Name: 전체 피부 결함 모델은 생체의 혈관 신생을 평가하기 생체 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-08-28T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 56 s
Description: 학습하세요 생체 내 혈관 신생을 평가하는 전체 피부 결함 모델 기법을 배우세요. 생쥐를 이용한 이 방법은 조직 공학 구조물의 혈관화를 시각화하고 정량화하는 비용 효율적인 접근법을 제공합니다.

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인테그라 피부 재생 템플릿은 친절 인테그라 생명 과학 회사에 의해 제공되었다. 작업을 지원하는 자금의 출처는 : (. 수 (Nr) 15,090,007)이 작품은 부분적으로 CIRM-BMBF 초기 번역 상 II 상 및 게놈 규제 FONDAP 센터 JTE에게 모두에 의해 자금을 조달했다.

비계의 1 준비 <ol><li> 12mm 생검 펀치를 사용하여 지지체의 샘플을 생성한다. </li><li> , 비계에 생리 활성 분자 또는 세포를 소개 부드럽게 멸균 거즈로 압박하여 발판을 배출합니다. 이어서 생체 활성 분자 또는 관심 세포를 포함하는 용액 160 μl를 첨가하여 지지체를 재수. 두 번 확인 등 MTT 분석 실험 등의 대사 분석을 통해 세포 생리 활성의 성공을. </li><li> 필요한 경우 단계 120에서 설명한 바와 같이, 재수 통해 다시 피브린 트롬빈 용액 또는 하이드로 겔, 예를 들면, 그들에 의해 전달 된 화합물 또는 세포가 지지체 내부 테스트 할 고정한다. 참고 : 화합물 또는 세포가 기계적으로 재료에 부착하지 않는 경우이 단계가 도움이 될 수 있습니다. 하나는 화합물의 방출 동역학을 제어 할 수있다 .. </li><li> cuttin에 의해, 모든 실험 및 제어 그룹에서 각 발판 아래에 배치됩니다 titanized 메쉬를 준비g 밖으로 둥근 모양의 조각, 직경 약 14mm. 참고 : titanized 메쉬 상처 침대에서 재생 조직을 구분하는 데 필요한 물리적 테두리로 작동합니다. </li></ol> 2 동물 <ol><li> 제시된 모델의 구현에 앞서, 해당 동물 보호법을 협의하고 지방 자치 단체의 허가를 얻을 수 있습니다. 이 작품에서 모든 실험은 현재 독일어 동물 복지 행위에 따라, 마우스로 수행하고 어퍼 바바리아의 지방 정부 (Regierung 폰 Oberbayern)에 의해 승인했다. </li><li> 조심스럽게 동물과 변형을 선택합니다. 생쥐 모델이 확립되었다 아니지만, 예컨대 래트, 토끼, 돼지 또는 다른 동물에 공통으로 번역 될 수있다. </li><li> 당신이 모피 동물로 작업하는 경우, 비계의 주입하기 전에 동물의 뒷면을 면도. 참고 :이 작품은 20g과 25g, 그러나 다른 연령대와 b 사이의 체중과 나이 6~8주의 마우스를 사용로디 가중치가 또한 사용될 수있다. </li></ol> 3 마취 <ol><li> 멸균 조건 하에서 작업을 수행. 동물의 정상 체온을 유지하기 위해, 온난화 매트를 사용한다. </li><li> 마취를 inhalative에 앞서 동물 / kg 체중 0.05-0.1 ㎎, 피하마다 8 시간의 용량으로 Buprenorphin을받을 수 있습니다. </li><li> inhalative 마취 (아이소 플루 란)에서 동물을 배치 또는 이에 상응하는 표준 절차를 적용 할 수 있습니다. 부드럽게 동물의 발가락을 압박하거나 피부 핀치를 통해 하나 마취를 확인합니다. </li><li> , exsiccosis 방지 동작의 시작 부분에 0.5 ㎖의 생리 식염수를 피하 주사한다. </li></ol> 피부의 절제 (4) <ol><li> 발생하기 쉬운 위치에 동물을 배치하고 앞쪽 끝이가는 영구 펜 (그림 1A)와 마우스의 뒷면의 중간 선을 표시합니다. </li><li> 절제 영역을 정의합니다. Figu에 표시된 영역에서 결함을 배치1C를 다시. 결함이 너무 하방 배치하는 경우, 동물 드레싱 및 비계를 제거하는 것이 더 경향이 있습니다. </li><li> 10mm 생검 펀치 (그림 1B)를 사용하여 양자의 결함 라운드 만듭니다. 펀치는 신중하게 피부에 대해 강제해야하며, 피부를 통해 완전히 잘라하지만 절제 영역 (그림 1C 및 1E)를 묘사하는 데 사용할 수 없습니다. </li><li> 부드럽게 집게로 표시된 피부를 들어 올려 미세 수술 가위 (그림 1 층)를 사용하여 표시된 원을 따라 절개. 출혈의 경우, 신중하게 멸균 거즈로 압축합니다. 절제의 단계별 설명은 그림 1에 나타나있다. NOTE : 결함 인해 피부 탄력에 결함의 확대를 보상하기 위해, 발판을 생성 한 것보다 더 작은 펀치로 생성된다. </li></ol> 5 비계 주입 <ol><li> TITA위한 공간을 만들기 위해을 인정했다가, 메쉬 2-4밀리미터 (그림 2A)에 대한 상처 국경에서 피부와 하부 조직의 분리를 확장 할 수 있습니다. </li><li> 직접 상처 침대에 상처 가장자리 (그림 2A &amp; B)에서 결함에 메쉬 titanized를 놓습니다. </li><li> 장소는 직접 메쉬를 통해 비계. </li><li> 약간 비계 (그림 2C)를 통해 가장자리를 떠나, 4-6 단일 노트와 인접한 상처 가장자리에 발판을 봉합. 