Name: Amphipod 갑각류의 여덟 세포 배아에서 단일 셀의 절제 Parhyale hawaiensis (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-03-16T23:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 55 s
Description: 학습하세요 Parhyale hawaiensis 여덟 세포 배아에서 생식계 전구세포 G를 절제하는 방법을. 이 기술은 갑각류 발생생물학 및 진화발생학 연구에 활용됩니다.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

우리는 카메라 작업에 Tripti 굽타와 Frederike Alwes 세포 제거 기술을 정제 도움, 데이터, 비디오 및 원고에 대한 의견을 Extavour 실험실 구성원을 Rayhan 아리프와 Hassaan Shahawy 감사합니다. 이 작품은 부분적으로 하버드 줄기 세포 연구소에 의해 지원되었다 (씨 그랜트 번호 SG-0057-10-00) 엘리슨 의료 재단 (새로운 학술 보너스 번호 AG-NS-07010-10) CGE에, 하버드 대학 연​​구 프로그램 상에 ARN.

특정 단계를 실행에 도움이 될 수있는 댓글은 이탤릭체로 표시됩니다. 1. 1 일 : 재료의 제조 <ol><li> 다음과 같은 물질을 (재료 및 장비의 표 참조) 준비 <ul><li> 15cm와 22cm 파스퇴르 피펫 </li><li> 다이아몬드 필 </li><li> 필터링 된 인공 해수 1 ㎎ / ㎖ 암포 테리 신 B (100 ㎎ / ㎖의 원액 1:100) 100 단위 / ㎖ 페니실린 및 100 ㎎ / ㎖ 스트렙토 마이신 (원액 1:50 포함 (0.0018-0.0020 사이 염분) 페니실린의 5000 단위 / ㎖ 및 스트렙토 마이신 5000 ㎎ / ㎖ 함유) </li><li> 첨가제없이 필터링 인공 해수 (0.0018-0.0020 사이 염분) </li><li> 주택 커플을위한 큰 플라스틱 용기 (최소 15cm X 15cm X 5cm) </li><li> 실 가드 늘어선 작은 (3 cm 또는 5cm) 페트리 접시 </li><li> 작은 (3 cm 또는 5cm) 페트리 접시 </li><li> watchglass 또는 유리 멀티 웰 플레이트 </li><li> 집게 (우리가 사용하는 무딘 집게 이리저리 유도실수로 우리가 집게의 끝은 모두 타인이 동일한 길이 있다는 것을, 부드러운 보장하기 위해 돌을 날카롭게 집게를 사용하여, 그들은 더 이상이 없다는으로 용도를 변경 한 다른 실험 절차에 손상되었다 m 오래 뒤몽 # 5 포셉 날카로운 포인트. 이러한 새로운 뒤몽 # 5 포셉으로 매우 미세 집게는, 그들은 배아 및 / 또는 여성을 손상 수 있으므로 바람직하지 않다.) </li><li> 끝 파스퇴르 피펫 (아래 단계 1.2 참조) 확대 </li><li> 파스퇴르 피펫의 얇은 단부로 매립 얇은 만곡 텅스텐 와이어로 이루어진 배아 검색 도구는 (구현 대안으로 대체 될 수있다; 아래 1.3 참조) </li><li> 작은 구멍과 입 피펫 (아래 단계 1.4 참조) </li><li> 뽑아 유리 모세관으로 만든 유리 바늘 (아래 단계 1.5 참조) </li></ul> 인간에게 독성이 없음 물질이 프로토콜에 사용되지 않습니다. 위험 관리 Guidel의 요구에 따라 그러나, 연구자들은 장갑이나 기타 보호 복장을 착용하고 있는지 확인해야합니다해당 기관의 네스. </li><li> 다음 확대 파스퇴르 피펫, 피펫, 다이아몬드 필 좁은 손가락을 보호하기 위해 킴 와이프 ​​종이 타월에 피펫의 득점 영역을 래핑하는 시작하는 지점에서 15cm 파스퇴르 피펫 주위에 먼저 점수, 그리고 신중하게하십시오 점수 선에서 끝을 해소. 가장자리를 다듬는 데 몇 초를위한 분젠 버너의 불꽃에 피펫의 깨진 끝을 잡고. 개구는 피펫의 최대 폭보다 약간 좁게한다. </li><li> 텅스텐 와이어 해부 도구를 만들려면 15cm 유리 파스퇴르 피펫의 끝 부분에 텅스텐 와이어를 삽입 한 유리를 용융 분젠 버너의 불꽃을 통해 짧게 잡고, 장소에 전선을 고정. 갈고리 모양으로까지 부드럽게 곡선 와이어의 끝에 집게를 사용합니다. 이 도구에 대한 적절한 형상의 예를 들어 그림 3을 참조하십시오. </li><li> 입 피펫을위한 작은 구멍을 만들려면, 두 부분의 오븐에 22 센티미터 파스퇴르 피펫의 얇은 끝을 당겨불꽃과 작은 쪽의 끝을 해소 어. 입 피펫 홀더의 끝 부분에 삽입합니다. </li><li> 바늘 풀러를 사용하여 절제 절차 중에 그 할구를 천공하는 데 사용될 유리 바늘을 만든다. 적절 형 바늘도 4에 도시된다. 이 바늘이 배는 매개 변수를 사용하여 프로그램을 사용하여 셔터의 P97 바늘 풀러에 당겨졌다 (열 = 566, = 100 당겨 속도 = 20 = 250 시간) + 1X (열 = 566, 당겨 = 100, 속도 = 100 시간 = 250). 아직 또한 태아의 융모막에 밀어 때 중단하지 않을 정도로 튼튼한 수, 바늘을 만드는 데 사용되는 특정 프로그램과 장비는 다양 할 수 있지만, 바늘이 좋은 지점이 있어야합니다. </li></ol> 2. 1 일 : 수집 Parhyale 연결 커플 <ol><li> P. 짝짓기 수집 확대 파스퇴르 피펫 (단계 위의 1.2)를 사용하여 hawaiensis의 큰 배양 용기에서 커플, 별도의 컨테이너에 포함 된 C로 전송인공 해수를 숙이고. 그것은이 해수를 여과 할 필요는 없다. 그것은 나중에 오후에 짝짓기를 수집하고 다음날 아침, 대부분의 태아는 최근 수정 된 및 입금, 따라서 초기 분열에서 한 수 있도록, (20 ~ 23 º C) 실온에서 하룻밤 커플을 두는 것이 가장 좋습니다하기에 적합한 스테이지 절제. 일부 여성은 다음 날 아침 일찍 분열 단계의 배아를 운반 할 수 있도록 최소 20 짝짓기를 수집합니다. </li></ol> 3. 주 2 : 수집 Parhyale 태아 <ul><li> 다음 날 아침, CO 2로 여과 인공 해수 (FASW)를 주입. 여성 중 일부는 밤에 자신의 남성에서 무료로 수영 할 것이다, 이러한 분리 여성을 수집하고 FASW / CO 2를 마취. 나머지 비공유 수컷 쌍 짝짓기 용기로부터 제거하고 대규모 배양으로 돌려 보내질 수있다. 