Name: 단백질-DNA 상호 작용의 연구에 대한 단일 분자 조작 및 이미지를 결합 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-08-27T14:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 43 s
Description: 학습하세요 단일 분자 수준에서 단백질-DNA 상호 작용을 관찰하는 방법을 이중 광학 핀셋과 형광 현미경을 결합하여 사용합니다. 이 기법은 유전자 발현 조절 메커니즘 연구에 필수적입니다.

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우리는 샘플 준비에 대한 도움말 미세 유체 및 알레 Tempestini에 대한 도움말 Gijs Wuite, 어윈 JG 피터 맨, 피터 그로스 감사합니다. 이 연구는 N 284464을 °와 Ricerca 2013 RBFR13V4M2 교육, 대학 및 연구 FIRB 2011 RBAP11X42L006, FUTURO의 이탈리아어 자원부에서, 그리고 프레임 워크에 부여 계약에 따라 유럽 연합 (EU) 일곱 번째 프레임 워크 프로그램 (FP7 / 2,007에서 2,013 사이)에 의해 투자되었다 주요 프로젝트 NANOMAX.

나노 안정성과 1 광학 족집게 설정 실험 장치는 1 % 아래 트래핑 레이저의 나노 미터 수준과 강도 변화에 안정성을 가리키는 2 개의 광 핀셋을 제공해야합니다. 이들 조건의 조합이 전형적인 장력 아령 나노 안정성을 보장한다 (일 PN - 몇 PN 수만), 트랩 강성 (0.1 PN / 나노 미터)와 측정 대역폭 (이미지 수집 속도 20 초 -1). 실험 장치의 구조는 그림 1에 묘사되어있다. <ol><li> 광 핀셋 설계 및 시공 15,17 : <ol><li> 기계적 진동을 줄이기 위해 활성 절연체와 광학 테이블에 실험 장치를 탑재합니다. 소음 및 현미경 구조의 기계식 공진을 흡수하는 탄성 절연체에 현미경 구조를 탑재. </li><li> R로, 레이저 소스에 가까운 트래핑 레이저의 경로 내에 광학 아이솔레이터를 삽입광학 피드백으로 인해 랜덤 진폭 변동을 끌어 내고. </li><li> 가급적 트래핑 레이저의 경로 길이를 줄이고 공기 흐름과 난류에 의한 레이저 포인팅 변동을 줄이기 위해 밀폐 상자에 전체 경로를 묶. </li><li> 직교 편파 두 개의 빔으로 (YAG 레이저, 1,064 nm 파장의 Nd) 하나의 근적외선 레이저 소스를 분할하여 두 번 광 핀셋을 만듭니다. 그들은 긴장 12에서 아령의 진동의 원인이 있기 때문에 시간 공유 트랩을 사용하지 마십시오. </li><li> (적어도) 한 트랩 및 DNA 장력을 정밀하게 조절의 미세한 움직임을 할 수 있도록 직접 디지털 합성기 (DDSS)에 의해 구동 음향 광학 편 향기 (AODs)를 사용합니다. DDSS는 전압 제어 발진기 (VCO)보다 더 나은 트랩 안정성을 할 수 있습니다. </li><li> 서브 - 나노 미터 정밀도로 포획 구슬의 위치를​​ 감지하는 응축기의 후면 초점면에서 두 개의 사분면 검출기 포토 다이오드 (QDPs)를 삽입한다. </li></ol></li><li> 그 강도 F 확인현미경 입구 트래핑 레이저 luctuations는 화상 취득의 레이트보다 더 큰 대역폭을 가진 포토 다이오드를 사용하여 1 % 이하이다. </li><li> 이 트래핑 레이저 포인팅 안정성 확인 <ol><li> 인산염 완충액에 실리카 비드를 준비 : 실리카 비드의 20 μl를 희석 (1.54 μm의 10 % 고체)을 아세톤 1 ㎖에 짧게 30 초, 소용돌이 초음파 처리하고 원심 분리기 2 분에서 19,000 × g으로. 1 ml의 아세톤 및 반복 세척에 재현 탁. 50 mM의 인산염 완충액 1 ㎖에 재현 탁은 두 번 세척하고, 마지막으로 50 mM의 인산염 완충액 100 ㎕에 재현 탁. </li><li> 실리카 비드와 광 핀셋 교정 : (약 60 μm의 두께)을 두 번 끈끈이 테이프를 사용하여 현미경 슬라이드에 커버 슬립을 부착하여 흐름 세포를 준비합니다. 