Name: 침전 형성 폴리에틸렌 글리콜 마이크로겔의 특성은 반응물의 분자량에 의해 제어됩니다 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-12-23T14:15:00.000+00:00
Duration: 11 min 32 s
Description: 배우세요 광중합 침전 반응을 이용하여 PEG 마이크로겔을 형성하는 방법을. 분자량에 따른 직경과 팽윤 비율 변화를 확인하고 약물 전달 및 조직 공학에 활용할 수 있습니다.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

이 프로젝트에 대한 자금은 NSF CBET Award 1061834를 통해 이루어졌습니다. 저자는 광개시제 샘플에 대해 CIBA에 감사를 표합니다.

1. 마이크로겔 제조에 사용하기 위한 솔루션 준비
<ol>
	<li>침전 반응을 시작하기 전에 필요한 용액을 만들고 37 °C로 가열하십시오. 필요한 용액에는 0.5% 광개시제, 1.5M Na2SO4, 완충 용액, 200mg/ml PEG-다이아크릴레이트(PEG-DA) 용액 및 1x 인산염 완충 식염수(PBS)가 포함됩니다. 참고: 발표된 방법에 따라 모든 PEG 전구체를 아크릴화하고 사용12까지 아르곤 아래 -20°C에서 보관하십시오.</li>
	<li>광개시제의 무게를 측정하고 0.5 (w/v)% 용액을 위해 탈이온(DI) H2O에 용해시킵니다. 용액이 자외선에 노출되지 않도록 보호하는 것이 중요합니다.
	<ol>
		<li>완전히 용해된 후 0.22μm 필터를 통해 필터링합니다. 이 용액은 미리 만들어 어두운 곳에서 4 °C에서 보관할 수 있습니다. 참고: 교반하는 동안 용액을 40°C로 가열하여 교반 시간을 약 1시간으로 줄입니다.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>1x PBS의 경우 1L DI H2O에 1정 PBS를 추가하고 0.22μm 필터를 통해 필터링합니다. PBS는 미리 만들어 4°C에서 보관할 수 있습니다.</li>
	<li>39.4ml의 인산염 완충 식염수(PBS, pH=7.4)를 측정하고 612μl의 트리에탄올아민(TEOA)과 260μl의 6M 염산(HCl)을 추가합니다. 참고 : TEOA는 매우 점성이 있습니다. 피펫팅 전에 TEOA를 37°C로 예열합니다.
	<ol>
		<li>버퍼의 pH를 약 7.7이 되도록 조정하고 0.22μm 필터(최종 pH ~7.8)를 통해 필터링합니다. 완충 용액은 규모를 늘리고, 미리 만들고, 37°C에서 보관할 수 있습니다.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>매번 반응을 시작하기 전에 PEG-DA 용액을 만드십시오. 용액을 보관하면 반응성이 감소하는 것이 관찰되었습니다. PEG-DA의 무게를 측정하고 PBS/TEOA/HCl 완충액을 최종 농도 200mg/ml에 추가합니다. 참고: PEG는 용액에서 팽창하므로 PEG 농도를 조심스럽게 제어하기 위해 완충액을 천천히 추가하십시오. 
	참고: 이 솔루션은 사용자 정의가 가능합니다. 마이크로겔을 맞춤화하기 위한 옵션에는 마이크로겔 특성을 변경하기 위해 PEG의 시작 분자량을 변경하고, 분해 가능한 PEG 전구체를 사용하여 분해 가능한 마이크로겔을 제조하고, 생물학적으로 멸균된 마이크로겔에 대한 모든 용액을 멸균 여과하고, 층류 후드에서 형성 과정을 완료하고, 마지막으로 PEG 용액에 통합하여 표면에 작용기를 추가하는 것이 포함됩니다.</li>
	<li>Na2SO4 의 무게를 측정하고 1.5M 용액을 위해 DI H2O 에 용해시킵니다. 최상의 결과를 얻으려면 반응을 시작하기 직전에 황산나트륨 용액도 만들어야 합니다.
	<ol>
		<li>Na2SO4 가 완전히 용해 될 때까지 용액을 가열하고 와류로 가열합니다. 필요에 따라 0.22μm 필터를 필터링합니다.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. 마이크로겔 제조
<ol>
	<li>127.5 μl의 PBS/TEOA/HCl 완충액, 10 μl의 0.5% 광개시제, 25 μl의 200 mg/ml PEG 용액을 마이크로겔이 형성될 튜브에 넣습니다. 일반적으로 2 ml의 마이크로 원심분리 튜브.
	<ol>
		<li>이 튜브를 1.5 M Na2SO4 용액과 함께 37 ° C로 가열합니다.</li>
		<li>가열하는 동안 튜브를 섞습니다. 참고: 이 마이크로겔 프로토콜은 확장할 수 있습니다.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>분자를 마이크로겔에 캡슐화하려면 원하는 분자(예: 오브알부민)를 PBS/TEOA/HCl 완충액, 광개시제 및 PEG 용액에 첨가합니다. 가교결합 후 분자는 마이크로겔 네트워크에 갇히게 됩니다.</li>
	<li>각 마이크로겔 반응을 한 번에 하나씩 완료합니다. 첫 번째 튜브를 가져 와서 87.5 μl의 1.5 M Na2SO4를 첨가합니다.</li>
	<li>3-5회 피펫팅으로 튜브를 혼합합니다. 또는 30초 동안 기다립니다. 혼합 후 염 농도가 고르게 분포되고 용액이 깨끗해야 합니다.</li>
	<li>튜브를 자외선 아래에 놓고 30초 동안 가교합니다. 가교 후에는 용액 위에 흐린 층이 있어야 하며, 이 층에는 마이크로겔이 포함되어 있습니다. 반응 계획은 그림 1을 참조하십시오.</li>
	<li>750 μl PBS를 첨가하여 원심분리시 펠릿을 형성하고 잘 혼합합니다.</li>
	<li>4,000 x g에서 2분 동안 원심분리하여 펠릿을 형성하고 상층액을 PBS로 교환하여 마이크로겔 5 x 세척합니다. 참고: 완충액을 교체하는 동안 마이크로겔 펠릿을 방해하지 마십시오.</li>
</ol>
3. 마이크로겔 크기 및 다분산성
<ol>
	<li>1ml의 DI H2O에서 원심 분리하여 형성된 펠렛에서 30 μl의 마이크로 젤을 피펫으로 만듭니다. 최상의 결과를 얻으려면 마이크로겔 용액을 수조 초음파 처리기에서 1시간(50-60Hz 및 1.4A) 동안 초음파 처리하거나 세게 혼합하여 마이크로겔을 현탁시킵니다.</li>
	<li>마이크로겔 용액 15μl를 깨끗한 유리 슬라이드에 피펫팅하고 그 위에 #1.5 커버 슬립을 놓습니다. 슬라이드와 커버를 뒤집어 실험실 티슈에 끼워 넣고 슬라이드를 아래로 눌러 과도한 용액을 제거하고 마이크로젤이 단일 층에 있는지 확인합니다.</li>
	<li>DIC 100X 오일 대물렌즈를 사용하여 마이크로겔의 여러 이미지를 캡처합니다. 일반적으로 샘플당 5개의 이미지를 촬영하고 배치당 3개의 샘플을 사용하여 총 15개의 이미지를 촬영하는 것이 좋습니다. 참고: 현재까지 배치 간 변동은 관찰되지 않았습니다.</li>
	<li>대표 직경을 얻기 위해 마이크로겔을 측정합니다.</li>
	<li>다음 부피 기반 방정식을 사용하여 PDI를 계산하며, 여기서 N은 마이크로겔의 총 수이고 Vi는 마이크로겔 i의 부피입니다.</li>
</ol>
4. 마이크로겔 밀도
<ol>
	<li>마이크로겔 밀도를 측정하기 위해 DI H2O에서 덱스트란 7, 6, 5, 4, 3 및 1 (w/v)% 용액을 준비합니다. 이러한 밀도는 각각 1.022, 1.020, 1.018, 1.016, 1.014 및 1.010g/cm3로 계산되었습니다.</li>
	<li>15ml 원심분리기 튜브에 7% 덱스트란 용액 1ml를 추가합니다.
	<ol>
		<li>6% 덱스트란 용액 1ml를 천천히 피펫팅하여 7% 덱스트란 위에 뚜렷한 층을 형성합니다.</li>
		<li>5분 정도 기다린 다음 5% 용액 1ml를 추가합니다.</li>
		<li>모든 dextran 용액이 dextran 농도가 감소하는 순서로 층을 이룰 때까지 계속합니다.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>마이크로겔을 1% 덱스트란 용액 위에 조심스럽게 겹쳐 놓습니다.</li>
	<li>4,000 x g 및 5 °C에서 10분 동안 그래디언트를 원심분리합니다. 원심분리 후 마이크로겔 위치를 사용하여 밀도13을 간단하게 계산할 수 있습니다.</li>
</ol>
5. 마이크로겔 평형 팽윤
<ol>
	<li>평형 팽창(48시간) 후의 질량으로 정의되는 마이크로겔의 팽창 질량(Ms)을 측정하려면 먼저 DI H2O에서 마이크로겔을 5배 세척하고 미리 계량된 마이크로 원심분리 튜브에서 최소 48시간 동안 팽창합니다.</li>
	<li>마이크로겔을 4,000 x g에서 10분 동안 원심분리합니다.</li>
	<li>모든 상등액을 제거하고 젖은 질량을 기록합니다. 보다 정확한 결과를 얻기 위해 여과 방법을 사용하여 과도한 물을 모두 제거하십시오.</li>
	<li>마이크로겔을 -80°C에서 동결한 다음 건조 질량(Md)을 얻기 위해 일정한 질량으로 동결건조합니다.</li>
	<li>마이크로겔의 수분 함량을 Water% = (Ms -M d) / Md x 100으로 계산합니다.</li>
	<li>폴리머 함량을 Polymer% = 100 - Water%로 결정합니다.</li>
	<li>n-way ANOVA 및 Tukey 사후 검정과 함께 SAS를 사용하여 모든 데이터에 대한 통계 분석을 수행할 수 있습니다. 차이점은 p<0.05.</li>
</ol>