남은 짝짓기 나중에 배아 수집을 위해 저장 될 수있다당일 또는 다음날. </li><li> FASW / CO 2의 시계 접시에 배아를 들고 하나의 마취 여성을 전송합니다. 모든 분리 된 여성은 가능성이 여성의 투명 coxal 플레이트 (그림 1A)를 통해 옅은 분홍색이나 보라색 상체와 같은 눈으로 볼 수있는 달걀을 기탁 한 것이다. 배아 초기 분열 단계에서와 할구의 절제하여 적합한 지 확인하기 위해 연구원은 알주머니에서 배아를 제거하고 현미경을 검토해야합니다. </li><li> 해부 현미경 절차 관찰, 집게로 몸체의 일측을 따라 coxal 플레이트 잡기. 태아는이 coxal 판 (도 1b) 사이의 복부 알주머니에 볼 수 있습니다. </li><li> 알주머니의 후방 끝으로 조심스럽게 무리를 분리하는 알주머니의 앞쪽 끝으로 전선을 들어 올려 얇은 곡선 선 도구 (위의 단계 1.3 그림 3)를 삽입현관 깔개 (이 30 oostegites 불리는 복부 부속을 수정), 주머니를 열고 배아를 풀어. 이 막 달걀 누워 후 약 2 ~ 3 시간에 의해 사라지고, 배아는 결합하지 않는, 모두가 쉽게 선 도구에 의해 중단 될 것입니다 매우 얇은 투명 막 내에 포함되어 배치되는 첫 번째 시간 정도 내에있는 태아 서로에게 또는 어떤 방식으로 여성에 배아에 걸쳐 이후이 시점에서. 연구진은이 불편하거나 어려운 알주머니에서 배아를 제거하는 곡선 된 와이어 도구를 기동 찾을 경우, 대안은 한 움직임이 부드러운 및 가혹한 압력이 배아 또는 알주머니에 적용되지 않는다 것과 같이, 사용할 수 있습니다 구현합니다. 알주머니에서 배아를 제거하기위한 적절한 다른 도구는 무딘 집게 또는 밀봉하고 부드럽게 끝이 유리 모세관 (가) 있습니다. </li><li> T를 밀어 열린 알주머니를 통해 물을 세척하기 위해 변경되지 않은 15cm 파스퇴르 피펫을 사용하여그는 시계 접시의 바닥에 침전해야하는 배아. 주 문화에 그녀를 재 도입하기 전에 복구를 할 수 있도록 (CO 2)없이 FASW을 청소하는 여성을 전송합니다. 다수의 여성은 같은 복구 접시에 놓여 있지만, 여전히 부분적으로 마취를하는 경우가 다른 동물에 의해 먹게 될 수 있으므로 여성은, 주 문화를 반환하기 전에 완벽하게 복구 할 수 있습니다. </li><li> 깨끗한 FASW와 페트리 접시에 배아를 전송하고, 자신의 배아 단계를 결정하기 위해 현미경으로 볼 수 변경되지 않은 15cm 파스퇴르 피펫을 사용합니다. 이 절차에 적합한 세 번째 분열 (단계 5)에 있습니다 별도의 배아. 그것은 또한 종래 세균 디스크 포메이션 어떤 분열 단계에이 프로토콜을 적용 할 수 있어야한다 (5월 7일에서 8일까지 스테이지). </li></ul> 4. 주 2 : 탄두 싱글 셀 <ol><li> FASW의 얕은 층으로 실 가드 늘어선 페트리 접시를 채우십시오. 변경되지 않은 15cm 파스퇴르 파이를 사용하여pette 플레이트에 하나의 배아를 전송합니다. </li><li> 무딘 집게를 사용하여 부드럽게 절제하는 셀 (도 2a 및도 2b)를 식별하기 위해 배아를 구른다. 세균 라인 전구체 G는 작은 macromere의 MAV 위에 앉아 작은 micromere으로 식별 할 수 있습니다. 또한, G는 직접 중배엽 전구체 micromeres의 ML 씨와 공유로 배아의 중간에 셀 테두리가. 씨가 G의 오른쪽에있는 할구, 그것에서 직접 걸쳐 micromere 인, 욕실 셀을 연락하고,하지 않습니다 밀리리터 g의 왼쪽 micromere이다. 씨, ML, 및 EN의 자매 macromeres는 외배엽 전구체 각각 어, 엘, 및 EP 있습니다. </li><li> LEF에서 집게로연구원은 오른 손잡이 인 경우 t 손 (또는 오른쪽에있는 연구원이 왼손잡이 경우), 오른쪽으로 관심의 세포와 배아의 방향 (또는 왼쪽에있는 연구원이 왼손잡이 경우) 부드럽게 안정 집게 사이의 배아를 파악. </li><li> 뽑아 유리 바늘 (위의 단계 1.5, 그림 4)를 사용하여 조심스럽게 관심의 세포에 구멍을. 이웃 세포로 또는 관심의 세포 아래에 바늘을 밀어하지 않도록, 너무 멀리 바늘을 삽입하지 마십시오. 니들 만 융모막 및 내부 세포막를 천공 가지며, 절제 할 셀에 깊게 확장 할 필요가 없다. </li><li> 교환 벌금 입 피펫의 유리 말의 배에 구멍을하는 데 사용되는 바늘은 파스퇴르 피펫 팁 (위의 단계 1.4)를 꺼냈다. 관심의 세포에서 생성 된 구멍에 가까운 피펫의 끝을 잡고, 매우 부드러운 흡입을 적용합니다. </li><li> 아주 부드럽게 집게와 배아를 짠다. blasto의 내용으로단순한는 단계 4.4에서 만든 구멍을 통해 융모막 밀려 배아의 탁 트인 전망을 할 수 있도록 입 피펫으로 빨아된다. 구멍이 충분히 큰 경우, 천공 된 세포의 핵은도 등장하는 것으로 될 수있다. 이것은 전체 셀 내용이 삭제되었습니다 다시 생성 할 수 있는지 확인하는 것이 확인하는 것입니다. </li><li> 관심의 할구를 제거주의 깊게 배아를 관찰합니다. 구멍이 셀의 테두리가 보이지 기본 세포의 교차점을 만들고, 융모막의 구멍쪽으로 후퇴 할 것이다. 관심의 할구 모두 제거 될 때까지 압력을 계속 적용. 좌우로 배아를 롤 집​​게를 사용하여 시각적으로 관심의 할구 모두 사라인지 확인합니다. </li><li> 변경되지 않은 15cm 파스퇴르 피펫을 사용하여, (FASW + 1 ㎎ / ㎖ 암포 테리 신 B, 100 단위 / ㎖ 페니실린 및 100 ㎎ / ㎖ 스트렙토 마이신) FASW + 청소 배아를 전송합니다. </li><li> 개인 우물에서 할구 - 절제 배아를 올립니다FASW +의 깨끗한 48 - 웰 플레이트의 매일 항생제 보충 FASW +의 50 %를 변경. 우리 손에 배아는 생존과 18 ~ 28 º C.의 온도 범위에서 잘 심지어 다음 제거를 개발 연구자들은 최소한의 방해로 배아를 육아에 깨끗한 (그러나 반드시 멸균되지 않음) 표면이되는 온도에서 자신의 배아를 제기해야합니다. 컨트롤 할구 - 절제 배아 발달 이벤트의 타이밍을 비교할 수 있으려면, 우리는 18 º C 4, 25 º C 4에서 제기 배아 가능합니다 자세한 개발 준비 정보에 독자를 참조, 26 º C 5,6. </li></ol>