참고 : 생분해 성 봉합사의 사용을 피하십시오. </li><li> 상처 면적 (도 2d)의 모니터링을 허용하는 동시에 발판을 보호하기 위해 상기 결함 드레싱 투명 상처 봉합. </li></ol> (6) 수술 후 케어 <ol><li> 드레싱과 비계의 상호 조작을 막아 케이지 당 하나의 마우스를 보관하십시오. </li><li> 관찰 모터 활동, 체중, 고통의 징후, 공차에 의해 매일 동물의 상태를 평가하기 일반드레싱 및 자동 절단한다. 또한 출혈, 로컬 및 감염의 전신 징후와 드레싱 위치 대 상처 영역을 감시한다. </li><li> 동물의 통증을 최소화하기 위해, 0.05-0.1 ㎎ / ㎏ (체중) 또는 동등한 진통제 약물의 투여 량은 매일 Buprenorphin 주입. </li><li> 마우스가 상처 드레싱을 제거하거나 손상되면 교체하거나 마취를 다시 연결합니다. </li></ol> 비계의 7 안락사 및 적출 <ol><li> 원하는 시점에서, 펜토 바르 비탈 (150 ㎎ / ㎏)에 의해 과량의 동물을 희생. </li><li> 비계 가능 (그림 3A)로 다시 마우스 피부의 정도를 포함해야 영구 마커, 피부 절제의 사이트를 표시합니다. </li><li> 가위 또는 메스 쌍 표시된 선을 따라 피부를 절개. (무딘 준비를 통해 하부 조직에서 인터넷을 발판과 titanized 메시를 포함하여 전체 피부를 분리gure 3B). </li><li> 페트리 접시에 펼쳐 외식 조직을 배치 (그림 3C와 D) </li></ol> 혈관 네트워크의 8 시각화 및 정량화 <ol><li> Transillumination : <ol><li> 흰색 빛 (100 와트 전구 표준)의 강한 소스 위의 페트리 접시를 장착하여, transillumination 장치를 설정합니다. </li><li> 디지털 사진을 얻기 위해 트랜스 일루미네이터 위의 디지털 카메라를 고정합니다. </li><li> 거꾸로 transillumination 장치를 통해 페트리 접시에 샘플을 놓습니다. </li><li> 정상적인 피부의 동일한 크기의 영역뿐만 아니라 매크로 모드에서 완전한 비계의 사진을 촬영합니다. 또한 디지털 분석을 위해 TIFF 형식으로 이미지를 저장합니다. </li><li> 또한 생화학 적 또는 조직 학적 분석을위한 조직을 저장합니다. </li></ol></li><li> 디지털 분할 및 정량화 : <ol><li> FR을 얻을 수있다 VesSeg - 도구 소프트웨어를 다운로드하여 설치:에서 충전 EE <a href="http://www.isip.uni-luebeck.de/index.php?id=150&amp;L=2%255">http://www.isip.uni-luebeck.de/index.php?id=150&amp;L=2%255</a> . </li><li> VesSeg - 도구 소프트웨어를 사용하여 사진을 엽니 다. </li><li> 디지털 분석 (선택 → 이미지)를위한 발판이 적용 이미지의 영역을 선택합니다. </li><li> 옵션 &quot;히스테리시스 임계 값&quot;(계산 용기 향상 → 탑 햇 변환 → 이미지 → 선박 향상 필터 → 히스테리시스 임계 값)를 사용하여 선박의 명암을 증가합니다. </li><li> 용기지도 (이미지 → 선박 향상 필터 → 히스테리시스 임계 값의 → 임계 테두리)의 분할을 진행합니다. 제 1 임계 값 ( &quot;선박 보험&quot;), 그래서 심지어 원격으로 혈관처럼 모든 픽셀이, 용기가 부착되어 있습니다를 선택합니다. 특히 용기와 같은 용기가 부착되어 있습니다들만 픽셀을 초 임계 ( &quot;배경의 범위를&quot;)를 선택합니다. </li><li> 비 캡처 한 선박을 추가하고 일반적으로 머리카락이나 봉합 길고 얇은 혈관과 같은 구조 인 일반적인 위양성 구조를 제거하기 위해 수동으로 자동 분할 제안을 확인합니다. </li><li> 선박의 길이와 (이진 이미지 통계 → 이미지 → 이미지 통계) 선박에 의해 커버되는 전체 영역을 계산합니다. NOTE : 혈관 길이의 계산을 위해, 생성 된 혈관의 혈관 맵 1 화소 (20)의 폭과 라인 박형화된다. </li></ol></li><li> 기본 조직에 100 %의 값을 할당하는 발판과 같은 파라미터에 따라 고유의 피부 영역을 분석하여 그 값을 지지체에 관한 것이다. 흰색 픽셀의 비율이 정상 조직에서 60 %와 30 % 지지체의 경우 예를 들어, 상기 지지체의 50 %의 혈관 신생을 나타낼 것이다. 참고 : 흰색 용기 적용 범위가 발판 주위에 사각형의 영역에 할당됩니다. 흰색 픽셀 커버리지 consi의 수를 조정원의 면적은 평방 (4 ×의 R 2)보다 훨씬 작은 (π의 X의 R 2)입니다 디링. </li></ol>

