Name: 유괴와 콩과 식물의 성장을위한 단일 공장, 무균 소우주 개자리 truncatula Rhizobial 공생과 Sinorhizobium meliloti (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-10-01T09:00:00.000+00:00
Duration: 20 min 1 s
Description: 학습하세요 Medicago truncatula와 Sinorhizobium meliloti의 근류균 공생을 단일 무균 소우주에서 관찰하는 방법을. 산 처리 후 종자 발아, 배양 접종, 9주간 무균 유지 기술을 익혀 식물-미생물 상호작용 연구에 활용하세요.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

우리는 원고의 중요한 검토를 위해 브라이언 K. 워시번 감사 KMJ에 20582 -이 작품은 USDA 국립 식량 농업 연구소, 농업 및 식품 연구 이니셔티브 부여 2010-65108에 의해 투자되었다.

단계를 수행하는 1, 2, 4, 멸균 층류 후드에있는 6 좋습니다. 1. M.의 준비 truncatula A17 모종 참고 : M. 이 연구에 사용 truncatula A17 씨는 22 ° C ~에서, 또는 ~ 150-400 밀리몰 / m -2 -1의 빛 22 ~ 26 ° C에서 유지 식물의 성장 룸 냉각 온실 조건에서 생산됩니다. <ol><li> 종자 발아 판을 따르십시오 : 100mm 사각 접시 (깊이 15mm)를 사용하여 3 ~ 5 mm의 깊이에 10 한천 정제 V / w를 멸균 1.1 ~ 1.2 %를 붓는다. 각 플레이트 (63-125 씨 / 플레이트에 해당) 씨의 ~ 0.25-0.5 g 발아하는 데 사용됩니다. 참고 :이 프로토콜에 설명 된 모든 플레이트에 식물 세포 배양 테스트, 정제 한천을 사용하는 것이 중요합니다. 한천의 공급 업체와 카탈로그 번호 정보는 특정 시약 및 장비의 표에 나열되어 있습니다. </li><li> 혹평 / M.에게 소독 truncatula A17 씨의 : 모종의 원하는 번호에 대한 충분한 씨앗의 무게. (;이는 ~ 63-125 씨입니다 0.25-0.5 G 씨 / 플라스크) 피펫 집중 (96 %) 20 ㎖ 멸균 호일 커버와 함께 멸균 125 ㎖의 플라스크에 넣고 씨앗 (M.는 A17 씨가 각각 1 ~ 4 MG 있습니다 truncatula) H 2 SO 플라스크의 측면을 따라 4. 참고 : 산 혹평이 씨앗을 소독합니다. 또한, 플라스크의 측면을 따라 산을 피펫 팅함으로써, 살균되지 않은 종자에 접촉 내용 플라스크의 내부를 다시 소독한다. </li><li> 멸균 유리 피펫 씨의 대단히 짧은 시간을 휴식. 10 ~ 12 분 동안 자주 각 플라스크를 소용돌이 친다. 작은 갈색 구덩이 씨에 표시 될 것입니다. 이들은 종피 (11)에 작은 구멍이다. 주 : SO 4 집중 H 2로 작업 할 때 눈 보호 장갑을 착용 할 것. </li><li> SO 4 H 2를 제거하고 종자를 씻어 : 씨앗의 10 % 이상이 작은 갈색 피트, 또는 12 분을 할 때 &#39;통과, 어느첫 번째 온다, 멸균 유리 피펫으로 플라스크에서 모든 산을 제거합니다. (최소 300 ㎖의 수돗물을 포함하는 1 ~ 2 L 비이커에 장소의 쓰레기 산.이 산을 희석하고 과열을 방지합니다. 것) 플라스크의 곡선에 남아있는 산을 수집 플라스크를 기울이고 작은 유리 피펫을 사용하여 남아있는 모든 산을 제거합니다. 잔여 산가 남아있는 경우는, 헹굼 물과 반응 씨앗을 가열하고 그들을 죽일 것입니다. <ol><li> 신속하게 각각의 플라스크에 멸균 초순수 100 ㎖를 부어 씨앗을 씻어. 과량의 물 볼륨이 산을 희석하고 물과 산의 반응시 발열 및 종자의 손상을 방지 할 것이다. 물을 붓고 플라스크의 입술을 화염 소독. </li><li> 멸균 초순수 50 ㎖의 씨앗 8 배를 씻어. 각 린스 동안 플라스크를 소용돌이 친다. 플라스크를이 시점에서 멸균 간주되어야하고 플라스크의 립 각 린스 전에 골조한다. </li></ol></li><li> 씨앗이 하룻밤을 마시다 보자 후마지막 헹굼은 어두운 하룻밤에 4 ° C에서 각각의 플라스크와 장소에 멸균 호일 덮개를 장착, 각각의 플라스크에 50 ㎖ 멸균 초순수 물을 부어. </li><li> 발아 접시에 장소 씨 :시키는 씨앗이 밤새 마시다 후, 씨앗을 재현 탁과에서 1.1 ~ 1.2 % 한천 발아 판에 그들을 부어 20 ㎖ 멸균 초순수, 소용돌이를 추가 한 후, ~ 25 ㎖를 초순수로 배를 씻어 물을 부어 1.1 단계. 씨앗 플라스크에 남아있는 경우, 더 많은 물을 추가하고 다시 붓​​는다. 각 플라스크에서 한 판 (63-125 씨 / 플레이트)에 씨앗을 배포합니다. <ol><li> 씨앗을 배포 판을 소용돌이 친다. 종자는 플레이트의 일단에 4~5cm 대역 균일하게 분포되어야한다. 이 판의 &quot;최고&quot;입니다. &quot;바닥&quot;5~6cm (그림 2A) 씨의 무료 보관해야합니다. </li><li> 멸균 피펫으로 물을 그립니다. 접시의 바닥에 남아있는 물을 배수를하도록 45 ° 각도로 플레이트를 기울이십시오. 참깨에 덮개를 교체합니다테드 플레이트와 빛으로부터 보호합니다. 플레이트는 20 분을 배출 허용해야합니다. (그림 2B). </li></ol></li><li> 발아를 설정 : 멸균 피펫으로 기울어 진 판의 바닥에서 수집 한 모든 물을 제거합니다. <ol><li> 뚜껑을 교체하고 파라 필름과 플레이트를 밀봉. 장갑을 착용하고 (그림 2C) 무균 유지. </li><li> 발아 플레이트 스택 다음 90 ° 각도로 그들 모두를 켭니다. 씨앗은 한천의 수직 표면에 누워됩니다. 완전히 흡수 된 씨앗 쉽게 한천을 준수해야합니다. 뿌리는 아래 (그림 2D)으로 성장할 것입니다. </li><li> 빛을 차단하고 3 일 동안 25 ° C로 유지하기 위해 호일에 발아 판의 스택을 감싸십시오. </li></ol></li></ol> 참고 : 미만 3 일간 발아가 진행되면 뿌리가 소우주에 한천에 도달이 너무 짧은 경우 일 수 있습니다. 발아는 4 일 이상 소우주 플레이트로 전송하기 전에 진행하는 경우, 모종의 생존 것가난. 만약 M. 느린 발아 속도로 truncatula의 생태형 또는 돌연변이 비교하기 위하여, 천천히 발아 생태형은 3 일 이상 발아 할 수 있어야합니다. 2. 개인 접시 소우주의 준비 <ol><li> 각각의 소우주에 대한 Jensen의 매체 (12) (컴포지션 표 1 참조), 수 ~ 70 ml의 매체를 준비합니다. 편리한 투수 또는 플라스크에 준비 빠른 쏟아져 (투수마다 더 이상 1-2 이상의 L) 및 고압 증기 멸균시 투 자기 교반 막대를 둡니다. <ol><li> 매체 ~ 55 ~ 65 ° C의 보충이 추가 된 것으로 냉각, 및 pH가 (표 1 참조) 확인 한 후, 둥근 직경 100mm로 15mm 깊은 접시를 붓는다. 플레이트 ~ 0.9-1 cm 깊이 (~ 70 ㎖ / 플레이트) 주입해야한다. </li><li> Jensen의 매질의 성분은 흐린 침전물을 형성 할 수있다, 그래서 아웃 침강 성분을 방지하기 위해 주기적으로 자기 교반 플레이트에 투수를 반환하는 것이 중요하다. 