 분석</td></tr><tr><td>ImageJ</td><td>NIH - 입자 추적기 플러그인</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

에 대한 마이크로 미터 프로브의 원격 자기 발동<em&gt; 현장에서</em세균 바이오 필름 물성&gt; 3d 매핑

Remote Magnetic Actuation of Micrometric Probes for in situ 3D Mapping of Bacterial Biofilm Physical Properties

인터페이스에 대한 세균의 부착과 성장을 입체적 이종 구조 소위 바이오 필름의 형성으로 이어질. 이러한 구조에 사는 세포는 세포 외 고분자 물질의 네트워크에 의해 매개 물리적 상호 작용에 의해 함께 개최됩니다. 세균 바이오 필름은 많은 인간의 활동에 영향을 미칠 및 해당 속성에 대한 이해는 개발의 더 나은 제어를 위해 매우 중요합니다 - 유지 보수 또는 근절 - 자신의 불리한 유익한 결과에 따라. 이 논문은 지금까지 단 거시적 균질 재료의 관점에서 검토, 현장에 있었다 바이오 필름의 지역의 물리적 특성을 측정하기 위해 목표로하는 새로운 방법을 설명합니다. 여기에 설명 된 실험은 원격으로 바이오 필름의 구조적 특성을 방해하지 않고 작동 할 수있는 지역의 프로브를 씨앗에 성장하는 바이오 필름에 자성 입자를 도입하는 것을 포함한다. 전용 자기 핀셋 deve을했다바이오 필름에 포함 된 각 입자에 정의 된 힘을 발휘하는 loped. 설치는 입자를 잡아 당기는 기간의 시간 경과 영상의 기록이 가능하도록 현미경의 무대에 장착된다. 입자 궤적이어서 당기는 시퀀스로부터 추출되고, 로컬 점탄성 파라미터함으로써 파라미터의 3 차원 공간 분포를 제공하고, 각 입자 변위 곡선으로부터 유도된다. 생물막 기계적 프로필 통찰력을 얻는 것은 구조적 특성 및 이들 구조의 특정 생물 사이의 관계를 명확히하기 위해 생물막 제어 목적 뷰 엔지니어의 관점에서뿐만 아니라, 기본적인 관점에서 필수적이다.

전형적인 분석은 원래의 배치를 방해하지 않고 생활 생물막에 미크론 스케일에서 점탄성 파라미터의 공간 분포를 제공 할 것이다. 탄성 컴플라이언스 - - 깊이와 함께 바이오 필름의 횡 방향 치수를 따라 Y 축, Z 축의 함수로서 주어진다 전형적인 결과는 J 0의 값을도 7에 나타낸다. 각 점은 크리프 곡선 분석은 J 0 값을 제공 한 구슬에 해당합니다. 데이터는 거의 3 크기 순서뿐만 아니라 그 강력한 측면 이질성을 통해 바이오 필름의 깊이에 따라 변화 지역을 준수 모든 바이오 필름의 높이에서 열렸다 것으로 나타났다. 데이터는 또한 바이오 필름의 기계적 특성이 지원되었는지 강한 표시를 제공하고, 여기에서 확산 및 비대칭 형상 (도 8)를 나타내 컴플라이언스 값의 분포에 액세스를 준높은 고분자 겔을 가교. 사실, 유사한 동작은 이전에 집중 높은 가교 말라 젤 23에</sup...

이 논문은 세균 바이오 필름과 현장에서 인터페이스에서 미생물에 의해 만들어진 복잡한 생활 소재의 로컬 기계적 특성을 측정 할 수있는 전용 자기 핀셋의 개발에 씨앗을 품고 자기 입자의 원격 작동에 따라 원래의 방법을 보여줍니다.

에 대한 마이크로 미터 프로브의 원격 자기 발동<em&gt; 현장에서</em세균 바이오 필름 물성&gt; 3D 매핑

Bacterial adhesion and growth on interfaces lead to the formation of three-dimensional heterogeneous structures so-called biofilms. The cells dwelling in ...

