Name: 마우스 다이어프램 기능의 진단 초음파 이미징 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-04-21T16:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 12 s
Description: 학습하세요 마우스 모델에서 비침습적 초음파 이미징을 이용한 횡격막 수축성 평가 방법을. 이 기술은 호흡근 기능을 정량적으로 분석하여 호흡기 질환 진단에 활용됩니다.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

이 작품은 OU 일반 기금 G110 및 생물 의학 연구 및 OSU-HRS 기금 013,000의 우수 연구 기금의 교부금에 의해 지원된다. 저자는이 원고를 준비하는 그녀의 도움 로렌 첸에게 감사의 말씀을 전합니다.

동물을 대상으로 한 모든 절차를 승인하고 오하이오 주립 대학 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC) 규정 및 지침에 따라 규정 준수에 완료되었다. 1. 마우스 마취 <ol><li> 수술 수건에 싸서 가열 된 등온 패드 청소 절차 테이블을 설정합니다. 가열 패드가 동물에 잠재적 인 스트레스를 줄이고 동물의 코어 온도를 안정시키기 위해 30 ° C와 34 ° C 사이에서 유지되어야한다. </li><li> 다음의 파라미터로 마취 유도 챔버에 놓고 마우스 : 산소 유량은 1.5 L / 분으로 3.5 %로 설정하고 이소 플루 란 기화기로 설정. 완전한 진정 작용은 1 ~ 2 분 이내에 자리를 대신한다. 유도 챔버를 사용할 수없는 경우, 벨자은 이소 플루 란과 직접 동물의 접촉을 피하기 위해 하부에 위치하는 와이어 메쉬로 사용될 수있다. </li><li> 즉시 유도 챔버에서 마우스를 제거하려면 한 번완전히 (마우스가 자발적인 운동 기능을 잃을 때 달성) 마취. 마취의 유지 보수를 위해 동물에 코 콘을 적용합니다. 산소 유량은 약 0.5 L / 분으로 감소되어야하고 이소 플루 란 기화기는 1.5-2.5 %의 범위로 설정되어야한다. <ol><li> 눈의 건조 8을 줄이기 위해 직접 각막에 안과 연고의 작은 금액을 적용합니다. 또한, 마취시, 마우스가 페달 철수 반사의 부재를 유지해야한다, 점막은 핑크 색상을 유지해야하며, 호흡이 안정 나타납니다. </li></ol></li></ol> 2. 진단 초음파 이미징 절차 준비 <ol><li> 수술 용 테이프와 같은 이동식 접착제로 가열 된 프로 시저 테이블에 마우스의 각 다리를 억제합니다. </li><li> 전기 면도기를 사용하여 흉강까지 복부 절반 방법 사이의 복부 신체 표면에 머리를 제거합니다. 또 다시 제모 크림을 적용합니다면도칼로 절단되지 않은 나머지 머리를 이동합니다. 2 ~ 3 분 후 젖은 거즈 패드로 크림을 닦아냅니다. </li><li> 물에 적신 거즈 패드를 사용하여 여분의 머리를 제거하고 70 % 알코올이나 방부제 동등한 면도 영역을 청소합니다. 초음파 프로브는 조리개 기능을 시각화하는이 영역에 적용한다. 국소 진통제로 인해 머리 제거에 약간의 피부 자극을 경험하는 동물에 제공 될 수있다. </li></ol> 3. 진단 초음파 이미징 프로토콜 <ol><li> 초음파 장치의 전원을 켜고 최적의 해상도를 얻을 수 비율에 의해 장치의 출력 전력을 필요한 경우 조정합니다. </li><li> 마우스 횡경막 수축의 적절한 시각화 수 있습니다 B (밝기) 모드, M (모션) 모드, 또는 두 가지 모두 이미징 전에, 하나에 초음파 기계를 설정합니다. </li><li> 마우스의 상단 복부에 초음파 젤의 작은 금액을 적용하고 흉강쪽으로 젤 마사지. </li><li> 초를 배치마음으로이 지역 상향 각도로의 변환기를 소리. 화상의 최적 해상도가 달성 될 때까지 탐침을 조정한다. 참고 :이 프로토콜에 대한, 마이크로 볼록한 배열 또는 선형 위상 배열 변환기 인해 작은 풋 프린트와 우수한 축 해상도 (9)에 사용하기에 이상적인 프로브입니다; 주파수 대역폭에 걸쳐 조정되어야하고 이러한 실험 6.5-12 MHz의 범위가 이용 될 수있다 필요로한다. </li><li> 일시적으로 다이어프램 이미지를 저장하고 선택 수축을 볼 수 정지 버튼을 누릅니다. </li><li> 횡격막 소풍뿐만 아니라, 호흡 속도의 이상 측정 할 수있는 영화 반복으로 기록을 저장합니다. 참고 : 이미지의 프레임이 미래 분석 9의 컴퓨터 메모리 나 외장 하드 드라이브에 저장할 수 있습니다. <ol><li> 정확하게 초음파 소프트웨어의 일부인 전자 캘리퍼스를 사용하여 수축 이완로부터 다이어프램의 움직임의 깊이를 측정한다. </li><li> 변환시네 루프 MPEG 파일에 파일과 기록 기간 횡격막 수축의 수를 카운트하여 호흡 속도를 결정한다. 대안 적으로, 분 (호흡률) 당 수축의 수가 M-모드 영상으로부터 계산 될 수있다. </li></ol></li></ol> 4. 포스트 마취 동물 복구 <ol><li> 마우스가 완전히 1 시간 안에 마취에서 회복해야합니다. 이 흉골 드러 누움을 유지하기 위해 충분한 의식을 회복 할 때까지 무인 동물을 방치하지 마십시오. </li></ol>

