Name: 시투에서 액체에 있는 생물학 어셈블리의 TEM (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-12-30T20:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 28 s
Description: 학습하세요 액체 환경에서 바이러스 복합체를 나노미터 해상도로 관찰하는 TEM 영상화 방법을. 친화성 포획 표면을 이용해 생물학적 어셈블리의 동적 거동을 연구할 수 있습니다.

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저자는 우리의 연구 노력을 장려하기위한 버지니아 기술 캐릴리온 연구소의 이사 마이클 J. 프리들랜더 박사를 인정합니다. 이 프로젝트는 S.M.M 및 D.F.K.에 대한 개발 기금에 의해 지원되었으며 버지니아 공대의 중요 기술 및 응용 과학 연구소의 나노 바이오 이니셔티브에 의해 부분적으로 지원되었습니다.

1. 선호도 캡처 장치 준비장치16
<ol><li>실리콘 질화물 E 칩을 15 ml의 아세톤으로 2 분 동안 배양하고 2 분 동안 메탄올 15 ml(그림 1A)를청소하십시오. 칩이 라미나르 공기 흐름 아래에서 건조하도록 허용합니다.</li>
	<li>150°C에서 1.5시간 동안 가열된 교반판에 말린 칩을 배양한 다음 사용하기 전에 실온으로 식힙니다.</li>
	<li>해밀턴 주사기를 사용하여 작은 유리 튜브에 지질 혼합물을 구성하여 25 % 클로로폼을 함유하고, 클로로폼(1mg/ml)의 55%의 DLPC(1,2-딜라우로일-인포콜린)와 20% Ni-NTA 지질(1,2-디오틸-이미노이아세트산-succinyl-니켈 소금)을 총 40μl의 부피량에 대해 클로로폼(1 mg/ml)이다.</li>
	<li>습한 페트리접시(그림 1B)에서파라필름 조각에 밀리-Q 물 15μl 방울에 혼합물의 1 μl 알리쿼트를 적용한다. 얼음에 샘플을 60분 이상 배양합니다.</li>
</ol>2. 매크로 분자 캡처17
<ol><li>단층 샘플 위에 150 nm 통합 스페이서가 있는 E 칩을 1분 동안 배양한다(그림1C).</li>
	<li>시료의 칩을 부드럽게 들어 올리고 실온에서 1 분 동안 그의 태그 된 단백질 A. 인큐베이터의 3 μl 알리쿼트(그림 1D)를추가합니다.</li>
	<li>Whatman #1 필터 용지를 사용하여 초과 낙하를 블롯하고 즉시 항체 용액의 3 μl 알리쿼트를 추가합니다. 실온에서 1분 동안 배양하십시오.</li>
	<li>해밀턴 주사기를 사용하여 초과 용액을 제거하고 즉시 50mM HEPES (pH 7.5), 150 mM M NaCl, 10mM MgCl2 및 10mM CaCl2를포함하는 버퍼 용액에 로타 바이러스 DLP (0.1 mg /ml)의 1 μl 알리쿼트를 추가합니다. 실온에서 최소 2분 동안 배양하십시오. DlP의 준비는 이전에 설명되었습니다18.
</li>
</ol>3. 미세 유체 챔버를 조립하고 시투 시편 홀더를 로드
<ol><li>바이러스 성 시료를 포함하는 젖은 E 칩을 미세 유체 표본 홀더의 끝에 적재합니다. 제2 플랫 E-칩을 1분 동안 발광한 다음 스페이서 칩 위에 적재합니다(그림2, 패널 1-5).</li>
	<li>대안적으로, 생물학적 거대분자의 대비를 높이기 위해 중금속얼룩(예를 들어 0.2% uranyl formate)은 습식 시편에 제2 E칩을 배치하기 전에 습식 시편에 첨가될 수 있다. 그러나 시편을 함유한 E-칩은 대비 시약을 추가하기 전에 밀리-Q 물로 세척해야 합니다.</li>
	<li>전체 어셈블리를 함께 샌드위치하여 3개의 황동나사(그림 2,패널 6-8)로 홀더 내에서 기계적으로 제자리에 고정된 밀봉된 인클로저를 형성합니다.</li>
	<li>조립 후 홀더의 끝은 TEM 내부에 홀더를 배치하기 전에 터보 펌핑 건조 펌핑 스테이션을 사용하여10-6 Torr로 펌핑됩니다.</li>
</ol>4. 전송 전자 현미경을 사용하여 액체에서 이미징
<ol><li>LaB6 필라멘트가 장착된 전송 전자 현미경(FEI Company)에 시투 시편 홀더를 적재하고 120kV에서 작동합니다.</li>
	<li>TEM 필라멘트를 켜고 보블러 기능을 사용하여 시편과 관련하여 현미경 단계의 유중심 높이를 조정하여 컬럼에서 -15°에서 +15°로 샘플을 기울이고 있습니다. 이 절차는 액체 챔버의 적절한 두께를 설명하기 위해 z 방향으로 스테이지를 조정합니다. 또한 이 단계는 이미지를 기록할 때 정확한 배율이 사용되도록 합니다.</li>
	<li>먼저 미세 유체 챔버의 가장자리와 모서리 영역에 이미지를 기록합니다. 이러한 영역에는 일반적으로 가장 얇은 솔루션이 포함됩니다. CCD 카메라를 사용하여 저용량 조건(1-3 전자/Å2)에서표본의 이미지를 기록합니다. 명목 배율을 6,000X - 30,000X로 사용하십시오.</li>
	<li>유체 챔버의 가장자리에 초점을 맞추어 적절한 디포커스 값을 결정합니다. -1.5 μm값을 사용하여 30,000배율로 이미지를 기록합니다. 두꺼운 용액이 발생하거나 시편 제조에 조영제가 사용되지 않는 경우 -2 ~ -4 μm 범위에서 더 높은 디포커스 값을 사용합니다.</li>
	<li>용액이 실험 전반에 걸쳐 미세 유체 챔버에 포함되도록 하기 위해 장치 내의 액체에 기포가 형성될 때까지 전자 빔에 초점을 맞춥니다.</li>
</ol>