침전물을 마주 할 수있다그들은 응고 후 접시에 호 환, 등 그들이 균등 판에 분산되므로 성능에 영향을주지 않습니다. </li><li> 접시 뚜껑에 응축의 형성을 방지하도록 붓는 도중 플레이트 스택. </li></ol></li><li> Jensen의 플레이트가 응고 한 후, U 자형 5 (그림 3A)에 구부러진 된 무게 주걱 두 접시와 뚜껑을 노치. 레드 핫, 노치 5-6 판까지 버너 주걱의 굴곡을 가열 한 후 다시 가열한다. 노치 뚜껑이 금이 간 접시에 배치되면,이 모종의 촬영 (그림 3B)를 성장할 통해 타원형 포털을 만들 것입니다. 노치 플레이트가 저장 될 경우에, 파라핀 필름으로 개별적으로 래핑 .. </li></ol> 3. Sinorhizobium의 준비 문화를 meliloti 이틀 식물 접종하기 전에, 모든 S.의 문화를 시작 meliloti 모종에 접종하는 변종. Cultu입술은 LBMC 2.5 mM의 망초, 2.5 mM의 염화칼슘, 적절한 항생제 (TY 매체도 잘 작동) 보충 (루리아 - 베르 타니 [밀러]) 매체 (13)에서 성장해야한다. 각 문화의 한 작은 2-3로 ML은 충분합니다. <ol><li> 세포 밀도가 될 때까지 2 일 동안 진탕 30 ° C에서 성장. </li><li> 대부분의 식물 접종의 경우, S.의 성장기 meliloti는 중요하지 않습니다. 일반적으로, 후반 로그인 또는 초기 정지상 세포가 사용됩니다. </li></ol> 4. M.를 세우고 개인 소우주에 truncatula 모종 <ol><li> 3 일 후에, (1 단계에서 준비) 발아 판을 열고 즉시 살균 초순수로 홍수. 딥 에탄올 및 살균하는 불꽃 간단히에 핀셋. 부드럽게 건조를 방지하기 위해 물 아래에있는 모든 모종의 뿌리 끝을 밀어 멸균 집게를 사용합니다. 뿌리는 긴 2-6센티미터 범위이다. 대부분 3 ~ 4 cm입니다. 바로 뿌리 명백한와 모종을 선택결함. </li><li> 응축의 빌드 - 업에 대한 Jensen의 매체 소우주의 뚜껑을 확인합니다. 응축을 제거하거나 새로운 노치 덮개로 교체 뚜껑 톡. 뚜껑에 응축 과잉이 있으면, 모종 뿌리 덮개에 부착 될 결로가 건조 후에 후 죽는다. </li><li> 집게를 사용하여 부드럽게 자엽에 의해 발아 판에서 모종을 선택하고 Jensen의 매체 소우주의 루트를하다. 루트 끝이 한천과 접촉해야합니다. </li><li> 여전히 존재하는 경우 조심스럽게 종피를 제거합니다. 종자 코트 5 ~ 10 분 동안 물에 몸을 담근 후 푼다. 조심스럽게이 방법을 제공 할 때까지 집게와 종피를 애타게하고 폐기. 촬영의 자엽 약 0.5 cm 플레이트 (그림 4A)에서 U-홈 밖으로 돌출한다. 조심스럽게 모종 (그림 4B)에 대한 포털을 만들어 모종에 뚜껑의 U-노치 접시의 뚜껑을 교체합니다.모든 모종이 소우주에 배치 될 때까지 수평 스택에 옆에 접시를 설정합니다. </li><li> 가능한 모양과 직선 루트가 각각의 발아 판에서 모든 모종을 사용합니다. (가능하면 그냥 접종 전에 시들지 모종 용 교체로 사용할 미개봉 모종의 한 판을 둡니다.) </li><li> 모든 모종을 레이아웃 한 후, 그들이 수평 Jensen의 소우주에 앉아 할 수있는 동안 S. meliloti 접종 현탁액을 준비하고있다. </li></ol> 5. S.의 준비 meliloti 접종 정학 <ol><li> S. 확인 그들이 성장하고 있는지 확인하기 위해 주기적으로 접종 문화를 meliloti. 이일 성장 후, OD (600)는 2와 4 사이 여야합니다. </li><li> 피펫 멸균 1.5 ML 튜브 및 펠렛 원심 분리기에 각 문화의 0.5 ML. 뜨는을 제거합니다. </li><li> 0.85 %의 NaCl 멸균 또는 살균 초순수 하나의 셀을 두 번 씻으십시오. 0.5 ml의 0.85 % 인트에 세포를 재현 탁염화나트륨 또는 초순수를 화나게. </li><li> 재현 탁 S.의 1 / 10 희석의 OD 600을 측정 단계 5.3에서 문화를 meliloti. 이 독서를 바탕으로, OD 600 = 0.05 살균 초순수의 각 문화의 현탁액을 만든다. 셀 밀도가 너무 높으면, 유괴가 억제 될 수있다. 100 ㎕를 각 모종에 접종 할 수 있도록 희석 현탁액을 충분히 확인합니다. OD 600 = 0.05 현탁액의 구름 양이 눈으로 겨우인지 할 수 있어야한다. </li></ol> 6. 예방 접종과 소우주의 씰링 <ol><li> 직전부터 예방 접종에, 젠슨의 매체 소우주로 전송 살아남은하지 않은 시들지 모종을 확인합니다. 발아 플레이트에서 신선한 모종과 그 묘목을 교체합니다. </li><li> 각각의 소우주를 열고 해당 S. 100 μl를 접종 모종의 루트에 현탁액을 meliloti. 뚜껑을 교체하고 수평 STAC에 따로6-10 소우주 캔자스. 각 S.위한 meliloti 변형이 비교되는, 적어도 15 식물을 접종. 공생의 생산성에 미묘한 차이가있을 균주의 경우, 30 ~ 35 식물을 접종. 음성 대조군으로 uninoculated 최소 10 식물을 둡니다. S.와 30-35 식물을 접종 meliloti 1021 또는 기타 적절한 야생형 균주는 양성 대조군 역할을한다. </li><li> 후 S. meliloti 서스펜션은 루트 표면에 흡착하는 시간을 가졌으며 현탁액은 한천 (20 분 이상).에 배어있다, 파라핀 필름 개별적으로 판을 감싸줍니다. 플레이트는 노치의 매우 가장자리에 싸여해야하지만, 파라핀 필름은 모종 (그림 4C)의 성장을 차단되지 않아야합니다. </li><li> 포장시에는, 접시 뚜껑의 안쪽에 부착 뿌리에 대한 최종적인 검사를한다. 뚜껑의 부착 뿌리를 제거 벤치에 플랫 플레이트를 놓고 한천 SU에 다시 아래로 뿌리를 노크 뚜껑을 누르거나 가볍게하려면rface. </li><li> 6-10 플레이트의 각 스택의 모종 포털을 라인업. 모종 (그림 4D) 위쪽을 가리키는 90 ° 각도로 스택을 놓습니다. 파라핀 필름의 끈적 거림은 모종 (그림 4E)를 등장 곳에 풀린 1-2 센티미터 지구를 떠나, 호일에서 전체 스택을 바꿈에 충분히 장소에 접시를 개최한다. 호일은 빛으로부터 뿌리를 보호 할 것입니다. </li><li> (16 시간 조명 / 8 시간 어두운주기에 21 ~ 25 ° C의 60 % ~ 70 %의 상대 습도와 100-175 μmol / m -2 -1의 빛을 조명 성장 챔버 또는 성장 방에 호일 포장 스택을 배치 그림 1A). 이러한 성장 조건에서 가벼운 수준에서 장기간 배양보다 높은 200 μmol / m -2 -1의 식물 성장에 해로운 영향을 미칠 수 있습니다. </li></ol> 7. 루트 시스템 및 공생 표현형의 정량 시험 식물에서 유지 될 수있다최대 9 주 소우주. <ol><li> 결절 번호는 각 스택에서 포일 언 래핑 및 결절 계수함으로써 일련의 시점들에서 정량화 될 수있다. S. 접종 식물에 결절 개발 meliloti 1021 야생형 접종 후 10-14일에 의해 명백하다. </li><li> 공생 생산성 또한 새로운 싹의 길이를 측정함으로써 각 시점에서 측정 될 수있다. </li><li> 공생 생산성의 최종 정량은 일반적으로 촬영을 분리하고 촬영의 신선한 무게를 측정하여 접종 후 7 주에 수행된다. 이상 성장이 요구되는 경우에는이 단계를 늦게 구주로서 수행 될 수있다. </li></ol>