<ol><li>Rehm, E. J., Hannibal, R. L., Chaw, R. C., Vargas-Vila, M. A., Patel, N. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chapter+3%5BTitle%5D)+AND+%22Emerging+Model+Organisms%3A+A+Laboratory+Manual+Volume%22%5BJournal%5D)">Chapter 3.</a> Emerging Model Organisms: A Laboratory Manual Volume. , CSHL Press. 373-404 Forthcoming.</li>
<li>Sander, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pattern+formation+in+insect+embryogenesis%3A+the+evolution+of+concepts+and+mechanisms%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.Insect+Morphol.+Embryol%22%5BJournal%5D)">Pattern formation in insect embryogenesis: the evolution of concepts and mechanisms.</a> Int. J.Insect Morphol. Embryol. 25, 349-367 (1997).</li>
<li>Regier, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arthropod+relationships+revealed+by+phylogenomic+analysis+of+nuclear+protein-coding+sequences%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Arthropod relationships revealed by phylogenomic analysis of nuclear protein-coding sequences.</a> Nature. 463, 1079-1083 (2010).</li>
<li>Extavour, C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+fate+of+isolated+blastomeres+with+respect+to+germ+cell+formation+in+the+amphipod+crustacean+Parhyale+hawaiensis%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">The fate of isolated blastomeres with respect to germ cell formation in the amphipod crustacean Parhyale hawaiensis.</a> Dev. Biol. 277, 387-402 (2005).</li>
<li>Browne, W. E., Price, A. L., Gerberding, M., Patel, N. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stages+of+embryonic+development+in+the+amphipod+crustacean%2C+Parhyale+hawaiensis%5BTitle%5D)+AND+%22Genesis%22%5BJournal%5D)">Stages of embryonic development in the amphipod crustacean, Parhyale hawaiensis.</a> Genesis. 42, 124-149 (2005).</li>
<li>Gerberding, M., Browne, W. E., Patel, N. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+lineage+analysis+of+the+amphipod+crustacean+Parhyale+hawaiensis+reveals+an+early+restriction+of+cell+fates%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Cell lineage analysis of the amphipod crustacean Parhyale hawaiensis reveals an early restriction of cell fates.</a> Development. 129, 5789-5801 (2002).</li>
<li>Rehm, E. J., Hannibal, R. L., Chaw, R. C., Vargas-Vila, M. A., Patel, N. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fixation+and+dissection+of+Parhyale+hawaiensis+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harbor+Protoc%22%5BJournal%5D)">Fixation and dissection of Parhyale hawaiensis embryos.</a> Cold Spring Harbor Protoc. 2009, (2009).</li>
<li>Price, A. L., Patel, N. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Investigating+divergent+mechanisms+of+mesoderm+development+in+arthropods%3A+the+expression+of+Ph-twist+and+Ph-mef2+in+Parhyale+hawaiensis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+B.+Dev.+Evol%22%5BJournal%5D)">Investigating divergent mechanisms of mesoderm development in arthropods: the expression of Ph-twist and Ph-mef2 in Parhyale hawaiensis.</a> J. Exp. B. Dev. Evol. 310, 24-40 (2008).</li>
<li>Rehm, E. J., Hannibal, R. L., Chaw, R. C., Vargas-Vila, M. A., Patel, N. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+situ+hybridization+of+labeled+RNA+probes+to+fixed+Parhyale+hawaiensis+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harbor+Protoc%22%5BJournal%5D)">In situ hybridization of labeled RNA probes to fixed Parhyale hawaiensis embryos.</a> Cold Spring Harbor Protoc. 2009, (2009).</li>
<li>Browne, W. W., Schmid, B. G. M., Wimmer, E. A., Martindale, M. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+otd+orthologs+in+the+amphipod+crustacean%2C+Parhyale+hawaiensis%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Genes+Evol%22%5BJournal%5D)">Expression of otd orthologs in the amphipod crustacean, Parhyale hawaiensis.</a> Dev. Genes Evol. 216, 581-595 (2006).</li>
<li>Prpic, N. M., Telford, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+homothorax+and+extradenticle+mRNA+in+the+legs+of+the+crustacean+Parhyale+hawaiensis%3A+evidence+for+a+reversal+of+gene+expression+regulation+in+the+pancrustacean+lineage%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Genes+Evol%22%5BJournal%5D)">Expression of homothorax and extradenticle mRNA in the legs of the crustacean Parhyale hawaiensis: evidence for a reversal of gene expression regulation in the pancrustacean lineage.</a> Dev. Genes Evol. 218, 333-339 (2008).</li>
<li>Kizil, G., Havemann, J., Gerberding, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Germ+cells+in+the+crustacean+Parhyale+hawaiensis+depend+on+Vasa+protein+for+their+maintenance+but+not+for+their+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Germ cells in the crustacean Parhyale hawaiensis depend on Vasa protein for their maintenance but not for their formation.</a> Dev. Biol. 327, 320-239 (2009).</li>
<li>Liubicich, D. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Knockdown+of+Parhyale+Ultrabithorax+recapitulates+evolutionary+changes+in+crustacean+appendage+morphology%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Knockdown of Parhyale Ultrabithorax recapitulates evolutionary changes in crustacean appendage morphology.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106, 13892-13896 (2009).</li>
<li>Pavlopoulos, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Probing+the+evolution+of+appendage+specialization+by+Hox+gene+misexpression+in+an+emerging+model+crustacean%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Probing the evolution of appendage specialization by Hox gene misexpression in an emerging model crustacean.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106, 13897-13902 (2009).</li>
<li>Vargas-Vila, M. A., Hannibal, R. L., Parchem, R. J., Liu, P. Z., Patel, N. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+prominent+requirement+for+single-minded+and+the+ventral+midline+in+patterning+the+dorsoventral+axis+of+the+crustacean+Parhyale+hawaiensis%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">A prominent requirement for single-minded and the ventral midline in patterning the dorsoventral axis of the crustacean Parhyale hawaiensis.</a> Development. 137, 3469-3476 (2010).</li>