<ol><li>Rahaman, M. N., Mao, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stem+cell-based+composite+tissue+constructs+for+regenerative+medicine%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnology+and+Bioengineering%22%5BJournal%5D)">Stem cell-based composite tissue constructs for regenerative medicine.</a> Biotechnology and Bioengineering. 91 (3), 261-284 (2005).</li>
<li>Lutolf, M. P., Hubbell, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthetic+biomaterials+as+instructive+extracellular+microenvironments+for+morphogenesis+in+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Synthetic biomaterials as instructive extracellular microenvironments for morphogenesis in tissue engineering.</a> Nature Biotechnology. 23, 47-55 (2005).</li>
<li>Machens, H. G., Berger, A. C., Mailaender, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioartificial+skin%5BTitle%5D)+AND+%22Cells+Tissues+Organs%22%5BJournal%5D)">Bioartificial skin.</a> Cells Tissues Organs. 167, 88-94 (2000).</li>
<li>Priya, S. G., Jungvid, H., Kumar, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Skin+tissue+engineering+for+tissue+repair+and+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering+Part+B%3A+Reviews%22%5BJournal%5D)">Skin tissue engineering for tissue repair and regeneration.</a> Tissue Engineering Part B: Reviews. 14, 105-118 (2008).</li>
<li>Papavasiliou, G., Cheng, M. H., Brey, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strategies+for+vascularization+of+polymer+scaffolds%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Investigative+Medicine%22%5BJournal%5D)">Strategies for vascularization of polymer scaffolds.</a> Journal of Investigative Medicine. 58 (7), 838-844 (2010).</li>
<li>Laschke, M. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Angiogenesis+in+tissue+engineering%3A+breathing+life+into+constructed+tissue+substitutes%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering%22%5BJournal%5D)">Angiogenesis in tissue engineering: breathing life into constructed tissue substitutes.</a> Tissue Engineering. 12, 2093-2104 (2006).</li>
<li>Zhong, S. P., Zhang, Y. Z., Lim, C. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+scaffolds+for+skin+wound+healing+and+dermal+reconstruction%5BTitle%5D)+AND+%22Wiley+Interdisciplinary+Reviews+Nanomedicine+and+Nanobiotechnology%22%5BJournal%5D)">Tissue scaffolds for skin wound healing and dermal reconstruction.</a> Wiley Interdisciplinary Reviews Nanomedicine and Nanobiotechnology. 2 (5), 510-525 (2010).</li>
<li>Liu, G., Zhang, Y., Liu, B., Sun, J., Li, W., Cui, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bone+regeneration+in+a+canine+cranial+model+using+allogeneic+adipose+derived+stem+cells+and+coral+scaffold%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Bone regeneration in a canine cranial model using allogeneic adipose derived stem cells and coral scaffold.</a> Biomaterials. 34 (11), 2655-2664 (2013).</li>
<li>Hansson, A., Di Francesco, T., Falson, F., Rousselle, P., Jordan, O., Borchard, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+and+evaluation+of+nanoparticles+for+directed+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Pharmaceutics%22%5BJournal%5D)">Preparation and evaluation of nanoparticles for directed tissue engineering.</a> International Journal of Pharmaceutics. 439 (1-2), 73-80 (2012).</li>
<li>Sarkar, S. D., Farrugia, B. L., Dargaville, T. R., Dhara, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chitosan-collagen+scaffolds+with+nano%2Fmicrofibrous+architecture+for+skin+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedical+Materials+Research+Part+A%22%5BJournal%5D)">Chitosan-collagen scaffolds with nano/microfibrous architecture for skin tissue engineering.</a> Journal of Biomedical Materials Research Part A. 18, (2013).</li>
<li>Wang, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+roles+of+knitted+mesh-reinforced+collagen-chitosan+hybrid+scaffold+in+the+one-step+repair+of+full-thickness+skin+defects+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomaterials%22%5BJournal%5D)">The roles of knitted mesh-reinforced collagen-chitosan hybrid scaffold in the one-step repair of full-thickness skin defects in rats.</a> Acta Biomaterials. 9 (8), 7822-7832 (2013).</li>
<li>Rizzi, S. C., Upton, Z., Bott, K., Dargaville, T. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recent+advances+in+dermal+wound+healing%3A+biomedical+device+approaches%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Review+of+Medical+Devices%22%5BJournal%5D)">Recent advances in dermal wound healing: biomedical device approaches.</a> Expert Review of Medical Devices. 1, 143-154 (2010).</li>
<li>des Rieux, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D+systems+delivering+VEGF+to+promote+angiogenesis+for+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Controlled+Release%22%5BJournal%5D)">3D systems delivering VEGF to promote angiogenesis for tissue engineering.</a> Journal of Controlled Release. 150, 272-278 (2011).</li>
<li>Reckhenrich, A. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioactivation+of+dermal+scaffolds+with+a+non-viral+copolymer-protected+gene+vector%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Bioactivation of dermal scaffolds with a non-viral copolymer-protected gene vector.</a> Biomaterials. 32, 1996-2003 (2011).</li>
<li>Chen, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Key+Regulatory+Roles+of+the+PI3K%2FAkt+Signaling+Pathway+in+the+Functionalities+of+Mesenchymal+Stem+Cells+and+Applications+in+Tissue+Regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering+Part+B+Rev%22%5BJournal%5D)">The Key Regulatory Roles of the PI3K/Akt Signaling Pathway in the Functionalities of Mesenchymal Stem Cells and Applications in Tissue Regeneration.</a> Tissue Engineering Part B Rev. 19, 516-528 (2013).</li>
<li>Fedorovich, N. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+endothelial+progenitor+cells+in+prevascularized+bone+tissue+engineering%3A+development+of+heterogenous+constructs%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering+Part+A%22%5BJournal%5D)">The role of endothelial progenitor cells in prevascularized bone tissue engineering: development of heterogenous constructs.</a> Tissue Engineering Part A. 16 (7), 2355-2367 (2010).</li>
