Name: 헬싱키 쥐 미세 측벽 동맥류 모델 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-10-12T15:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 53 s
Description: 학습하세요 헬싱키 쥐 미세 측벽 동맥류 모델의 수술 기법을 통해 실험적 융기 동맥류를 생성하는 방법을. 이 모델은 신경외과 연구에서 재현 가능한 동맥류 연구에 활용됩니다.

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저자는 제시된 연구의 설계 및 수행에 대해 전적으로 책임을 집니다. Marbacher 박사는 스위스 국립과학재단(PBSKP3-123454)의 보조금을 지원받았습니다. 저자는 이해 상충이 없음을 선언합니다. 
연구 및 원고 준비에 대한 저자의 기여는 다음과 같습니다. 개념 및 디자인 : SM, JM, JF. 데이터 수집 : SM, EA, JF. 데이터 분석 및 해석: SM, JF, JM. 기사 초안 작성: SM, JF, JM. 문서를 비판적으로 수정: JH, MN. 통계 분석: SM, JF. 학습 감독: JF, JH, MN.

참고 : 남성의 Wistar 쥐 (평균 체중 : 356 ± 44g, 10~14주 이전) 22 ~ 24 ° C와 12 시간 조명 / 펠렛 다이어트에 무료로 액세스, 일반 수돗물 어두운 사이클 동물 실에 보관 하였다 또한 제도적 지침을 준수 인간적인 치료를 받았다. 실험은 검토하고 핀란드 헬싱키 대학의 동물 복지위원회에 의해 승인되었다. 참고 : medetomidine 하이드로 클로라이드 (0.5 ㎎ / ㎏)와 케타민 염산염의 복강 내 주사 (50 ㎎ / ㎏)의 체중 적응 피하 주사로 쥐를 마취 다음 데모에서는 우리의 수술 방법은 다음과 같습니다. 발가락 - 핀치 반사의 부족에 대한 테스트는 쥐가 완전히 마취되어 있는지 확인합니다. 예를 클로르헥시딘에 대한, 중 알코올이나 물, 눈 연고를 적용 수술 부위를 클립하고, 적절한 소독제로 피부를 청소하십시오. 보호 복, 헤드 커버 및 얼굴에 넣어 손을 씻으십시오마스크 및 무균 수술 장갑. 무균 수술 환경을 유지하는 수술 보조 지원을하고 (표 1에 표시) 수술의 특성을 문서화 할 수 있습니다. 유해 자극 (발가락 핀치 테스트)에 호흡, 심장 박동, 반응에 따라 수술 중 마취 15 분마다의 깊이를 모니터링합니다. 부 프레 노르 핀 (0.03 ㎎ / ㎏)의 피하 주사는 수술 후 진통을위한 것으로 매 12 시간 필요한 경우 반복 하였다. 1 하드웨어, 소모품, 및 위치 <ol><li> 조용하고 작은 동물 수술 방을 유지 무균, 23 + 3 ° C의 실내 온도를 유지한다. 다음과 같은 최소한의 장비가 필요한 실험 동맥류 수술을 수행하려면 : <ol><li> 이상적으로 보조 범위와 디지털 현미경 카메라가 장착 된 테이블 위에 수술 현미경을 사용합니다. 실험실 벤치를 보호하기 위해 비 다공성 재사용 운영 표면과 청소 가능 악기 표면을 사용합니다. </li><li&gt; 같은 피부 소독제, 생리 식염수, 크고 작은 거즈 면봉과 9-0 마이크로 봉합, 5-0 비 흡수성, 3-0 흡수성 봉합사를 포함하여 봉합사와 같은 소모품을 준비합니다. </li><li> 외과 용 가위, 조직 겸자, 연부 조직 확장기 또는 자체 유지 견인기, 두 개의 모기 외과 클램프 : 다음과 같은 표준 수술 도구를 사용합니다. </li><li> 곡선 미세 바늘 홀더, 곡선 하나와 두 개의 직선 microforceps하고, 직선 또는 곡선 microscissor ​​: 포함 기본 미세 악기 세트를 사용합니다. </li><li> 수술 중 끈적하고 깨끗한 장비를 유지하기 위해 멸균 식염수로 가득 신장 접시에 미세 악기를 보관하십시오. 신장 요리는 고무 매트 또는 마이크로 악기의 선단의 손상을 방지하기 위해 수술 장갑으로 패딩된다. 모든 공급 멸균 및 절차는 실험 동물에서 생존 수술에 대한 현재의 권장 사항에 따라 무균 기술로 수행되었는지 확인 <sup&gt; 8-10. </li><li> 또한, 혈관 클립 어플리케이터 세 외상 임시 혈관 클램프를 사용한다. 그것은 사용 클램프 래트 대동맥 매우 얇은 벽으로 부상을 방지 낮은 닫는 힘이 중요하다. 또한 반 밀리미터 스케일 바, 작은 색깔의 고무 패드, 짧은 무딘 바늘 통치자를 준비합니다. </li><li> , 앙와위에서 쥐를 배치로 전면을 고정화하고 피부에 스트레칭이나 압축을 적용하지 않고 수술 테이프로 발을 뒷다​​리, 그리고 뒷면의 목재 영역 아래에 배치하여 두꺼운 마커 또는 소작 펜으로 자신의 등을 구부리십시오. 그것은 미세 문합을 용이 infrarenal 대동맥 복막 노광 및 접근성을 향상시키기 위해 가능한 한 많은 요추 전만을 얻는 것이 중요하다. 이 위치는 복부 대동맥 동맥류 작성을 권장하지만, 흉부 이식 수확에 필요한되지 않습니다. </li></ol></li></ol> 2 이식 수확 <ol><li> U파인더 전신 마취, 흉강을 열고 (이식 허혈 시작 시간). 쥐가 다음 단계를 진행하기 전에 응답하지 않는 것을 확인하기 위해 유해 발가락 핀치를 적용합니다. midventral 복벽을 통해 자르고, 단지 간 위에 진동판을 식별하고, 흉곽에 대한 액세스를 허용하도록 진동판의 하부에서 결합 조직을 잘라. 리브의 실수로 큰 위, 아래로 무딘면, 그냥 일cm 왼쪽과 흉곽의 정중선의 오른쪽 흉강을 엽니 다. 폐는 심장의 오른쪽에 동원된다. 케타민 hydrochloride.Pulmonary 트렁크 왼쪽 쇄골 하 정맥의 심장 내 주입, 왼쪽 뇌 대정맥과 했나봐하여 쥐를 희생하고 azygous 정맥 근위 흉부 대동맥의 수확을 방해. </li><li> 꼬리는 눈에 띄는 혈관에 마이크로 가위 microforceps를 사용하여 하행 흉부 대동맥 박리를 시작하는 좋은 엔트리 포인트가있다. </li><li> 흉부 대동맥 B를 추적위쪽으로 모기 외과 클램프와 부드러운 무딘 후퇴와 절개에 의한 대동맥 궁에 가슴의 등쪽 벽에서 ACK. </li><li> 클램프 한 다음 가위로 정맥을 잘라. 혈관에 클램프를 유지하고 기본 대동맥 궁을 노출 트랙터로 사용합니다. </li><li> 단지 대동맥을 떠나 첫 번째 늑간 동맥 위에 비 흡수성 6-0 실크 봉합사를 놓습니다. </li><li> 단지 왼쪽 쇄골 하 동맥 아래에 다음 합자 아래 하행 대동맥을 잘라. 트리밍은 수직 표준화 동맥류 형상을 얻기 위해 수행 될 수 있고, 또는 필요한 경우, 대동맥 동맥류와의 축 사이의 소정 각도를 얻기 위해. 