<ol><li>McNaught, A. D., Wilkinson, A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMcNaught%2C+AD+%22IUPAC+Compendium+of+Chemical+Terminology+%28The+Gold+Book%29.+2nd+edn%22">IUPAC Compendium of Chemical Terminology (The Gold Book). 2nd edn</a>. , Blackwell Scientific Publications. (1997).</li>
<li>Lu, S. X., Anseth, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Release+behavior+of+high+molecular+weight+solutes+from+poly%28ethylene+glycol%29-based+degradable+networks%5BTitle%5D)+AND+%22Macromolecules%22%5BJournal%5D)">Release behavior of high molecular weight solutes from poly(ethylene glycol)-based degradable networks.</a> Macromolecules. 33, 2509-2515 (2000).</li>
<li>Peppas, N. A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPeppas%2C+NA+%22Hydrogels+in+Medicine%22">Hydrogels in Medicine</a>. 1, CRC Press, Inc. (1986).</li>
<li>West, J. L., Hubbell, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Photopolymerized+hydrogel+materials+for+drug+delivery+applications%5BTitle%5D)+AND+%22React.+Polym%22%5BJournal%5D)">Photopolymerized hydrogel materials for drug delivery applications.</a> React. Polym. 25, 139-147 (1995).</li>
<li>Hunkeler, D., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHunkeler%2C+D+%22Theories+and+Mechanism+of+Phase+Transitions%2C+Heterophase+Polymerizations%2C+Homopolymerization%2C+Addition+Polymerization.+Advances+in+Polymer+Science%22">Theories and Mechanism of Phase Transitions, Heterophase Polymerizations, Homopolymerization, Addition Polymerization. Advances in Polymer Science</a>. 112, Springer. Berlin Heidelberg, Ch. 115-133 (1994).</li>
<li>Arshady, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Suspension%2C+emulsion%2C+and+dispersion+polymerization%3A+A+methodological+survey%5BTitle%5D)+AND+%22Colloid+Polym.+Sci%22%5BJournal%5D)">Suspension, emulsion, and dispersion polymerization: A methodological survey.</a> Colloid Polym. Sci. 270, 717-732 (1992).</li>
<li>Bai, F., Yang, X. L., Huang, W. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthesis+of+narrow+or+monodisperse+poly%28divinylbenzene%29+microspheres+by+distillation-precipitation+polymerization%5BTitle%5D)+AND+%22Macromolecules%22%5BJournal%5D)">Synthesis of narrow or monodisperse poly(divinylbenzene) microspheres by distillation-precipitation polymerization.</a> Macromolecules. 37, 9746-9752 (2004).</li>
<li>Bailey, F., Callard, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Some+properties+of+poly%28ethylene+oxide%29+in+aqueous+solution%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Appl.+Polym.+Sci%22%5BJournal%5D)">Some properties of poly(ethylene oxide) in aqueous solution.</a> J. Appl. Polym. Sci. 1, 56-62 (1959).</li>
<li>Cruise, G. M., Scharp, D. S., Hubbell, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+permeability+and+network+structure+of+interfacially+photopolymerized+poly%28ethylene+glycol%29+diacrylate+hydrogels%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Characterization of permeability and network structure of interfacially photopolymerized poly(ethylene glycol) diacrylate hydrogels.</a> Biomaterials. 19, 1287-1294 (1998).</li>
<li>Flory, P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFlory%2C+P+%22Principles+in+Polymer+Chemistry%22">Principles in Polymer Chemistry</a>. , Cornell University Press. (1953).</li>
<li>Flake, M. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Poly+%28ethylene+glycol%29+microparticles+produced+by+precipitation+polymerization+in+aqueous+solution%5BTitle%5D)+AND+%22Biomacromolecules%22%5BJournal%5D)">Poly (ethylene glycol) microparticles produced by precipitation polymerization in aqueous solution.</a> Biomacromolecules. 12, 844-850 (2011).</li>
<li>Sawhney, A. S., Pathak, C. P., Hubbell, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioerodible+hydrogels+based+on+photopolymerized+poly%28ethylene+glycol%29-co-poly%28.alpha.-hydroxy+acid%29+diacrylate+macromers%5BTitle%5D)+AND+%22Macromolecules%22%5BJournal%5D)">Bioerodible hydrogels based on photopolymerized poly(ethylene glycol)-co-poly(.alpha.-hydroxy acid) diacrylate macromers.</a> Macromolecules. 26, 581-587 (1993).</li>
<li>Scott, R. A., Elbert, D. L., Willits, R. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modular+poly%28ethylene+glycol%29+scaffolds+provide+the+ability+to+decouple+the+effects+of+stiffness+and+protein+concentration+on+PC12+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomaterialia%22%5BJournal%5D)">Modular poly(ethylene glycol) scaffolds provide the ability to decouple the effects of stiffness and protein concentration on PC12 cells.</a> Acta Biomaterialia. 7, 3841-3849 (2011).</li>
<li>Ianeselli, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein-Protein+Interactions+in+Ovalbumin+Solutions+Studied+by+Small-Angle+Scattering%3A+Effect+of+Ionic+Strength+and+the+Chemical+Nature+of+Cations%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Phys.+Chem.+B%22%5BJournal%5D)">Protein-Protein Interactions in Ovalbumin Solutions Studied by Small-Angle Scattering: Effect of Ionic Strength and the Chemical Nature of Cations.</a> J. Phys. Chem. B. 114, 3776-3783 (2010).</li>
<li>Scott, R., Marquardt, L., Willits, R. K. Characterization of poly(ethylene glycol) gels with added collagen for neural tissue engineering. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aScott%2C+R+%22J.+Biomed.+Mater.+Res.+A.%22">J. Biomed. Mater. Res. A.</a>. 93, 817-823 (2010).</li>