<li>Simanton, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conservation+of+arthropod+midline+netrin+accumulation+revealed+with+a+cross-reactive+antibody+provides+evidence+for+midline+cell+homology%5BTitle%5D)+AND+%22Evol.+Dev%22%5BJournal%5D)">Conservation of arthropod midline netrin accumulation revealed with a cross-reactive antibody provides evidence for midline cell homology.</a> Evol. Dev. 11, 260-268 (2009).</li>
<li>Rehm, E. J., Hannibal, R. L., Chaw, R. C., Vargas-Vila, M. A., Patel, N. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antibody+staining+of+Parhyale+hawaiensis+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harbor+Protoc%22%5BJournal%5D)">Antibody staining of Parhyale hawaiensis embryos.</a> Cold Spring Harbor Protoc. 2009, (2009).</li>
<li>Pavlopoulos, A., Averof, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishing+genetic+transformation+for+comparative+developmental+studies+in+the+crustacean+Parhyale+hawaiensis%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Establishing genetic transformation for comparative developmental studies in the crustacean Parhyale hawaiensis.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 102, 7888-7893 (2005).</li>
<li>Kontarakis, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+versatile+strategy+for+gene+trapping+and+trap+conversion+in+emerging+model+organisms%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">A versatile strategy for gene trapping and trap conversion in emerging model organisms.</a> Development. 138, 2625-2630 (2011).</li>
<li>Zeng, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((De+novo+assembly+and+characterization+of+a+maternal+and+developmental+transcriptome+for+the+emerging+model+crustacean+Parhyale+hawaiensis%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Genom%22%5BJournal%5D)">De novo assembly and characterization of a maternal and developmental transcriptome for the emerging model crustacean Parhyale hawaiensis.</a> BMC Genom. 12, 581 (2011).</li>
<li>Zeng, V., Extavour, C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ASGARD%3A+an+open-access+database+of+annotated+transcriptomes+for+emerging+model+arthropod+species%5BTitle%5D)+AND+%22Database%22%5BJournal%5D)">ASGARD: an open-access database of annotated transcriptomes for emerging model arthropod species.</a> Database. , (2012).</li>
<li>Nestorov, P., Battke, F., Levesque, M. P., Gerberding, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Maternal+Transcriptome+of+the+Crustacean+Parhyale+hawaiensis+Is+Inherited+Asymmetrically+to+Invariant+Cell+Lineages+of+the+Ectoderm+and+Mesoderm%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">The Maternal Transcriptome of the Crustacean Parhyale hawaiensis Is Inherited Asymmetrically to Invariant Cell Lineages of the Ectoderm and Mesoderm.</a> PLoS ONE. 8, (2013).</li>
<li>Alwes, F., Hinchen, B., Extavour, C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patterns+of+cell+lineage%2C+movement%2C+and+migration+from+germ+layer+specification+to+gastrulation+in+the+amphipod+crustacean+Parhyale+hawaiensis%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Patterns of cell lineage, movement, and migration from germ layer specification to gastrulation in the amphipod crustacean Parhyale hawaiensis.</a> Dev. Biol. 139, 110-123 (2011).</li>
<li>Ewen-Campen, B., Schwager, E. E., Extavour, C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+molecular+machinery+of+germ+line+specification%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Reprod.+Dev%22%5BJournal%5D)">The molecular machinery of germ line specification.</a> Mol. Reprod. Dev. 77, 3-18 (2010).</li>
<li>Price, A. L., Modrell, M. S., Hannibal, R. L., Patel, N. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesoderm+and+ectoderm+lineages+in+the+crustacean+Parhyale+hawaiensis+display+intra-germ+layer+compensation%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Mesoderm and ectoderm lineages in the crustacean Parhyale hawaiensis display intra-germ layer compensation.</a> Dev. Biol. 341, 256-266 (2010).</li>
<li>Fraser, S. E., Harland, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+molecular+metamorphosis+of+experimental+embryology%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">The molecular metamorphosis of experimental embryology.</a> Cell. 100, 41-55 (2000).</li>
<li>Olsson, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+clash+of+traditions%3A+the+history+of+comparative+and+experimental+embryology+in+Sweden+as+exemplified+by+the+research+of+G%C3%B6sta+J%C3%A4gersten+and+Sven+H%C3%B6rstadius%5BTitle%5D)+AND+%22Theory+Biosci%22%5BJournal%5D)">A clash of traditions: the history of comparative and experimental embryology in Sweden as exemplified by the research of Gösta Jägersten and Sven Hörstadius.</a> Theory Biosci. 126, 117-129 (2007).</li>
<li>Rehm, E. J., Hannibal, R. L., Chaw, R. C., Vargas-Vila, M. A., Patel, N. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Injection+of+Parhyale+hawaiensis+blastomeres+with+fluorescently+labeled+tracers%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harbor+Protoc%22%5BJournal%5D)">Injection of Parhyale hawaiensis blastomeres with fluorescently labeled tracers.</a> Cold Spring Harbor Protoc. 2009, (2009).</li>
<li>Chaw, R., Patel, N. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Independent+migration+of+cell+populations+in+the+early+gastrulation+of+the+amphipod+crustacean+Parhyale+hawaiensis%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Independent migration of cell populations in the early gastrulation of the amphipod crustacean Parhyale hawaiensis.</a> Dev. Biol. 371, 94-109 (2012).</li>
<li>Schmitz, E. H. Crustacea Microscopic Anatomy of Invertebrates. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSchmitz%2C+EH+%22Microscopic+Anatomy+of+Invertebrates%22">Microscopic Anatomy of Invertebrates</a>. Harrison, F. W. 9, Wiley-Liss, Inc.. 443-528 (1992).</li>
</ol>