폭과 길이 이식을 측정합니다. NOTE : 수확 역시 즉시 이식받는 쥐에 이식하거나, 상기 그래프트 벽의 탈세 포화를 달성하기 위하여 처리 될 수있다. Decellularized 이식은 나중에 다시 주입 (그림 1)까지 -4 섭씨 온도에서 저장 될 수있다. 목동맥류 벽의 전자 탈세 포화는 11를 확대 동맥류 걸리기 쉬운 것으로 나타났다. </li></ol> 3 이식 탈세 포화 <ol style="margin-left: 40px;"><li> 정지 기증자 이식 인산염에 C ° -4 완충 식염수. </li><li> 다음 날, 이식을 녹여 상온에서 정제 및 탈 이온수로 세척하고, 0.1 % 황산 도데 실 나트륨에 37 ° C에서 10 시간 동안 배양한다. </li><li> 마지막으로, 교반과 함께 황산 도데 실 나트륨 처리 이식을 세 번 씻어 인산염 완충 생리 식염수에 다시 냉동 및하시오 -4 ° C 사용할 때까지. </li></ol> 4 동맥류 만들기 <ol style="margin-left: 40px;"><li> 복부 대동맥의 해부 <ol><li> 동물을 마취 한 후 수술 부위에서 털을 잘라 내고 적합한 살균제로 피부를 깨끗하게. 종래의 피부 절개에 토인 핀치 응답의 부족에 대한 시험. 성기에 절개 1cm 근위 시작 전N midventral 위치 (단계 : 시작 시간). 조심스럽게 기본 근육으로부터 피부를 구분합니다. 흉골 아래 1~2cm 최종 해부. </li><li> 조심스럽게 단단히 기본 장기에 손상을 방지하기 위해 기본이되는 복부 근육을 잡아 당깁니다. 칼 모양의 프로세스에 위쪽으로 원격 교육의 알바을 따라 종 방향 절단을 확장 및 방광의 수준에서 꼬리 방향으로 끝난다. </li><li> 부드럽게 복막 공간에 대한 액세스를 용이하게하기 위해 그것을 비우기 방광에 압력을 적용한다. </li><li> 소장하고 오른쪽 또는 왼쪽으로 눈에 띄는 맹장 이동합니다. 복강의 왼쪽 하단에있는 대장에게 즉 하행 결장을 확인합니다. </li><li> 등쪽 체벽의 넓은 노출을 허용하는 소장 및 두개골 방향으로 하강 콜론 사이의 인대를 잘라. 떨어져 창자를 보유하는 자체 유지 견인기를 놓습니다. </li><li> 엔드 - 투 - 사이드 동맥류 문합 난의 이상적인 위치신장과 iliolumbar 맥 사이의 레벨에있는 s의. 복부 대동맥은 지방 조직에 포함 된 복막을있다. 해부하는 동안 쌍 거의 투명 요관 및 고환의 혈관에 특히주의를 기울이십시오. </li><li> 내장의 추가 후퇴가 필요한 경우, 큰 스왑 거즈를 사용한다. 쥐의 허리 아래 소작 펜 또는 유사 물체를 배치하여 위치하는 동안 유도 요추 전만은 크게 장 후퇴의 필요성을 감소시킨다. </li><li> 등쪽 체벽의 복부 표면은 얇은 정수리 복막으로 덮여있다. 이가 개방되면, 바로 아래 대동맥을 시각화. 인접한 큰 혈관에서 복부 대동맥 조심 날카로운 무딘 절개 중에 혈관 벽의 손상을 방지하기 만 외막을 파악. </li><li> 가끔, 작은 척추 동맥은 복부 대동맥의 등면에서 분절 선박으로 일어나 준비를 방해합니다. 혈관의 결찰 및 절단은 옛 성은입니다동맥류 봉합 동안 역행 흘러 나오지 않도록 DED. 곡선 형 마이크​​로 핀셋을 사용하면 깊이 합자 배치를 용이하게 할 수있다. </li></ol></li><li> 엔드 - 투 - 측면 문합 <ol><li> 복부 대동맥 아래 색깔의 고무 패드를 넣고 작은 거즈 면봉을 대다. 계획된 문 합부의 수준에서 느슨한 결합 조직 및 외막을 제거합니다. </li><li> 첫째, 다음 근위부 문합에 복부 대동맥의 원위부 클램프 (대동맥 차단 시간을 시작). 이것은 용기의 충전을 보장 회사 및 후속 arteriotomy을 용이하게한다. </li><li> 직선 또는 곡선 마이크로 가위를 사용하여 arteriotomy를 수행합니다. 마이크로 집게 타원형를 잘라하기 위해 혈관 벽의 아주 작은 조각을 보유하고있다. </li><li> 끝이 무딘 바늘을 사용하여 두 방향으로 식염수로 완전히 동맥을 세척합니다. </li><li> (arteriotomy의 근위 및 원위 단부에서이 엔드 - 투 - 측면 문합이 봉합 제를 배치 문합 시작 시간). 가능하면 마이크로 포셉으로 혈관 벽의 잡지 마십시오. 각 봉합은 혈관벽의 모든 층을 통해 배치되어 있는지 확인합니다. </li><li> 중 연속 또는 중단 봉합사로 봉합을 수행합니다. 중단 봉합을 선택하면 먼저 뒷면 구 시방 봉합을 배치합니다. 후속 봉합사는 봉합사 최초 인접 시작 이격 될 수있다. 조심스럽게 외막을 잡고. 내막의 압착 / 파지을 피하십시오. </li><li> 다시 벽이 완료되면 잘못된 봉합의 문합의 endoluminal 부분을 확인합니다. 전방 측에 동일한 순서로 동일한 절차를 수행한다. 봉합 당 세 노트의 총의 첫번째가 너무 꽉 회사가 아닌 지 확인합니다. </li></ol></li><li> 지혈 및 폐쇄 <ol><li> 측면 문합에 단부 (끝 문합 시간)을 완료 한 후, 생리 식염수와 사이트 린스 및 (역류를 허용하는 제 1 단부 대동맥 시간과 종료 그래프트 허혈 TI 클램핑을 원위 클램프를 제거나). </li><li> 명백한 출혈 여분 스티치가 필요할 수있다 역류로부터 발생하는 경우 (지혈 개시 시간). 마이너 스며 경우, 거즈 면봉의 작은 조각을 이용하여 출혈 사이트 위에 부드러운 압력으로 지혈을 달성한다. </li><li> , 근위 혈관 클램프를 제거 한 번 더 문 합부를 씻어하고, 동맥류 돔에서 합자의 나머지 끝을 잘라. </li><li> 피크 동맥 맥파 중 동맥류의 볼륨 증가의 관찰에 의해 동맥류의 개통을 확인합니다. 직접 &quot;착유 테스트&quot;를 통해 말초 복부 동맥의 개통을 평가합니다. </li><li> 플라스틱 시트와 아래에있는 작은 거즈 면봉을 제거합니다. 생성 된 동맥류 내에서 맥동 혈액 소용돌이는 명확하게 볼 수 있습니다. </li><li> 작은 돌아 다니며 여전히 존재하는 경우 (지혈의 종료 시간) 추가 지혈을위한 지방 조직 또는 Spongostan의 작은 조각으로 문합 주위 봉합 라인을 커버. </li><li> 연부 조직 확장기와 거즈 면봉을 제거합니다.다시 올바른 위치에 소장, 맹장, 그리고 지방 질량을 놓습니다. </li><li> 5-0, 4-0, 또는 3-0 3-0 흡수성 polyfilament 봉합 (끝 동작 시간)으로 연속 봉합 기술을 사용하여 피부에 상처 폐쇄 다음 흡수성 또는 비 흡수성 봉합사를 사용하여 중간 선 복부 근육을 닫습니다. 참고 : 우리의 경험 쥐 비 흡수성 모노 필라멘트 봉합사보다 흡수성 피부 봉합을 허용합니다. </li></ol></li></ol>