<ol><li>Snyder, C. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complementarity+of+ultrasound+and+fluorescence+imaging+in+an+orthotopic+mouse+model+of+pancreatic+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Cancer%22%5BJournal%5D)">Complementarity of ultrasound and fluorescence imaging in an orthotopic mouse model of pancreatic cancer.</a> BMC Cancer. 9, 106(2009).</li>
<li>Franchi, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-invasive+assessment+of+cardiac+function+in+a+mouse+model+of+renovascular+hypertension%5BTitle%5D)+AND+%22Hypertension+Research%3A+Official+Journal+of+the+Japanese+Society+of+Hypertension%22%5BJournal%5D)">Non-invasive assessment of cardiac function in a mouse model of renovascular hypertension.</a> Hypertension Research: Official Journal of the Japanese Society of Hypertension. , (2013).</li>
<li>Coatney, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultrasound+imaging%3A+principles+and+applications+in+rodent+research%5BTitle%5D)+AND+%22ILAR+Journal+%2F+National+Research+Council%2C+Institute+of+Laboratory+Animal+Resources%22%5BJournal%5D)">Ultrasound imaging: principles and applications in rodent research.</a> ILAR Journal / National Research Council, Institute of Laboratory Animal Resources. 42, 233-247 (2001).</li>
<li>Morenz, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+air+trapping+in+chronic+obstructive+pulmonary+disease+by+low+frequency+ultrasound%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Pulmonary+Medicine%22%5BJournal%5D)">Detection of air trapping in chronic obstructive pulmonary disease by low frequency ultrasound.</a> BMC Pulmonary Medicine. 12, 8(2012).</li>
<li>Gilliam, L. A., Moylan, J. S., Ann Callahan, L., Sumandea, M. P., Reid, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Doxorubicin+causes+diaphragm+weakness+in+murine+models+of+cancer+chemotherapy%5BTitle%5D)+AND+%22Muscle+%26+Nerve%22%5BJournal%5D)">Doxorubicin causes diaphragm weakness in murine models of cancer chemotherapy.</a> Muscle & Nerve. 43, 94-102 (2011).</li>
<li>Ferreira, L. F., Campbell, K. S., Reid, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effectiveness+of+sulfur-containing+antioxidants+in+delaying+skeletal+muscle+fatigue%5BTitle%5D)+AND+%22Medicine+and+Science+in+Sports+and+Exercise%22%5BJournal%5D)">Effectiveness of sulfur-containing antioxidants in delaying skeletal muscle fatigue.</a> Medicine and Science in Sports and Exercise. 43, 1025-1031 (2011).</li>
<li>Zuo, L., Clanton, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reactive+oxygen+species+formation+in+the+transition+to+hypoxia+in+skeletal+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology.+Cell+Physiology%22%5BJournal%5D)">Reactive oxygen species formation in the transition to hypoxia in skeletal muscle.</a> American Journal of Physiology. Cell Physiology. 289, 207-216 (2005).</li>