<ol><li>Zhou, Z. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Towards+atomic+resolution+structural+determination+by+single-particle+cryo-electron+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Struct.+Biol%22%5BJournal%5D)">Towards atomic resolution structural determination by single-particle cryo-electron microscopy.</a> Curr. Opin. Struct. Biol. 18, 218-228 (2008).</li>
<li>Wolf, M., Garcea, R. L., Grigorieff, N., Harrison, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subunit+interactions+in+bovine+papillomavirus%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Subunit interactions in bovine papillomavirus.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 6298-6303 (2010).</li>
<li>Dubochet, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cryo-electron+microscopy+of+vitrified+specimens%5BTitle%5D)+AND+%22Q.+Rev.+Biophys%22%5BJournal%5D)">Cryo-electron microscopy of vitrified specimens.</a> Q. Rev. Biophys. 21, 129-228 (1988).</li>
<li>Unwin, P. N., Henderson, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+structure+determination+by+electron+microscopy+of+unstained+crystalline+specimens%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Molecular structure determination by electron microscopy of unstained crystalline specimens.</a> J. Mol. Biol. 94, 425-440 (1975).</li>
<li>Ohi, M., Li, Y., Cheng, Y., Walz, T. Negative Staining and Image Classification - Powerful Tools in Modern Electron Microscopy. Biol. Proced. Online. 6, 23-34 (2004).</li>
<li>Adrian, M., Dubochet, J., Fuller, S. D., Harris, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cryo-negative+staining%5BTitle%5D)+AND+%22Micron%22%5BJournal%5D)">Cryo-negative staining.</a> Micron. 29, 145-160 (1998).</li>
<li>Parsons, D. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structure+of+wet+specimens+in+electron+microscopy.+Improved+environmental+chambers+make+it+possible+to+examine+wet+specimens+easily%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Structure of wet specimens in electron microscopy. Improved environmental chambers make it possible to examine wet specimens easily.</a> Science. 186, 407-414 (1974).</li>
<li>Parsons, D. F., Matricardi, V. R., Moretz, R. C., Turner, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electron+microscopy+and+diffraction+of+wet+unstained+and+unfixed+biological+objects%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.+Biol.+Med.+Phys%22%5BJournal%5D)">Electron microscopy and diffraction of wet unstained and unfixed biological objects.</a> Adv. Biol. Med. Phys. 15, 161-270 (1974).</li>
<li>Hui, S. W., Parsons, D. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electron+diffraction+of+wet+biological+membranes%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Electron diffraction of wet biological membranes.</a> Science. 184, 77-78 (1974).</li>
<li>Hui, S. W., Parsons, D. F., Cowden, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electron+diffraction+of+wet+phospholipid+bilayers%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Electron diffraction of wet phospholipid bilayers.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 71, 5068-5072 (1974).</li>
<li>Ring, E. A., de Jonge, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+system+for+transmission+electron+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Microsc.+Microanal%22%5BJournal%5D)">Microfluidic system for transmission electron microscopy.</a> Microsc. Microanal. 16, 622-629 (2010).</li>
<li>Dukes, M. J., Ramachandra, R., Baudoin, J. P., Gray Jerome, W., de Jonge, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-dimensional+locations+of+gold-labeled+proteins+in+a+whole+mount+eukaryotic+cell+obtained+with+3nm+precision+using+aberration-corrected+scanning+transmission+electron+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Struct.+Biol%22%5BJournal%5D)">Three-dimensional locations of gold-labeled proteins in a whole mount eukaryotic cell obtained with 3nm precision using aberration-corrected scanning transmission electron microscopy.</a> J. Struct. Biol. 174, 552-562 (2011).</li>
<li>Yuk, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-resolution+EM+of+colloidal+nanocrystal+growth+using+graphene+liquid+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">High-resolution EM of colloidal nanocrystal growth using graphene liquid cells.</a> Science. 336, 61-64 (2012).</li>
<li>Peckys, D. B., de Jonge, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualizing+gold+nanoparticle+uptake+in+live+cells+with+liquid+scanning+transmission+electron+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Nano+Lett%22%5BJournal%5D)">Visualizing gold nanoparticle uptake in live cells with liquid scanning transmission electron microscopy.</a> Nano Lett. 11, 1733-1738 (2011).</li>
<li>Klein, K. L., Anderson, I. M., de Jonge, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transmission+electron+microscopy+with+a+liquid+flow+cell%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Microsc%22%5BJournal%5D)">Transmission electron microscopy with a liquid flow cell.</a> J. Microsc. 242, 117-123 (2011).</li>
<li>Degen, K., Dukes, M., Tanner, J. R., Kelly, D. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+development+of+affinity+capture+devices-a+nanoscale+purification+platform+for+biological+in+situ+transmission+electron+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Rsc.+Adv%22%5BJournal%5D)">The development of affinity capture devices-a nanoscale purification platform for biological in situ transmission electron microscopy.</a> Rsc. Adv. 2, 2408-2412 (2012).</li>
<li>Gilmore, B. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualizing+viral+assemblies+in+a+nanoscale+biosphere%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Visualizing viral assemblies in a nanoscale biosphere.</a> Lab Chip. 13, 216-219 (2013).</li>
<li>Bican, P., Cohen, J., Charpilienne, A., Scherrer, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purification+and+characterization+of+bovine+rotavirus+cores%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">Purification and characterization of bovine rotavirus cores.</a> J. Virol. 43, 1113-1117 (1982).</li>
<li>Frank, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SPIDER+and+WEB%3A+processing+and+visualization+of+images+in+3D+electron+microscopy+and+related+fields%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Struct.+Biol%22%5BJournal%5D)">SPIDER and WEB: processing and visualization of images in 3D electron microscopy and related fields.</a> J. Struct. Biol. 116, 190-199 (1996).</li>
<li>Zhang, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Near-atomic+resolution+using+electron+cryomicroscopy+and+single-particle+reconstruction%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Near-atomic resolution using electron cryomicroscopy and single-particle reconstruction.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 1867-1872 (2008).</li>
<li>Scheres, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Bayesian+view+on+cryo-EM+structure+determination%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">A Bayesian view on cryo-EM structure determination.</a> J. Mol. Biol. 415, 406-418 (2012).</li>
<li>Kelly, D. F., Abeyrathne, P. D., Dukovski, D., Walz, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Affinity+Grid%3A+a+pre-fabricated+EM+grid+for+monolayer+purification%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">The Affinity Grid: a pre-fabricated EM grid for monolayer purification.</a> J. Mol. Biol. 382, 423-433 (2008).</li>
</ol>