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저자는 사용 된 약물 물질 또는 장치 중 임의 재정적 또는 상업적 관심이 없다.

주머니 모양 뇌동맥 동맥류의 복잡한 생물학에 대한 우리의 이해의 발전은 동물 모델 3,12,13 환자의 샘플 및 실험 연구에 실험 연구에 의해 보완 역학 및 임상 데이터의 분석에 따라 달라집니다. 예를 들면 쥐와 같은 작은 동물은 본질적으로 실험 주택의 낮은 비용과 관련, 전문 장비의 필요성을 줄일 수 있습니다. 쥐의 측벽 동맥류의 미세 창조를위한 60 분 미만의 평균 총 수술 시간은 토끼, 개 2,14,15에서 더 복잡한 미세 정맥 파우치 동맥 분기 동맥류의 생성에 사용되는 시간보다 훨씬 짧다. 낮은 비용과 동맥류 창조의 빠른 방법의 장점은 실험의 더 많은 수의 후속 증가 통계 학적으로 연구의 전도를 용이하게 할 수있다. 또한, 현재의 뮤린 모델이 성공적 researc 응답하도록 구현되었다<html> 형질 전환 동물 3,4를 포함하여 더 정교한 실험 방법을 필요로하는 시간 질문. 측벽 동맥류의 창조를위한 마우스를 사...

주머니 모양 뇌동맥 동맥류의 파열은 뇌졸중, 영구적 인 신경 손상 또는 사망에 이르는 생명을 위협하는 출혈이 발생합니다. 파열이 중 미세 클리핑이나 혈관 동맥류 폐색을 방지 할 수있다. 동맥류 성장 및 파열을 방지하기 위해 의료 치료를 아직 확립되어 있지 않다. 주머니 모양 동맥류에 대한 실험 모델은 동맥 동맥류 및 새로운 치료 장치 및 전략의 테스트를위한 생물학을 연구하기 위해 필요하다. 이러한 목적을 위해, 다른 종에서 여러 가지 모델이 개발 한 간행되었다. 돼지, 개, 토끼의 큰 동맥류 모델은 바람직 복잡한 동맥류 아키텍처 1,2에서 혈관 혁신을 테스트하는 데 사용됩니다. 동맥류 뮤린 모델은, 반면에, 유전자 변형 종 3,4 연구 질문 테스트 허용 세포 및 분자 생물학에서 동맥류의 설명을 용이하게큰 종 1보다 훨씬 더 나은 수준. 혈관 트랜스 경동맥 및 트랜스 - 장골 장치 배포가 큰 쥐 제한 (&gt; 400~500g) 및보다 작은 2.0 mm 직경 5,6에서 1.5 mm를 스텐트 있지만, 스텐트는 복부 대동맥에 직접 삽입을 통해 배치 할 수 있습니다 실험 동맥류를 숨겨 세그먼트. 쥐 미세 복부 대 동맥류 측벽 모델을 사용하여 이전 작업은 테스트 소설 전성 장치에있는 그것의 타당성 및 동맥류 생물학 3,7의 분자 기초를 공부에서의 사용을 보여 주었다. 현재 게시 된 실험 동맥류 모델의 대부분은 고가의 장비, 특수 환경 (투시 기능을 예를 들면 멸균 조작 실), 중재 적 방사선 능력, 비싼 종의 사용을 필요로한다. 이러한 요구 사항은 이러한 모델의 광범위한 사용을 제한하고, M 개의 상이한 실험실에서 다른 모델의 사용으로 이어질akes 데이터 비교 및​​ 메타 분석 불가능하지는 않지만 어렵다. A, 간단한 강력하고 저렴한 실험 모델은 상이한 기관에서 유사한 결과를 얻기 위하여 여러 실험실에서 표준화 된 방식으로 사용할 수있는 표준화 된 도구로서 필요하다. 이러한 목적을 위해, 우리는 래트 대동맥 측벽 주머니 모양 동맥 동맥류 모델을 만들었다. 이 보고서의 목적은 필요한 장비에 대한 단계별 절차 지침, 정보를 제공하고, 쥐의 복부 대동맥 측벽 동맥류의 성공적인 미세 창조를위한 중요한 해부학 및 수술 특성을 설명하는 것입니다.