<li>Helms, M. N., Torres-Gonzalez, E., Goodson, P., Rojas, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+tracheal+instillation+of+solutes+into+mouse+lung%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Direct tracheal instillation of solutes into mouse lung.</a> J. Vis. Exp. , (2010).</li>
<li>Hedrick, W. R., Hykes, D. L., Starchman, D. E. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHedrick%2C+WR+%22Ultrasound+Physics+and+Instrumentation%22">Ultrasound Physics and Instrumentation</a>. , 4th edn, Elsevier Mosby. 445 (2005).</li>
<li>von Sarnowski, B., Khaw, A. V., Kessler, C., Schminke, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+a+microconvex+array+transducer+for+the+ultrasonographic+examination+of+the+intrathoracic+segments+of+the+supraaortic+arteries%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroimaging%3A+Official+Journal+of+the+American+Society+of+Neuroimaging%22%5BJournal%5D)">Evaluation of a microconvex array transducer for the ultrasonographic examination of the intrathoracic segments of the supraaortic arteries.</a> Journal of Neuroimaging: Official Journal of the American Society of Neuroimaging. 20, 246-250 (2010).</li>
<li>Stocksley, M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aStocksley%2C+M+%22Abdominal+Ultrasound%22">Abdominal Ultrasound</a>. , Cambridge University Press. 7-8 (2001).</li>
<li>Kremkau, F. W., Taylor, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Artifacts+in+ultrasound+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Ultrasound+in+Medicine%3A+Official+Journal+of+the+American+Institute+of+Ultrasound+in+Medicine%22%5BJournal%5D)">Artifacts in ultrasound imaging.</a> Journal of Ultrasound in Medicine: Official Journal of the American Institute of Ultrasound in Medicine. 5, 227-237 (1986).</li>
<li>Kremkau, F. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diagnostic+Ultrasound%3A+Principles+and+Instruments%5BTitle%5D)+AND+%22Saunders+Elsevier%22%5BJournal%5D)">Diagnostic Ultrasound: Principles and Instruments.</a> Saunders Elsevier. , 7th edn, 521 (2006).</li>
<li>Laing, F. C., Kurtz, A. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+importance+of+ultrasonic+side-lobe+artifacts%5BTitle%5D)+AND+%22Radiology%22%5BJournal%5D)">The importance of ultrasonic side-lobe artifacts.</a> Radiology. 145, 763-768 (1982).</li>
<li>Abu-Zidan, F. M., Hefny, A. F., Corr, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+ultrasound+physics%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Emergencies%2C+Trauma%2C+and+Shock%22%5BJournal%5D)">Clinical ultrasound physics.</a> Journal of Emergencies, Trauma, and Shock. 4, 501-503 (2011).</li>
<li>Gargani, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lung+ultrasound%3A+a+new+tool+for+the+cardiologist%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovascular+Ultrasound%22%5BJournal%5D)">Lung ultrasound: a new tool for the cardiologist.</a> Cardiovascular Ultrasound. 9, 6(2011).</li>
<li>Sanders, R. C., Winter, T. Clinical Sonography A Practical Guide. , 4th edn, Lippincott Williams & Wilkins. 632 (2007).</li>
</ol>