저자, 매들린 J. 듀크스, 프로토 칩스의 직원입니다, Inc.

제시된 작업에서, 우리는 마이크로 유체 플랫폼에 밧줄 로타 바이러스 DLP에 친화성 캡처 접근 방식을 채택했다. 이것은 액체 미세 환경에서 매크로 분자 복합체의 시상 화상 진찰에서 허용했습니다. 포획 접근법은 다른 미세 유체 이미징 기술과 관련하여 중요한데, 이는 액체에서 이미지를 기록하는 동안 발생하는 큰 확산 문제를 부정하기 위해 이미징 창에 생물학적 표본을 국소화하기 때문입니다. 그러나, 우리의 프로토콜에서 가장 중요한 단계 중 하나는 마이크로 칩 표면에 지질 생물막의 전송을 포함한다. 지질 단층이 그리드 위로 고르게 퍼지지 못하면 결함이 있는 실험이 발생합니다. 가난한 전송 단계의 표시는 거의 또는 전혀 바이러스 성 어셈블리 는 유체 칩에 바인딩됩니다. 이송 단계의 한계는 지질 층의 유동성에 관한 열 안정성이다. 이송 단계가 부적절한 경우, 드롭의 고르지 않은 확산에 의해 평가, 지질 층은 더 이상 얼음또는 진동없는 차가운 방에서 인큐베이션해야합니다...

<a href="https://app.jove.com/t/6605">This corrects</a> the article <a href="https://dx.doi.org/10.3791/50936">10.3791/50936</a>

An erratum was issued for:&#160;<a href="https://www.jove.com/t/50936">In situ TEM of Biological Assemblies in Liquid</a>. The Representative Results and References sections were&#160;updated.

Erratum: In situ TEM of Biological Assemblies in Liquid

생물학자와 엔지니어의 공통된 목표는 분자 기계의 내부 작동을 이해하는 것입니다. 전송 전자 현미경 (TEM)은 거의 원자 해상도1-2에서이러한 복잡한 세부 사항을 시각화하기에 이상적인 도구입니다. TEM의 높은 진공 시스템을 유지하기 위해, 생물학적 샘플은 전형적으로 유리체3,설탕4,중금속 염5,또는 그일부조합6의 박막에 내장되어 있다. 따라서 임베디드 표본의 이미지는 동적 프로세스의 제한된 스냅샷만 나타낼 수 있습니다.
환경 액체 챔버에서 수화 된 생물학적 표본을 유지하기 위한 초기 시도는 파슨스와 동료들이 차동 펌핑 단계를 사용하여 수행되었습니다. 스테인드 카탈라제 결정의 전자 회절 패턴은7-8수화 상태에서 3Å의 해상도로 성공적으로 기록되었다. 또한, 위상 분리지질 도메인은 인간 적혈구9-10의수화 막에서 검사될 수 있었다. 그러나, 액체를 확산시키고 전자빔과의 간섭으로 인한 움직임은, 생물학적 표본을 이용한 심한 분해능 손실 및 추가 실험이 최근까지 시도되지 않았다.
새로 개발된 미세유체 표본 홀더는 반도체 마이크로칩을 활용하여 마이크로 스케일환경챔버를 형성하는 것으로 소개되었습니다. 이러한 장치는 TEM 컬럼11-12에위치하는 동안 액체로 샘플을 유지할 수 있습니다. TEM 이미징의 이러한 기술적 돌파구는 연구자들이 분자 수준13에서처음으로 진보적인 사건을 볼 수 있게 해 주어 왔다. 우리는 실험이 이제 EM 컬럼14-15를"내부"수행 할 수 있으므로"시투 분자 현미경 검사법에서"로이 새로운 양식도를 지칭한다. 이 방법의 전반적인 목표는 나노미터 해상도에서 그들의 동적 행동을 관찰하기 위하여 액체에 있는 생물학 어셈블리를 심상하는 것입니다. 개발 된 기술의 근거는 실시간 관찰을 기록하고 용액에서 생물학적 기계의 새로운 특성을 검사하는 것입니다. 이 방법론은 세포 및 분자 생물학12-16에서더 넓은 목적을 위해 TEM의 사용을 확장합니다.
현재 비디오 문서에서는 시판되는 미세 유체 표본 홀더를 조립하고 사용하는 포괄적인 프로토콜을 제시합니다. 이 전문 홀더는 통합 스페이서로 생성된 실리콘 트랜티드 마이크로칩을 사용하여 미세량의 용액을 둘러싸는 액체 챔버를 형성합니다. 얇고 투명한 창문은 이미징 목적을 위해 마이크로칩에 새겨져있다(12). 우리는 TEM을 사용하여 액체에 있는 simian rotavirus 이중 층 입자 (DlPs)를 검사하기 위하여 미세 유체 홀더의 적당한 사용을 보여줍니다. DP와 같은 생물학적 어셈블리가 이미징 하는 동안 먼 거리에서 빠르게 확산되지 않도록 하기 위해, 우리는 미세 유체챔버(16)의표면에 그들을 묶기 위해 선호도 캡처 접근법을 채택한다. 이 분자 포획 단계는 다운스트림 처리 루틴에 사용될 이미지의 수집을 허용하기 때문에 액체에서 생물학적 표본을 이미징하기위한 대체 기술에 비해 주요 이점이 있습니다. 미세 유체 이미징과 함께 사용되는 이 캡처 단계는 당사의절차(17)에고유합니다. TEM 또는 미세 유체 이미징 챔버를 사용하여 구조 생물학 응용 프로그램을 사용하는 독자는 분자 수준에서 동적 관찰이 최종 목표일 때 친화성 캡처 기술의 사용을 고려할 수 있습니다.