<li>Lin, H., Kai, T., Freeman, B. D., Kalakkunnath, S., Kalika, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Effect+of+Cross-Linking+on+Gas+Permeability+in+Cross-Linked+Poly%28Ethylene+Glycol+Diacrylate%29%5BTitle%5D)+AND+%22Macromolecules%22%5BJournal%5D)">The Effect of Cross-Linking on Gas Permeability in Cross-Linked Poly(Ethylene Glycol Diacrylate).</a> Macromolecules. 38, 8381-8393 (2005).</li>
<li>Mellott, M. B., Searcy, K., Pishko, M. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Release+of+protein+from+highly+cross-%3Blinked+hydrogels+of+poly%28ethylene+glycol%29+diacrylate+fabricated+by+UV+polymerization%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Release of protein from highly cross-;linked hydrogels of poly(ethylene glycol) diacrylate fabricated by UV polymerization.</a> Biomaterials. 22, 929-941 (2001).</li>
<li>Bryant, S. J., Anseth, K. S., Lee, D. A., Bader, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crosslinking+density+influences+the+morphology+of+chondrocytes+photoencapsulated+in+PEG+hydrogels+during+the+application+of+compressive+strain%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Orthop.+Res%22%5BJournal%5D)">Crosslinking density influences the morphology of chondrocytes photoencapsulated in PEG hydrogels during the application of compressive strain.</a> J. Orthop. Res. 22, 1143-1149 (2004).</li>
<li>Padmavathi, N. C., Chatterji, P. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+Characteristics+and+Swelling+Behavior+of+Poly%28ethylene+glycol%29+Diacrylate+Hydrogels%5BTitle%5D)+AND+%22Macromolecules%22%5BJournal%5D)">Structural Characteristics and Swelling Behavior of Poly(ethylene glycol) Diacrylate Hydrogels.</a> Macromolecules. 29, 1976-1979 (1996).</li>
<li>Ross, A. E., Tang, M. Y., Gemeinhart, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+molecular+weight+and+loading+on+matrix+metalloproteinase-2+mediated+release+from+poly%28ethylene+glycol%29+diacrylate+hydrogels%5BTitle%5D)+AND+%22AAPS+J%22%5BJournal%5D)">Effects of molecular weight and loading on matrix metalloproteinase-2 mediated release from poly(ethylene glycol) diacrylate hydrogels.</a> AAPS J. 14, 482-490 (2012).</li>
<li>Sun, G., Zhang, X. -Z., Chu, C. -C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+the+molecular+weight+of+polyethylene+glycol+%28PEG%29+on+the+properties+of+chitosan-PEG-poly%28N-isopropylacrylamide%29+hydrogels%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Materi.+Sci.+Mater.+Med%22%5BJournal%5D)">Effect of the molecular weight of polyethylene glycol (PEG) on the properties of chitosan-PEG-poly(N-isopropylacrylamide) hydrogels.</a> J. Materi. Sci. Mater. Med. 19, 2865-2872 (2008).</li>
<li>Zustiak, S. P., Leach, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+Protein+Release+From+Hydrolytically+Degradable+Poly%28Ethylene+Glycol%29+Hydrogels%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol.+Bioeng%22%5BJournal%5D)">Characterization of Protein Release From Hydrolytically Degradable Poly(Ethylene Glycol) Hydrogels.</a> Biotechnol. Bioeng. 108, 197-206 (2011).</li>
<li>Ruan, G., Feng, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+and+characterization+of+poly%28lactic+acid%29-poly%28ethylene+glycol%29-poly%28lactic+acid%29+%28PLA-PEG-PLA%29+microspheres+for+controlled+release+of+paclitaxel%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Preparation and characterization of poly(lactic acid)-poly(ethylene glycol)-poly(lactic acid) (PLA-PEG-PLA) microspheres for controlled release of paclitaxel.</a> Biomaterials. 24, 5037-5044 (2003).</li>
<li>Loxley, A., Vincent, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Equilibrium+and+kinetic+aspects+of+the+pH-dependent+swelling+of+poly%282-vinylpyridine-co-styrene%29+microgels%5BTitle%5D)+AND+%22Colloid+Polym.+Sci%22%5BJournal%5D)">Equilibrium and kinetic aspects of the pH-dependent swelling of poly(2-vinylpyridine-co-styrene) microgels.</a> Colloid Polym. Sci. 275, 1108-1114 (1997).</li>
<li>Vivaldo-Lima, E., Wood, P. E., Hamielec, A. E., Penlidis, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+updated+review+on+suspension+polymerization%5BTitle%5D)+AND+%22Ind.+Eng.+Chem.+Res%22%5BJournal%5D)">An updated review on suspension polymerization.</a> Ind. Eng. Chem. Res. 36, 939-965 (1997).</li>
<li>Ritger, P. L., Peppas, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+equation+for+description+of+solute+release+I.+Fickian+and+non-fickian+release+from+non-swellable+devices+in+the+form+of+slabs%2C+spheres%2C+cylinders+or+discs%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Controlled+Release%22%5BJournal%5D)">A simple equation for description of solute release I. Fickian and non-fickian release from non-swellable devices in the form of slabs, spheres, cylinders or discs.</a> Journal of Controlled Release. 5, 23-36 (1987).</li>
<li>Matsumoto, A., Kitazawa, T., Murata, J., Horikiri, Y., Yamahara, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+preparation+method+for+PLGA+microspheres+using+non-balogenated+solvents%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Controlled+Release%22%5BJournal%5D)">A novel preparation method for PLGA microspheres using non-balogenated solvents.</a> J. Controlled Release. 129, 223-227 (2008).</li>
</ol>