<ol><li>Galibert, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+composite+genome+of+the+legume+symbiont+Sinorhizobium+meliloti%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">The composite genome of the legume symbiont Sinorhizobium meliloti.</a> Science. 293, 668-672 (2001).</li>
<li>Young, N. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Medicago+genome+provides+insight+into+the+evolution+of+rhizobial+symbioses%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">The Medicago genome provides insight into the evolution of rhizobial symbioses.</a> Nature. 480, 520-524 (2011).</li>
<li>Glazebrook, J., Walker, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+techniques+in+Rhizobium+meliloti%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Genetic techniques in Rhizobium meliloti.</a> Methods Enzymol. 204, 398-418 (1991).</li>
<li>Cheng, X., Wen, J., Tadege, M., Ratet, P., Mysore, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reverse+genetics+in+medicago+truncatula+using+Tnt1+insertion+mutants%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Reverse genetics in medicago truncatula using Tnt1 insertion mutants.</a> Methods Mol Biol. 678, 179-190 (2011).</li>
<li>Leigh, J. A., Signer, E. R., Walker, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exopolysaccharide-deficient+mutants+of+Rhizobium+meliloti+that+form+ineffective+nodules%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">Exopolysaccharide-deficient mutants of Rhizobium meliloti that form ineffective nodules.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 82, 6231-6235 (1985).</li>
<li>Wong, K. K. Y., Fortin, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Petri+Dish+Technique+for+the+Aseptic+Synthesis+of+Ectomycorrhizae%5BTitle%5D)+AND+%22Canadian+Journal+of+Botany-Revue+Canadienne+De+Botanique%22%5BJournal%5D)">A Petri Dish Technique for the Aseptic Synthesis of Ectomycorrhizae.</a> Canadian Journal of Botany-Revue Canadienne De Botanique. 67, 1713-1716 (1989).</li>
<li>Barker, D. G., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBarker%2C+DG+%22The+Medicago+truncatula+handbook%22">The Medicago truncatula handbook</a>. Mathesius, U., Journet, E. P., Sumner, L. W. , (2006).</li>
<li>Leonard, L. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Simple+Assembly+for+Use+in+the+Testing+of+Cultures+of+Rhizobia%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">A Simple Assembly for Use in the Testing of Cultures of Rhizobia.</a> J Bacteriol. 45, 523-527 (1943).</li>
<li>Trung, B. C., Yoshida, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improvement+of+Leonard+jar+assembly+for+screening+of+effective+rhizobium%5BTitle%5D)+AND+%22Soil+Sci+Plant+Nutr%22%5BJournal%5D)">Improvement of Leonard jar assembly for screening of effective rhizobium.</a> Soil Sci Plant Nutr. 29, 97-100 (1983).</li>
<li>Penmetsa, R. V., Cook, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Production+and+characterization+of+diverse+developmental+mutants+of+Medicago+truncatula%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Production and characterization of diverse developmental mutants of Medicago truncatula.</a> Plant Physiol. 123, 1387-1398 (2000).</li>
<li>Garcia, J., Barker, D. G., Journet, E. P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGarcia%2C+J+%22The+Medicago+truncatula+handbook%22">The Medicago truncatula handbook</a>. Mathesius, U., Journet, E. P., Sumner, L. W. , (2006).</li>
<li>Vincent, J. M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aVincent%2C+JM+%22A+Manual+for+the+Practical+Study+of+the+Root-Nodule+Bacteria%22">A Manual for the Practical Study of the Root-Nodule Bacteria</a>. , Blackwell. (1970).</li>
<li>Sambrook, J., Fritsch, E. F., Maniatis, T. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSambrook%2C+J+%22Molecular+cloning%3A+a+laboratory+manual%22">Molecular cloning: a laboratory manual</a>. , 2nd, Cold Spring Harbor Laboratory Press. (1982).</li>
<li>Pladys, D., Vance, C. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proteolysis+during+Development+and+Senescence+of+Effective+and+Plant+Gene-Controlled+Ineffective+Alfalfa+Nodules%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiology%22%5BJournal%5D)">Proteolysis during Development and Senescence of Effective and Plant Gene-Controlled Ineffective Alfalfa Nodules.</a> Plant Physiology. 103, 379-384 (1993).</li>
<li>Vasse, J., de Billy, F., Truchet, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Abortion+of+infection+during+the+Rhizobium+meliloti-alfalfa+symbiotic+interaction+is+accompanied+by+a+hypersensitive+reaction%5BTitle%5D)+AND+%22The+Plant+J%22%5BJournal%5D)">Abortion of infection during the Rhizobium meliloti-alfalfa symbiotic interaction is accompanied by a hypersensitive reaction.</a> The Plant J. 4, 555-566 (1993).</li>
<li>Johnson, L. E. B., Vance, C. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histological+and+Biochemical+Comparisons+of+Plant+Induced+Ineffective+Nodules%5BTitle%5D)+AND+%22Phytopathology%22%5BJournal%5D)">Histological and Biochemical Comparisons of Plant Induced Ineffective Nodules.</a> Phytopathology. 71, 884(1981).</li>
<li>Vance, C. P., Johnson, L. E. B., Hardarson, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histological+Comparisons+of+Plant+and+Rhizobium+Induced+Ineffective+Nodules+in+Alfalfa%5BTitle%5D)+AND+%22Physiological+Plant+Pathology%22%5BJournal%5D)">Histological Comparisons of Plant and Rhizobium Induced Ineffective Nodules in Alfalfa.</a> Physiological Plant Pathology. 17, 167(1980).</li>
<li>Van de Velde, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aging+in+legume+symbiosis.+A+molecular+view+on+nodule+senescence+in+Medicago+truncatula%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Aging in legume symbiosis. A molecular view on nodule senescence in Medicago truncatula.</a> Plant Physiol. 141, 711-720 (2006).</li>
<li>Jones, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+production+of+the+exopolysaccharide+succinoglycan+enhances+Sinorhizobium+meliloti+1021+symbiosis+with+the+host+plant+Medicago+truncatula%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Increased production of the exopolysaccharide succinoglycan enhances Sinorhizobium meliloti 1021 symbiosis with the host plant Medicago truncatula.</a> J Bacteriol. 194, 4322-4331 (2012).</li>
<li>Queiroux, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparative+genomics+screen+identifies+a+Sinorhizobium+meliloti+1021+sodM-like+gene+strongly+expressed+within+host+plant+nodules%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Microbiol%22%5BJournal%5D)">A comparative genomics screen identifies a Sinorhizobium meliloti 1021 sodM-like gene strongly expressed within host plant nodules.</a> BMC Microbiol. 12, 74(2012).</li>
</ol>