<table><tbody><tr><td>전자 칩, 스페이서 칩</td><td>Protochips, Inc.</td><td>EPB-52TBD</td><td>400 &뮤; m x 50 &뮤; m 창</td></tr><tr><td>전자 칩, 최고 칩</td><td>Protochips, Inc.</td><td>EPT-45W</td><td>400 &뮤; m x 50 &뮤; m 창</td></tr><tr><td>Ni-NTA 지질</td><td>Avanti Polar Lipids</td><td>790404P</td><td>분말 형태</td></tr><tr><td>DLPC (12:0) 지질</td><td>Avanti Polar Lipids</td><td>850335P</td><td>분말 형태</td></tr><tr><td>부피 플라스크&nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>20-812A; 20-812C</td><td>1 ml; 5 ml&nbsp;</td></tr><tr><td>해밀턴 주사기</td><td>Hamilton Co.</td><td>80300, 80400</td><td>1-10 &뮤; l; 1-25 &뮤; l</td></tr><tr><td>Whatman #1 여과지</td><td>Whatman</td><td>1001 090</td><td>100개, 90mm</td></tr><tr><td>유리 페트리 접시</td><td>Corning</td><td>70165-101</td><td>100mm x 15mm</td></tr><tr><td>유리 파스퇴르 피펫</td><td>VWR</td><td>14673-010</td><td>14673-010</td></tr><tr><td>유리 배양 튜브</td><td>VWR</td><td>47729-566</td><td>6mm x 50mm</td></tr><tr><td>아세톤</td><td>Fisher Scientific</td><td>A11-1</td><td>1L</td></tr><tr><td>메탄올</td><td>피셔 사이언티픽</td><td>A412-1</td><td>1 L</td></tr><tr><td>클로로포름&nbsp;</td><td>전자 현미경 과학</td><td>12550</td><td>100 ml&nbsp;</td></tr><tr><td>그의 태그가 붙은 단백질 A</td><td>Abcam, Inc.</td><td>ab52953</td><td>10 mg</td></tr><tr><td>Milli-Q 급수 시스템</td><td>EMD Millipore Corp.</td><td>Z00QSV001</td><td>초순수</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>피셔 사이언티픽</td><td>BP310-500</td><td>500 g</td></tr><tr><td>장비&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>포세이돈 In situ 표본 홀더</td><td>Protochips, Inc.</td><td></td><td>&nbsp; FEI 호환 FEI</td></tr><tr><td>스피릿 바이오트윈 TEM</td><td>FEI Co.</td><td></td><td>120 kV</td></tr><tr><td>독수리 2k HS CCD 카메라</td><td>FEI Co.</td><td></td><td>10&nbsp; &Aring;/픽셀 샘플링 at 30,000X</td></tr><tr><td>Gatan 655 Dry pump station</td><td>Gatan, Inc.</td><td></td><td>펌프 홀더 팁을 10-6&nbsp; range</td></tr><tr><td>PELCO easiGlø, 글로우 방전 장치</td><td>Ted Pella, Inc.</td><td></td><td>&nbsp; 음극 모드</td></tr><tr><td>Isotemp 가열 교반 플레이트</td><td>Fisher Scientific</td><td></td><td>Heat to 150 &ordm; C 1.5</td></tr></tbody></table>시간