<table><tbody><tr><td>메데토미딘</td><td></td><td></td><td>모든 제네릭</td></tr><tr><td>케타민</td><td></td><td></td><td>모든 제네릭</td></tr><tr><td>부프레노르핀</td><td></td><td></td><td>모든 제네릭</td></tr><tr><td>인산염 완충 식염수</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>나트륨 도데실 설페이트(0.1%)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>3-0 흡수성 봉합사</td><td>Ethicon Inc., USA</td><<td>a name="RANGE! C7">VCP824G</a></td><td></td></tr><tr><td>5-0 비흡수성 봉합</td>사 <td>Ethicon Inc., 미국</td><td>8618G</td><td></td></tr><tr><td>6-0 비흡수성 실크 봉합</td>사 <td>B. Braun, 독일</td><td>C0761060</td><td></td></tr><tr><td>9-0 나일론 마이크로 봉합</td>사 <td>B. Braun, 독일</td><td>G1118471</td><td></td></tr><tr><td>Spongostan</td><td>Ethicon Inc., 미국</td><td>MS0002</td><td></td></tr><tr><td>작동 현미경</td><td>Leica, 독일</td><td>M651</td><td></td></tr><tr><td>디지털 현미경 카메라</td><td>소니, 일본</td><td>SSC-DC58AP</td><td></td></tr><tr><td>표준 수술 기구</td><td>B. 브라운, 독일</td><td>다중</td><td>참조 프로토콜 1.4</td></tr><tr><td>미세 수술 기구</td><td>B. 브라운, 독일</td><td>다중</td><td>참조 프로토콜 1.5</td></tr><tr><td>혈관 클립 애플리케이터</td><td>B. 브라운, 독일</td><td>FT495T</td><td></td></tr><tr><td>임시 혈관 클램프</td><td>B. Braun, 독일</td><td>FT250T</td><td></td></tr><tr><td>Graph Pad Prism 통계 소프트웨어&nbsp;</td><td>Windows용 GraphPad Software, San Diego, California, USA</td><td></td><td>V 6.02</td></tr></tbody></table>

헬싱키 쥐 미세 측벽 동맥류 모델

The Helsinki Rat Microsurgical Sidewall Aneurysm Model

실험 동맥류 모델은 임상에 도입되기 전에 새로운 수술 및 혈관 내 치료 방법 및 장치를 테스트하기 위해 필요하다. 또한, 실험 모델은 주머니 모양 동맥류의 파열로 이어지는 복잡한 동맥류 생물학을 규명하기 위해 필요하다. 주머니 모양 동맥류에 대한 실험 모델의 몇 가지 다른 종류의 다른 종에 설립되었다. 그들 중 대부분은, 그러나, 그들의 광범위한 사용을 제한하는, 특별한 기술, 고가의 장비 또는 특수 환경을 필요로한다. A, 간단한 강력하고 저렴한 실험 모델은 다양한 기관에서 표준화 된 방식으로 사용할 수있는 표준화 된 도구로서 필요하다. 미세 쥐의 복부 대 동맥류 측벽 모델은 새로운 혈관 내 치료 전략 및 표준화하고 저렴한에서 동맥류 생물학의 분자 기준을 모두 공부 할 수있는 가능성을 결합방법. 모양, 크기, 형상에 의한 표준화 된 이식은 기증자 쥐의 하행 대동맥에서 수확 후 syngenic받는 사람 쥐에 이식된다. 동맥류는 지속적으로 엔드 - 투 -면을 봉합하거나 infrarenal 복부 대동맥에 9-0 나일론 봉합사를 중단한다. 우리는 필요한 장비에 대한 단계별 절차 지침, 정보를 제공하고, 쥐의 복부 대동맥 측벽 동맥류의 성공적인 미세 창조를위한 중요한 해부학 및 수술 세부 사항을 논의.