저자는 더 경쟁 재정적 이익이 없다는 것을 선언합니다.

현재 실험 프로토콜은 비 침습적 생체 내 접근법을 통해 마우스 모델에서 다이어프램 액티비티 특정 진단 초음파 이미징 기술을 개발한다. 마취 장치 설정은 개별 쥐가 마취에 다르게 반응 할 수 있기 때문에 약간 각 동물에 대해 조정할 수있다 근사 값입니다. 부적당 마취 투여를 방지하기 위해, 정기적으로 심박수, 호흡 수, 체온 등 마우스의 생체 신호를 모니터링하는 것이 중요하다. 면도 머리 이미지를 흐리게 다이어프램 수축의 정확한 시각화를 방지 할 수 있기 때문에 또한, 머리는 초음파 검사 전에 제거해야합니다. 우리는 마우스 진동판의 단면 화상을 이차원 (2D)을 제공하기 위하여 B-모드 초음파 이미지를 사용하고 조임 모션 동력학을 모니터하는 M-모드를 사용했다. 때문에 프로 그것은 2D 이미지에 대한 마이크로 볼록한 배열 트랜스 듀서를 사용하는 것이 중요합니다Vides의 전통적인 선형 배열 센서 (10)에 비해 표면적있는 해부학 적 구조의 축...

최근에는 초음파 영상 진단 기법은 신 혈관성 고혈압 및 췌장암 1,2의 마우스 모델에 적용되어왔다. 그러나, 이러한 기술이 널리 설치류 호흡기 근육의 기능 분석에 사용되지 않았다. 따라서, 우리는 생쥐의 다이어프램 이동성의 생체 종 평가를위한 유용한 도구로 진단 초음파 영상 방법을 개발했습니다. 진단 초음파 영상에 대한 몇 가지 장점이 있습니다. 예를 들어, 비 침습적 안전 장치, 휴대용, 및 상대적으로 낮은 비용으로 3에서 실시간 측정을 허용한다. 특히, 특정 저주파 초음파 장치는 공기 폐색 심한 기류 제한 4 가벼운 만성 폐쇄성 폐 질환 (COPD)의 임상 적 특징을 검출 할 수 있었다. 따라서, 진단 초음파 영상은 실시간 모니터링을 위해 쉽게 접근 할 수있는 재생 가능한 검사 방법으로 역할을 할 수있다<html> 호흡기 질환. 진단 초음파 영상 기술은 자주 큰 동물이나 인체에 적용됩니다. 그러나, 소규모의 주제에 초음파를 수행하는 문제에 대한 가능성이 마우스 모델에서 초음파 이미징 연구, 제한된 수의가 있었다. 현재 프로토콜은 마우스에 조임 기능을 측정하기위한 새로운 절차를 설명. 조임 기능에 여러 가지 설치류 연구가되었지만 또한, 결과의 대부분은 안락사 동물 5-7에서 직접 근육 스트립을 분리하여 생성 하였다. 대조적으로, 조임 작업을 분석하는 생체 내 진단 초음파 촬상 방법을 사용하여 동물의 수는 실험에 희생 줄일 것이다. 또한, 다이아 프램의 수축력을 강화에 초점을 맞춘 장기 치료가 정확하게 동물을 희생하지 않고 설치류 모델에서 초음파를 통해 평가 될 수있다. ntent는 &quot;&gt; 본 연구실에서는 구상뿐만 아니라, 생체 내에서 조임 기능의 이해에 도움이 동물 침습적 방법을 피하고, 치료제의 개발 제품 초음파 기계를 사용하여 마우스 조임 활성을 분석하기위한 효과적인 방법을 개발했다 호흡 부전에 대한 치료.