다음 실험의 전반적인 목표는 박테리아 바이오필름의 국소적 물리적 특성을 마이크로미터 규모에서 두 가지 방식으로 측정하는 것입니다. 이를 위해, 바이오필름의 구조적 특성을 방해하지 않으면서 원격으로 작동 가능한 프로브 역할을 수행할 수 있도록 성장 중인 바이오필름에 자성 입자를 도입합니다. 그런 다음 전용 자기 집게(magnetic tweezers)를 사용하여 각 입자에 정의된 힘을 가합니다.바이오필름 내에 매립된 입자가 자기 인력에 의해 변위되는 과정을 비디오 현미경으로 모니터링하여 국소 점탄성 매개변수를 도출하고, 바이오필름 기계적 특성의 3D 공간 분포를 제공합니다. 이를 통해 E. coli 바이오필름의 기계적 불균질성을 보여주는 결과를 얻었으며, 어떤 바이오필름 구성 성분이 바이오필름의 물리적 특성을 지지하는지에 대한 단서를 제공합니다. 따라서 현미경 관찰, 콜로지(cology) 또는 전체 바이오 식생과 같은 기존 방법과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은 재료의 원래 구조를 방해하지 않고 인 시투(in situ) 상태에서 기계적 특성의 공간적 분포를 보고한다는 점입니다.본 프로토콜을 위한 자성 입자를 준비하려면, 2.8 µm 입자가 담긴 스톡 바이알을 볼텍싱하여 재현탁시킵니다. 그 다음 10 µL를 마이크로 원심분리 튜브로 옮깁니다. 입자를 세척하기 위해 190 µL의 최소 배지를 추가하고 튜브를 회전시킨 후, 자성 샘플 랙에 올려놓고 펠릿이 형성될 때까지 기다렸다가 상층액을 흡입하여 제거합니다.이 세척 단계를 두 번 더 반복하고, 비드를 190 µL의 최소 배지에 다시 현탁합니다. 다음으로, 세척된 비드 용액 50 µL에 0.4% glucose가 포함된 M 63 B one 950 µL를 첨가하여 입자 농도를 밀리리터당 약 500만 개의 비드로 조정합니다. 채널을 준비하려면, 다이아몬드 유리 절단기를 사용하여 10 cm 길이의 붕규산 유리 모세관 두 개를 잘라 8 cm 길이의 조각 두 개를 얻습니다.유리 절단기를 사용하여 유리 슬라이드를 반으로 자릅니다. 그런 다음, 빠르게 경화되는 시아노아크릴레이트 접착제 또는 순간접착제를 사용하여 이 도식에 표시된 대로 두 개의 모세관 조각을 두 개의 유리 슬라이드 조각에 부착합니다. 두 조각 사이의 간격을 2 cm로 두고 양 끝에 1 cm씩 돌출되도록 배치한 후, 전체 장치와 필요한 튜빙을 오토클레이브로 멸균합니다.추가적인 채널 연결을 위해, 층류 후드(laminar flow hood) 아래에서 다음과 같은 멸균 재료를 준비하십시오. 장착된 채널 튜빙 및 커넥터, 2개의 소아용 버블 필터 또는 트랩, 2개의 클램프, M 63 B 및 1.4% glucose가 채워진 30 milliliter 주사기, 그리고 폐액병입니다.두 모세관을 동일한 방식으로 연결합니다. 튜브 중 하나를 사용하여 폐액 병을 한쪽 모세관 끝에 연결하십시오.그런 다음 루어 락 커넥터를 접합부로 사용하여 모세관의 반대쪽 끝을 수제 버블 트랩 또는 트랩 1에 연결하고, 트랩 1을 트랩 2에 연결합니다. 그다음 30 mL M 63 B one 주사기를 트랩 2에 연결합니다. 이어서 장치 내부를 0.4% glucose가 포함된 멸균 M 63 B one으로 채웁니다.시린지를 시린지 펌프에 장착하고, 실험 속도보다 약 5 mL/h 더 빠른 속도로 시린지 펌프를 작동시킵니다. 필요한 경우 회로 내의 모든 기포를 주의 깊게 추적하여 제거하십시오. 이 과정에서 회로를 분리했다가 다시 연결하십시오.