파일럿 시리즈는 14 쥐를 구성. 그 후 84 동물의 총은 2012 년 추가 29 동물 동맥 주머니 모양 이식을위한 기증자 역임 월과 9 월 사이에 몇 가지 연구 프로젝트에 대한 발표 프로토콜에 따라 운영되었다. 나머지 실험 수확과 동일한 성별, 스트레인, 체중, 연령의 래트를 사용하여 이전의 실험에서 저장된 전처리 이식편을 사용하여 수행 하였다. 체중, 전체 운전 시간, 대동맥 차단 시간, 문합 창조를위한 시간, 시간은 문합 작성, 이식 허혈 시간 후 지혈하고, 창조의 시간 (동맥류의 폭과 길이)에서 동맥류의 크기가 기록 및 작성 사례 보고서 양식에서 추출 된 . 모든 특성을 요약하면 표 1과 그림 1에서 시각입니다. 아브 인해 혈전증의 제 2 동작을 시행 한 동물을 제외문 합부에하면 악 대동맥 원위부는 시술 전후 사망률이나 이환율 없었다. 수술 시간을 평균하면보다 52 분 (52 ± 12 분...

쥐의 미세수술 측벽 동맥류는 복부 대동맥에 대한 대동맥 이식편의 종단 간 문합에 의해 생성됩니다. 단계별 지침을 제시하고 성공적인 실험적 낭골 동맥류 생성을 위한 해부학적 및 외과적 세부 사항에 대해 논의합니다.

Experimental saccular aneurysm models are necessary for testing novel surgical and endovascular treatment options and devices before they are introduced ...

