2014년 1월 30일
미세 아교 세포 생물학의 성공적인 조사에 하나의 키는 CNS의 조직으로부터 분리하는 동안 생체 미세 아교 immunofunction의 보존이다. 형광 이미징, 면역 세포 화학, 및 염증성 자극 지질 다당류 (LPS)와 팸 3 CSK 4 (팸)와 ELISA 다음 미세 아교 세포의 활성에 의해 평가 매우 순수하고 immunofunctional 세포 배양에 회전 흔들림 결과를 통해 미세 아교 세포를 분리.
이 절차의 전반적인 목표는 쥐 신생아로부터 피질 미세아교세포를 분리하는 것입니다. 이것은 Muren 신생아의 피질 뇌 조직을 해부하는 첫 번째 마이크로에 의해 이루어집니다. 두 번째 단계는 혼합된 신경교세포 배양액을 체외에서 17일에서 21일 동안 성장시키는 것입니다.
다음으로, 미세아교세포는 이러한 혼합된 신경교세포(glial culture)로부터 분리된다. 마지막 단계는 추가 실험을 위해 세포 배양 플레이트에 미세아교세포 세포를 플레이트링하는 것입니다. 궁극적으로, 면역형광 현미경 검사법과 Eliza는 이 분리 프로토콜이 미세아교세포 면역 표현형과 기능을 보존한다는 것을 보여주기 위해 사용됩니다.
마이크로 미세해부와 관련된 SEP는 수행하기 어렵기 때문에 이 방법의 시각적 시연이 중요합니다. 이 절차를 성공적으로 실행하려면 속도와 정확성이 모두 필요합니다. 즉, 너무 느리면 세포 수율이 감소하고 수막을 불완전하게 제거하면 신경교 배양이 오염되고 신경교 성장을 방해합니다.
이하 MCM이라고 하는 미세아교세포 완전 배지를 준비하는 것으로 시작합니다. 강아지 한 마리당 하나의 플라스크를 준비하고 최소 1시간 동안 배양하십시오. 이 평형 단계는 성공에 필수적입니다.
다음으로 부분 표본을 준비하고 얼음에서 식힙니다. 필요한 모든 매체는 각 강아지에 대해 6ml의 MCM을 분주하고 해부 전에 섭씨 37도의 수조에서 데웁니다. 수평 기류 워크스테이션을 닦고 70% 에탄올로 현미경을 해부합니다.
다음으로 절차에 필요한 멸균된 수술 도구를 작업 영역에 놓습니다. 머리를 포획하기 위한 해부 매체와 해부를 위한 다른 매체가 있는 멸균 접시를 준비합니다. 뇌 조직을 다지기 위해 다진 매체를 자체 접시에 분배합니다.
참수와 뇌 적출 후, 갓 분리한 뇌를 해부 현미경 아래에 놓아 예의를 시각화하고 등쪽이 위로 향하고 건조하게 유지되도록 합니다. 집게 끝을 중뇌와 피질의 교차점에 삽입하여 뇌를 고정합니다. 일단 제자리에 놓이면 등쪽 피질 수막을 완전히 제거합니다.
다음으로, 미세아교세포의 순도와 수율을 최대화하기 위해 복부 수막을 제거합니다. 모든 수막 조직을 완전히 제거하는 것이 필수적입니다. 피질을 뇌의 나머지 부분과 분리한다.
피질의 복부 또는 내측에 존재할 수 있는 잔여 피질 수막을 제거해야 합니다. 수막 조직을 제거한 후 피질을 앞서 준비한 다진 접시에 넣는다. 2급 생물 안전 캐비닛에서 작업하면서 가위를 사용하여 뇌 조직을 다집니다.
다진 조직을 15mm 원추형 튜브로 옮깁니다. 수율을 최대화하기 위해 가위와 다진 접시를 각각 1ml의 다진 매체로 헹굽니다. 이 헹굼물을 모아서 다진 조직이 들어 있는 15ml 원뿔형 튜브에 넣습니다.
조직 현탁액을 1-2분 동안 방해받지 않고 그대로 두어 다진 조직이 튜브 바닥에 가라앉을 수 있도록 합니다. 이 시간이 지나면 침전된 다진 조직을 방해하지 않도록 주의하면서 2ml의 상층액을 조심스럽게 제거하고 버립니다. 이전에 데운 MCM 3ml를 다진 조직에 첨가한 다음 조직을 강력하게 트리
빙합니다.트리어가 완성되었을 때 눈에 띄는 고형 조직이 남아 있어서는 안 됩니다. 동일한 피펫 팁을 사용하여 MCM 3ml를 더 추가하여 팁에서 잔류 분쇄 샘플을 수집합니다. 일단 채취되면 다진 조직을 원심 분리하여 세포를 펠릿화합니다.
완료되면 펠릿화된 세포를 생물학적 안전 캐비닛으로 되돌립니다. 상층액을 조심스럽게 제거하고 버리십시오. 부드럽게 소생시킵니다.