<table><tbody><tr><td>수의학 디지털 초음파 진단 이미징 시스템</td><td>Edan</td><td>DUS 3 VET</td><td>초음파 매개변수는 다음을 포함합니다: 주파수 6.5 MHz, 깊이 29 mm. 참고: 이 프로토콜에는 동등한 초음파 기계가 사용될 수 있습니다</td></tr>. <tr><td>마이크로 볼록 배열 트랜스듀서</td><td>Edan</td><td>C611</td><td>또는 동등한</td></tr><tr><td>GE Logiq i hand-carry unit (HCU)&nbsp;</td><td>GE Healthcare</td><td>GE Logiq i 휴대용 장치(HCU)</td> <td>또는 동급</td></tr><tr><td>GE 12MHz 선형 어레이 프로브</td><td>GE Healthcare</td><td>12L-RS</td><td>또는 동급</td></tr><tr><td>수의학 마취기</td><td>Webster Veterinary</td><td>Serial #: W422021</td><td>Isoflurane은 이 기화기(또는 동급)와 함께 독점적으로 사용되었습니다. 마취를 위한 맞춤형 유도 챔버가 초기 마취를 위해 조립되었습니다. 유지 마취는 콧방울</td></tr><tr><td>Isothesia (Isoflurane, USP)</td><td>Butler Schein</td><td>29405 250ML PVL</td><td>또는 이에 상응하는</td></tr><tr><td>Enviro-pure 마취 흡수 캐니스터</td><td>Surgivet Smiths Medical PM, Inc.를</td> 사용하여 수행되었습니다.<td>부품 #: 32373B10</td><td>또는 동등한</td></tr><tr><td>초음파 전송 젤</td><td>HM Sonic</td><td>N/A</td><td>또는 동등한&nbsp;</td></tr><tr><td>Puralube 수의사 연고</td><td>Puralube</td><td>NDC 17033-211-38</td><td>또는 이에 상응하는</td></tr><tr><td>Deltaphase 등온 패드</td><td>Braintree Scientific Inc.</td><td>39DP</td><td>또는 동급</td></tr><tr><td>제모제</td><td>Nair</td><td>N/A</td><td>또는 동급</td></tr><tr><td>전기 면도기</td><td>Remington</td><td>HC-5015</td><td>또는 동급</td></tr><tr><td>수술용 테이프</td><td>3M Micropore</td><td>1530-1</td><td>또는 동급</td></tr><tr><td>거즈 스폰지</td><td>Dynarex</td><td>3262</td><td>또는 동급</td></tr></tbody></table>

마우스 다이어프램 기능의 진단 초음파 이미징

Diagnostic Ultrasound Imaging of Mouse Diaphragm Function

설치류 호흡 골격근의 기능 분석, 특히 다이어프램은 일반적 침습 수술 절차를 이용하여 근육의 스트립을 분리하여 수행된다. 이 체외 조임 활동 평가하는 효율적인 방법이지만, 비 생존 수술을 포함한다. 생체 절차와 같은 비 침습적 초음파 영상의 응용 프로그램은 희생 동물의 수를 줄일뿐만 아니라 이후 유익 아니라 살아있는 마우스에서 질병의 진행을 모니터링하기에 적합하다. 따라서, 우리의 초음파 촬상 방법은 가능성 다양한 호흡기 질환에 의해 유도 근육 손상을 완화 신규 치료법의 개발에 도움이있다. 특히, 폐색 성 폐 질환의 임상 진단에서, 초음파 영상은 격막의 근육 피로의 조기 개시를 검출하기 위해 다른 표준 시험과 함께 사용될 수있는 잠재력을 갖는다. 현재 프로토콜에서, 우리는 정확하게 다이어프램 contracti을 평가하는 방법에 대해 설명합니다진단 초음파 이미징 기술을 사용하여 마우스 모델에서의 lity.

마우스 다이어프램의 일반적인 초음파 영상은 그림 1A에 표시됩니다. 마우스 조리개 최대 수직 변위를 기록했다. 이 거리를 정확하게 초음파 소프트웨어. 표 1 디스플레이 세 가지 다른 생쥐에서 횡격막 수축이 거리 측정의 일부인 전자 캘리퍼스를 사용하여 수축 이완에서 다이어프램의 움직임의 깊이를 측정하여 계산 하였다. MPEG 파일로 시네 루프 파일을 변환 한 후, 호흡률은 여섯 제 2 기록 기간 횡격막 수축의 수를 계수함으로써 결정 하였다. 이 분석은 B-모드를 사용하여 수행 될 수있다. 도 1b에 도시 된 바와 같이 대안 적으로, M-모드는 시각화 다이어프램 상하 운동의 이미지뿐만 아니라 호흡 속도를 제공한다. 이러한 결과는이 방법이 정확하게 마우스 다이어프램의 수축을 관찰하는 효과가 있음을 보여줍니다. 또한, 녹음기로<html> 조리개 기능을 겨,이 프로토콜은 또한 격막 소풍 및 호흡 수 등의 두 가지 중요한 매개 변수를 평가 할 수 ...