헬싱키 쥐 미세외과적 측벽 동맥류 모델입니다. 다음 영상에서는 핀란드 헬싱키 대학교 병원 신경외과에서 개발한 쥐 미세외과적 측벽 동맥류 모델의 가장 중요한 특징들에 대해 심도 있게 설명합니다. 단계별 시술 지침과 필수 장비에 대한 정보를 제공하며, 쥐의 하드웨어 및 소모품을 이용해 미세외과적 측벽 동맥류를 성공적으로 생성하기 위한 중요한 해부학적 및 외과적 세부 사항에 대해 논의합니다.소동물 수술실은 정숙하고 무균 상태를 유지해야 하며, 실내 온도는 23 ± 3°C로 유지해야 합니다. 실험적 동맥류 수술을 수행하기 위해서는 다음과 같은 최소한의 장비가 필요합니다. 탁상용 미세수술 현미경에는 보조 현미경과 디지털 현미경 카메라가 함께 구비되는 것이 이상적입니다.비다공성 재사용 가능 수술 표면과 세척 가능한 기구 표면을 사용하여 피부 소독제, 생리적 세포주 등 크고 작은 실험대 소모품을 보호합니다. 9-0 미세 봉합사를 포함한 골드 스왑과 봉합 재료를 준비합니다. 5-0 비흡수성 봉합사와 3-0 흡수성 봉합사를 준비합니다.다음과 같은 표준 수술 도구가 필요합니다: 수술용 가위, 조직 포셉, 연조직 스프레더 또는 자가 유지 견인기, 그리고 두 개의 모스키토 수술용 클램프입니다. 기본 미세수술 도구 세트에는 곡선형 미세 바늘 홀더, 곡선형 미세 포셉 1개와 직선형 미세 포셉 2개, 그리고 직선형 또는 곡선형 미세 가위가 포함됩니다. 미세수술 도구가 달라붙지 않고 깨끗하게 유지되도록 멸균된 세포 라인이 채워진 신장형 용기에 보관하십시오.수술 중 과정. 미세 기구의 팁이 손상되는 것을 방지하기 위해 신장 접시(kidney dish)에 고무 매트나 수술용 장갑을 댑니다. 또한, 혈관 클립 어플리케이터와 3개의 임시 혈관 비외상성 클램프가 필요합니다.쥐 대동맥의 매우 얇은 벽에 손상을 주는 것을 방지하기 위해, 사용하는 클램프는 낮은 폐쇄력을 가져야 합니다. 또한 0.5mm 눈금자가 있는 자와 작은 색상 고무 패드, 짧고 뭉툭한 바늘을 준비합니다. 마취된 쥐는 체중에 맞게 메이네 염산염(meine hydrochloride) 0.4 mg/kg을 피하 주사하고, 케토민 염산염(ketomine hydrochloride) 60 mg/kg을 복강 내 주사합니다. 피부 절개 전, 꼬집기 반사(pinch reflex)가 없는지 확인하여 쥐가 완전히 마취되었음을 확인합니다. 수술 중에는 호흡수, 심박수 및 유해 자극에 대한 반응을 관찰하여 15분마다 마취 깊이를 모니터링합니다.수술 후 통증 완화를 위해 buprenorphine 0.03 mg/kg을 피하 주사하고, 필요 시 반복 투여합니다. 12시간마다 쥐의 대동맥에서 이식편을 채취합니다. 쥐를 앙와위로 눕히고, 피부에 신전이나 압박이 가해지지 않도록 외과용 테이프로 앞다리와 뒷다리를 모두 고정합니다.흉강을 열기 전, 유해한 두 번의 꼬집기 자극을 가하여 쥐가 완전히 반응하지 않는지 확인하십시오. 흉강을 연 직후, 케타민 염산염을 심장 내로 과량 투여하여 쥐를 안락사시키고, 폐를 심장의 오른쪽으로 이동시켜 확보합니다. 폐동맥, 좌측 쇄골하정맥, 좌측 두개정맥, CVA 및 ATUs 정맥이 두드러진 정맥들로 인해 근위 흉부 대동맥의 채취를 방해할 수 있습니다.마이크로 가위와 마이크로 포셉을 사용하여 하행 흉부 대동맥의 박리를 시작하기에 적절한 진입 지점이 있습니다. 모스키토 수술용 클램프를 이용해 부드러운 둔성 견인 및 박리를 수행하며, 흉부 대동맥을 흉곽의 등쪽 벽에서부터 대동맥궁 방향으로 거슬러 올라가며 추적합니다. 이때 혈관 분지들을 클램프로 고정한 후 가위로 절단합니다. 클램프는 분지들에 고정된 상태를 유지하며, 하부의 대동맥궁을 노출시키기 위한 견인기로 사용됩니다.대동맥에서 나오는 첫 번째 늑간동맥 바로 위에 결찰사를 배치합니다. 그 다음 하행대동맥을 왼쪽 쇄골하동맥 바로 아래에서 절단하고, 이어서 결찰사 아래쪽을 절단합니다. 수직의 표준화된 동맥류 기하학적 구조를 얻거나, 필요한 경우 동맥류 축과 대동맥 사이의 특정 각도를 형성하기 위해 드레이닝(drainage)을 수행할 수 있습니다.이식편의 너비와 길이를 측정합니다. 채취한 이식편은 즉시 수혜 쥐에게 이식하거나, 이식편 벽의 탈세포화를 위해 추가 공정을 진행할 수 있습니다. 탈세포화된 이식편은 재이식 전까지 -4°C에서 보관할 수 있습니다.나중에. 동맥류 벽의 탈세포화는 동맥류를 확장되기 쉽게 만드는 것으로 나타났으며 동맥류 형성을 유도합니다. 