저자가 공개하는 게 없다.

성공을위한 중요한 프로토콜의 몇 가지 단계가 있습니다 : 1) 정제, 식물 세포 배양을 사용의 필요성은 한천은 아무리 강조해도 지나치지 않습니다 테스트. 이것은 알팔파 모종 중요하지이지만, M.의 성장에 중요 truncatula A17. 2) 1 단계에서 설명 된대로 수직 한천 플레이트에 모종을 발아하는 것이 중요합니다. 모종의 뿌리가 바로 너무 짧은 및 / 또는 일 것이다 때문에 15mm 깊이 판 (7)의 반전 수평 표면에 모종을 발아의 널리 사용되는 기술은이 프로토콜에 대한 권고하지 않습니다. 길이 2-4 ㎝의 직선 성장 뿌리 모종 소우주에 발아 플레이트에서 전송에 적합하다. 수직 발아 플레이트 성장의 세 가지 일이 길이를 달성하기 위해 일반적으로 뿌리에 이상적입니다. 3) 이전에 접종 박테리아 (Rhizobi​​a)와 모종의 오염을 방지하는 것도 중요하다. microco에 발아 판에서 모종의 양도하기 전에SMS는, 작업 영역 철저 에탄올로 세척해야하고 전송에 사용되는 모...

콩과 식물 기주 식물 개자리의 truncatula A17와 Sinorhizobium는 1021 meliloti rhizobial 박테리아 사이의 상호 작용은 루트 결절 개발 및 질소 고정 공생의 연구를위한 가장 다루기 쉬운 모델 시스템 중 하나입니다. 모두 공생 파트너의 게놈은 1,2 염기 서열을 한 식물과 박테리아 모두 유전자 조작 3,4 의무가 있습니다. 식물과 박테리아의 돌연변이 모두의 표현형 분석 결절 개발의 단계를 관찰하고 시간이 지남에 따라 공생 생산성을 정량화 할 수있는 능력을 필요로한다. 여기에서 우리는 M.의 루트 결절 개발을 관찰하는 방법을 설명합니다 이력서를 truncatula. S. 접종 Jemalong A17 표준, 둥근 직경 100mm, 15mm 깊은 실험실 접시 (그림 1A)에서 만든 각각의 소우주 내 meliloti 1021. 촬영은 접시의 측면에있는 노치 포털 (를 통해 노출 및 성장한다 FigurES 1B, 1C 및 1E). 뿌리는 소우주에 포함 된 플레이트 (그림 1D)의 뚜껑을 통해 관찰을 허용하면서, 멸균 보관됩니다. 촬영에 액세스하기 때문에, 그 성장이 제한되지 않고 루트의 무균 저하없이 주기적으로 측정 될 수있다. 노치 플레이트 소우주를 만드는 방법은 원래 알팔파 식물 성장을위한 리, 등. (5)에 의해 개발 된,하지만 널리 다른 방법에 비해 수많은 장점에도 불구하고 채택되지 않았다. 이 방법의 변형은 식물 뿌리와 mycorrhizae (6) 사이의 상호 작용의 분석을 위해 개발되었다. 우리는 지금 M.의 성장에 적응이 방법을 최적화 한 truncatula 식물. 더 일반적으로 사용되는 방법을 통해이 프로토콜의 장점은 다음과 같습니다. M.의 유괴 연구에 대한 폭 넓은 현재 사용중인 방법은 여러 가지가 있습니다 truncatula inocuS.와 lated meliloti 7. 마디가있는 뿌리의 대규모 준비를 위해 가장 일반적으로 사용되는 방법은 aeroponic 케이슨 7의 성장입니다. 이 방법에서는, 식물은 큰 용기에 일시 중단 뿌리는 S.의 혼합물로 폭기된다 meliloti 및 영양 솔루션 7. 이 방법은 실제적인 경우 S. 단 하나의 유전자형 meliloti 테스트 할 수 있습니다. 이 세균의 높은 농도의 에어로졸 화를 필요로하기 때문에, 서로 다른 박테리아 균주를 접종 케이슨 간의 교차 오염의 가능성이 높다. 종종 접종 식물의 대량 제조에 사용되는 또 다른 방법은 욕조 또는 펄라이트, 버미큘라이트, 모래 또는 양액 주입 및 S. 접종되어 소성 점토 냄비 성장이다 meliloti 7. 이 방법은 오픈 욕조 또는 포트의 사용을 필요로하고, 양액의 급수 및 보충을 필요로한다. 냄비의 또 다른 단점은 식물뿌리와 결절의 진단이 미립자 행렬에서 제거해야합니다. 이 방법의 또 다른 단점은 다양한 S. 때 인큐베이터 공간의 넓은 면적이 요구된다는 것이다 meliloti 유전자형은 별도 냄비 각 세균의 유전자형을 위해 사용되어야하기 때문에, 비교해야한다. &quot;레너드 항아리는&quot;이 방법 8,9의 변형입니다. 레너드 항아리는 하나가 다른 하나의 위에 스택 및 심지에 의해 연결된 두 개의 멸균 용기로 구성되어있다. 성장 배지는 하부 용기에 넣고, 펄라이트, 버미큘라이트, 모래 또는 상측 용기에서 하소 점토의 성장 매트릭스에 모세관 현상에 의해 심지를 통해 그려진다. 모종 (들)은 성장 행렬에 넣고 S.로 접종 meliloti. 이 방법은 물을 필요로하지 않지만, 뿌리와 결절의 검사는 모종은 입자 성장 매트릭스에서 제거해야합니다. 타나로 오의 쉬운 시험을 허용 않는 방법은 여러 가지가 있습니다TS. 이 중 하나는 투명 플라스틱 &quot;성장 주머니&quot;7입니다. 이 방법의 단점은 자주 물이 액체 배지가 M. 성장에 최적입니다 만 ≤ 10 ㎖ 때문에 필요한 것입니다 파우치 7 truncatula. 주머니 실험은 일반적으로 인해 주머니 안에 종이 심지의 고장, 2 주 ~ 7로 제한됩니다. 일반적으로 사용되는 두 가지 다른 방법은 식물이 한천에서 성장하고 뿌리를 볼 수 있습니다 것을 우리의 방법과 유사하지만, 이러한 방법은 우리의 절차는 피할 단점이 있습니다. 이러한 방법으로, 식물이 완전히 24.5 cm 다공성 외과 테이프를 맨 주위를 밀봉하거나면 마개 또는 플라스틱 캡 7 마개 한천 경사 관에서 재배 X 24.5 cm 한천 플레이트에 포함됩니다. 두 방법 모두 뿌리 쉽게 시험을 허용하고 멸균 유지 될 수있다. 그러나, 한천 기울기 튜브는 일반적으로 중간 7 한천 20 ㎖로 성장하고 물과 영양분이 필요합니다식물의 장기 성장 ddition. 24.5 cm 내에서 재배 식물은 24.5 cm 한천 플레이트 소우주 충분한 수분과 장기 성장을위한 영양분을 가지고 있지만, 성장 촬영이 빨리 동봉 판 소우주와 에틸렌 가스가 유괴 7을 억제 구축 할 수 있습니다 내에서 제한된다 x. 여기에 기술 된 절차에서, 촬영은 노출 및 장기 성장을 가능 매체 ~ 70 ㎖에 포함 축도 외측 자유롭게 성장한다. 여기에서 설명하는 절차는 콩과 식물의 유괴의 연구뿐만 아니라 다른 중간 크기의 식물의 뿌리 표현형의 연구뿐만 아니라 유용 할 수 있습니다. 이 소우주와 기존의 폴리 카보네이트 공장 조직 문화 단지의 차이는 여기에 설명 된 판의 소우주에 뿌리가 아래로 항아리의 맨 아래에있는 한천의 수평 층으로 한천의 수직 표면에 성장이 아닌 것입니다. 이 루트는 최소한의 개발과 한천 표면의 오프 해제 할 수 있습니다루트 머리와 현미경으로 루트 머리카락의 시험을 용이하게 뿌리 표면에 한천의 최소한의 접착에 amage.