저자가 공개하는 게 없다.

우리는 수동 제거 및 amphipod P.의 초기 분열 단계에서 단일 할구의 완전한 물리적 인 제거를위한 프로토콜을 설명 hawaiensis. 우리는 여덟 세포 단계의 배아에서 단일 배아 줄 전구 세포의 g를 제거하여이 의정서의 사용을 설명하고, 절제 나중에 배아에서 g의의 딸 세포의 유무를 확인하여 성공했는지 보여줍니다. 이 프로토콜은 초기 분열 단계에서 배아로부터 micromeres 중 하나를 제거하는데 사용될 수있다. 첫 번째 또는 두 번째 분열 단계에서이 단계에서 macromeres 또는 할구를 제거하기 위해 이러한 프로토콜을 사용하기 위해, 사용자는 단순히 단계 8.8에서 융모막에서 약간 큰 구멍으로 만들고, 더 긴 시간 동안 압력과 흡입을인가 약간의 수정을 적용 할 수있다 단계 4.6에서 셀 내용의 큰 볼륨을 제거합니다. 우리는이 프로토콜을 사용하는 다음, 절제 후 남은 할구의 개발이되지 않은 것으로 나타났습니다적어도 낭 배...

amphipod 갑각류 Parhyale의 hawaiensis 진화 발달 생물학 연구 1에서 사용하기에 큰 잠재력을 가진 유망한 모델 생물로 지난 십 년간 떠오르고있다. 과일. D.에게 초파리 비행하는 절지 동물 중에서 가장 모델 시스템은 곤충, 그리고 가장 광범위하게 이들의 연구 의 melanogaster은 곤충 순서 Diptera의 멤버이며, basally 분기 곤충 2와 관련하여 파생 된 이러한 표시 많은 발생 학적으로 특징. 또한, 곤충 곤충 pancrustaceans라는 오랜 &quot;자연&quot;그룹 내에서 자신의 가장 가까운 친척이 있다는 것을 의미 아문 Pancrustacea 3 중첩하고,이 그룹 paraphyletic입니다됩니다. 이 외에도 basally 곤충 모델을 분기 할 것을 제안, 다른 갑각류의 연구 개발 특성의 진화 역사의 넓은 시각을 얻기 위해 필요합니다잘 D.에서 공부 한 차 분자 메커니즘 의 melanogaster. 그러나, 거의 갑각류 잘 개발의 실험적인 실험실 분석을 위해 설립되었다. amphipod P. hawaiensis 실험 기술의 범위에 순종 매우 다루기 쉬운 실험 모델 시스템이다. 갑각류는 상위 superorder Peracarida (비치 호퍼, 스커드, 잘 새우) 내에서의 다양하고 독특한 기능을 표시하고, 따라서 상대적으로 갑각류의이 그룹 내에서 파생 된 것으로 생각된다. 그럼에도 불구하고, Parhyale에서 제공 학적 및 기능적 유전자 조작의 상대적 용이성이 amphipod 모델 생물의 현재 재고에 귀중한 추가합니다. 실험실 동물, P.로 hawaiensis는 많은 장점을 제공합니다. 동물은 온도와 염분의 광범위한 관용, 인공 해수 1의 큰 문화에 잘 남아있다. 그것은 betw 구별하기 쉬운명확한 형태 학적 차이, 짝짓기하는 동안 암컷을 파악하는 데 사용하는 수컷 특히, 대형, 후크, 전방 트렁크 부속에 따라 EEN의 남성과 여성. 배아 발달 작업, P. hawaiensis 몇 가지 매우 매력적인 기능을 가지고 있습니다. 배아는 대략 10 일을 지속하고 성적 성숙에 시간이 28 º C에서 약 6 주입니다 (하지만 Parhyale 약 20 ~ 30 º의 C에 이르는 온도에서 잘 살아 있습니다, 그 상세한 개발 준비 정보는 18 º C 4에서 제기 배아 사용할 수 있습니다 25 º C에서 4, 26 º C 5,6). 성인은 실험실에서 일년 내내 짝짓기, 그래서 배아는 일년 중 언제든지 가능합니다. 여성은 처음 몇 다리 쌍 (그림 1A와 1B)간에있는 복부 알주머니로 수정란 (여성의 나이)에 따라 2-20을 마련하고, 이들 배아를 수집 할 수 있습니다여성을 살해하거나 배아 (그림 1C)을 손상시키지 않고 초기 개발이야. 배아는 부화를 통해 여과 인공 해수에서 생존 이후의 유전자 발현 또는 조직 학적 분석 7 고정 할 수 있으며, 자세한 준비 테이블 개발 (5)를 통해 진행 상황을 정확하게 식별 할 수 있습니다. 강력한 프로토콜 현장 하이브리드 8-15 또는 4,16,17를 면역 염색에 의해 유전자 발현 분석을 수행하는 데 사용되었습니다, RNA 간섭 (13, 15) 또는 morpholinos와 12 및 안정 세균 라인으로 기능 최저는 18 형질 전환. 형질 전환 시스템, 유도 식 14 및 19의 방법은 또한 P.의 유전자 기능을 연구하기 위해 이용 될 수있는 인핸서 트랩을 사용 hawaiensis. 공개 된 게놈 시퀀스는 현재 사용할 수 없습니다 있지만, 난자 및 배아 동안 생산 된 성적 증명서를 포함하는 전 사체는 꿀벌을 가지고N 드 노보 조립 및 20 주석, 유전자 발견을 용이하게 검색 할 수있는 데이터베이스 (21)에 입금. 요컨대, P. hawaiensis 개발을 이해하는 여러 실험과 유전자 접근 방식에 적합한 매우 다루기 쉬운 모델 생물이다. D의 초기 세포 융합 분열과 달리 의 melanogaster, P. hawaiensis 배아 holoblastically 수정 (그림 2A)를 다음 절단. 리니지 추적 분석은 세 번째 분열에 의해, 세 번째 분열 할구 각각 구체적으로 세 가지 세균 층의 하나 또는 세균 라인 (6) (그림 2B)로 야기 운명되는 것으로 나타났습니다. 이러한 데이터는 함께 마이크로 어레이 데이터 (22)와, 세포 계보는 6,23를 분석하고 할구 분리 실험 4는 개발 잠재력이 CEL의 비대칭 상속에 의해 적어도 일부의 세 번째 분열 할구를 분리합니다 것을 제안했습니다L 운명 결정. 세포의 부재로 표시된 바와 같이 따라서, (Parhyale 세포 계보 명명법 6에서 &quot;g&quot;라고) 세균 라인 전구체 팔 세포 단계에서 제거되는 할구 박리 실험에서, 배아는 나중에 개발 단계 4에서 생식 세포가 결여 대부분의 후생 동물 (24)의 세균 라인 마커 단백질 바사을 표현. 대조적으로, 체세포 할구 절제 실험은 보여 주었다 P. hawaiensis 배아는 상당한 규제 기능을 가지고 여덟 세포 단계에서 절제 중배엽 또는 외배엽 전구체 할구의 운명은 나머지 할구 (25)의 일부의 자손에 의해 인수 될 수 있도록. 어떻게 규정하는 세포의 운명 교체가 발생할 수 및 체세포 할구에 의한 자율적 인 세포의 운명 채용의 정도는 알 수없는 남아있다. 이러한 할구 절제와 같은 실험 발생학 기술은 understan에 유용 할 수 있습니다딩은 상대적 자율성과 세포의 운명 결정 (26, 27)의 nonautonomy 및 P.의 연구에 관심 그러므로입니다 hawaiensis의 배아. 외배엽 및 중배엽 계통의 규정하는 대체를 보여 실험에서 할구 절제 사출 (28)과 광독성 염료 (25)의 다음 여기에 의해 수행되었다. 이 기술은 주입 된 할구 (들)을 죽이는 효과가 있지만, 그것은 완전히 배아에서 죽은 세포의 시체를 제거하지 않습니다. 또한, 차이는 세포 계보 형광 계보 트레이서 (28, 29)와 할구를 주입하여 배아의 낭 배기 단계를 통해 수집 된 데이터를 동일한 배아 단계 23의 개발을 통해 교란 할구에 따라 수집 된 데이터 사이에 관찰되었다. 특정 할구의 완전한 물리적 제거 따라서 일부 응용 프로그램 제거하는 바람직한 방법이 될 수 있습니다. 우리는 이전에 세포 계통의 결과를 발표하는 것은 하나의 세포가 수동으로 23을 절제 하였다있는 배아의 분석. 그러나, 초기 분열 단계의 배아에서 단일 할구를 제거하는 데 필요한 섬세한 작업은 아직 완전히 설명하지 않았다. 여기에서 우리는 P.의 수집을위한 프로토콜을 제시한다 hawaiensis 배아와 여덟 세포 단계의 배아에서 하나의 할구를 수동으로 제거. 이 방법의 목적은 셀룰러 동작 및 배아 발생 및 후 배아 발달 동안 남아있는 세포의 세포 운명 역량의 관찰을 허용 배아에서 전지 본체의 완전한 제거를 달성하는 것이다. 우리 프로토콜 세균 선 g 전구체 (도 2c)의 제거를 도시하지만, 이하 절단 단계 할구에, 팔 세포 단계에서 모든 셀에인가 될 수있다. 원칙적으로,이 프로토콜은 인접 초기 분열 단계 배아에서 단일 세포를 제거하도록 적용될 수있다R holoblastically 해양 무척추 동물을 쪼개기.