동물이 마취되면 수술 부위의 털을 깎고 적절한 소독제로 피부를 세척한 후, 쥐를 배와 위로 향하게 눕힙니다. 피부에 신전이나 압박을 가하지 않고 수술용 테이프로 앞뒷다리를 모두 고정하며, 요추 부위 아래에 두꺼운 마커나 펜을 놓아 등을 굽힙니다. 후복막 노출과 신하대동맥으로의 접근성을 높여 미세수술 문합술을 용이하게 하기 위해 가능한 한 많은 요추 전만을 확보하는 것이 중요합니다. 피부 절개 전, 꼬집기 반사가 없는지 테스트하여 쥐가 완전히 마취되었는지 확인하십시오.정중선 절개 후, 소장과 돌출된 맹장을 오른쪽 또는 왼쪽으로 이동시킵니다. 소장과 하행 결장 사이의 인대를 두측 방향으로 절단합니다. 등쪽 체벽을 더 넓게 노출시키기 위해, 장기를 벌려 고정할 수 있도록 자가 유지 견인기를 배치합니다.내세포 동맥류 문합의 이상적인 위치는 신정맥과 내장요근정맥 사이의 수준에서 발견됩니다. 박리 과정 중 복부 대동맥은 후복막의 지방 조직 내에 매몰되어 있습니다. 쌍으로 존재하는, 거의 투명한 요관과 고환 혈관에 특히 주의를 기울여야 합니다.장관을 추가로 견인해야 합니다. 더 큰 고스트 면봉(ghost swab)을 사용할 수 있습니다. 등쪽 체벽의 복측 표면은 얇은 벽측 복막으로 덮여 있습니다.개복 후, 복부 대동맥을 조심스럽게 예리한 절개와 둔적 절개로 박리하면 그 바로 아래에서 대동맥을 시각화할 수 있습니다. 혈관벽의 손상을 방지하기 위해 외막(advia)만 잡아야 합니다. 흔히 요동맥이 복부 대동맥의 배측 표면에서 분절 혈관으로 분지하여 준비 과정에 방해가 될 수 있습니다.곡선형 미세 포셉을 사용하면 결찰을 용이하게 할 수 있습니다. 역행성 삼출을 방지하기 위해 혈관의 깊은 곳에서 결찰 및 절단이 이루어져야 합니다. 동맥류 봉합 시, 복부 대동맥 아래에 유색 고무 패드를 놓고 작은 거즈 솜으로 느슨한 결합 조직을 보강하며, 계획된 문합 부위 수준에서 AIA를 제거합니다.복부 대동맥의 문합부 원위측을 먼저 클램핑한 후, 근위측을 클램핑합니다. 이를 통해 혈관 내부를 단단하게 채워 이후의 동맥 절개술을 용이하게 합니다. 동맥 절개술은 직선형 또는 곡선형 마이크로 가위를 사용하여 수행합니다.마이크로 포셉으로 혈관벽의 아주 작은 부분을 들어 올려 타원형으로 절개합니다. 둔한 팁의 바늘을 사용하여 양방향으로 세포주를 흘려보내 동맥을 철저히 세척합니다. 이 단측-측면 문합술의 처음 두 봉합사는 동맥 절개창의 근위단과 원위단에 배치합니다.이 시점에서 봉합은 연속 봉합 또는 단속 봉합으로 수행합니다. 단속 봉합을 선택한 경우, 먼저 배면의 9시 방향 봉합을 실시합니다. 이때 마이크로 포셉으로 혈관벽을 잡는 것은 피해야 합니다.가능한 경우, 각 봉합사가 벽의 모든 층을 관통하도록 배치하십시오. 이후의 봉합사는 첫 번째 봉합사와 인접한 곳부터 시작하여 벽을 따라 일정 간격으로 배치할 수 있습니다. AIA를 조심스럽게 잡고, 내막을 짜거나 움켜쥐지 않도록 주의합니다.후벽 봉합이 완료되면 문합부의 내강 쪽 상태를 확인합니다. 봉합 위치가 잘못된 경우, 문합부 앞쪽에서도 동일한 순서로 동일한 절차를 수행하며, 특히 총 세 개의 매듭 중 첫 번째 매듭에 주의합니다. 시술은 견고하게 수행하되 너무 꽉 조이지 않도록 해야 합니다.내세포작용(endocytosis)이 완료되면, 해당 부위를 세포주로 헹구고 역류가 가능하도록 원위부 클램프를 먼저 제거합니다. 역류로 인해 명백한 출혈이 발생하는 경우, 추가 봉합이 필요할 수 있습니다. 미세한 삼출물이 있는 경우에는 출혈 부위를 가볍게 압박하여 지혈할 수 있습니다.작은 ghost swap 조각을 사용합니다. 그런 다음 근위부 혈관 클램프를 제거합니다. 문합 부위를 다시 한번 헹구고 류(aneurysm dome)에 남은 결찰사의 끝부분을 절단한 후, 직접 밀킹 테스트(direct milking test)를 통해 원위부 복부 동맥의 개통성을 평가합니다.플라스틱 시트와 그 아래의 작은 고스트 면봉을 제거합니다. 생성된 동맥류 내부에서 박동하는 혈류가 명확하게 보입니다. 문합부 주변의 봉합선은 추가 지혈을 위해 작은 지방 조직 조각이나 pongo stand로 덮을 수 있습니다.미세한 삼출물이 여전히 남아 있는 경우, 연조직 확장기와 거즈 면봉을 제거합니다. 결론적으로, 헬싱키 쥐 동맥류 모델은 모혈관과 비교한 동맥류의 크기, 모양 및 기하학적 구성으로 표준화된 실험적 동맥류를 생성할 수 있는 빠르고 경제적이며 일관된 방법입니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