<li>Wang, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Osteogenesis+and+angiogenesis+of+tissue-engineered+bone+constructed+by+prevascularized+%CE%B2-tricalcium+phosphate+scaffold+and+mesenchymal+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Osteogenesis and angiogenesis of tissue-engineered bone constructed by prevascularized β-tricalcium phosphate scaffold and mesenchymal stem cells.</a> Biomaterials. 36, 9452-9461 (2010).</li>
<li>Cuadra, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+results+of+burned+hands+treated+with+Integra%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Plastic%2C+Reconstructive+%26+Aesthetic+Surgery%22%5BJournal%5D)">Functional results of burned hands treated with Integra.</a> Journal of Plastic, Reconstructive & Aesthetic Surgery. 65 (2), 228-234 (2012).</li>
<li>Wilcke, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((VEGF%28165%29+and+bFGF+protein-based+therapy+in+a+slow+release+system+to+improve+angiogenesis+in+a+bioartificial+dermal+substitute+in+vitro+and+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Langenbecks+Arch+Surg%22%5BJournal%5D)">VEGF(165) and bFGF protein-based therapy in a slow release system to improve angiogenesis in a bioartificial dermal substitute in vitro and in vivo.</a> Langenbecks Arch Surg. 392 (3), 305-314 (2007).</li>
<li>Condurache, A., Aach, T., Grzybowsky, S., Machens, H. G. Vessel segmentation and analysis in laboratory skin transplant micro-angiograms. Proceedings of the Eighteenth IEEE Symposium on Computer-Based Medical Systems. , 21-26 (2005).</li>
<li>Danner, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+human+sweat+gland-derived+stem+cells+for+enhancing+vascularization+during+dermal+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Investigative+Dermatology%22%5BJournal%5D)">The use of human sweat gland-derived stem cells for enhancing vascularization during dermal regeneration.</a> Journal of Investigative Dermatology. 132 (6), 1707-1716 (2012).</li>
<li>Shaterian, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Real+Time+Analysis+of+the+Kinetics+of+Angiogenesis+and+Vascular+Permeability+in+an+Animal+Model+of+Wound+Healing%5BTitle%5D)+AND+%22Burns%22%5BJournal%5D)">Real Time Analysis of the Kinetics of Angiogenesis and Vascular Permeability in an Animal Model of Wound Healing.</a> Burns. 35 (6), 811-817 (2009).</li>
<li>McDonald, D. M., Choyke, P. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+of+angiogenesis%3A+from+microscope+to+clinic%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Medicine%22%5BJournal%5D)">Imaging of angiogenesis: from microscope to clinic.</a> Nature Medicine. 9 (6), 713-725 (2003).</li>
<li>Bergeron, L., Tang, M., Morris, S. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+review+of+vascular+injection+techniques+for+the+study+of+perforator+flaps%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery%22%5BJournal%5D)">A review of vascular injection techniques for the study of perforator flaps.</a> Plastic and Reconstructive Surgery. 117, 2050-2057 (2006).</li>
<li>Schlatter, P., König, M. F., Karlsson, L. M., Burri, P. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+study+of+intussusceptive+capillary+growth+in+the+chorioallantoic+membrane+%28CAM%29+of+the+chicken+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Microvascular+Research%22%5BJournal%5D)">Quantitative study of intussusceptive capillary growth in the chorioallantoic membrane (CAM) of the chicken embryo.</a> Microvascular Research. 54 (1), 65-73 (1997).</li>
<li>Lehr, H. A., Leunig, M., Menger, M. D., Nolte, D., Messmer, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dorsal+skinfold+chamber+technique+for+intravital+microscopy+in+nude+mice%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Pathology%22%5BJournal%5D)">Dorsal skinfold chamber technique for intravital microscopy in nude mice.</a> American Journal of Pathology. 143 (4), 1055-1062 (1993).</li>
<li>Menger, M. D., Jäger, S., Walter, P., Hammersen, F., Messmer, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+technique+for+studies+on+the+microvasculature+of+transplanted+islets+of+Langerhans+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22International+journal+of+microcirculation%2C+clinical+and+experimental%22%5BJournal%5D)">A novel technique for studies on the microvasculature of transplanted islets of Langerhans in vivo.</a> International journal of microcirculation, clinical and experimental. 9 (1), 103-117 (1990).</li>
<li>Laschke, M. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-dimensional+spheroids+of+adipose-derived+mesenchymal+stem+cells+are+potent+initiators+of+blood+vessel+formation+in+porous+polyurethane+scaffolds%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Three-dimensional spheroids of adipose-derived mesenchymal stem cells are potent initiators of blood vessel formation in porous polyurethane scaffolds.</a> Acta Biomaterials. 9 (6), 6876-6884 (2013).</li>
<li>Egaña, J. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+human+mesenchymal+cells+to+improve+vascularization+in+a+mouse+model+for+scaffold-based+dermal+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng+Part+A%22%5BJournal%5D)">Use of human mesenchymal cells to improve vascularization in a mouse model for scaffold-based dermal regeneration.</a> Tissue Eng Part A. 15 (5), 1191-1200 (2009).</li>
<li>Condurache, A., Aach, T. Vessel segmentation in angiograms using hysteresis thresholding. Proceedings of the Ninth IAPR Conference on Machine Vision Applications. , 269-272 (2005).</li>
<li>Egaña, J. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ex+vivo+method+to+visualize+and+quantify+vascular+networks+in+native+and+tissue+engineered+skin%5BTitle%5D)+AND+%22Langenbecks+Archives+of+Surgery%22%5BJournal%5D)">Ex vivo method to visualize and quantify vascular networks in native and tissue engineered skin.</a> Langenbecks Archives of Surgery. 394, 349-356 (2009).</li>
</ol>