시투에서 액체에 있는 생물학 어셈블리의 tem

In situ TEM of Biological Assemblies in Liquid

연구원은 정기적으로 전염 전자 현미경 (TEM)을 사용하여 생물학적 개체를 검사하고 새로운 물질을 평가합니다. 여기서는 액체 환경에서 이러한 계측기-바이러스 성 어셈블리를 볼 수 있는 추가 응용 프로그램에 대해 설명합니다. 생물학적 구조를 시각화하는 이 흥미롭고 새로운 방법은 최근에 개발된 미세 유체 기반 표본 홀더를 활용합니다. 비디오 기사에서는 미세 유체 홀더를 조립하고 사용하여 TEM 내에서 액체 표본을 이미지화하는 방법을 보여 줍니다. 특히, 우리는 우리의 모델 시스템으로 시미안 로타 바이러스 이중 층 입자 (DlP)를 사용합니다. 우리는 또한 보기 창에 DLP를 묶는 친화성 생물막으로 액체 챔버의 표면을 코팅하는 단계를 설명합니다. 이렇게 하면 3D 구조 결정에 적합한 방식으로 어셈블리를 이미지할 수 있습니다. 따라서, 우리는 네이티브 액체 환경에서 서브 바이러스 입자의 첫 번째 엿볼을 제시한다.

광분 방출된 E칩을 이용한 액체의 DlP의 대표적인이미지(그림 3A)는선호도 캡처 장치(그림3B)에농축된 DlP에 비해 확산으로 인한 특정 보기 영역에서 더 적은 DP를 보여준다. 이미징 챔버에 우라알 수감자를 첨가하면 시편의 대비를 향상시키고 따라서 용액에서 개별 DlP의가시성(도 3C,상단 패널). 더 나은 콘트라스트는 이전에 설명된17과같이 입자평균(도 3C,하단 패널) 및 3D 재구성 루틴(도3C,인셋)과 같은 다운스트림 이미지 처리를 가능하게 한다. 간단히, 3D 재구성을 위해 우리는 SPIDER 소프트웨어패키지(19)를사용하여 600개의 DP 입자를 선택했습니다. 선택된 입자는 80Å 해상도로 여과된 로타바이러스DLP(20)의 초기 모델에 대해 정제되었다. 우리는 RELION 소프트웨어 패키지(21)를...

여기서는 투과 전자 현미경을 이용하여 나노미터 해상도로 액체에 바이러스 성 복합체를 이미지화하는 절차를 설명합니다.

시투에서 액체에 있는 생물학 어셈블리의 TEM

Researchers regularly use Transmission Electron Microscopes (TEMs) to examine biological entities and to assess new materials. Here, we describe an ...