2ml의 따뜻한 MCM으로 세포 펠릿을 현탁시킨 다음 이전에 준비한 플라스크에 세포 재생 현탁액을 추가합니다. 세포를 24시간 동안 배양합니다. 24시간 후, 플라스크를 손바닥에 부드럽게 두드려 조직 파편을 방해합니다.
두드리기 전과 후에 셀을 확인하여 파편이 완전히 제거되었는지 확인하십시오. 그런 다음 미디어를 새 MCM으로 교체하고 플라스크를 인큐베이터에 다시 넣습니다. 성장과 오염을 모니터링하기 위해 매일 세포를 확인하십시오.
약 17일에서 21일 후에 미세아교세포는 세포가 준비되었는지 확인하기 위해 수확할 준비가 되고 반전 위상차 현미경으로 검사합니다. Microglia는 수확할 준비가 되었습니다. 약 40%의 유창성에 도달하면 다른 세포 위에 단층으로 성장하는 작고 밝은 구형 세포로 나타납니다.
분리하기 위해 미세아교세포는 플라스크를 실험실 벤치에 세게 두드립니다. 이 교반은 미세아교세포의 낮은 접착 특성으로 인해 미세아교세포를 다른 신경교세포와 분리하는 데 도움이 됩니다. 파라폼으로 플라스크 캡을 밀봉하고 온도 조절이 가능한 비가습 로터리 셰이커를 사용하여 혼합된 아교세포 배양물을 5시간 동안 회전시킵니다.
이 시간이 지나면 미세아교세포가 플라스크 표면에서 들어 올려졌는지 육안으로 검사합니다. 반전 위상차 현미경을 사용하여 미세아교세포는 밝은 구형의 자유 부동 세포입니다. 플라스크 바닥에 부착된 성상세포(astrocyte)와 희소돌기아교세포(oligodendrocyte)의 잔류 층이 있을 것입니다.
다음으로, 미세아교세포를 함유한 상등액을 멸균 원추형 원심분리기 튜브와 입천장에 수집합니다. 소생. 따뜻한 미세아교세포 성장 배지에 미세아교세포 펠릿을 현탁시키고 혈구 분석기 플레이트를 사용하여 세포 농도를 측정합니다. 플라스틱 또는 멸균 유리 커버의 24웰 플레이트 형식의 셀은 24시간 후에 미끄러집니다.
미디어를 따뜻한 새 MGM으로 교체하여 떠다니는 세포와 파편을 제거합니다. 이 단계는 세포 생존에 매우 중요하며 정지 상태인 미세아교세포를 유지하기 위해 미세아교세포는 미세아교세포의 순도를 평가하기 위해 이 재공급 단계 직후 실험할 준비가 되어 있습니다. GFP를 내인성으로 발현하는 미세아교세포에서 유래한 세포 배양물을 대식세포 항원 IBA 1에 대해 염색하고 dapi로 반대 염색했습니다.
세포핵을 시각화하기 위해 세포의 95% 이상이 GFP IBA 1 및 dpi의 공동 국소화를 나타냈습니다. LPS로 세포에 도전한 후, 미세아교세포는 작은 bi 표현형에서 아메바와 같은 모양으로 뚜렷한 형태학적 변화를 채택했습니다. P 65에 대한 면역 파이토케미컬 염색은 정상적인 조건에서 P 65가 세포질 전체에 걸쳐 분산되어 있다는 증거를 제시합니다.
반면, Pam P 65에 2시간 동안 노출된 후 면역 반응은 세포핵으로 극적으로 국소화를 전환하여 분리된 미세아교세포가 생화학적 면역 기능을 유지한다는 것을 확인했습니다. 전염증성 사이토카인 TNF 알파의 분비는 PAM 또는 LPS에 노출된 후 측정되었습니다. 이 비디오를 시청한 후에는 최상의 결과를 위해 미러 신생아로부터 피질 미세아교세포를 분리하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다.
무균 기술을 유지하고 절개된 피질 영역에서 수막 조직을 철저히 제거하는 것이 중요합니다.
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이 기사는 마우스 신생아의 피질 미교세포를 분리하는 절차를 설명하며, 이 과정에서 미교세포의 면역 기능을 보존하는 중요성을 강조합니다. 분리 방법에는 뇌 조직의 미세 해부, 혼합 교세포의 배양, 그리고 실험을 위한 미교세포의 분리가 포함됩니다.
Isolation of functional microglia from murine neonates enables mechanistic de-risking in neuroimmunology target validation by preserving immunophenotype and responsiveness to inflammatory stimuli. This ex vivo model supports predictive confidence in early discovery by maintaining quiescent and activated states relevant to CNS disease pathways. The method provides a disease-relevant system for screening immunomodulatory compounds and assessing target engagement in preclinical workflows.
The isolation method fits within the discovery continuum from target validation to lead identification by providing a reproducible microglial platform for mechanism-of-action studies and phenotypic screening in neuroimmunology.