<table><tbody><tr><td>15cm 파스퇴르 피펫</td><td>Wheaton</td><td>53499-630 VWR</td><td>온전하고 배구가 절제된 배아를 접시에서 접시로 옮기는 데 사용됩니다.</td></tr><tr><td>22cm 파스퇴르 피펫</td><td>Wheaton</td><td>53499-632 VWR</td><td>입 피펫 팁 제작용.</td></tr><tr><td>3cm 페트리 접시</td><td>Thermo Scientific</td><td>25382-334 VWR</td><td>배아를 수집하고 보관하기 위해 변경되지 않은 것을 사용하십시오. 배반구 절제를 위한 작업 표면을 만들기 위해 실가드 층(아래 참조)으로 일부를 코팅하십시오.</td></tr><tr><td>48웰 플레이트</td><td>Greiner Bio-One</td><td>82051-004 VWR</td><td>절제 후 배아 배양용.</td></tr><tr><td>병 상단 필터 0.2 &마이크로; m</td><td>Nalge Nunc International</td><td>28199-296 VWR</td><td>FASW 생성용(아래 참조).</td></tr><tr><td>분젠 버너</td><td>VWR</td><td>89038-530 VWR</td><td>텅스텐 와이어 도구 및 미세한 입 끝 피펫을 만들기 위해.</td></tr><tr><td>다이아몬드 스크라이브</td><td>Musco Sports Lighting</td><td>52865-005 VWR</td><td>커플을 모으기 위해 입이 넓은 파스퇴르 피펫을 만듭니다.</td></tr><tr><td>집게</td><td>Fine Science Tools</td><td>11050-10 Fine Science Tools</td><td>부화 주머니에서 배아를 제거하는 동안 마취된 암컷을 잡기 위한 것입니다. 팁이 가는 Dumont 집게일 필요는 없습니다 - 팁은 적어도 카탈로그 번호가 여기에 나열된 집게만큼 뭉툭할 수 있습니다.</td></tr><tr><td>Fungizone-Amphotericin B</td><td>Sigma</td><td>A2942 Sigma Aldrich</td><td>FASW에 최종 농도 1mg/ml까지 첨가하고 이 용액을 사용하여 배반구 절제 배아를 배양합니다.</td></tr><tr><td>유리 모세관 4인치 길이, 1/0.58 OD/ID(mm)</td><td>World Precision Instruments</td><td>1B100-4 World Precision Instruments</td> 배반구를 절제하기 <td>위한 바늘을 만들기 위한 것입니다.</td></tr><tr><td>유리 시계 유리 300mm 직경</td><td>전자 현미경 과학</td><td>70543-30 전자 현미경 과학</td><td>마취 된 암컷의 무리 주머니에서 배아를 제거하는 데 사용됩니다.</td></tr><tr><td>인스턴트 오션 인공 해수(ASW)</td><td>인스턴트 오션</td><td>IS160 수생 생태계</td><td>탈이온수에 소금을 1.022-1.024의 염도로 용해시켜 ASW를 만듭니다.</td></tr><tr><td>인스턴트 오션 필터링 인공 바닷물 (FASW)</td> <td>인스턴트 오션</td><td>IS160 수생 생태계</td><td>사용 0.2 & 마이크로; ASW를 살균하는 m 필터. 필요에 따라 소량(< 250ml)으로 메이크업합니다.</td></tr><tr><td>Kimwipes</td><td>Kimberly-Clark</td><td>21905-026 VWR</td><td>커플을 모으기 위해 개조 된 파스퇴르 피펫의 미세한 끝을 안전하게 끊기 위해.</td></tr><tr><td>입 피펫 어댑터</td><td>Drummond Labware</td><td>A5177-5EA Sigma Aldrich</td><td>절제 절차 중에 압출된 세포 내용물을 제거하는 데 사용하기 위해 미세 당겨진 파스퇴르 피펫 팁을 이 끝에 삽입합니다.</td></tr><tr><td>구강 피펫 튜빙</td><td>Aldrich</td><td>Z280356 Sigma Aldrich</td><td>절제 절차 중에 목에 편안하게 걸 수 있을 만큼 충분히 길게 자릅니다.</td></tr><tr><td>Needle Puller</td><td>Sutter Instrument Company</td><td>P97 Sutter Instrument Company</td><td>절제할 배반구에 구멍을 뚫기 위해 유리 모세관으로 바늘을 만들기 위해.</td></tr><tr><td>페니실린-스트렙토마이신 용액</td><td>Mediatech</td><td>45000-650 VWR</td><td>FASW에 100 units/ml 페니실린 및 100 mg/ml 스트렙토마이신의 최종 농도를 첨가하고 이 용액을 사용하여 배반구 절제 배아를 배양합니다.</td></tr><tr><td>고무 전구</td><td>전자 현미경 과학</td><td>100488-418 VWR</td><td>파스퇴르 피펫을 사용하여 배아를 접시에서 접시로 옮기는 데 사용됩니다.</td></tr><tr><td>실가드 184</td><td>KR 앤더슨, Inc.</td><td>NC9659604 Fisher Scientific</td><td>제조업체의 지침에 따라 구성합니다. 2cm 페트리 접시에 3-5mm 두께의 층을 부어 배반구 절제를 위한 작업 표면을 만듭니다.</td></tr><tr><td>텅스텐 와이어 0.004 인치 직경</td><td>AM 시스템</td><td>719000 AM 시스템</td><td>이것을 사용하여 마취 된 암컷의 부화 주머니에서 배아를 제거하는 도구를 만듭니다.</td></tr></tbody></table>

amphipod 갑각류의 여덟 세포 배아에서 단일 셀의 절제<em&gt; parhyale hawaiensis</em

Ablation of a Single Cell From Eight-cell Embryos of the Amphipod Crustacean Parhyale hawaiensis

amphipod Parhyale의 hawaiensis 전세계 조간대 해양 서식지에서 발견되는 작은 갑각류이다. 지난 10 년간 Parhyale은 잘 공부 절지 동물 모델 생물 초파리 melanogaster의에 유용한 외집단 비교를 제공하고, 개발의 실험실 연구를위한 유망한 모델 생물로 떠오르고있다. 초파리의 포체 분열 달리 Parhyale의 초기 분열은 holoblastic이다. 초기 할구에 주입 추적 염료를 사용 운명 매핑은 세 가지 배엽 및 세균 라인이 여덟 세포 단계에 의해 설립되는 것으로 나타났습니다. 이 단계에서, 세 할구는 외배엽으로 야기 운명 아르 세는 중배엽으로 야기 운명, 나머지 두 개의 할구 각각 내배엽 및 세균 계 전구체되어있다. 그러나 할구 제거 실험은 Parhyale 배아는 상당한 규제 capabiliti을 가지고있는 것으로 나타났습니다여덟 세포 단계에서 절제 할구의 운명 나머지 할구의 일부의 자손에 의해 점령 할 수 말이지, 그런 것을. 주입 및 광독성 염료 또는 수동 제거 0098 : 할구 절제는 이전에 두 가지 방법 중 하나를 사용하여 설명하고있다. 그러나 photoablation은 할구를 죽이고 있지만 배아에서 죽은 세포의 시체를 제거하지 않습니다. 특정 할구의 완전한 물리적 제거 따라서 일부 응용 프로그램 제거하는 바람직한 방법이 될 수 있습니다. 여기에 우리가 살아 그대로 남아있는 할구를 유지하면서 신체의 세포의 완전한 제거에 필요한 악기 및 수동 절차를 설명, Parhyale 배아의 8 세포 단계에서 하나의 할구를 수동으로 제거 프로토콜을 제시한다. 이 프로토콜은 팔 세포 단계에서, 또는 다른 초기 분열 단계의 할구 어떤 Parhyale 셀에 적용될 수있다. 또한, 원칙적으로이 프로토콜은 초기 클레아에 적용 할 수있다다른 holoblastically 쪼개기 해양 무척추 동물의 vage 단계의 배아.

하나의 세 번째 분열 P.의 성공적인 절제 다음 이 프로토콜에 설명 된 것처럼 이전에 부분적으로 절제된 할구가 차지하는 공간을 점유하도록 hawaiensis의 micromeres는 나머지 micromeres 서서히 약간 자신의 위치를 이동. g이 제거 될 때 예를 들어, 할구 미스터 이웃과 약간 시프트 및 g와 직접 접촉 (도 2A 및 2C와 비교)에 이전되었습니다 횡 셀 테두리 나누어지는 밀리리터. 성공적으로 제거 후, 나머지 할구는 네 번째 분열에 들어가기 전에 (한 시간 미만) 약간의 지연을 표시 할 수 있지만, 그 같은 분열 패턴과 그들이 적어도 낭 배기까지 조작되지 배아에 표시했을 것이라고 타이밍이 23 스테이지를 다시 시작해야합니다 . 네 micromeres, 나머지 blasto의 자손...

amphipod Parhyale의 hawaiensis 갑각류 발생학 및 비교 절지 동물의 개발과 진화 연구를위한 유망한 모델 생물이다. 이 프로토콜은 Parhyale의 초기 분열 단계의 배아에서 단일 할구를 수동으로 제거하는 방법을 설명합니다.

Amphipod 갑각류의 여덟 세포 배아에서 단일 셀의 절제<em&gt; Parhyale hawaiensis</em

The amphipod Parhyale hawaiensis is a small crustacean found in intertidal marine habitats worldwide. Over the past decade, Parhyale has emerged as a ...

