December 13th, 2013
여기에 설명된 프로토콜은 전체산 망막 제제의 구조적 평가를 위한 것입니다. 여기에는 조직 해부에 대한 설명, 친수성 폴리테트라플루오로에틸렌(PTFE) 멤브레인 삽입물에 장착, 형광 마커를 사용한 볼루스 로딩, 세포 및 시냅스 구성 요소의 면역조직화학 분석을 위한 카르보디이미드 및 파라포름알데히드와의 고정 비교가 포함됩니다.
이 절차는 마우스 망막 조직을 사용하여 섬세한 신경 조직을 안정화하여 구조적 무결성을 보존하는 방법을 보여줍니다. 면역조직화학적 염색의 여러 단계에서 먼저 눈의 핵을 생성하고 각막을 제거하고 공막에서 망막을 분리합니다. 조직을 평평하게 하기 위해 망막 안구컵을 절개합니다.
그런 다음 조직의 무결성을 보존하기 위해 직접적인 조작 없이 흡입 전달을 사용하여 망막을 링 강화 멤브레인에 부착합니다. 이제 염색을 위해 링을 다중 웰 플레이트로 옮깁니다. 우리의 결과는 이 기술이 살아있는 조직에서 효과적으로 사용될 수 있고 절개된 망막을 취급하는 기존 금속에 비해 시냅스 단백질의 이미징을 위한 우수한 기질을 제공한다는 것을 보여줍니다.
이러한 기술을 사용하면 최소한의 물리적 조작으로 섬세한 조직을 전달할 수 있습니다. 이렇게 하면 왜곡 및 손상 가능성이 줄어듭니다. 우리는 망막 변성 모델인 RD one 마우스의 평평한 장착 조직에서 기록해야 했을 때 이 아이디어를 처음 떠올렸으며, 이 마우스 망막은 돌연변이 Chief로 인한 광범위한 세포 손실로 인해 매우 얇고 취약합니다.
저희 연구실의 박사후 연구원이 저와 함께 절차를 시연할 것입니다. 먼저, 마취된 마우스의 눈에 핵을 삽입하고 안구를 산소가 공급된 버퍼 링거 용액으로 옮깁니다. 각막을 제거하려면 집게로 가장자리에서 눈을 잡은 다음 ora serrata를 따라 원형 경로를 자릅니다.
볼루스 주사 및 전기 생리학적 기록을 위해 집게로 렌즈를 당겨 빼냅니다. 혼합된 가장자리 집게를 사용하여 가능한 한 많은 유리체를 제거합니다. 이제 겸자로 공막을 단단히 잡고 아이컵을 고정합니다.
두 번째 집게 세트를 망막과 아이컵 사이에 놓습니다. 집게를 둘레를 따라 천천히 움직입니다. 망막과 아이컵 사이의 시신경을 절개하고 가위로 아이컵을 제거합니다.
망막 주변부에서 시신경까지 절개합니다. 또는 망막 전체를 사용하려면 주변부에서 시신경까지 반쯤 절개하여 홀더를 짧게 만듭니다. 선반으로 과도한 부분을 제거하십시오.
그런 다음 고운 사포로 거친 표면을 닦습니다. 링 아래에서 발을 제거합니다. 플라스틱 피펫의 좁은 끝을 자릅니다.
그런 다음 일부 용액이 있는 조직을 멤브레인으로 옮깁니다. 망막을 펼치면서 용액을 서서히 제거하고 조직을 펼칩니다. 이제 신경절 세포가 위를 향하도록 망막을 막에 부착합니다.
1밀리리터 주사기의 고정 끝을 잘라 조직 바로 아래에 놓습니다. 플런저를 약 0.3밀리리터의 부피로 뒤로 당겨 멤브레인 내의 조직을 물리적으로 맞물립니다. 약 1메가의 저항을 사용하여 일부 boro silicate capillary 피펫을 당깁니다.
그런 다음 각 패치 피펫의 끝을 부드럽게 부러뜨립니다. 다음으로, 0.3 마이크로 리터의 셀렉틴 스톡 염색 용액을 10 마이크로 리터의 힙 완충 링거 용액에 첨가합니다. 이제 멤브레인을 따뜻한 산소화 힙 완충 링거 용액으로 관류된 기록 챔버에 넣습니다.
염료가 포함된 피펫을 microm 매니퓰레이터를 사용하여 내부 제한 멤브레인에 대고 배치합니다. 내부 제한 멤브레인을 관통하도록 피펫을 더 전진시킵니다. 그런 다음 염색 용액을 단일 또는 여러 대상 위치에 주입합니다.