이 절차의 전반적인 목표는 나노미터 해상도로 동적 거동을 관찰하기 위해 생물학적 어셈블리와 액체를 이미징하는 것입니다. 이를 위해 우선 친화성 캡처 표면이 있는 질화규소 마이크로칩을 준비하여 거대분자가 마이크로칩 표면에 결합될 수 있도록 함으로써 액체 내에서의 확산을 방지합니다. 두 번째 단계는 로타바이러스 입자를 모집하기 위해 생물학적 샘플을 마이크로칩에 로딩하는 것입니다.다음으로, 바이러스 입자가 포함된 마이크로칩을 대조제로 세척한 후 미세유체 시료 홀더에 장착합니다. 마지막 단계는 상단 칩과 페이스 플레이트를 장착하여 액체 시료를 둘러싸는 밀폐 용기를 형성하는 것입니다. 최종적으로, TEM으로 이미지를 기록하여 액체 마이크로 챔버 내 바이러스 시료의 특징을 확인합니다.액체 내의 개체를 관찰하는 기존의 다른 방법들에 비해 이 기술이 갖는 주요 장점은, 마이크로칩에 적용된 친화성 포획 코팅 덕분에 이미징 과정 중 시료가 먼 거리로 빠르게 확산되지 않는다는 점입니다. 이 기술의 영향력은 나노입자 기반의 약물 전달 시스템이나 바이러스성 병원체에 대응하는 백신 개발의 실시간 평가로 확장될 수 있는데, 이는 용액 내에서 역동적인 나노 머신이 어떻게 변화하는지를 처음으로 관찰할 수 있기 때문입니다. 이 방법은 생물학적 거대 분자의 시각화에 대한 통찰을 제공할 뿐만 아니라, 전기화학 응용 분야와 같은 다른 시스템에도 적용될 수 있습니다.이 방법의 시각적 시연은 매우 중요합니다. 친화성 캡처 장치를 준비하고 마이크로플루이딕 시편 홀더를 장착하는 과정이 초보 사용자에게는 어려울 수 있기 때문입니다. 먼저, 실리콘 질화물 칩을 15 milliliters의 아세톤에 2분 동안 담가 세척한 후, 이어서 15 milliliters의 메탄올에 2분 동안 담가 세척하십시오.제조 공정에서 사용된 잔류 포토레지스트를 제거하기 위해, 칩을 층류 공기 흐름 하에서 빠르게 건조시킵니다. 건조가 완료되면 150 °C로 가열된 플레이트 위에서 칩을 1.5시간 동안 배양합니다. 그 다음 실온으로 식힙니다.다음으로, Hamilton 시린지를 사용하여 소형 유리 튜브에 지질 혼합물을 조제합니다. 먼저 25% chloroform을 첨가한 후, 1 mg/mL 농도의 chloroform 내 DLPC를 55% 첨가합니다. 마지막으로, 별도의 시린지를 사용하여 1 mg/mL 농도의 chloroform 내 nickel NTA lipid를 20% 첨가하여 총 부피를 40 µL로 맞춥니다.그 다음 100 x 15 mm 유리 페트리 접시 내부에 맞게 파라필름 조각을 잘라 넣고, 파라필름 표면에 15 µL의 Milli Q water를 아홉 방울 떨어뜨립니다. 각 15 µL의 Milli Q water 방울 위에 지질 혼합물 1 µL를 가한 후, 방울 표면에 지질 단분자층이 형성될 수 있도록 습한 환경의 얼음 위에 플레이트를 60분 이상 둡니다. 150 nm 통합 스페이서가 있는 EIP를 단분자층 방울 위에 놓고 1분 동안 함께 배양합니다.다음으로, 칩을 액적에서 조심스럽게 들어 올린 후 0.01 mg/mL 농도의 hist 태그 단백질 A 3 µL를 칩 표면에 직접 첨가합니다. 칩과 단백질 A를 실온에서 1분 동안 배양합니다. 그런 다음 Watman 1번 여과지를 사용하여 과잉 액체를 닦아내고, 즉시 0.01 mg/mL 농도의 IgG 항체 용액 3 µL를 첨가합니다.샘플을 상온에서 1분 동안 배양합니다. 