진단 초음파 영상은 사람과 동물을 대상으로 각종 호흡기 질환을 진단하는 데 효과적 일 수있다. 우리는 구체적으로 마우스 모델에서 다이아 프램 역학을 분석하는 박사 ZUO의 실험실에 의해 이용 포괄적 인 초음파 프로토콜을 보여줍니다. 이것은 또한 마우스 호흡기 근육의 기능에 대한 정량적 인 정보를 제공 할 수있는 비 침습적 연구 기법이다.

Function analysis of rodent respiratory skeletal muscles, particularly the diaphragm, is commonly performed by isolating muscle strips using invasive ...

이 절차의 전반적인 목적은 마우스 모델에서 횡격막 수축력을 정확하게 평가하는 방법을 시연하는 것입니다. 초음파 영상을 이용하여, 먼저 마우스를 마취하고 복부의 털을 제거합니다. 다음 단계로 초음파 젤을 도포하고 초음파 프로브를 사용하여 횡격막 영상을 분해능 있게 구현합니다.최종적으로, 소프트웨어의 전자 캘리퍼스를 활용하여 횡격막의 이동 거리와 호흡수를 확인할 수 있습니다. 침습적 근전도 검사와 같은 기존 방법과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은 비침습적이며 희생되는 동물의 수를 줄일 수 있다는 점입니다. 이 기술의 응용 범위는 호흡근 기능 장애의 진단 및 잠재적 치료법으로 확장될 수 있습니다.이 방법은 마우스 모델의 횡격막 수축력에 대한 통찰을 제공할 수 있을 뿐만 아니라, 임상 모델과 같은 다른 시스템에 적용하여 질병의 진행 상황과 치료 효능을 평가하는 데에도 활용될 수 있습니다. 수술용 타월로 감싼 가열 등온 패드가 준비된 깨끗한 시술대를 설정하십시오. 가열 패드는 동물의 체온을 안정시키는 동시에 동물이 받을 수 있는 스트레스를 줄이는 데 사용되어야 합니다.마우스를 산소 유량이 1.5 liters per minute로 설정되고 3.5%의 isoflurane이 기화된 마취 유도 챔버에 넣습니다. 진정 상태는 보통 2분 이내에 나타나며, 수의적 운동 기능의 상실로 확인할 수 있습니다. 그 후 노즈 콘(nose cone) 가스 공급을 통해 마취 상태를 유지합니다. 동물을 마취시킨 후, 마취 중 안구 건조를 줄이기 위해 각막에 소량의 안연고를 직접 도포합니다.마우스에서 발 반사(pedal withdrawal reflex)가 절대 나타나지 않아야 합니다. 점막은 항상 분홍색을 유지해야 하며, 동물은 규칙적으로 호흡해야 합니다. 마취된 마우스의 각 다리를 수술용 테이프와 같은 제거 가능한 접착제로 가열된 처치대 위에 고정하십시오.전동 면도기를 사용하여 복부와 흉강 중간 지점 사이의 복측 체표면 털을 대부분 제거합니다. 그 다음 제모 크림을 도포하여 남은 털을 제거합니다. 2~3분 후에 젖은 거즈 패드로 크림을 닦아냅니다.또한, 물과 거즈를 사용하여 남은 털을 제거합니다. 다음으로, 70% 알코올 또는 그에 상응하는 소독제로 면도한 부위를 네 번 닦아낸 후 초음파 장치를 켭니다. 이러한 프로브들은 크기가 작고 축 방향 분해능이 뛰어나므로 마이크로 컨벡스 어레이(micro convex array) 또는 리니어 페이즈드 어레이(linear phased array) 트랜스듀서가 이상적입니다.초음파 주파수를 6.5에서 12 megahertz 범위로 조정합니다. 이제 기기의 모드, 밝기 및 모션 모드를 함께 설정하여 횡격막 수축을 가장 잘 영상화할 수 있도록 합니다. 