<table><tbody><tr><td>한천 정제, 식물 세포 배양 테스트를 거친</td><td>Sigma</td><td>A7921</td><td></td></tr></tbody></table>

유괴와 콩과 식물의 성장을위한 단일 공장, 무균 소우주<em&gt; 개자리 truncatula</em&gt; rhizobi​​al 공생과<em&gt; sinorhizobi​​um meliloti</em

Single-plant, Sterile Microcosms for Nodulation and Growth of the Legume Plant Medicago truncatula with the Rhizobial Symbiont Sinorhizobium meliloti

Rhizobi​​al 박테리아는 호환 호스트 콩과 식물의 뿌리에 공생 질소 고정 결절을 형성한다. 이러한 상호 작용을 연구하기위한 가장 잘 개발 된 모델 시스템 중 하나는 개자리는 이력서를 truncatula 식물입니다. Jemalong A17와 rhizobial 박테리아 Sinorhizobium는 1021 meliloti. 식물 뿌리와 공생 표현형의 득점 반복 영상은 식물이나 박테리아 중 하나에 비 파괴적 방법이 필요합니다. 일부 식물 및 박테리아 변이주의 표현형 공생 성장의 상대적으로 짧은 기간 후에 명백하고, 호스트 / 공생 상호 작용의 장기 관측을 필요로하지 않는다. 그들이 득점하기 전에 그러나, 유괴 과정의 초기 단계에서 식별 할 수없는 공생의 효율성과 결절 노화 표현형에 미묘한 차이가 비교적 긴 성장 기간을 필요로합니다. 몇몇 방법들은 장기적인 성장 및이 호스트 / 공생 쌍의 관측을 위해 개발되었다.그러나, 이러한 방법의 대부분은 다른 미생물에 의한 오염의 가능성을 증가 반복 물을 필요로합니다. 다른 방법은 식물의 많은 수의 성장을 위해 상대적으로 큰 공간이 필요합니다. 상기 방법은 여기에서 M. 공생의 성장을 설명 truncatula / S. 살균, 단일 식물 소우주에 meliloti은 몇 가지 장점이 있습니다. 이 소우주에있는 식물은 물이 물을 때 교차 오염을 방지, 최대 9 주 동안 필요하지 않습니다 보장하기 위해 충분한 수분과 영양분이 있습니다. 이 표현형는 결절의 개발 및 초기 결절 노화의 미묘한 지연 등의 단기 성장 시스템에서 누락 될 수 있습니다 것을 정량화 할 수 있습니다. 업 응원 관찰 식물이 필요하지 않도록 또한, 소우주의 뿌리 결절은 쉽게 플레이트 뚜껑을 통해 볼 수 있습니다.

이 판의 소우주의 준비 및 접종 소개 참조 대부분의 다른 방법에 비해 비교적 간단하다. 이 소우주의 사용은 또한 물이나 영양 보충, 루트 불임의 유지 보수, 모두 뿌리와 빛으로부터 뿌리를 보호 쉽게 검사하지 않고 (9 주간까지) 연장 식물의 성장을 허용, 식물의 제약 성장의 촬영에 쉽게 액세스를 촬영 길이 측정 및 루트 모발 손상을 최소화 소우주에서 식물의 제거. 그림 1A는 인큐베이터에서 소우주에서 성장 어린 모종을 보여줍니다. 그림 1B-1E 쇼의 이미지 M.를 포함하는 소우주의 여러 다른보기 야생형 S. 접종 truncatula A17 식물 meliloti 1021. 단단히 포장하는 경우&gt; 220 소우주의 x 67.5 cm 인큐베이터 선반 73.8 cm에 맞는 것입니다.에 1B 및 1C 쇼 소우주 피규어포일 포장 소우주의 포털에서 신...

표준 실험실 접시에서 만든 개별 멸균 소우주의 질소 고정 박테리아 Sinorhizobium meliloti과의 공생에 개자리의 truncatula 식물의 성장 저하 불임없이 루트 시스템과 결절의 자주 검사를 허용합니다. 식물은 최대 9 주 동안 이러한 성장 챔버에서 유지 될 수있다.

유괴와 콩과 식물의 성장을위한 단일 공장, 무균 소우주<em&gt; 개자리 truncatula</em&gt; Rhizobi​​al 공생과<em&gt; Sinorhizobi​​um meliloti</em

Rhizobial  bacteria form symbiotic, nitrogen-fixing nodules on the roots of compatible host  legume plants.  One  of the most well-developed model systems ...