다음으로, Hamilton 시린지를 사용하여 과잉 용액을 제거하고, HEPS 버퍼 용액 내 0.1 mg/mL 농도의 로타바이러스 이중층 입자(double layered particles) 1 µL 분량을 즉시 첨가한 후, 칩을 상온에서 최소 2분 동안 배양합니다. 두 번째 평면 IP는 1분 동안 글로우 방전을 통해 준비하며, 먼저 시료 챔버의 팁에 O-링을 장착한 후 ST.Stereoscope를 사용하여 미세유체 챔버를 조립합니다.그 다음, 바이러스 샘플이 포함된 젖은 E IP를 미세유체 시편 홀더의 팁에 로드합니다. 이어서, 글로우 방전 처리된 평평한 EIP를 시편 위에 얹고 전체 어셈블리를 함께 샌드위치처럼 맞물려, 홀더 내에서 3개의 황동 나사로 기계적으로 고정되는 밀폐된 외함 구조를 형성합니다. 조립 후, 홀더의 팁 부분을 10⁻⁶ tor까지 펌핑합니다.TEM 내부에 홀더를 배치하기 전 터보 펌프 건식 펌핑 스테이션을 사용하여, 120 kV에서 작동하는 La₆ 필라멘트가 장착된 투과전자현미경(TEM)에 I two 시편 홀더를 장착하십시오. 다음으로, TEM 필라멘트를 켜고 워블러(wobbler) 기능을 사용하여 시편을 -15°에서 +15°까지 앞뒤로 기울이며 현미경 스테이지의 중심 높이를 시편에 맞게 조정하십시오. 컬럼에서 마이크로플루이딕 챔버의 가장자리와 모서리 영역을 따라 6,000배에서 30,000배 배율의 이미지를 기록하십시오.Å⁻²당 1~3개의 저선량 조건에서 CCD 카메라를 사용하여 첫 번째 이미지를 촬영합니다. 유체 챔버의 가장자리에 초점을 맞추어 적절한 디포커스 값을 결정합니다. 일반적으로, 용액이 마이크로유체 챔버 내에 포함되어 있는지 확인하기 위해 30,000배 배율에서 이미지를 기록하려면 -1.5 µm의 디포커스 값을 사용하십시오.전 실험 과정 동안, 장치 내 액체에 기포가 형성될 때까지 전자빔의 초점을 맞추십시오. 여기에 제시된 이미지는 5 electrons per angstrom squared의 강도로 2분 동안 조사한 후 촬영되었습니다. 5분 후에는 글로우 방전 및 마이크로칩 결합으로 인해 더 많은 기포가 형성되었습니다.확산으로 인해 용액 내의 이중층 입자는 매우 적게 관찰됩니다. 이와 대조적으로, 여기 제시된 대표 이미지와 조영제가 포함된 액체 내 이중층 입자의 3D 재구성 영상에서 볼 수 있듯이, 친화성으로 수식된 마이크로칩 상에는 이중층 입자가 농축되어 있습니다. 재구성된 영상의 직경은 80 nanometers입니다.이중층 입자와 액체의 클래스 평균 결과, 외곽 표면을 따라 명확하게 정의된 특징들이 나타났습니다. 개별 패널의 크기는 110 nanometers입니다. 이 절차를 수행할 때, specimen holder의 팁에 E IPS를 중앙에 맞추고 전자 현미경에 삽입하기 전에 holder를 PrepU 하는 것이 중요합니다.이 절차를 마친 후, 전자빔이 바이러스 복합체의 기능적 능력에 어느 정도 영향을 미쳤는가와 같은 추가적인 질문에 답하기 위해 전사 활성 평가와 같은 다른 방법들을 수행할 수 있습니다. 이 영상을 시청하신 후, 여러분은 친화성 캡처 장치를 제작하고, 분자 어댑터로 이를 장식하며, 마이크로플루이딕 TEM 홀더에 바이러스 시료를 로딩하고 cche 현미경 절차를 사용하여 시료를 이미징하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다. 바이러스성 병원체를 다루는 것은 매우 위험할 수 있으므로, BSL 2 등급의 병원체로 절차를 수행할 때는 항상 장갑과 보호 안경을 착용하는 등의 예방 조치를 취해야 함을 잊지 마십시오.