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생체 물질 내에 혈관 과정을 연구하기위한 새로운 방법의 안정적인 발전을 요구 조직 공학적 구조에 혈류를 개선하는 방법을 성공적으로 확립 할 필요가있다. 생체 가시 골격 혈관을 만들기위한 일반적인 방법은 고해상도 도구를 제공 현미경의 사용을 포함한다. 대부분의 경우에, 그러나,이 방법은 작은 조직 영역의 분석에 제한되고 비용과 시간이 걸리는 경향이있다. 또한, 종종 혈액 관류 혈관 비 기능들 (22)로부터 구별 될 수없는 정교한 라벨 및 염색 방법을 포함한다. 사용 방법은 혈관의 기능을 컴퓨터 단층 촬영, 자기 공명 영상 및 양전자 단층 촬영되어 전자 평가한다. 이러한 방법은 매우 고가의 장비 및 저해상도 전원 (23)의 단점을 가지고있다. 혈관을 시각화하기 위해 일반적으로 사용되는 또 다른 전략은혈관의 사용은 조직 (24)의 화학적 부식 다음 캐스트. 이 방법은 혈관 네트워크의 대표적인 3D 구조를 획득하는 것을 가능하게하지만, 결과는 강하게 인공 관류...

최근 수십 년 동안 조직 공학은 신체의 자신의 세포 하나와 조직 결함을 대체하는 새로운 치료 옵션을 열었다. 조직 재생의 생리 학적 과정을 지원하기 위해, 지지체는 상처 침대에서 세포가 성장하고 결함 2,3 복원 할 시나리오를 제공 생분해 구조로 설계된다. 불충분 한 혈관은 bioartificial 지지체 (4)의 임상 돌파구를 다시 보유하고있는 주요 장애물로 간주됩니다. 세포의 증식과 함께, 영양소 및 산소의 증가 및 혈관 신생의 재료에 대한 요구가 중요하게된다. 부족 또는 지연 혈관 따라서 조직 공학 제품 (5)의 중앙 괴사로 이어질 수 있습니다. 또한, 혈관 면역 적격 세포를 제공하고 회생 영역에서 대사 잔류 물을 제거. 높은 감염률과 낮은 재생은 아르목표로 조직 공학에서 관찰 부족한 혈액 관류의 결과의 일부는 발판 6,7의 혈관을 증가시켜 막을 수 있습니다. 생체 재료 자체와 지지체의 미세 혈관 형성에 중요한 역할 초점 향상을 목표로 여러 전략. 8,9을 복원하기 때문에 (재), 재생하여 수리에서 치유 과정 시프트 하나에 가까운 특성을 갖는 생리 조직을 생성하는 새로운 방법을 개발하기 위해 집중적 인 연구 노력들이있다. 자신의 회생 가능성에 관해서 공부하고 평가 하였다 생체 적합 물질은 콜라겐, 섬유소, 키토산, 알긴산 (10, 11)를 포함했다. 이러한 생체 재료를 사용하고 티슈 탈세 포화, 자기 조립, 조형 등 다양한 전략을 사용하는 새로운 발판을 구축하고 12 전기 방사를위한 백본으로서 결합 될 수있다. ENH 위해서는신체의 자신의 재생 능력 ANCE, 비계는 bioactivated 할 수 있습니다. 재조합 혈관 성장의 혼입 등의 요소 (14) 또는 (13)에 대해 코딩하는 유전자 벡터는 지지체의 혈관을 개선 요인을 보여 주었다. 줄기 세포의 사용은 널리 간엽 기질 세포 및 내피 전구 세포가 가장 관심을 얻고있다 15,16 혈관을 개선하기 위해 유망한 전략으로 밝혀졌다. 다른 방법은 이식 17 일 이전 조립식 용기를 포함하는 네트워크 구조를 구축하기 위해 시도한다. 집중 지지체 디자인 노력과 그들의 생체 활성에도 불구하고, 어떤 전략이 대규모 화상 상처의 피부 대체를 제외하고, 임상 적으로 상당한 수준에서 혈관 생성을 향상하지 않고 있으며, 임상 루틴으로 생체 공학 재료의 번역은 주저 18 일어나는 . 그 이유 중 하나는 혈관 이유인공 조직 구성체, 여전히 미해결 문제이며 생체 내 접근법에서 새로운 기술의 성공 여부를 평가하기 곤란하다. 시험 관내 실험은 비계의 혈관 전위의 중요한 식견을 제공 할 수도 있지만, 적절한 동물 모델은 이러한 재료의 생체 적합성, 특히 중요한 안전성 및 효능을 치료하고, 조직의 혈관 형성과 같은 주요 파라미터를 연구해야 구성. 따라서 신뢰할 수있는 도구를 시각화하고 혈관 네트워크를 생체 내에서 필수적인을 정량화한다. 본 연구에서 우리는 외식 지지체 내부의 혈관 네트워크 시각화 및 정량화를 허용 간단하고 신뢰할 수있는 방법을 제시한다. 이 방법은 조직 transillumination 디지털 분할에 기초한다. 이 방법은 비 침습적이기 때문에, 타겟 재료의 상기 분자 및 조직 학적 분석을 허용한다.