본 절차의 전체적인 목표는 표준 실험실 플레이트로 제작된 단일 식물 무균 마이크로코즘을 사용하여, 질소 고정 박테리아인 sino oum me latte의 서로 다른 돌연변이 변이체를 접종한 medic cargo Tula 식물의 공생 표현형을 정량화하는 것입니다. 이는 먼저 산으로 Mula, a 17 종자를 스캐리피케이션(scarifying)하고 한천 플레이트에서 종자를 발아시킴으로써 수행됩니다. 두 번째 단계는 굽은 가열 스패튤라를 사용하여 응고된 플레이트와 뚜껑에 홈을 내고 플레이트를 밀폐함으로써 단일 식물 무균 마이크로코즘을 준비하는 것입니다.나중에 측면에 타원형 구멍을 낼 것입니다. 다음으로, Mula 묘목 각각을 마이크로코즘 위에 배치하여 뿌리 끝이 agar 및 co leadin에 닿게 하고, 줄기 0.5 centimeters가 플레이트의 U자형 홈 밖으로 돌출되도록 합니다. 마지막 단계는 SME latte를 접종하고, 플레이트를 알루미늄 호일로 감싸 적층하여 조명이 있는 성장 챔버에서 배양하는 것입니다.최종적으로 식물 지상부의 길이와 무게, 그리고 뿌리혹의 유형을 정량화하여 각 S milliot 고효율 균주 또는 ULA 돌연변이체의 상대적인 공생 성공 여부를 확인합니다. 성장 파우치나 케이슨과 같이 뿌리 성장을 지속적으로 시각적 관찰할 수 있는 다른 방법들에 비해 이 기술의 주요 장점은, 서로 다른 Cy Melo 균주를 접종한 식물 간의 교차 오염 위험이 매우 적다는 것입니다. 이 방법은 서로 다른 효율로 뿌리에 침입하는 s rosa Melodi 균주 집합을 접종한 mego trica 식물의 뿌리혹 발달 시간대와 같이, Zoia legum 공생 분야의 핵심 질문들에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다.마이크로코즘의 구축과 묘목의 이식 과정은 텍스트로 설명하기 어렵기 때문에, 이 방법에 대한 시각적 시연이 매우 중요합니다. 이 절차의 시연을 돕기 위해 제 연구실의 대학원생인 Haji Mendez와 박사후 연구원인 Clotilde Caru가 함께할 것입니다. 본 절차는 M trunk aula의 멸균부터 시작됩니다.A 17 종자의 산 처리 흉터 형성법(acid scarification)을 위해, 먼저 원하는 묘종 수에 충분한 양의 종자를 칭량합니다. Mula A 17 종자는 개당 약 4 mg입니다. 종자를 멸균된 알루미늄 호일 덮개가 있는 멸균 125 mL 플라스크로 옮깁니다. 피펫을 사용하여 농축 황산을 플라스크 벽면을 따라 20 mL 넣습니다. 황산을 플라스크 벽면을 따라 넣으면 멸균되지 않은 종자와 접촉하는 플라스크 내부가 멸균됩니다.멸균된 유리 피펫을 사용하여 뭉쳐 있는 종자를 풀어줍니다. 각 플라스크를 10분에서 12분 동안 자주 흔들어 줍니다. 종자에 작은 갈색 구멍들이 나타나기 시작할 것입니다.종피에 아주 작은 구멍들이 생긴 상태로, 최소 10%의 종자에 작은 갈색 구멍이 보이거나 12분이 경과했을 때 중 먼저 도달하는 시점에 멸균 유리 피펫을 사용하여 플라스크 내의 모든 산을 제거하십시오. 플라스크를 기울여 곡선 부위에 남은 산을 모은 후, 작은 유리 피펫을 사용하여 잔류 산을 모두 제거하고 각 플라스크에 100 milliliters의 멸균 초순수를 빠르게 부어 종자를 헹구십시오. 과량의 물은 산을 희석하여 산과 물의 반응 중에 과열 및 종자 손상이 발생하는 것을 방지합니다. 물을 따라 버리고 플라스크 입구를 화염 멸균하십시오.각 플라스크에 멸균된 초순수 50 milliliters를 넣고 가볍게 흔들어 줍니다. 물을 따라 버린 후, 플라스크 입구 부분을 화염 멸균합니다. 동일한 방식으로 멸균된 초순수 50 milliliters를 다시 넣고 흔들어 줍니다.마지막 세척 후 종자를 8~10회 헹굽니다. 각 플라스크에 멸균 초순수 50 milliliters를 붓고 멸균 알루미늄 호일 덮개를 다시 씌운 후 4 °C의 암소에서 하룻밤 동안 보관합니다. 다음 날 종자가 흡수될 수 있도록 두 플라스크를 멸균 라미나 플로우 후드로 옮깁니다.공기 중의 곰팡이 포자가 가장 문제가 되는 오염원이므로, 이후 모든 단계는 반드시 멸균된 라미나 플로우 후드 내에서 수행해야 합니다. 각 플라스크에서 물을 따라내고 약 25 milliliters의 초순수로 두 번 헹굽니다. 두 번째 헹굼 후, 각 플라스크에 20 milliliters의 멸균 초순수를 넣고 흔들어 종자를 재부유시킨 다음, 1.1 내지 1.2% Agar 발아 플레이트에 종자를 붓고 플레이트를 흔들어 종자를 고르게 분산시킵니다.종자는 4~5cm 너비의 띠 형태로 고르게 분산시켜 파종해야 합니다. 플레이트의 한쪽 끝이 플레이트의 상단이 됩니다. 하단 5~6cm 부분에는 종자가 없도록 유지해야 합니다.멸균 피펫을 사용하여 물을 뽑아냅니다. 플레이트를 45도 각도로 기울인 상태로 10~20분 동안 유지하여 남은 물이 플레이트 바닥으로 흘러내리게 합니다. 그 다음, 기울어진 플레이트 바닥에 고인 모든 물을 멸균 피펫으로 제거합니다.뚜껑을 닫고 파라필름으로 플레이트를 밀봉합니다. 발아 플레이트를 쌓은 다음 모두 세웁니다. 90도 각도로 세우면 씨앗이 한천의 수직 표면에 놓이게 됩니다.완전히 흡수된 씨앗은 한천(agar)에 쉽게 부착되어야 합니다. 뿌리는 아래쪽으로 자라게 됩니다. 발아 플레이트 적층물을 알루미늄 호일로 감싸 빛을 차단하고 25 °C에서 3일 동안 유지하십시오.본 절차를 시작하려면, 함께 제공된 원고의 레시피와 지침에 따라 jenssen's medium을 준비하십시오. 배지가 식고 보충제가 첨가되었으며 pH 확인이 완료되면, 지름 100 millimeter, 깊이 15 millimeter의 원형 플레이트에 배지를 붓기 시작하십시오.플레이트의 깊이는 약 0.9~1cm가 되도록 부어야 합니다. 플레이트당 약 70mL의 배지를 사용하십시오. 플레이트 뚜껑에 응결물이 생기는 것을 방지하기 위해 붓는 동안 플레이트를 쌓아 두십시오.Jenssen 배지의 성분은 뿌연 침전물을 형성할 수 있으므로, 성분이 가라앉는 것을 방지하기 위해 주기적으로 플라스크를 마그네틱 교반기에 다시 놓는 것이 중요합니다. Jenssen 플레이트가 응고된 후, U자 모양으로 구부린 칭량 스파출라를 사용하여 플레이트와 뚜껑 모두에 노치(notch)를 만들어야 합니다. 버너로 스파출라의 굽은 부분을 빨갛게 달궈질 때까지 가열한 후, 5~6개의 플레이트에 노치를 만들고 다시 가열하여 반복하십시오. 플레이트 뚜껑에도 동일하게 노치를 만듭니다.노치형 덮개를 노치형 플레이트 위에 덮으면, 유묘의 슈트가 자라날 수 있는 타원형 포털이 생성됩니다. 앞서 설명한 대로 발아를 위해 Mula 종자를 파종하고 3일 후에, 발아 플레이트를 열고 즉시 멸균된 초순수로 가득 채웁니다. 포셉을 에탄올에 담근 후 빠르게 화염 멸균합니다.멸균 핀셋을 사용하여 모든 유묘의 뿌리 끝이 마르지 않도록 조심스럽게 물속으로 밀어 넣고, 뿌리가 곧고 뚜렷한 결함이 없는 유묘를 선택합니다. Jenssen 배지가 담긴 마이크로코즘의 뚜껑에 응결수가 맺혔는지 확인합니다. 핀셋으로 뚜껑을 튕겨 응결수를 제거합니다.발아 플레이트에서 유묘의 끝부분을 잡고 조심스럽게 꺼내어, 뿌리가 jenssen's 배지가 담긴 마이크로코즘 위에 놓이도록 합니다. 이때 뿌리 끝이 한천(agar)에 닿아 있는지 확인하십시오.종피가 여전히 남아 있다면 조심스럽게 제거하십시오. 