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Research

연구

JoVE Journal

Bioengineering

생명공학

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액체 셀 전송 전자 현미경을 사용하여 액체의 재료의 동적 프로세스를 공개

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우리는 제자리에 액체 스캐닝 전자 현미경 검사 법에 의해 실시간 이미징 및 이온된 수 boehmite 입자의 원소 조성 분석에 대 한 절차를 제시.

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시투에 바이오 프로세스에서 단세포 형태학의 실시간 측정을 위한 현미경 검사법

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본 프로토콜은 광 조명 시스템을 사용한 투과 전자 현미경(TEM) 변형, 액체 세포의 제조 및 박테리아 세포와 감광제 간의 광 유도 상호작용에 대한 현장 TEM 관찰을 설명합니다. 샘플 준비 방법, 전자빔 손상 및 이미징에 대해서도 설명합니다.

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여기에서는 투과 전자 현미경을 사용하여 나노 스케일에서 액체-EM 및 Cryo-EM 분석에 적합한 바이러스 어셈블리를 준비하는 프로토콜에 대해 설명합니다.

액체와 얼음에서 바이러스 어셈블리의 고해상도 이미징 향상

Cryo-STEM 단층촬영은 임베딩, 절편 또는 기타 침습적 제제 없이 손상되지 않은 세포의 세포 소기관을 시각화하는 수단을 제공합니다. 얻어진 3D 해상도는 현재 수 나노미터 범위이며, 시야는 수 마이크로미터이고 접근 가능한 두께는 1μm 정도입니다.

Cryo-STEM 단층촬영에 의한 세포 소기관 In Situ 의 시각화

학습하세요 액체 환경에서 바이러스 복합체를 나노미터 해상도로 관찰하는 TEM 영상화 방법을. 친화성 포획 표면을 이용해 생물학적 어셈블리의 동적 거동을 연구할 수 있습니다.

시투에서 액체에 있는 생물학 어셈블리의 TEM

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