저자는 경쟁하는 금전적 이해관계가 없음을 선언합니다.

PEG 마이크로겔의 물리적 특성은 중합 조건의 변화에 대해 조사되었습니다. 이 침전 반응을 위해 완충 용액, 20%(w/v) PEG-디아크릴레이트(MW 3,000, 4,600 또는 6,000 Da) 용액 및 광개시제를 혼합하고 37°C로 가열했습니다. 물 분자 간의 상호 작용을 증가시키는 코스모트로피 염인 1.5M Na2SO4를 첨가하면 PEG가 첨가 시 순간적으로 침전되었습니다. 이 효과는 분자량이 높은 PEG8에서 더 두드러지며, 이는 실제 마이크로겔 형성이 사슬 성장과 침전의 조합임을 시사합니다. 마이크로겔은 자외선(UV)을 이용한 광중합으로부터 얻어졌습니다. UV 노출은 30, 90, 120, 300 및 600초에서 다양했습니다. 폴리머가 임계 분자량에 도달하면 침전되어 얽히고 가교된 마이크로겔을 형성합니다. 마이크로겔에 단백질을 캡슐화하는 것은 UV 노출 전에 용액에 분자를 첨가함으로써 달성되었습니다. 폴리머 사슬이 가교를 형성함에 따라 폴리머 네트워크...