<table><tbody><tr><td>Ethilon P-3 13 mm 3/8 circle 5-0</td><td>Ethicon, Norderstedt, Germany</td><td>698G</td><td>Ethilon polyamid-6 precision point-reverse cutting 봉합사</td></tr><tr><td>생검 펀치 (10 mm)</td><td>Xiomedics, Acuderm inc., Fort Lauderdale, FL, USA</td><td>P1050</td><td></td></tr><tr><td>생검 펀치 (12 mm)</td><td>Xiomedics, Acuderm inc., Fort Lauderdale, FL, USA</td><td>P1250</td><td></td></tr><tr><td>디지털 카메라&nbsp;</td><td>Ricoh, 하노버, 독일</td><td>Cx1</td><td></td></tr><tr><td>Gazin Mullkompresse&nbsp;</td><td>Lohmann und Rauscher, Neuwied, Germany</td><td>13622</td><td>멸균 거즈 (10 cm x 10 cm)</td></tr><tr><td>이중 레이어 콜라겐 기반 스캐폴드 (8' x 10')</td><td>Integra Life Science Corporation, Plainsboro, NJ, USA</td><td>88101</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane, 흡입 마취용 액체 가스&nbsp;</td><td>Baxter, Unterschleissheim, 독일</td><td>100196040</td><td></td></tr><tr><td>Pentobarbital, 16 g / 100 ml</td><td>Fa. Merial, Hallbergmoos</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nuri Nu/Nu Nude 마우스, CrLNU-Foxn1nu</td><td>Charles River, Sulzfeld, Germany</td><td>스트레인 코드 088</td><td>Athymic 누드 마우스, 생후 6주에서 8주령이며 체중이 20에서 25 g 사이입니다.</td></tr><tr><td>부프레노르핀 (0.3 mg/ml)</td><td>Essex Pharma GmbH, 뮌헨, 독일</td><td></td><td></td></tr><tr><td>티탄화 메쉬 (15 cm x 15 cm), 초경량</td><td>PFM Medical AG, K&ouml; ln, 독일</td><td>6000029</td><td></td></tr><tr><td>Tissucol Duo S Immuno 2 ml</td><td>Baxter Germany GmbH, Unterschlei&szlig; 독일 하임</td><td>B1332020110614</td><td>피브린-트롬빈 솔루션&nbsp;</td></tr><tr><td>투명 접착 드레이프(30.5cm x 26cm)</td><td>KCI Medical Products, Wimborne Dorset, UK</td><td>M6275009/10</td><td></td></tr></tbody></table>

전체 피부 결함 모델은 생체의 혈관 신생을 평가하기<em&gt; 생체</em

A Full Skin Defect Model to Evaluate Vascularization of Biomaterials In Vivo

불충분 한 혈관이 조직 공학적 구조물의 임상 성공을 제한하는 주요 요인들 중 하나로 간주된다. 혈관 생성을 향상을 목표로 새로운 전략을 평가하기 위해, 신뢰할 수있는 방법을 보이는 바이오 인공 지지체에 새로운 혈관의 성장을 확인하고 그 결과를 정량화하기 위해 요구된다. 지난 몇 년 동안, 우리 그룹은 transillumination에 의해 혈관의 직접적인 시각화를 가능하게하고 디지털 분할을 통해 정량의 가능성을 제공하는 전체 피부 결함 모델을 출시했다. 이 모델에서, 하나는 수술 마우스의 뒷면에 전체 피부 결함을 생성하고 테스트를 재료로 대체합니다. 분자 또는 관심의 세포는 또한 잠재적 인 효과를 연구하기 위해 이러한 물질에 통합 할 수 있습니다. 자신의 선택의 관측 시간 후, 재료는 평가를 위해 외식된다. 양자 상처 번째 내부 비교하기의 가능성을 제공한다연구에 필요한 동물의 수를 감소뿐만 아니라 개인간 아티팩트를 최소화한다. 다른 방법에 비해, 우리의 방법은 간단, 신뢰성과 비용 효과 분석을 제공합니다. 우리는 다른 생체 물질과 생체 인증 방식의 혈관 테스트시 고해상도의 스크리닝을 수행하는 루틴 도구로이 모델을 구현 하였다.

신뢰할 수있는 양자 간 전체 피부 결함은 피부 연구 (그림 2)에서 생체 재료로 대체 될 수있다 마우스 (그림 1)에서 생성 할 수 있습니다. 여기에서, 더 큰 합병증은 감염이나 이물 반응,도 거시적 징후 중 또는 수술 시술 후 관찰되지 않습니다. 마우스를 제거 할 때 드문 경우에, 비계가 손실됩니다. 상처 수축 (그림 3) 관찰되지 않았다. 조직 transillumination는 모두 기본 조직과 이식 비계 (그림 4)를 포함 전체 조직 샘플에서, 폭 최대 30 μm의 혈관 구조의 명확한 시각화를 허용했다. 원하는 시간 주입을 게시에 디지털 분할 한 후, 혈관을 쉽게 정량화 할 수있다. 예를 들어, 이주 주입 한 후, 62.28 ± 8.6 %의 혈관 수준이 관찰되었다 (평균의 표준 오차 ± 의미, N = 8) 21. 전체적으로 약 25 분 &amp;# 160; 동물 당 (2 비계)가 이...

혈관은 성공적인 조직 공학의 접근 방법의 핵심입니다. 따라서, 신뢰성있는 기술은 조직 구조에서의 혈관 망의 발달을 평가하기 위해 필요하다. 여기서 우리는 시각화 및 생체 내에서 혈관 생성을 정량화하기 위해 간단하고 비용 효율적인 방법을 제시한다.

Insufficient vascularization is considered to be one of the main factors limiting the clinical success of tissue-engineered constructs. In order to ...