분기점 인간의 대뇌 동맥류을 흉내낸 동맥 분기 동맥류의 microsurgical 생성을위한 최적화된 기술이 설명되어 있습니다. 정맥 주머니는 모두 공통 경동맥 동맥의 인위적으로 만들어진 사실이 분기로 봉합니다. 촉진 microsurgical 기법과 적극적인 수술 anticoagulation와 진통제는 최소화 병적 속도와 높은 동맥 명백 속도로 이어집니다.

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토끼의 동맥 파우치 미세 외과 분기 동맥류 모델

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여기에서는 혈관 내 장치 평가를 위해 토끼의 거대 분기 동맥류를 미세 수술로 만드는 기술을 설명합니다.

혈관 내 장치 평가를 위한 토끼의 거대 분기 동맥류의 미세외과 생성

본 프로토콜은 단일 수술을 통해 쥐 모델에서 경동맥류 유도를 위한 표준화된 수술 방법을 설명합니다.

경동맥류 형성의 쥐 모델

학습하세요 헬싱키 쥐 미세 측벽 동맥류 모델의 수술 기법을 통해 실험적 융기 동맥류를 생성하는 방법을. 이 모델은 신경외과 연구에서 재현 가능한 동맥류 연구에 활용됩니다.

헬싱키 쥐 미세 측벽 동맥류 모델

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