정의에 따라 마이크로겔은 약 0.1-100 μm1의 등가 직경을 가진 모든 형태의 하이드로겔입니다. 그 크기와 특성으로 인해 고분자 마이크로겔은 약물 전달 및 조직 공학 시스템을 발전시키기 위한 다재다능한 도구를 제공합니다. 벌크 하이드로겔은 조직 공학 골격 및 약물 전달 매개체로 광범위하게 활용되어 큰 성공을 거두었지만2-4, 최근 골격의 마이크로 스케일 제어로의 전환은 마이크로겔이 골격 구축의 기본 재료로 사용될 수 있는 독특한 기회를 제공합니다. 또한 마이크로겔은 세포 상호 작용에 대한 표면적 대 부피 비율이 높고 용액 내 점도가 낮아 주입에 이상적입니다. 마지막으로, 마이크로겔은 원하는 마이크로겔 특성에 따라 다양한 방법으로 수많은 폴리머를 사용하여 형성할 수 있으므로 다양한 응용 분야에 맞게 고도로 맞춤화할 수 있습니다.
마이크로겔을 생산하는 기술에는 현탁액, 에멀젼, 분산 또는 침전 중합이 포함됩니다. 에멀젼 및 현탁액 중합은 일반적으로 마이크로겔을 형성하기 위해 유기 용매와 계면활성제 또는 안정제를 필요로 합니다. 이러한 방법의 특성은 매우 분산된 입자 크기 분포5를 생성합니다. 분산 및 침전 반응은 입자를 더 낮은 다분산성(polydispersity)으로 렌더링합니다6; 그러나 분산 중합에 의해 형성된 입자는 여전히 안정화제의 사용을 필요로 합니다6. 침전 반응에 의해 형성된 마이크로겔은 안정제나 계면활성제를 사용하지 않고 균일한 크기와 모양의 입자를 형성한다는 점에서 독특합니다. 마이크로겔 형성은 엔탈픽 또는 엔트로피 침전에 의해 연속상과 분리된 고분자 사슬 상을 성장시킬 때 달성됩니다7. 침전 중합은 종종 코스모트로피 염을 사용하여 낮출 수 있는 고온에서 이루어지며, 이는 용매8에서 고분자의 용해도를 감소시킵니다. 이 연구는 생물학적으로 호환되는 조건에서 광중합 침전 반응에 의해 폴리(에틸렌 글리콜)(PEG)로 형성된 마이크로겔에 초점을 맞추고 있으며, 마이크로겔 특성을 변경하고 약물 전달 응용 분야를 위해 분자를 캡슐화하는 변형이 있습니다.
PEG 하이드로겔에 대한 이전 연구는 중합 조건이 하이드로겔의 물리적 및 기계적 특성, 즉 하이드로겔 수분 함량 및 압축 탄성률3,9에 큰 영향을 미친다는 것을 보여줍니다. 이러한 가교 결합 물질은 Flory10에 의해 설명된 구조적 특성과 물리적 특성 간의 관계를 사용하여 특정 응용 분야에 맞게 가교 하이드로겔을 조정할 수 있기 때문에 관심이 있습니다. 이러한 원리는 마이크로겔과 유사합니다. 침전 형성된 PEG 마이크로겔은 재생 의학11에 대한 잠재력을 가지고 있는 것으로 밝혀졌지만, 미래의 생물 의학 응용 분야를 위한 레퍼토리를 향상시키기 위해 마이크로겔 특성에 대한 추가 조사가 필요했습니다. 이 보고서는 침전 반응에 의해 마이크로겔을 제조하고 약물 전달 또는 재생 의학을 위해 이러한 물질을 추가로 개발하는 데 중요한 미립자 직경, 다분산 지수(PDI), 밀도 및 팽창과 같은 특성을 변경하는 절차를 설명합니다.

<table><tbody><tr><td>인산염 완충 식염수(PBS)</td><td>MP 생물의학</td><td>2810305</td><td></td></tr><tr><td>트리에탄올아민(TEOA)</td><td>J.T. Baker</td><td>9468-01</td><td>37°C로 예열; C 피펫팅 전</td></tr><tr><td>염산(HCl)</td><td>BDH Aristar</td><td>BDH3028</td><td></td></tr><tr><td>황산나트륨</td><td>J.T. Baker</td><td>3891-01</td><td></td></tr><tr><td>Irgacure 2959</td><td>Ciba</td><td>029891301PS04</td><td></td></tr><tr><td>Ovalbumin (OVA)</td><td>Invitrogen</td><td>34782</td><td></td></tr><tr><td>PEG 1,500</td><td>Alfa Aesar</td><td>A16241</td><td></td></tr><tr><td>PEG 3,000</td><td>Fluka</td><td>03997-1KG</td><td></td></tr><tr><td>PEG 4,000</td><td>Alfa Aesar</td><td>A16151</td><td></td></tr><tr><td>PEG 4,600</td><td>Sigma</td><td>373001-250G</td><td></td></tr><tr><td>PEG 6,000</td><td>Fluka</td><td>03394-1KG</td><td></td></tr><tr><td>PEG 10,000</td><td>Alfa Aesar</td><td>B21955</td><td></td></tr><tr><td>덱스트란 70</td><td>TCI</td><td>D1449</td><td></td></tr></tbody></table>

침전 형성 폴리에틸렌 글리콜 마이크로겔의 특성은 반응물의 분자량에 의해 제어됩니다

Characteristics of Precipitation-formed Polyethylene Glycol Microgels Are Controlled by Molecular Weight of Reactants

이 작업은 광중합 침전 반응을 통해 폴리(에틸렌 글리콜)(PEG) 마이크로겔의 형성을 설명합니다. 침전 반응은 기존의 미세구 제조 기술에 비해 몇 가지 이점을 제공합니다. 에멀젼(emulsion), 현탁액(suspension) 및 분산(dispersion) 기법과 반대로, 침전에 의해 형성된 마이크로겔은 유기 용매 또는 안정제를 사용하지 않고 모양과 크기가 균일하며, 즉 낮은 다분산 지수(polydispersity index)를 갖습니다. 침전 반응의 온화한 조건, 마이크로겔의 맞춤형 특성, 주입을 위한 낮은 점도로 인해 in vivo 목적에 적용할 수 있습니다. 다른 제조 기술과 달리 마이크로겔 특성은 시작 고분자 분자량을 변경하여 수정할 수 있습니다. 시작 PEG 분자량을 늘리면 마이크로겔 직경과 팽윤 비율이 증가했습니다. 마이크로겔 교차결합 동안 분자를 캡슐화하는 것과 같은 추가 변형이 제안됩니다. PEG 마이크로겔 빌딩 블록에 대한 간단한 적응은 약물 전달 매개체 및 조직 공학 골격으로서의 마이크로겔의 미래 응용을 위해 탐구됩니다.