세포 입자 혼합물을 튜브에 주입하기 전과 주입하는 동안 기포를 완전히 제거하십시오. 모세관 위에 폐기물 수집 용기를 배치하면 바이오필름의 지속적인 성장에 도움이 됩니다. 배지가 시스템을 통해 10~15분 동안 흐르도록 둡니다. 그동안 마이크로 원심분리 튜브에서 흡광도 0.5의 박테리아 현탁액 1 mL와 앞서 준비한 세척된 비드 용액 1 mL를 혼합합니다.흐름을 차단하고 튜빙을 다시 연결한 다음 클램프를 잠급니다. 다음으로, 1 mL 시린지에 박테리아 비드 혼합물을 채워 모세관에 주입합니다. 수제 버블 트랩 이후 단계에서, 장치를 현미경으로 옮깁니다.모세관을 현미경 스테이지에 설치하고 폐액 컨테이너를 약간 더 높은 위치에 둡니다. 시린지 펌프를 현미경 옆 작업대에 놓습니다. 박테리아가 가라앉아 모세관 표면에 부착될 수 있도록 장치를 15분에서 20분 동안 그대로 둡니다.박테리아가 모세관에 부착되면, 클램프를 열고 시린지 펌프의 유속을 조절한 후 흐름을 시작합니다. 24~48시간에 걸쳐 모세관 표면에 바이오필름이 형성되며, 모세관 바닥 평면에 초점을 맞추고 샘플 이미지의 타임랩스 기록을 시작합니다. 일반적으로 분당 2장의 이미지 획득 빈도면 바이오필름 성장을 충분히 보고할 수 있습니다.이 영상은 세포-입자 혼합물을 주입한 직후의 바이오필름 초기 단계를 보여줍니다. 모세관 획득 시 빈도는 초당 한 장의 이미지이며, 영상은 초당 10프레임으로 재생됩니다. 4시간 동안의 성장 후, 입자들은 표면에서 점차 분리되어 바이오필름 부피 전체로 분포되었습니다.파란색 화살표는 분리 이벤트를 표시합니다. 여기서 획득 빈도는 분당 2장의 이미지이며, 동영상은 초당 15프레임으로 재생됩니다. 20시간의 성장 후, 초점 평면에서 고르게 분포된 12개의 입자를 관찰할 수 있습니다.이 영상은 모세관 바닥에서 20 µm 위에 위치한 중간 평면에서 촬영되었습니다. 분당 2장의 이미지가 획득되었습니다. 영상은 초당 15프레임으로 재생됩니다.자기 입자가 접종된 바이오필름이 수동으로 성장하면, 자기 핀셋을 현미경 스테이지에 고정하십시오. 관찰 구역에 적절한 자기장 구배가 생성되도록, 빨간색으로 표시된 측정 영역이 Y축을 따라 핀셋의 좌우 폴 가장자리로부터 300 µm 떨어진 곳에 위치하도록 핀셋을 본 다이어그램과 같이 배치하십시오. 모세관의 바닥은 핀셋 바닥에서 200 µm 아래에 배치합니다.이 단계를 수행하려면 현미경 스테이지의 XY 이동 제어 장치를 사용하여 왼쪽 자극의 가장자리와 모세관의 왼쪽 가장자리를 맞춥니다. 동일한 관찰 시야에서 핀셋의 왼쪽 마이크로 매니퓰레이터 x 다이얼을 사용하여 자극의 위치를 모세관 가장자리로부터 300 micrometers 떨어진 곳으로 조정합니다. 오른쪽 면에서도 동일한 작업을 수행합니다.그런 다음 모세관 바닥을 기준으로 Z축을 따라 트위저의 위치를 조정합니다. 먼저 전극의 바닥을 모세관의 바닥에 맞춘 후, 전극을 200 micrometers 위로 이동시킵니다.마이크로 매니퓰레이터의 Z 다이얼을 사용하여, 함수 발생기의 파라미터를 0 신호 24초 및 4A의 정전류 16초로 설정하십시오. 트리거를 사용하여 20초 후에 명시야 광 셔터로 전송하십시오.신호 동기화를 위해 파워 앰프를 통해 트위저를 함수 발생기에 연결하십시오. 공간적으로 분포된 크리프 곡선을 얻으려면 극을 직렬로 적절하게 연결하는지 주의하십시오. 공간 원점을 잡고, Z축의 원점을 모세관 내부 바닥으로 설정하십시오.현미경 Z축 제어 위치를 기록하십시오. 