이 시연에서는 포드 내 초기 배아에서 생식세포 전구세포를 제거하는 기술을 보여줍니다. 갑각류인 parli sys parli는 진화 및 발달 연구에서 활용 가능성이 매우 큰 신흥 모델 생물입니다. 대부분의 모델 절지동물은 곤충이며, 그중 가장 광범위하게 연구된 것은 초파리 Glip Melanogaster입니다. 곤충은 Panc cresta 아문에 속하며, 곤충 이외의 다른 갑각류를 연구함으로써 초파리에서 잘 연구된 발달 특성과 분자 기전의 진화적 역사에 대해 더 넓은 관점을 얻을 수 있습니다.하지만 발달 과정의 실험적 실험실 분석을 위해 잘 확립된 갑각류는 매우 적습니다. Parelli는 실험실 모델 시스템으로서 매우 다루기 쉬우며, 따라서 모델 생물 목록에 귀중한 추가 사례가 됩니다. 실험 동물로서 Parelli는 유지 및 관리가 매우 용이합니다.이 종은 인공 해수의 대량 배양 환경에서 잘 생존하며, 뚜렷한 형태학적 차이 덕분에 암수를 쉽게 구별할 수 있습니다. 특히 수컷은 발달 연구를 위한 교미 과정 중 암컷을 잡는 데 사용하는 크고 갈고리 모양의 전방 부속지를 가지고 있습니다. Parelli는 여러 가지 매력적인 특징을 가지고 있는데, 그중 하나는 쌍들이 연중 내내 교미하므로 언제든지 배아를 수집할 수 있다는 점입니다.암컷은 앞부분의 여러 다리 쌍 사이에 있는 육아낭에 배아를 낳으며, 암컷을 죽이거나 배아를 손상시키지 않고 발달 초기 단계의 배아를 수집하는 것이 가능합니다. 배아는 여과된 인공 해수에서 부화할 때까지 생존하며, 상세한 단계 표를 통해 발달 진행 상황을 정확하게 확인할 수 있습니다. 여기서는 8세포기 발달 단계를 기준으로 부화까지의 paral 발달 단계 중 일부를 보여줍니다.파랄(paral) 배아의 각 세포는 세 개의 배엽 중 하나 또는 원시 생식 세포로 구체적으로 분화됩니다. 본 시연에서는 특히 생식 세포군(germ cell population)의 지정 과정에 주목합니다. 생식선(germline)을 의미하는 세포명 G는 파랄 계보 추적 실험에서 유일한 생식선 전구체인 것으로 알려져 있으며, G의 후손은 모두 생식 세포가 되며 다른 배엽의 일부가 되는 후손은 없습니다.또한, 나머지 세포들에 손상을 주지 않고 배아에서 G를 제거하는 실험들이 수행되었습니다. 이 실험들에서 G가 제거된 배아는 배아 발생의 나머지 과정 동안 생식 세포가 결여되어 있었는데, 이는 후생동물 전반의 모델 생물에서 생식선 마커인 vasa 단백질을 발현하는 세포가 없었다는 점으로 확인되었습니다. 이제 parli 배아를 수집하고 8세포기 배아에서 G를 수동으로 제거하는 방법을 시연하겠습니다.이 영상은 G를 제거하는 과정을 보여주지만, 8세포기 단계의 어떤 세포에도 적용할 수 있습니다. 이 절차 단계에서는 끝부분을 넓힌 파스퇴르 피펫, 수정되지 않은 파스퇴르 피펫, 여과된 인공 해수, 배아를 보관할 큰 용기, 작은 페트리 접시, 유리 웰 플레이트, 포셉, 그리고 끝부분에 얇고 굽은 와이어가 달린 파스퇴르 피펫으로 구성된 해부 도구가 필요합니다. 본 시연에서는 장갑을 사용하지 않았으나, 소속 기관의 위험 관리 지침에 따라 보호 장구를 반드시 착용하십시오. 먼저 다이아몬드 펜으로 피펫 주변에 금을 그은 다음, 끝부분을 조심스럽게 부러뜨려 넓은 파스퇴르 피펫을 만듭니다.모서리를 매끄럽게 하기 위해 몇 초 동안 불꽃 위에 댑니다. 개구부는 피펫의 최대 너비보다 약간 더 좁아야 합니다. 와이어 해부 도구를 만들려면 텅스텐 와이어를 유리 피펫 끝에 삽입하고 불꽃 위에 대어 유리를 녹입니다.와이어를 고정하려면 포셉을 사용하여 와이어 끝을 살짝 구부려 도구로 조작하기 쉽게 만듭니다. 갈고리 모양의 끝부분 길이는 0.5 cm보다 약간 길어야 합니다. 넓은 파스퇴르 피펫을 사용하여 쌍을 수집하고 인공 해수가 담긴 별도의 용기에 옮깁니다.쌍을 이룬 개체들을 실온에서 하룻밤 동안 둡니다. 다음 날 아침, 여과된 인공 해수에 이산화탄소를 주입합니다. 분리된 암컷들을 모아 이 물에서 마취시킵니다.이산화탄소가 포함된 여과 인공 해수가 담긴 유리 웰 플레이트에 암컷 한 마리를 옮깁니다. 해부 현미경으로 관찰하면서 핀셋으로 몸의 한쪽 면을 따라 있는 기절판(coxal plates)을 잡습니다. 포란낭 내에 배아가 보입니다. 와이어 해부 도구를 포란낭의 후단에 삽입하고, 와이어를 전단 방향으로 조심스럽게 들어 올려 포란낭 덮개를 분리함으로써 낭을 열고 배아를 노출시킵니다.파스퇴르 피펫을 사용하여 열린 포란낭에 물을 흘려보냅니다. 이때 배아를 밀어내어 배출시킵니다. 암컷을 이산화탄소가 없는 여과된 인공 해수로 옮겨 회복시킨 후 다시 주 배양조로 되돌립니다.여과된 인공 해수가 담긴 페트리 접시에 배아를 옮기고 현미경으로 관찰하여 발달 단계를 확인합니다. 암컷에서 배아를 꺼내기 전에는 단계를 결정하기 어려운 경우가 많으므로, 적절한 단계의 배아를 충분히 확보하기 위해 여러 마리의 암컷으로부터 배아를 수집해야 할 때가 많습니다. 8세포기 배아를 얻는 가장 쉬운 방법은 대개 이전 단계의 배아를 수집한 후 적절한 단계로 성숙할 때까지 기다리는 것입니다.절제술(ablation procedure)을 위해 이미 수집한 배아 외에, 파스퇴르 피펫, 포셉, 여과된 인공 해수, 아가(agar) 층이 깔린 페트리 접시, 연신된 유리 모세관으로 만든 바늘, 입구가 작은 마우스 피펫, 깨끗한 페트리 접시, 그리고 마우스 피펫 팁에 사용할 암포테리신 및 페니실린-스트렙토마이신이 포함된 여과된 인공 해수가 필요합니다. 파스퇴르 피펫의 끝부분을 화염 위에서 가열하여 길게 늘린 후, 작은 끝부분을 잘라 마우스 피펫 끝에 삽입합니다. 이 팁은 해당 절차에 가장 적합한 크기입니다.절제 시술 동안 G를 찌르는 데 사용될 유리 바늘은 끝이 가늘어야 하지만, 코리온(corion)을 밀 때 부러지지 않을 만큼 충분히 튼튼해야 합니다. 여기에 우리 실험실에서 흔히 사용하는 형태가 제시되어 있습니다. 절제를 위해서는 먼저 어떤 세포가 G인지 확인해야 합니다. 왼쪽의 배아 사진에서 G가 검은색 실선으로 표시되어 있으며, 다음 섹션에서 G를 다른 마이크로 미러와 구별하는 방법을 알아보겠습니다.오른쪽 배아는 성공적인 절제 결과로 예상되는 모습을 보여줍니다. 이 배아에서는 검은색 원으로 표시된 바와 같이 G가 절제되었으며, 핀셋을 사용하여 세 개의 소분절 세포(micro meres)만 남겨두었습니다. 배아를 조심스럽게 굴려 세포들을 관찰하고 비교하십시오.G는 가장 작은 매크로미어 M 위에 놓인 가장 작은 마이크로미어로 식별할 수 있습니다. 배아를 굴려보면 가장 작은 매크로미어로 MAV를 식별할 수 있습니다. 또한, G는 맞은편에 있는 마이크로미어인 세포 EN과 접촉하지 않습니다. 이 배아의 경우 세포 el과 er이 G와 EN 사이의 경계를 공유하므로, 가장 작은 마이크로미어가 왼쪽에 위치하며 맞은편의 마이크로미어와 접촉하지 않는다는 것을 알 수 있습니다.배아를 굴려서 이동시킴으로써, 이 마이크로 거울이 가장 작은 매크로 거울 위에 놓여 있음을 확인할 수 있습니다. 이제 배아의 왼쪽 하단에 위치하게 된 이 거울을 G라고 명명하고, 절제 단계로 넘어갈 수 있습니다. 요약하자면 다음과 같습니다.본 과정에서는 포셉으로 배아를 고정시킨 상태에서 뽑아낸 유리 침으로 G를 천자합니다. 그 다음, 포셉으로 배아에 가벼운 압력을 가하여 G의 내용물이 생성된 구멍을 통해 배아 밖으로 나오게 합니다. G의 내용물이 배아 밖으로 나오면 마우스 피펫을 사용하여 이를 제거함으로써 G가 완전히 제거되었는지 확인할 수 있도록 합니다.이제 세부 과정을 살펴보겠습니다. 실크 가드 플레이트에 여과된 인공 해수를 얕게 채웁니다. 핀셋을 사용하여 8세포기 배아를 파스퇴르 피펫으로 플레이트에 옮깁니다. 왼손으로는 배아의 G 부위가 오른쪽을 향하도록 방향을 잡고, 뽑아낸 유리 니들을 사용하여 배아를 부드럽게 잡아 고정합니다. G 부위를 조심스럽게 찌르되, G 아래의 거대 거울(macro mirrors) 쪽으로 니들이 밀려 들어가지 않도록 너무 깊게 삽입하지 마십시오. 오른손에 든 니들을 끝을 뽑아낸 파스퇴르 피펫이 장착된 마우스 피펫으로 교체합니다.피펫 팁을 G의 구멍 가까이에 대고 매우 약하게 흡입합니다. G의 내용물이 chorion 밖으로 밀려 나올 때 핀셋으로 배아를 살짝 누릅니다. 배아를 방해 없이 관찰할 수 있도록 마우스 피펫 안으로 끌어당깁니다.배아를 주의 깊게 관찰하십시오. G가 제거됨에 따라 G의 경계가 코리온(corion)의 구멍 쪽으로 후퇴하며, 그 아래에 있는 세포들의 교차 지점이 보이게 됩니다. G가 모두 제거될 때까지 계속해서 압력을 가하고, 포셉을 사용하여 배아를 굴려 G가 완전히 제거되었는지 육안으로 확인하십시오.파스퇴르 피펫을 사용하여 배아를 amphotericin과 pen strep이 첨가된 여과된 인공 해수로 옮깁니다. 감염을 방지하기 위해 배아가 담긴 해수의 절반을 매일 교체하십시오. 다음은 절제 전과 후의 배아 모습입니다.보시는 바와 같이 G가 있던 자리에 빈 공간이 생겼습니다. 정교하게 수행하고 시술 후 배아를 잘 관리한다면, 높은 비율로 부화까지 생존합니다. 저희 실험실의 평균 생존율은 50%를 약간 상회합니다