핀셋으로 종피를 살살 떼어내어 분리한 후 버립니다. 약 0.5 centimeters의 싹이 플레이트의 U자형 홈 밖으로 돌출되어야 합니다. 뚜껑의 U자형 홈이 묘목 위에 오도록 플레이트 뚜껑을 조심스럽게 닫아, 마이크로코즘 접종 전 묘목을 위한 통로를 만듭니다. S mil latte 접종액 현탁액은 동봉된 텍스트에 설명된 대로 S mil latte 배양물로부터 준비합니다.각 현탁액을 멸균된 초순수로 희석하여 OD 600을 0.05로 맞추며, 현탁액의 탁도가 육안으로 아주 약간 보일 정도여야 합니다. 각 마이크로코즘을 열고 적절한 salvati 현탁액 100 µL를 묘목 뿌리에 접종합니다. 뚜껑을 닫고, 비교 대상인 각 SEL 균주별로 6~10개의 마이크로코즘을 가로로 쌓아 둡니다.공생 생산성의 차이가 미미한 균주의 경우 최소 15개 이상의 식물에 접종하십시오. 30~35개의 식물에 접종하되, 음성 대조군으로 사용할 식물 최소 10개는 접종하지 않은 상태로 둡니다. 양성 대조군으로 사용하기 위해 30~35개의 식물에 Esme Lata 1 0 2 1 또는 다른 적절한 야생형 균주를 접종하십시오. Esme Lata 현탁액이 뿌리 표면에 흡수되고 현탁액이 한천(agar)으로 스며들 수 있도록 최소 20분 동안 기다린 후, 각 플레이트를 파라핀 필름으로 개별적으로 감쌉니다. 플레이트는 홈(notch)의 가장자리까지 감싸야 하지만, 파라핀 필름이 묘목의 성장을 방해해서는 안 됩니다. 6~10개씩 쌓인 각 플레이트 더미의 묘목 포털(seedling portal) 위치를 일직선으로 맞춥니다.적층물을 90도 각도로 눕히고 묘목이 위를 향하게 합니다. 파라핀 필름의 점착력이 플레이트들을 고정해주므로, 묘목이 나오는 부분에 1~2cm 정도의 띠를 남기고 전체 적층물을 알루미늄 호일로 감쌉니다. 호일로 감싼 적층물을 적절한 조건으로 설정된 조명 성장 챔버 또는 성장실에 넣습니다.식물은 마이크로코즘에서 최대 9주까지 유지할 수 있습니다. 각 적층물의 알루미늄 호일을 벗겨내고 뿌리혹의 수를 세어 여러 시점별로 뿌리혹 수를 정량화할 수 있습니다. SME 1 0 2 1 야생형을 접종한 식물에서는 접종 후 10~14일이면 발달 중인 뿌리혹이 뚜렷하게 나타납니다.공생 생산성은 또한 각 시점마다 새로 돋아나는 싹의 길이를 측정하여 측정할 수 있습니다. 공생 생산성의 최종 정량화는 일반적으로 접종 7주 후에 싹을 분리하고 어린 묘목의 생체중을 측정하여 수행합니다. 이 사진에는 인큐베이터 내 마이크로코즘에서 성장 중인 모습이 나와 있습니다.촘촘하게 배치할 경우 73.8 centimeter x 67.5 centimeter 크기의 인큐베이터 선반 하나에 220개 이상의 마이크로코즘을 배치할 수 있습니다. 다음 네 개의 이미지는 Mula가 포함된 마이크로코즘의 여러 가지 모습을 보여줍니다. 야생형 S로 접종된 17개 식물이 포함된 Malta 1 0 2 1 패널 B와 C는 마이크로코즘의 포털 밖으로 식물이 자라나고 있는 호일로 감싸인 적층 상태의 마이크로코즘을 보여줍니다.식물을 방해하지 않고 마이크로코즘에서 싹이 나온 지점부터 shoot 길이를 측정할 수 있습니다. 패널 D는 호일을 제거하여 플레이트 전면을 통해 뿌리와 뿌리결절이 보이는 단일 마이크로코즘을 보여줍니다. 패널 E는 식물이 플레이트의 포털을 통해 나와 있는 상태로 평평하게 놓인 동일한 마이크로코즘을 보여줍니다.마이크로코즘 내에서의 성장은 뿌리혹 발달 및 지상부 길이의 시계열 데이터를 수집하기에 이상적입니다. 이 그래프는 emran atula의 지상부 길이 데이터를 보여줍니다. 야생형 Es Malta 1 0 2 1을 접종한 A 17 식물을 접종 후 7주 및 9주 시점에서 비접종 식물과 비교하였습니다.접종 후 9주에 지상부를 잘라내어 지상부 생체중을 측정합니다. 비접종 식물은 성장이 멈추고 황색으로 변하며, 지상부 무게가 약 0.01 g에 불과하게 됩니다. Mula에 더 효율적으로 침투하는 ssta 균주를 접종한 식물은 더 빠르게 성장하여 접종 후 9주까지 0.10 ~ 0.12 g의 무게에 도달하게 됩니다.이 그림은 접종 7주 후의 세 가지 공생 표현형 예시를 보여줍니다. 서로 다른 smeta 스트림을 접종한 MTR aula. 17 식물의 상대적 공생 생산성을 cm, m 단위의 줄기 길이와 g 단위의 줄기 생체중으로 정량화하였습니다.이식 바 위의 별표는 비쌍체 T-검정(unpaired T-test)에서 1 0 2 1 야생형 참조 균주와 통계적으로 유의미한 차이가 있음을 나타냅니다. 이 균주들을 접종한 식물의 뿌리 혹 수는 패널 C에 표시되어 있습니다. 분홍색은 혹이 기능적이며 질소 고정이 가능함을 나타내고, 작은 흰색 혹은 보통 비기능적이며, 갈색 혹은 노화 및 괴사된 상태임을 나타냅니다. 이 그림의 비교 결과, XOY ecop 모체 인산-갈락토스 포스포트랜스퍼라제(phosphate galactose phospho transferase)를 과발현하는 P-S-T-B-L-A FFR five XOY 플라스미드를 보유한 SML Lavati 1 0 2 1을 접종한 M trunk aula A 17 식물의 공생 생산성이 야생형 S me 1 0 2 1 및 음성 대조군 플라스미드 P-S-T-B-L-A-F-R five를 보유한 균주들보다 더 높음을 보여주었습니다.이러한 exo Y 과발현 균주들은 대조군 균주들보다 더 많은 공생 외당류인 SAG 글라이칸을 생성합니다. 발현되는 데 수주가 걸리는 공생 표현형의 차이를 정량화할 수 있다는 점은 모든 공생 생산성 측정 지표에 있어 이 방법이 가지는 주요한 장점입니다. MTR Aula A 17에서 Sano Zoia Medicaid 균주 WSM 4 1 9와 ABS seven은 Smeta 1 0 2 1보다 더 우수한 성능을 보였습니다. suc 및 O 글라이칸을 전혀 생성하지 않는 XO YN five null 돌연변이체를 접종한 식물은 접종하지 않은 식물과 유사한 지상부 길이 및 생체중을 보였으며, 마이크로코즘을 해체하고 지상부 생체중을 측정하는 시점에서 비효율적인 뿌리혹만을 생성하였습니다. 지상부는 제거될 수도 있습니다.M trunk atula의 대표적인 뷰를 이미지화한 것입니다. 마이크로코즘에서 제거된 17개의 뿌리가 이 그림에 나타나 있습니다. 패널 A와 B는 접종 후 10일째의 이미지이며, 패널 C는 접종 후 14일째의 이미지입니다. 각 이미지의 막대는 100 microns에 해당합니다.여기에 제시된 뿌리들은 smeta 1 0 2 1 야생형, egg, C Gus Fusion을 보유한 smeta 균주, 그리고 SMC 0 0 9 1 1 Gus Fusion을 보유한 smeta 균주를 각각 접종한 것입니다. 패널 C에서 SMC 0 0 9 1 1 Gus fusion을 보유한 STI 세포의 Gus 염색 결과가 뿌리털과 뿌리 표면에서 관찰됩니다. 이 절차를 수행할 때는 묘목의 뿌리가 항상 한천(agar)과 접촉 상태를 유지하도록 하는 것이 중요합니다.각 공생 표현형과 관련된 해부학적, 생리학적 및 유전자 발현의 차이를 분석하기 위해, 단면 절편 제작 및 뿌리혹 염색과 같은 다른 방법들과 뿌리 및 뿌리혹으로부터의 총 RNA 추출을 수행할 수 있습니다. 이 영상을 시청한 후에는 종자 발아, 마이크로코즘 준비 및 유묘 접종을 포함하여 Mego Tula Sino Rosa Melo 공생 관찰을 위한 단일 식물 무균 마이크로코즘 설정 방법을 충분히 이해하게 될 것입니다.