그런 다음 모세관의 가장자리와 폴피스의 가장자리에 의해 각각 정의되는 x축과 Y축의 교차점을 찾으십시오. 이곳이 분석의 원점이 됩니다.좌표를 기록하십시오. 이후의 모든 좌표는 이 원점을 기준으로 측정됩니다. 바이오필름이 성장하면, 미동 초점 조절 노브를 사용하여 모세관의 수직 위치를 조정함으로써 첫 번째 평면이 모세관 바닥에서 4~7 µm 위에 위치하도록 합니다.이 슬라이스는 공간 기준점의 원점이 왼쪽 상단 모서리에 위치한 바이오필름 슬라이스에 해당합니다. 그런 다음 전류 발생기를 켜고 이미지 획득 시퀀스를 수동으로 트리거하십시오. 42번째 이벤트 시퀀스를 시작하면, 여기서 획득한 이미지 스트림은 특정 평면 및 XY 필드에 해당하게 됩니다.시퀀스 캡처가 완료되면, 모세관을 이동하여 새로운 영역의 비디오를 캡처하십시오. 데이터 분석에 필요한 모든 비디오를 얻을 때까지 이 과정을 계속 반복하십시오. 모든 입자에서 획득한 모든 스택에 대해 ImageJ 또는 이에 상응하는 입자 추적 소프트웨어에서 이미지를 여십시오.입자 변위를 추적하여 이미지를 텍스트 파일로 변환합니다. 다음으로, 데이터 처리 소프트웨어를 사용하여 변위 곡선을 그리고, 이 변위 곡선을 컴플라이언스 곡선으로 변환하여 여기에 표시된 컴플라이언스 공식에 따라 재료의 총 컴플라이언스 JFT를 시간의 함수로 계산합니다. 이 공식은 이전에 established 및 동료들이 정립한 바와 같이, 점탄성 및 비압축성 매질에 내장된 기준 입자에 대해 가해진 응력과 재료 변형 사이의 관계를 설명합니다. 점탄성 재료에 대한 일반적인 Burgers 모델에 크리프 컴플라이언스 곡선을 피팅하여, 바이오필름의 점탄성 특성에 대한 공간적 분포를 제공하는 점탄성 파라미터 J zero J one at the zero at the one prime을 도출합니다. 크리프 곡선은 약 200 by 200 by 40 cubic micrometers의 바이오필름 미세 부피 내 서로 다른 깊이에서 수집되었습니다. 전형적인 결과가 여기에 표시되어 있습니다.탄성 컴플라이언스인 J zero 값은 깊이 방향인 Z축과 바이오필름의 가로 방향인 y축의 함수로 나타내었습니다. 각 점은 크리프 곡선 분석을 통해 J zero 값이 도출된 비드를 나타냅니다. 이 데이터는 국부적 컴플라이언스가 바이오필름의 깊이에 따라 거의 3배수(orders of magnitude) 범위 내에서 다양하게 변한다는 것을 보여줍니다.또한, 모든 바이오필름 높이에서 강한 측면 불균질성이 나타났습니다. 데이터는 또한 광범위하고 비대칭적인 형태를 보이는 컴플라이언스 값의 분포를 제공합니다. 이러한 결과를 이전에 다른 생물학적 폴리머에서 얻은 결과와 비교해 보면, 바이오필름의 기계적 특성이 고도로 가교된 폴리머 겔에 의해 지지됨을 시사합니다.C에서는 여기서 볼 수 있듯이 낮은 유속과 같은 서로 다른 환경 조건 하에서 바이오필름의 국소 특성에 대한 두 가지 측정이 수행되었습니다. 0.1 mL/h에서 성장한 바이오필름의 컴플라이언스 값은 여전히 매우 불균일한 기계적 프로파일을 보입니다. 하지만 1 mL/h에서 성장한 바이오필름에서 관찰되었던 바이오필름 강성의 뚜렷한 Z 깊이 의존성은 사라졌습니다.이러한 결과는 외부 조건이 바이오필름 조직화에 미치는 상당한 영향을 입증합니다. 영상을 시청함으로써 완전히 제어된 성장 조건 하에서 바이오필름 연구소의 점성 특성을 매핑하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