마이크로겔의 크기는 중합 조건에 따라 달라집니다. 그림 2A는 PEG의 초기 분자량과 가교 시간이 증가함에 따라 마이크로겔의 직경이 어떻게 증가하는지를 보여줍니다. 다양한 분자량의 마이크로겔을 사용하여 크기를 측정한 대표 이미지(30초간 가교)가 그림 2C-G에 제시되어 있습니다. 분자량이 3,000 Da인 PEG의 경우, UV 노출 시간이 30-600초로 증가함에 따라 마이크로겔의 평균 직경이 1.65±0.26에서 2.20±0.54 μm로 증가했습니다(그림 2B). UV 노출 시간을 30초로 일정하게 유지하면서 분자량을 3,000-10,000 Da로 증가시켰을 때, 마이크로겔 직경은 1.65±0.26에서 2.17±0.33 μm로 증가했습니다(그림 2A). 3,000, 4,000, 4,600 Da의 분자량 사이에서는 유의미한 차이가 관찰되지 않았습니다. 침전 방식으로 형성된 마이크로겔의 통계적으로 유의미한 차...

이 작업은 광중합 침전 반응을 통해 폴리(에틸렌 글리콜)(PEG) 마이크로겔의 형성을 설명합니다. PEG 분자량을 늘리면 마이크로겔 직경과 팽윤 비율이 증가했습니다. PEG 마이크로겔 침전 반응에 대한 간단한 적응은 약물 전달 매개체 및 조직 공학 골격으로서의 마이크로겔의 미래 응용을 위해 탐구됩니다.

This work describes the formation of poly(ethylene glycol) (PEG) microgels via a photopolymerized precipitation reaction. Precipitation reactions offer ...