single-plant-sterile-microcosms-for-nodulation-growth-legume-plant

Research

연구

JoVE Journal

Environment

환경

털이 루트 복합 식물이 어려운 변환 종의 식물 rhizobi​​um 상호 작용과 유괴를 공부하는 데 사용할 수있는 방법을 우리가...

의 복합 식물의 생성 Medicago truncatula 유괴의 Assays 사용

루트 매듭 nematodes있는 화면 식물 별개의 두 가지 방법이 설명되어 있습니다. 설명한 방법은 번식 프로그램에서 이러한 식물의 이용을 촉진 비파괴 방식으로 nematodes과 높은 처리량 화면을 포함합니다.

루트 - 매듭 Nematodes과 높고 낮은 처리량 화면 Meloidogyne SPP.</em

질량 분석 영상 (MSI)은 생물 학적 과정에 새로운 통찰력을 제공 할 수있는 자신의 네이티브 환경에서 화합물을 보존, 그대로 조직에서 다양한 화학 종을 발견하고 식별하는 데 사용할 수있는 강력한 도구입니다. 여기서 작은 분자의 분석을 위해 개발 MSI 방법이 설명된다.

의 대사 산물의 조사를위한 MALDI-질량 분석 이미징<em&gt; 개자리 truncatula</em&gt; 루트 결절

목표는 콩과 식물이 아닌 애기장대 모델을 보완하기 위해 초기 식물 배아 발생의 조절을 조사하는 데 모델 콩과 식물 Medicago truncatula를 쉽게 사용할 수 있음을 설명하는 것입니다. 포드 형태학은 접합 배발생 단계와 관련이 있으며 조직 배양을 사용하여 배아를 수집하는 프로토콜도 제공됩니다.

모델 콩과 식물에서 초기 배아 발달의 규정 유학을위한 접합체 및 체세포 배아를 얻기위한 프로토콜<em&gt; Medicago truncatula</em

발기인 식 분석은 유전자 규정의 이해 및 대상 유전자의 spatiotemporal 식 개선에 중요 한. 여기 우리는 식별, 격리, 식물 발기인을 복제 하는 프로토콜을 제시. 또한, 우리는 일반적인 콩 털이 뿌리에 결 절 특정 발기인의 특성을 설명합니다.

식물 발기인 분석: 식별 및 일반적인 콩에서 루트 결 절 특정 발기인의 특성

이 프로토콜에 복사 번호 유사의 전체 게놈 배열 기반 비교 genomic 교 잡 (CGH) 분석 수행에 관심이 있는 연구자에 대 한 실험 단계 및 시 약, 장비, 및 분석 도구에 대 한 정보 제공 식물입니다.

어레이 기반 비교 Genomic 교 잡 플랫폼 효율적인 탐지의 복사 번호 유사 빠른 중성자 유도 개자리속 truncatula 돌연변이에 대 한

여기, 우리는 토양, rhizosphere, 및 루트 endosphere microbiomes amplicon 시퀀스 데이터를 얻기 위해 프로토콜을 설명 합니다. 이 정보 구성 및 플랜트 관련 미생물 커뮤니티의 다양성을 조사 하는 데 사용할 수 있습니다 그리고 다양 한 종의 식물 사용에 적합.

루트 미생물 탐색: 토양, Rhizosphere, 및 루트 Endosphere에서 세균성 지역 사회 데이터 추출

Parasponia andersonii는 대마초 가족 (칸 나바세아)에 속하는 빠르게 성장하는 열대 나무이며, rhizobium와 관련하여 질소 고정 뿌리 작은 혹을 형성 할 수 있습니다. 여기에서, 우리는 Agrobacterium tumefaciens-중재된 안정한 변환 및 CRISPR/Cas9 기지를 둔 게놈 편집에 근거를 둔 P. andersonii에 있는 역유전 분석을 위한 상세한 프로토콜을 기술합니다.

질소 고정 열대 카나바세아 나무 파라스포니아 앤더슨이 변형, 게놈 편집 및 현상형 화

이 프로토콜은 균근 진균으로 발아된 식물 조직 및 종자에서 진균 집락을 연구하기 위해 주사 및 투과 전자 현미경, 빛, 공초점 및 형광 현미경과 같은 다양한 현미경 기술을 적용하여 진균종속영양 식물 샘플을 수집, 고정 및 유지하기 위한 자세한 절차를 제공하는 것을 목표로 합니다.

균종속영양 식물 조직의 곰팡이 집락화 및 종자의 공생 발아를 해석하기 위한 현미경 기술

이 프로토콜은 온전한 대두 결절로부터 진핵 폴리솜 정제를 위한 방법을 기술한다. 시퀀싱 후, 유전자 발현 분석을 위한 표준 파이프라인을 사용하여 전사체 및 트랜스라톰 수준에서 차등적으로 발현된 유전자를 식별할 수 있습니다.

대두 공생 결절에서 폴리솜 정제

학습하세요 Medicago truncatula와 Sinorhizobium meliloti의 근류균 공생을 단일 무균 소우주에서 관찰하는 방법을. 산 처리 후 종자 발아, 배양 접종, 9주간 무균 유지 기술을 익혀 식물-미생물 상호작용 연구에 활용하세요.

유괴와 콩과 식물의 성장을위한 단일 공장, 무균 소우주

더 많은 동영상 탐색