이제 조직이 주사에서 회복될 때까지 10분 동안 epi 형광 조명 아래에서 볼 수 있습니다. 원하는 경우 삽입물을 유리 바닥 배양 접시로 옮기고 망막 면이 아래로 향하게 놓습니다. 표본을 촉촉하게 유지하기 위해 힙 용액 한 방울을 추가합니다.
또한 플라스틱 링 둘레에 진공 그리스 세 점을 놓아 인서트를 배양 접시에 단단히 고정합니다. 고정 후 접시를 현미경 스테이지로 옮기고 멤브레인을 자당 구배 용액에 담그십시오. 플라스틱 삽입 링에서 멤브레인을 절제합니다.
Kim 물티슈로 용액을 최대한 많이 제거하고 망막이 위를 향하도록 하여 param에 놓습니다. 조직이 있는 파라폼을 저온 유지 챔버로 옮기고 OCT 배지 한 방울을 추가합니다. 급속 냉동고 장치를 사용하여 동결을 가속화하십시오.
얼어붙은 샘플을 분리하고 뒤집습니다. 이제 과도한 냉동 OCT를 잘라냅니다. 홀더에 부착될 샘플 주위 3면과 측면에서 약 2mm를 남겨둡니다.
노출된 망막 쪽을 OCT 한 방울로 덮어 부착된 부위를 비워둡니다. 망막 조직을 포함하는 막을 동결합니다. 콜드 홀더 링에 OCT 한 방울을 떨어뜨립니다.
즉시 얼어붙은 샘플을 드롭에 삽입하십시오. 섭씨 음의 19도에서 10-20미크론 절편을 절단하고 따뜻한 폴리리신 접착 슬라이드에 놓습니다. 부착된 섹션이 있는 슬라이드를 섭씨 41도의 가열 플랫폼에 어둠 속에서 2-3분 동안 놓습니다.
그런 다음 샘플을 섭씨 영하 20도에서 보관하십시오. 이 실험은 망막 혈관 구조를 여러 망막층에 걸쳐 있는 정교한 혈관 네트워크로 빠르고 간단하게 특성화하는 방법을 보여줍니다. iso selectin의 볼루스 로딩과 sulfa rumine 이멀젼 라벨링을 결합하면 살아있는 조직을 망막에서 거의 즉시 시각화하고 스캔할 수 있으며, 혈관을 표재층에서 심층까지 라벨링할 수 있습니다.
상대적으로 잘 확산되는 것과는 대조적으로, SRH는 내부 제한 막을 가로질러 잘 투과되지 않습니다. 시냅스 단백질을 라벨링할 때, 예를 들어, 시냅스 마커에 대한 카비미드 면역형광 염색으로 짧은 기간 동안 고정한 후, 파라 포름알데히드를 사용한 기존 고정에 비해 카비미드를 사용한 고정의 몇 가지 장점이 있습니다. IPL의 PSD 95는 개별 시냅스를 구별하는 것과 일치하는 밝은 반점 모양을 가졌습니다.
대조적으로, 기존의 파라폼 알데히드 고정제를 사용할 때 시냅스 구성 요소의 식별이 덜 명확합니다. 망막 저온 유지 장치 절편에서도 유사한 결과가 얻어졌습니다. 이 비디오를 시청한 후에는 이 멤브레인에 섬세한 조직을 장착하는 방법과 제제 원 마스터에 세포 화학적 염색을 적용하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다.
망막을 필터에 부착하는 데 15분이 걸립니다.
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이 프로토콜은 마우스 망막 조직을 사용한 전체 장착 망막 준비의 구조적 평가 방법을 설명합니다. 시냅스 단백질 이미지화를 위해 조직 무결성을 유지하기 위한 해부, 장착 및 염색 과정을 상세히 설명합니다.
This protocol addresses a critical challenge in neuroscience drug discovery: preserving the structural integrity of fragile neural tissue during immunohistochemical processing. By enabling reliable visualization of synaptic proteins and vascular networks in retinal wholemounts, it supports target validation and mechanistic de-risking in neurodegenerative disease models. The method enhances predictive confidence in preclinical assays by minimizing tissue distortion artifacts that could confound target engagement readouts.
The method fits within the discovery continuum from target hypothesis testing in neural tissue to preclinical validation of modulator effects on synaptic integrity and vascular function.