이 절차의 전반적인 목표는 조직 공학 구조물 내의 혈관을 시각화하는 것입니다. 이는 마우스의 등에 표준화된 전층 피부 결손 부위를 만들어 수행합니다. 그다음, 조직 공학 재료 샘플을 피부 결손 부위에 이식합니다.그 후 관찰 시간이 끝나면, 재료를 이식하고 투과 조명 장치에 배치합니다. 마지막으로, 표준 디지털 카메라를 사용하여 혈관 네트워크의 고해상도 사진을 획득합니다. 최종적으로, Vessel egg 툴 소프트웨어를 이용한 디지털 분할 및 정량화를 통해 혈관 네트워크를 분석합니다.현미경 검사, 컴퓨터 단층 촬영 또는 자기 공명 영상과 같은 기존 방법과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은, 모든 새로운 기능성 혈관에 집중하여 생체 재료 내 혈관 형성 과정의 시각화 및 정량화를 시간 및 비용 효율적으로 수행할 수 있다는 점입니다. 이 방법은 피부 대체재의 혈관 형성에 대한 통찰력을 제공할 수 있습니다. 또한 다른 모델 생물체에 적용하거나 다른 장기의 혈관 형성을 연구하는 데에도 활용될 수 있습니다.먼저, 12mm 생검 펀치를 사용하여 스캐폴드 샘플을 제작합니다. 예를 들어, 소의 콜라겐 기반 진피 대체재에서 샘플을 생성하고, 각 스캐폴드 아래에 배치할 직경 14mm의 원형 테틴 메쉬 조각을 절단합니다. 마우스를 마취한 후, 발가락 꼬집기(toe pinch)로 마취 깊이를 확인하고 텍스트 프로토콜에 따라 등 쪽의 털을 제거합니다. 동물을 복와위(prone position)로 배치하고, 세밀한 팁의 유성펜을 사용하여 마우스 등의 정중선을 표시합니다.동물이 스캐폴드를 제거하지 못하도록 너무 가깝지 않은 부위에 절제 영역을 설정하십시오. 10 millimeter 생검 펀치(biopsy punch)를 사용하여 펀치를 피부에 조심스럽게 눌러 양측에 원형 결손 부위를 만듭니다. 핀셋으로 절제 영역을 구분하여 표시된 피부를 살짝 들어 올린 후, 외과용 가위를 사용하여 표시된 원을 따라 절개하십시오.출혈이 발생하면 멸균 거즈를 사용하여 해당 부위를 조심스럽게 압박하여 Titanic 메쉬가 들어갈 공간을 확보하십시오. 상처 경계부에서 피부와 하부 조직의 분리 범위를 2~4mm 더 확장합니다. 메쉬를 상처 바닥에 직접 대고 상처 가장자리 아래로 결손 부위에 배치하십시오.그런 다음 스캐폴드를 메쉬 위에 직접 배치합니다. 4~6개의 단일 결절 봉합을 사용하여 스캐폴드를 봉합하여, 인접한 상처 가장자리가 스캐폴드 위로 약간 겹치도록 합니다. 그 후 결손 부위 위에 투명 상처 드레싱을 봉합하여 상처 부위를 모니터링하면서 스캐폴드를 보호합니다.운동 능력, 체중, 통증 징후, 드레싱에 대한 내성 및 자해 여부를 모니터링하여 동물의 전반적인 상태를 매일 평가하십시오. 또한, 상처 부위의 출혈, 국소 및 전신 감염 징후, 드레싱의 위치를 모니터링하십시오. 설정된 시간대에 동물을 안락사시킨 후 절차를 진행합니다.텍스트 프로토콜에 따라, 영구 마커를 사용하여 스캐폴드가 포함된 절제 부위를 표시하십시오. 가위나 메스를 사용하여 표시된 선을 따라 둔탁한 절제로 피부를 절개하고, 스캐폴드와 메쉬를 포함한 피부 전체를 하부 조직에서 분리한 후, 조직을 페트리 접시에 뒤집어 펼쳐 놓으십시오. 샘플을 시각화하려면 투과 조명 장치 위에 놓으십시오.매크로 모드에서 전체 스캐폴드와 동일한 크기의 정상 피부 영역의 사진을 촬영하고, 이후의 디지털 분석을 위해 이미지를 TIFF 형식으로 저장하십시오. ves EQ 툴 소프트웨어를 다운로드한 후, 이미지를 열고 백스페이스 키를 눌러 분석할 관심 영역을 선택하십시오. 그런 다음 invert를 누르십시오.혈관 네트워크를 흰색으로 시각화하려면 image vessel enhancement filter hysteresis thresholding top hat transformation을 선택하고, 이전의 모든 단계에서 혈관 강화(vessel enhancement)를 계산하십시오. 스크롤을 통해 이미지의 배율을 확대하거나 축소할 수 있습니다. 첫 번째 임계값 또는 혈관 범위(vessel coverage)를 선택하여 혈관 맵을 세분화함으로써, 혈관과 조금이라도 유사한 모든 픽셀이 혈관으로 표시되도록 하십시오.계산을 누릅니다. 선택 영역을 미리 보려면 두 번째 임계값 또는 배경 커버리지를 선택하여 특히 혈관과 유사한 픽셀만 혈관으로 표시되도록 합니다. 혈관의 길이와 혈관이 차지하는 전체 면적을 계산하려면 이미지, 이미지 통계 및 이진 이미지 통계를 클릭하십시오.혈관 길이는 혈관 네트워크를 1픽셀 너비로 사전 세선화하여 추정하는 것이 가장 정확합니다. 이를 위해 계산 전 이미지 형태학적 필터(image morphological filters)의 스켈레톤화(skeletonizing) 기능을 실행하십시오. 혈관 면적 대 혈관 길이의 비율을 통해 관심 영역 내 혈관 크기 값을 구할 수 있습니다.필요한 경우, 관심 혈관만 선택하여 아티팩트를 제거하십시오. 선택 모드 하단을 클릭한 후, 백스페이스 키를 눌러 선택한 혈관을 새 이미지로 복사합니다. 마지막으로, 지지체와 동일한 파라미터로 천연 피부 영역을 분석하여 천연 조직에 100%의 값을 할당하고, 해당 값에 대비하여 지지체를 분석하십시오.예를 들어, 흰색 픽셀의 비율이 정상 조직에서 30%이고 스캐폴드에서 15%라면, 이는 스캐폴드 전체 면적의 50%가 혈관화되었음을 나타냅니다. 이때 값은 전체 이미지 면적에 해당한다는 점에 유의하십시오. 따라서 여기에 표시된 것처럼 선택한 영역의 면적으로 보정하는 과정이 필요합니다.이식 2주 후, 투과 조명을 통해 기존 조직과 이식된 지지체가 모두 포함된 전체 조직 샘플에서 최대 30 µm 너비의 혈관 구조를 명확하게 시각화할 수 있었습니다. 디지털 분할법을 사용하여 적출된 조직의 혈관 형성 수준을 분석한 결과, 지지체에서 기존 피부 대비 62.28 ± 8.6%의 혈관 형성이 관찰되었습니다. 이 과정을 수행할 때, 재현 가능한 전체 피부 결손 부위를 만들고 생체 재료를 상처 부위에 안정적으로 고정하는 것이 중요합니다.이 절차를 거친 후, 확장된 조직은 조직학 또는 RNA 및 단백질 발현과 같은 추가 분석에 사용할 수 있습니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Bioengineering

생명공학

우리는 전체 마운트 immunohistochemistry를 소개하고 레이저 마우스 배아 사지 피부에 복잡한 혈관 네트워크 형성을 분석하는 데 여러 상표와 공촛점 현미경을 검사합니다.