ablation-single-cell-from-eight-cell-embryos-amphipod-crustacean

Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

개인 배아 세포의 운명은 상속 분자 및 / 또는 주변 세포의 신호에 의해 영향을받을 수 있습니다. 절단 단계 Xenopus의 배아의 운명지도 활용 한 blastomeres는 세포 세포의 상호 작용 비해 상속 분자의 공헌을 평가하기 위해 격리 문화 식별 할 수 있습니다.

Blastomere Explants는 배아 개발하는 동안 세포 운명의 헌신에 대해 테스트 할

이 비디오는 초기 배아에서 C. elegans 할구를 분리하는 방법을 소개합니다. 그 결과로 생성된 세포는 세포 배양 또는 생체 외 실험에 적합합니다.

C. 예쁜꼬마선충 배반구 해부: 난자 껍질을 제거하고 배아 세포를 해리하는 방법

이 프로토콜은 제브라피시 배아에서 단일 세포를 분리하고, 관심 세포를 농축하고, 미세유체 기반 단세포 다중 시스템에서 제브라피시 세포를 포획하고, 단일 세포에서 유전자 발현을 평가하는 방법을 설명합니다.

분리 및 Zebrafish의 배아에서 단일 세포의 특성

이 프로토콜은 서로 다른 유전적 배경을 가진 기생충 제브라피시 배아를 생성하는 방법에 대한 단계별 지침을 제공합니다. 제브라피시 배아의 탁월한 이미징 기능과 결합하면 이 방법은 관심 후보 유전자에 대한 세포 자율 기능과 비세포 자율 기능을 조사할 수 있는 독특하고 강력한 수단을 제공합니다.

Blastulae 개발의 외과 융합에 의해 Parabiotic 제브라 피쉬 배아의 생성

소 Cas9를 활용 하 여 복잡 한 ribonucleoprotein (RNP)은 정확 하 고 효율적인 게놈 편집에 대 한 강력한 방법입니다. 여기, 우리가 강조의 유틸리티 세포와 생물의 광범위 한 범위에 걸쳐 기본 인간 세포 등 모두 클래식 하 고 모형 유기 체를 신흥.

향상 된 게놈 세포와 유기 체에서 다양 한 Cas9 Ribonucleoprotein 편집

이 프로토콜의 목표는 배아를 희생하지 않고  위도 동안 말미잘 성충을 유전자 형화하는것입니다.

초기 개발 중 바다 말미잘의 지질 형질이

다세포 시스템의 조직 복잡성은 세포 외 단서와 개별 적인 세포 행동 사이 인과 관계의 확인을 혼동. 여기에서, 우리는 C. elegans 배아 블라스토미어와 접착성 폴리스티렌 구슬을 사용하여 접촉 의존적 큐와 분할 축 사이의 직접적인 링크를 연구하는 방법을 제시한다.

분리 된 예쁜 꼬마 염 철충 배아 블라스타미어와 접착 성 폴리스티렌 구슬과 공간 세포 접촉 패턴의 체외 재구성

세포의 해출 및 이식과 같은 배아 조작은 초기 발달을 연구하기 위한 중요한 도구입니다. 이 프로토콜은 제브라피시 배아에서 이러한 조작을 수행하기 위해 간단하고 효과적인 이식 장치를 설명합니다.

Zebrafish 배아를 위한 간단하고 효과적인 이식 장치

Zebrafish blastoderm explant는 초기 배아 내내 내인성 신호 센터에서 배아 세포를 분리하여 생성되며, 상대적으로 순진한 세포 클러스터를 쉽게 조작하고 배양하여 ex vivo를배양한다. 이 문서에서는 이러한 각질에 대한 지침을 제공하고 위장 중에 Nodal 신호에 대한 역할을 심문하여 유용성을 입증합니다.

제브라피시 배아에서 나이브 Blastoderm 의 세대

배아 발달은 세포 운동의 대규모 조정을 요구합니다. 2광자 포동 중재 레이저 절제는 심층 세포의 큰 그룹의 공간 적으로 제어 된 3 차원 절제를 허용한다. 또한, 이 기술은 생체 내에서 집단적으로 이동하는 세포의 반응을 기계적 환경에서 의 동요로 조사할 수 있다.

얼룩말 피시 가스트룰라의 2광자 현미경을 사용하여 깊고 공간적으로 제어된 볼륨 절제

학습하세요 Parhyale hawaiensis 여덟 세포 배아에서 생식계 전구세포 G를 절제하는 방법을. 이 기술은 갑각류 발생생물학 및 진화발생학 연구에 활용됩니다.

Amphipod 갑각류의 여덟 세포 배아에서 단일 셀의 절제

더 많은 동영상 탐색