다음으로, 상복부에 소량의 초음파 젤을 바르고 젤을 흉강 방향으로 마사지합니다.초음파 탐촉자를 젤 위에 놓고 심장을 향해 위쪽으로 각도를 조절합니다. 이미지 해상도를 최적화하기 위해 프로브를 조정하십시오. 이 과정은 다소 어려울 수 있으나, 연습을 통해 숙달될 수 있습니다.검사 결과에 지장이 없도록 마취 상태인 동물의 호흡을 모니터링하는 것이 매우 중요합니다. 정지 버튼을 눌러 횡격막 이미지를 일시적으로 저장하고 선택한 수축 상태를 확인하십시오. 횡격막의 가동 범위와 호흡률을 나중에 측정할 수 있도록 기록을 cyl 루프로 저장하십시오.영상 촬영 후, 마우스는 30분 이내에 마취에서 완전히 회복되어야 합니다. 동물이 흉복와위(sternal recumbent) 상태를 유지할 수 있을 만큼 충분히 의식을 회복할 때까지 방치하지 마십시오. M 모드에서 데이터를 분석하려면, 초음파 소프트웨어에 포함된 전자 캘리퍼를 사용하여 이완 상태에서 수축 상태까지의 횡격막 움직임의 깊이와 속도를 측정하십시오.또는 B 모드에서 CINA 루프 파일을 MP4 파일로 변환한 후, 녹화 기간 동안의 횡격막 수축 횟수를 세어 호흡수를 결정할 수 있으며, B 모드에서 전자 캘리퍼스를 사용하여 횡격막 이동 깊이를 측정할 수도 있습니다. 마우스 횡격막의 최대 수직 변위가 기록되었으며, 전자 캘리퍼스를 사용하여 프로토콜에 설명된 대로 거리를 계산했습니다. 이러한 측정은 서로 다른 세 마리의 마우스를 대상으로 수행되었습니다.예를 들어, CIL 루프 파일을 MP4 파일로 변환한 후의 과정입니다. 호흡률은 6초의 기록 기간 동안 횡격막 수축 횟수를 측정하여 결정했습니다. 이 분석은 B 모드를 사용하여 수행되었습니다.대안적으로, M 모드를 통해 호흡수뿐만 아니라 횡격막의 수직 운동을 시각화된 이미지로 제공하였습니다. 진단 초음파 영상을 촬영할 때 반향(reverberation)과 같은 일부 잠재적인 영상 아티팩트가 발생할 수 있습니다. 또 다른 아티팩트로 코멧 테일(comet tales) 현상이 나타날 수 있습니다. 이 기술을 숙달하여 적절하게 수행한다면 20분에서 30분 정도 소요될 수 있습니다.이 영상을 시청한 후에는 진단용 초음파 영상 기술을 사용하여 마우스 모델에서 횡격막 수축력을 정확하게 평가하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

diagnostic-ultrasound-imaging-of-mouse-diaphragm-function

Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

Transthoracic echocardiography는 생쥐에서 심장 기능의 평가에 대한 비침 투 방법을 제공합니다. 초음파 및 도플러 영상 modalities의 조합이 심장과 함께 심장 수축기 및 diastolic 성능 평가를 제공 intracardiac 혈액 흐름의 차원 측정을 얻을하는 데 사용할 수 있습니다.

마우스에 Transthoracic Echocardiography

이 동영상은 anesthetized 마우스 echocardiography을 수행하는 레일 마운트 고주파 초음파 프로브의 사용을 보여줍니다. 방법은 컬러 도플러, 스트레인 분석뿐만 아니라 일반 목표 대비 이미징과 같은 새로운,보다 강력한 도구 이외에도 심장 기능을 모두 종래의 2 차원 및 M 모드 측정을 설명합니다.