remote-magnetic-actuation-micrometric-probes-for-situ-3d-mapping

Research

연구

JoVE Journal

Bioengineering

생명공학

여기에서는 고해상도 나노 스케일 표면 전위 맵을 생성하기 위한 도구로 Kelvin 프로브 힘 현미경을 사용하는 방법을 설명하는 프로토콜을 제시합니다. 이 도구는 기질 표면에 대한 미생물의 결합 능력에 대한 표면 전위의 역할을 평가하기 위해 적용되었습니다.

켈빈 프로브 힘 현미경을 사용하여 박테리아의 표면 전위 측정

입자 추적 미세유변학은 재료의 점탄성을 조사합니다. 여기서 이 기술은 박테리아 생물막의 다양한 매트릭스 구성 요소에 대한 점탄성, 크리프 규정 준수 및 효과적인 가교 역할을 결정하는 데 사용됩니다. 매트릭스는 박테리아가 분비하는 고분자 물질로 구성되며 그 구성 요소는 생물막 구조와 기계적 특성을 결정합니다.

입자 추적 Microrheology에 의한 바이오 필름의 기계적 성질의 제자리 매핑에서

이 프로토콜은 성장과 질적으로 공 초점 및 전자 현미경으로 곰팡이 균사에 세균 바이오 필름을 분석하는 새로운 방법을 설명합니다.

새로운 방법 사상 진균 식민지에 세균 바이오 필름의 질적 다중 스케일 분석을 위해 사용 공 촛점 및 전자 현미경

이 연구는 세포질로 전달되는 자기 마이크로 비드를 통해 세포핵에 기계적 힘을 직접 적용하고 동시 살아있는 세포 형광 이미징을 수행하는 새로운 프로토콜을 제시합니다.

3D 자기력 액추에이터와 다기능 형광 이미징을 결합하여 핵 역학 연구

자기력 현미경(MFM)은 수직으로 자화된 원자력 현미경 프로브를 사용하여 나노 스케일 분해능으로 샘플 지형과 국부 자기장 강도를 측정합니다. MFM 공간 분해능과 감도를 최적화하려면 리프트 높이 감소와 드라이브(진동) 진폭 증가의 균형을 맞춰야 하며 불활성 분위기의 글로브박스에서 작동하는 이점을 누릴 수 있습니다.

자기력 현미경 분해능과 감도를 최적화하여 나노스케일 자기 도메인 시각화

여기에서는 최대 1.2kHz의 속도로 힘에 민감한 생체 분자에 대한 나노기계적 측정을 수행하는 고속 자기 핀셋 설정에 대해 설명합니다. 우리는 모델 시스템으로 DNA 헤어핀과 SNARE 복합체에 대한 적용을 소개하지만 기계 생물학적 사건에 관여하는 다른 분자에도 적용 할 수 있습니다.

힘에 민감한 요소에 대한 나노 역학 측정을 위한 고속 자기 핀셋

이 논문은 Proteus mirabilis 생물막을 위해 특별히 설계된 확장 현미경 기술인 PmbExM에 대한 포괄적인 프로토콜을 제시합니다. PmbExM은 생물막 샘플의 단계적 효소 처리를 활용하여 등방성, 4.3배 팽창을 달성함으로써 이러한 고착 미생물 군집 내 세포 및 세포 내 구조의 공간 조직에 대한 초해상도 분석을 가능하게 합니다.

확장 현미경 검사법에 의한 Proteus mirabilis 생물막의 초고해상도 이미징

레이저 미세 가공을 사용하여 빛 흡수 복합 고분자 재료, 특히 자기 활성 엘라스토머(MAE)의 표면 지형을 부과하는 방법이 제시됩니다. 이 방법은 지형 설계 및 신속한 프로토타이핑에서 큰 유연성을 가능하게 합니다. MAE 표면 구조화, 특성화 및 외부 자기장에 대한 반응의 예가 시연됩니다.

폴리머 표면 지형 설계를 위한 레이저 미세 가공

이 문서는 파노라마 영상 시스템을 사용 Langendorff - perfused 토끼 마음에 광학 매핑 실험을 실시하기위한 기본 절차 및 듀얼 (전압과 칼슘) 이미징 양상을 설명합니다.

Langendorff - perfused 토끼 하트의 Multiparametric 광 매핑

그대로 고립 Langendorff에 transmembrane 잠재력 (VM)과 일시적인 세포 내 칼슘 (CAT)의 광학 매핑하는 동안이 종이 자세히 해부 절차를, 수단 설치, 그리고 실험 조건 마우스 마음을 perfused.

마우스 중심에 액션 후보와 칼슘 과도의 광학 매핑

배우세요 자기 입자를 이용한 E. coli 바이오필름의 점탄성 특성 측정 방법입니다. 이 기술은 바이오필름 구조를 손상시키지 않고 3D 공간 분포에서 기계적 이질성을 분석하여 미생물 생물막의 물리적 특성을 연구하는 데 활용됩니다.

에 대한 마이크로 미터 프로브의 원격 자기 발동

더 많은 동영상 탐색