배아 림브 스킨 Vasculature에 대한 전체 마운트 Immunohistochemical 분석 : 엠브료에 혈관 분기 Morphogenesis를 공부하는 모델 시스템

이 프로토콜의 목표는 자연 피부와 유사한 3차원 전체 두께 피부를 구축하는 것입니다. 특별히 제작된 자동 상처 제거 장치를 사용하면 무균 상태를 유지하면서 정확하고 재현 가능한 상처를 생성할 수 있습니다.

3 차원 전체 두께 피부의 세대 동등한 및 자동화 부상

현재까지 두꺼운 조직 결손은 일반적으로 자가 조직 플랩 또는 엔지니어링 조직을 적용하여 재구성됩니다. 이 프로토콜에서는 자가 피판을 대체하기 위해 자가 척추경을 지닌 혈관 조직 피판을 엔지니어링하는 새로운 방법을 제시합니다.

엔지니어링 혈관을 근육 플랩

이것은 조직 공학 챔버 내부의 미세 수술 동정맥 루프 또는 관류 척추경 구성을 사용하여 생체 내 혈관 조직을 구성하기 위한 지침입니다. 생성된 혈관 조직은 장기 재생 및 조직 결함 교체, 약물 검사 및 질병 모델링에 사용할 수 있습니다.

에 내장 혈관 신생에 의하여 조직 공학<em&gt; 생체</em&gt; 조직 공학 상공 회의소

우리는 고립과 잘 특성화 된 환경에서 생체 내에서 혈관을 분석하기위한 모델로서 동정맥 (AV) 루프의 생성을위한 미세 수술 방법을 설명합니다. 이 모델은뿐만 아니라 혈관 신생의 조사에 유용 할뿐만 아니라 최적의 엔지니어링 축 방향으로 혈관 및 이식 가능한 조직에 적합합니다.

소형 동물 모델에서의 동정맥 (AV) 루프는 혈관 신생과 혈관을 조성한 조직 공학을 공부하기

이 비디오는 쥐의 정맥 삽입 수술 후 근육 내막 증식증의 발달을 연구하는 모델을 보여줍니다.

정맥 삽입 위치 모델 : 바이 패스 이식 개통을 연구하기위한 적절한 모델

여기, 선물이 혈관 형성에서 vivo에서 시각화 하는 프로토콜에 multiphoton 현미경 검사 법에 의해 3 차원 건설 기계에서 실시간. 유전자 변형된 건설 기계에서 신생 murine calvarial 중요 한 뼈 결함 모델에서 연구 했다. 더 많은 새로운 혈관 컨트롤에서 보다 처리 그룹에서 발견 했다.

Calvarial 중요 한 뼈 결함 수리 다 현미경 Vivo에서 유전자 변형 3D-PLGA/nHAp 비 계에 의해 신생 시각화

여기서, 2개의 뮤린 상처 치유 모델이 기술되고, 하나는 세포 및 사이토카인 상처 치유 반응을 평가하기 위해 고안되고 다른 하나는 상처 폐쇄의 속도를 정량화하도록 설계된다. 이 방법은 가난한 상처 치유의 각종 양상에 의하여 기계장치를 결정하기 위하여 당뇨병과 같은 복잡한 질병 모형으로 이용될 수 있습니다.

등지성 폴리비닐 알코올 스폰지 이식 및 절제 꼬리 피부 상처 모델을 사용하여 급성 상처 치유의 평가.

우리는 정맥 기형의 뮤린 xenograft 모형을 생성하는 상세한 프로토콜을 제시합니다. 본 모델은 하이퍼 활성화 TIE2 및/또는 PIK3CA 유전자 돌연변이를 포함하는 환자 유래 내피 세포의 피하 주입을 기반으로 한다. Xenograft 병변은 VM 환자 조직의 조직 병리학적 특징을 밀접하게 재구성합니다.

정맥 기형에 대한 환자 유래 제노이식 모델

이 프로토콜의 목표는 장기 문화를 위한 접근가능하고 간단한 기술을 사용하여 혈관화된 인간 피부 등가물의 생성 및 체적 분석을 설명하는 것입니다. 가능한 한, 단계에 대한 근거는 연구원이 연구 요구에 따라 사용자 정의 할 수있는 능력을 허용하기 위해 설명된다.

자가 조립 혈관 인체 피부 등가물의 생성

이 프로토콜은 실험 연구를 목적으로 하부 하복동맥 페디클을 기반으로 인간 천공관 피판 모델을 채취하는 외과적 기법을 설명합니다.

혈관 화된 복합 동종편 및 자유 피판의 보존 전략을 조사하기 위한 실험적 인간 DIEP 플랩 모델

학습하세요 생체 내 혈관 신생을 평가하는 전체 피부 결함 모델 기법을 배우세요. 생쥐를 이용한 이 방법은 조직 공학 구조물의 혈관화를 시각화하고 정량화하는 비용 효율적인 접근법을 제공합니다.

전체 피부 결함 모델은 생체의 혈관 신생을 평가하기

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