이 실험 절차의 전반적인 목적은 광중합 침전 반응을 이용하여 약물 전달체 및 조직 공학 지지체로 사용할 폴리에틸렌 글리콜 마이크로 겔을 형성하는 것입니다. 이는 먼저 광개시제, 완충액, 트리에틸아민 및 PEG DL 용액을 포함한 시약들을 준비하고 이를 37 °C로 가온함으로써 수행됩니다. 두 번째 단계는 시약들을 마이크로 원심분리 튜브에 넣고 37 °C의 온도를 유지하면서 볼텍싱하는 것입니다.다음으로 황산나트륨을 혼합하고, 용액을 UV 광원 아래에 두어 30초 동안 가교 결합시킵니다. 가교 결합 후, 용액 상단에 마이크로 겔이 포함된 혼탁한 층이 형성됩니다. 마지막 단계로 혼합물에 PBS를 첨가하고 원심분리하여 펠렛을 형성합니다.최종적으로, 현미경 관찰과 동적 광산란법(dynamic light scattering)을 통해 마이크로 겔의 크기를 측정하며, 덱스트린 밀도 구배를 이용하여 밀도를 측정합니다. 또한, 마이크로 겔의 습윤 중량과 건조 중량을 측정하여 팽윤도를 계산합니다. 에멀젼, 현탁 및 분산 기술과 같은 다른 방법들과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은, 침전 반응으로 형성된 마이크로 겔이 유기 용매나 안정제 없이도 낮은 다분산 지수(poly dispersity index)를 갖는다는 점입니다. 또한, 침전 반응의 온화한 조건, 마이크로 겔의 맞춤형 특성 및 주입에 적합한 낮은 점도 덕분에 NVivo 응용 분야에 적합합니다.이 방법은 균일한 크기와 낮은 다분산 지수(poly dispersity index)를 모두 갖춘 스캐폴드 제작과 같이 조직 공학 및 재생 의학 분야의 핵심 질문에 답하는 데 도움을 줄 수 있습니다. 약물 내의 성장 인자를 쉽게 캡슐화할 수 있으므로, 이 기술의 영향은 약물 전달 치료까지 확장될 수 있습니다. 우선, 광개시제 500 milligrams를 정밀하게 측정하여 탈이온수 100 milliliters에 첨가해 0.5% 용액을 만듭니다.용액을 UV 광선으로부터 보호하고, 광개시제가 완전히 용해될 때까지 약 1시간 동안 지속적으로 저어주며 40°C로 가열합니다. 용액이 완전히 용해되면, 0.22 µm 필터로 여과하여 멸균한 후 필요한 때까지 4°C의 암소에 보관합니다. 다음으로, 점도를 낮추기 위해 Triethylamine을 37°C로 예열합니다.그 다음, 해당 용액 612 µL와 6 M 염산을 260 µL 함께 PBS 39.4 mL에 첨가하고, 멸균 상태에서 pH를 7.8로 조정합니다. 최종 용액을 0.22 µm 필터로 여과하고, 필요할 때까지 37 °C에서 보관합니다. Sony et al.의 연구에 따라, 기발표된 방법에 따라 PEG 전구체를 제조하고 완성된 제품을 아르곤 가스 하에 -20 °C에서 보관합니다. 그 후 사용 직전에, triethanolamine과 염산이 첨가된 PBS 0.8 mL를 PEG diacrylate 200 mg에 천천히 첨가하여 200 mg/mL PEG diacrylate 용액 1 mL를 준비합니다.또한, 실험 직전에 황산나트륨 213 mg을 정밀하게 측정하여 탈이온수 1 mL에 녹입니다. 1.5 M 용액을 조제하기 위해, 용액을 37 °C에서 20분 동안 가열한 후 완전히 용해될 때까지 볼텍싱합니다. 용해가 완료되면, 최종 황산나트륨 용액과 PEG di Acrylate 용액 모두를 37 °C에서 0.22 µm 필터로 여과합니다.PBS와 triethylamine 및 hydrochloric acid 혼합물 127.5 µL, 0.5% 광개시제 10 µL, 그리고 200 mg/mL PEG diacrylate 용액 25 µL를 1.6 mL 마이크로 원심분리 튜브에 넣고 혼합합니다. 그 후, 캡슐화하려는 원하는 분자들을 추가합니다.이 튜브들을 1.5 molar 황산나트륨 용액과 함께 37 °C로 가열합니다. 그런 다음, 예열된 1.5 molar 황산나트륨 용액 87.5 µL를 PEG 용액이 들어있는 첫 번째 튜브에 넣고, 파이펫팅을 3~5회 반복하여 혼합합니다. 혼합 후에는 염 농도가 균일하게 분포되며 용액이 투명해져야 합니다.튜브를 UV 램프 아래에 두고 30초 동안 가교 결합을 유도합니다. 가교 결합 후에는 마이크로겔이 포함된 용액 상단에 뿌연 층이 형성되어야 합니다. 그다음, 튜브에 750 µL의 PBS를 첨가하고 볼텍싱하여 용액을 잘 섞어줍니다.그런 다음 혼합물을 4,000 ×g에서 2분 동안 원심분리하여 펠릿을 형성합니다. 펠릿이 형성되면 펠릿이 흐트러지지 않도록 주의하며 상층액을 제거하고 신선한 PBS에 마이크로겔을 부유시킵니다. 마이크로겔을 신선한 PBS로 총 5회 세척하며, 매 세척 단계 사이에 원심분리를 통해 펠릿을 형성합니다.마지막 세척 후 상층액을 제거하고, 펠렛에서 30 µL의 마이크로 젤을 취해 1 mL의 탈이온수에 넣습니다. 그다음 마이크로 젤 용액을 수조 초음파 세척기에서 50~60 Hz, 1.4 A의 전력으로 1시간 동안 초음파 처리합니다. 이어서 마이크로 젤 용액 15 µL를 깨끗한 산 식각 유리 슬라이드 위에 분주하고, 그 위에 1.5번 산 식각 커버 슬립을 덮습니다.슬라이드를 실험실 티슈 위에 뒤집어 놓고 슬라이드를 부드럽게 눌러 과잉 용액을 제거하고 마이크로 겔이 단일 층으로 형성되었는지 확인합니다. 그런 다음 광학 현미경을 사용하여 DIC 100x 오일 대물렌즈로 마이크로 겔의 이미지 여러 장을 캡처합니다. 마이크로 겔의 크기를 측정하여 대표 직경을 구합니다.N을 마이크로겔의 총 개수, VI를 마이크로겔의 부피로 하는 여기에 표시된 부피 기반 방정식을 사용하여 다분산 지수를 계산하십시오. 평균 마이크로겔 밀도를 측정하기 위해 먼저 탈이온수에서 7, 6, 5, 4, 3 및 1%의 덱스트린 용액을 준비하십시오. 덱스트린 용액의 밀도는 여기에 표시되어 있습니다. 그다음, 15 mL 원심분리관에 7% 덱스트린 용액 2 mL를 넣으십시오.그 다음 6% dextrin 용액 2 mL를 천천히 피펫팅하여 7% dextrin 위에 뚜렷한 층을 형성합니다. 5분 후, 다음 층인 5% dextrin 2 mL를 추가하고, dextrin 농도가 낮아지는 순서대로 각 농도의 dextrin이 층을 이룰 때까지 이 과정을 반복합니다. 그런 다음 마이크로 겔을 1% dextrin 용액 위에 조심스럽게 층을 만들어 올리고, 밀도 구배를 5 °C에서 4,000 ×g로 10분 동안 원심분리합니다.그 다음 마이크로 젤의 위치를 시각화하고 층 사이의 위치에 따른 마이크로 젤의 밀도를 계산합니다. 마이크로 젤의 팽윤 질량을 측정하려면, 먼저 마이크로 원심분리 튜브의 무게를 미리 측정한 후 마이크로 젤 1 mL를 첨가합니다. 각 세척 단계 사이에 탈이온수로 마이크로 젤을 5회 세척합니다.마지막 세척 후 마이크로 겔을 침전시키기 위해 샘플을 4,000 ×g에서 10분 동안 원심 분리합니다. 이를 탈이온수에 재현탁하고 최소 48시간 동안 팽창시킵니다. 48시간 후, 팽창된 마이크로 겔을 4,000 ×g에서 10분 동안 원심 분리한 다음 모든 상층액을 제거합니다.그런 다음 샘플의 무게를 측정하여 습윤 질량을 기록합니다. 정확한 습윤 무게를 얻은 후, 마이크로 젤을 -80 °C에서 냉동시킨 다음 동결 건조하여 수분을 제거하고 건조 질량을 얻습니다. 모든 수분이 승화되면, MS를 마이크로 젤의 습윤 무게, MD를 건조 무게로 하는 여기에 표시된 식을 사용하여 마이크로 젤의 수분 및 폴리머 함량을 계산합니다.다양한 분자량의 20% PEG를 사용하여 형성된 PEG 마이크로 겔의 평균 직경이 여기에 표시되어 있습니다. UV 노출 시간을 늘리는 것 또한 마이크로 겔의 직경에 영향을 미쳤습니다. UV 노출 시간이 증가함에 따라, 여기에 표시된 세 가지 제형의 직경도 함께 증가하였습니다.덱스트린 구배로 측정한 밀도는 전구체 peg 분자의 분자량이 증가함에 따라 감소했습니다. 이는 수분 함량 백분율 그래프에서도 확인되며, 분자량이 더 높은 peg일수록 폴리머 g당 수분 함량이 더 높은 것으로 나타났습니다. 마지막으로, 마이크로 겔에 형광 결합 단백질을 탑재할 수 있음을 보여주기 위해 중합 전 혼합물에 알부민을 첨가하였으며, 이는 구체 내부에 포집되었습니다.형광 표지 단백질의 농도가 높아질수록 구체의 다분산 지수(poly dispersity index)는 증가했으나, 평균 크기는 일정하게 유지되었습니다. 이 절차를 수행할 때는 모든 용액을 37 °C로 가열해야 하며, 슬라이드를 세척하고 이미징을 위해 준비하는 동안 응집물을 제거하기 위해 마이크로 겔을 충분히 볼텍싱(vortex)해야 한다는 점에 유의하십시오. 이 절차 이후에, 약물 방출 효과에 관한 추가적인 의문에 답하기 위해 약물 캡슐화를 위한 추가 방법을 수행할 수 있습니다.이 영상을 시청한 후, 여러분은 침전 반응을 통해 온화한 조건에서 peg DA 마이크로 겔을 생성하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

characteristics-precipitation-formed-polyethylene-glycol-microgels

Research

연구

JoVE Journal

Bioengineering

생명공학

강우 형성 폴리에틸렌 글리콜 마이크로겔의 특성은 반응물의 분자량에 의해 제어됩니다

이 문서 디블록 공동 폴리머를 사용하여 폴리머 기반 nanoparticles를 합성하는 nanoprecipitation 방법을 설명합니다. 우리는 디블록의 합성 공동 고분자, nanoprecipitation 기술, 그리고 잠재적인 애플 리케이션을 설명합니다.