Murine Echocardiography 및 초음파 이미징

심장 개발에 영향을 미치는 유전자 변경을 공부할 때 태아 및 perinatal 죽음은 일반적인 기능입니다. 고주파 초음파 이미징은 2-D 해상도를 개선하고 조기 심장 개발에 우수한 정보를 제공 할 수 있으며 죽기 전에 심장 구조와 기능에 미치는 영향을 감지 할 수있는 이상적인 방법입니다.

손쥐 태아 Echocardiography

이 문서에서는 우심실의 크기와 생쥐의 폐 고혈압의 심 초음파 평가를위한 프로토콜을 제공합니다. 응용 프로그램은 유전자 변형과 심장 근육 병증 및 폐 혈관 질환의 독소 유발 마우스 모델에서 표현형 결정 및 직렬 평가를 포함.

마우스의 오른쪽 심장의 심 초음파 평가

초음파 이미징 생쥐에서 흉부 및 복 부 대동맥 동맥 류의 luminal 크기를 결정 하는 일반적인 형식 되고있다. 이 프로토콜 생쥐에서 상승 하 고 복 부 대동맥의 안정적이 고 재현 가능한 2 차원 초음파 이미지 절차를 설명 합니다.

흉부 및 복 부 대동맥 동맥 류 크기를 결정 하는 쥐에서의 초음파 이미징

이 프로토콜은 초음파 화상 진찰에 의하여 형성된 종양의 정량화뿐만 아니라 마우스에 있는 KRAS 폐 종양을 유도하기 위하여 취한 단계를 기술합니다. 작은 종양은 B 선으로 초기 시간대에 시각화됩니다. 이후 시점에서 상대 종양 부피 측정은 초음파 소프트웨어의 측정 도구에 의해 달성됩니다.

초음파 화상 진찰에 의하여 마우스에 있는 폐 종양 진행의 탐지

고해상도 초음파는 임신 상태, 임신 연령 및 임신 손실을 결정하여 임신 시간 임신 마우스를 요구하는 실험을 간소화하는 데 도움이 될 수 있습니다. 여기에 제시된 것은 임신을 모방할 수 있는 잠재적인 함정 (이미지 아티팩트)뿐만 아니라 마우스 임신을 평가하는 방법을 설명하는 프로토콜입니다.

내 마우스가 임신? 고주파 초음파 평가

이 프로토콜은 전체 및 조직학적 변화와 상관관계가 있는 초음파 영상을 사용하여 자궁내막암의 유도성 마우스 모델에서 시간 경과에 따른 형태학적 변화의 진행을 모니터링하는 방법을 설명합니다.

마우스에서 종양 억제인자 Arid1a 및 Pten 의 Pax8 지시 결실에서 자궁내막암 진행의 비침습적 초음파 평가

다이어프램 두께와 기능은 현장 진료 초음파를 사용하여 건강한 개인과 중증 환자에서 평가할 수 있습니다. 이 기술은 다이어프램 구조 및 기능을 평가하기 위한 정확하고 재현 가능하며 실현 가능하고 내약성이 우수한 방법을 제공합니다.

현장 진료 초음파를 사용한 다이어프램 두께 및 기능 측정

현장 진료 초음파(POCUS)는 휴대성, 비침습성 및 실시간 이미징 기능으로 인해 횡격막 기능 장애를 선별하는 데 필수적인 기술입니다. 현재 다이어프램 POCUS 프로토콜이 존재하지만 운영자 간 신뢰성이 낮고 합의 지침이 부족합니다. 여기에서는 재현 가능하고 간단하게 수행할 수 있는 기술에 대해 설명합니다.

성인의 횡격막 초음파: 이미지 획득 및 해석

학습하세요 마우스 모델에서 비침습적 초음파 이미징을 이용한 횡격막 수축성 평가 방법을. 이 기술은 호흡근 기능을 정량적으로 분석하여 호흡기 질환 진단에 활용됩니다.

마우스 다이어프램 기능의 진단 초음파 이미징

더 많은 동영상 탐색