Nanoprecipitation 기법을 통해 디블록 고분자 Nanoparticles의 제형

이 비디오는 연쇄 중합 및 하이드로 겔의 합성을 가능하게, 폴리 (에틸렌 글리콜) 메타 크릴 레이트 신속하고 효율적인 방법을 도시한다. 그것은 유사하게 작용의 효율성을 평가하는 문제 해결 및 고급 수정에 대한 제안을 제공하고, 일반 하이드로 겔의 특성 기술을 설명하는 펩티드, 세부 일반적인 분석 방법으로 메타 크릴의 기능을 소개하는 방법을 보여줍니다.

전자 레인지를 이용한 폴리의 기능화 (에틸렌 글리콜) 및 체인 중합 및 하이드로 겔 형성에있는 사용을위한 온 수지 펩티드

우리는 과포화 NIPAAm 단량체 용액의 상 분리에 대해 명확하게 구획화된 구조 기반을 가진 동일한 기본 물질인 폴리(N-이소프로필아크릴아미드)(PNIPAAm)로 완전히 구성된 Janus 마이크로하이드로겔을 합성하는 프로토콜을 제시합니다. 합성된 Janus 마이크로하이드로겔은 이방성 열 반응성 및 유기친성/친수성 로딩 능력과 같은 고유한 특성을 보여줍니다.

폴리의 합성 (<em&gt; N</em&gt; 이소 프로필 아크릴 아미드) 이방성 열 응답 성 및 유기화 / 친수성로드 기능에 대한 야누스 Microhydrogels

비 교반 침전 중합 자극 성 폴리 (N- 이소 프로필 아크릴 아미드의) 좁은 크기 분포의 마이크로 겔의 합성에 대한 빠르고 재현성있는 조형 방법을 제공한다. 이 프로토콜 합성에서, 광 산란 특성과 넓은 필드 현미경 설정에서 이러한 마이크로 겔의 단일 입자의 형광 추적 증명된다.

제어 합성 및 매우 균일 한 폴리 형광 추적 (<em&gt; N</em&gt; 이소 프로필 아크릴 아미드) 미크로 겔

메 톡시 폴리에틸렌 글리콜 (B 형을 mPEG -PPheGE)의 페닐 글리시 딜 에테르 (PheGE)의 리빙 음이온 중합의 주요 단계를 설명한다. 그 결과 블록 공중 합체 마이셀 (BCM 일)은 생리 학적으로 관련 조건 얻었다에서 사일 동안 독소루비신 14 % (중량 %) 및 약물의 서방로드되었다.

π-π 스태킹 상호 작용에 의해 안정화 된 블록 공중 합체 미셀 준비하는 양친 매성 공중 합체의 음이온 중합

프로토콜 분해성 thermoresponsive hydrogels hydrazone 대량 규모, 미, 그리고 나노, 젤 나노 입자 및 nanofibers의 준비에 대 한 후자에 고분자 올리고의 cross-linking에 따라 제작에 대 한 설명 합니다.

자기 조립, 분해 Thermoresponsive Hydrogels 반응 압출, 마이크로, 통해 여러 길이 가늠 자에를 조작 하 고 전기

여기, 선물이 제조 프로세스와 semi-three-dimensional (세미-3D) 흐름 초점 미세 칩 물방울 형성에 대 한 확인 실험을 설명 하는 프로토콜.

크기 제어 폴 리 (에틸렌 글리콜) 빛 방울 장치를 통해 세미 3 차원 흐름 초점 미세의 세대

상보적인 반응성 그룹을 갖는 마이크로겔 로드는 수용액에서 상호 연결될 수 있는 능력을 가진 마이크로유체공학을 통해 생산됩니다. 아니소메트릭 마이크로젤은 구형 기반 시스템에 비해 더 큰 기공을 가진 안정적인 구조물로 막히고 상호 연결됩니다. GRGDS-PC로 변형 된 마이크로 겔은 세포 배양에 사용할 수있는 거대 다공성 3D 구조물을 형성합니다.

마이크로젤 로드의 상호 연결된 거대 다공성 3D 스캐폴드

이 프로토콜은 다양한 재생 의학 응용에 사용될 수 있는 미세다공성 어닐링된 입자 스캐폴드를 위한 마이크로겔 빌딩 블록을 합성하기 위한 일련의 방법을 기술한다.

미세 다공성 어닐링 입자 스캐폴드를위한 마이크로 겔 빌딩 블록의 미세 유체 합성

입상 스캐폴드 내에서 입자 분획의 변동성을 최소화하면 재현 가능한 실험이 용이해집니다. 이 작업은 시험관 내 조직 공학 응용 분야를 위해 제어된 입자 분획으로 과립 스캐폴드를 생성하는 방법을 설명합니다.

3D 세포 배양을 위한 미세 다공성 어닐링 입자 스캐폴드의 입자 분획 제어

배우세요 광중합 침전 반응을 이용하여 PEG 마이크로겔을 형성하는 방법을. 분자량에 따른 직경과 팽윤 비율 변화를 확인하고 약물 전달 및 조직 공학에 활용할 수 있습니다.

침전 형성 폴리에틸렌 글리콜 마이크로겔의 특성은 반응물의 분자량에 의해 제어됩니다

더 많은 동영상 탐색