1 ㎎ / ㎖의 BSA 흐름과 3 분을 기다립니다. 실리카 비드가 인산염 완충액에 1 / 1000로 희석 흐름 및 실리콘 그리스 유량 용기를 밀봉. 트랩 한 각 트랩의 비드 및 전력 스펙트럼을 사용하는 방법 (18)을 보정 트랩. </l난&gt; <li> 펜틸 아세테이트 및 니트로 셀룰로오스의 실리카 비드를 제조 : 실리카 비드 20 ㎕의 희석 (1.54 μM, 10 % 고형분) 아세톤 1 ㎖ 중에, 짧게 30 초, 와류를 초음파 처리하고, 원심 분리로 2 분에서 19000 × g으로. 1 ml의 아세톤 및 반복 세척에 재현 탁. 및 펜틸 아세테이트 1 ㎖에 재현 탁은 2 회 반복한다. 마지막 펜틸 아세테이트에 용해 0.1 % 니트로 셀룰로스로 펜틸 아세테이트에이를 재현 탁. </li><li> 제 커버 슬립 (24 X 60mm)를 사용하여 커버 슬립 (24 X 24mm)의 표면 상 펜틸 아세테이트 + 0.1 % 니트로 셀룰로스에 용해하고 1.54 μm의 직경의 실리카 비드의 2 μl를 확산. 플로우 셀을 만들기 위해 양면 테이프의 두 가지를 사용하여 현미경 슬라이드에 커버 슬립을 부착. 50 mM의 인산 버퍼 플로우 셀을 채우고 실리콘 그리스를 밀봉하십시오. </li><li> 2,000X 배율의 시야 현미경의 이미지 한 실리카 비드. 비드 (190)는 화상 (P)의 직경을 갖도록 시야는 768 X 576 픽셀에서 취득한 7 × 5 μM이어야ixels. REF. 17에있어서, 회절 고리로부터의 화상 및 z 중심으로부터의 XY 위치를 산출하고 nm의 정확도 또는 그 이상을 가진 피에조 스테이지를 이동 감도를 수정, 피드백 소프트웨어 열적 드리프트를 보상. </li><li> 비드 중앙과 좌측 트랩의 중심과 중첩 (QDP부터 XY 신호 레벨은 교정시 측정 같아야) 및 위치 노이즈 QDP로부터 표준 편차를 측정한다. 오른쪽 트랩에 대한 측정을 반복합니다. </li></ol></li></ol> 나노 미터의 정확도와 2 단일 분자 현지화 <ol><li> 형광 현미경 설계 및 건설 15,19 <ol><li> 나노 파악 정확성을 위해 필요한 높은 신호대 잡음비를 달성하도록 높은 양자 효율과 전자 승산 CCD를 사용한다. </li><li> 화상 픽셀 크기 ~ 80nm의 것을 알고 광학를 선택 (예를 들면, 16 μM의 카메라 픽셀 크기의 이미지 배율 ~ 200X). 이 suffi입니다픽셀 화 8로 인해 현지화 오류를 무시하는 ciently 작지만 충분히 큰 픽셀 당 광자의 상당한 수를 수집합니다. </li><li> 여기 원으로서, 방향에 관계없이, 하나의 발색단의 여진을 최대화하기 위해, 레이저 (비 편파 유지 광파이버를 통과하여) 비 편광 인 광 또는 원 (λ / 4 파장 판을 통과하여) 편광을 사용한다. </li><li> 효율적으로 차단 모두 여기 및 트래핑 레이저 조명, 발광 대역 통과 필터를 선택합니다. 참고 : 우리의 실험에서 우리는 Atto532 염료로 우리의 단백질을 표지 및 100 nm의 대역폭을 600 nm에서 중심 대역 통과 방출 필터를 사용합니다. </li></ol></li></ol> 3 미세 유체 버퍼 교환 및 &#39;아령&#39;조립, 즉,이 광학적으로 포획 된 마이크로 사이에 단일 DNA 분자의 정박, 주문 제작 층류 채널 흐름의 정확한 제어를 달성하려면시스템이 개발되어야한다. 이는 유동 챔버, 압력 저장조 및 압력 제어 시스템 (도 2)에 의해 구성된다. <ol><li> 플로우 셀 준비 참고 : 단백질-DNA 상호 작용에 단일 분자 실험에 사용 유량 용기는 4 병렬 버퍼 플로우를 허용하는, 바람직하게는 4 입구와 콘센트 1 개를 가지고, 다른 실험에 필요한 구성 요소 중 하나를 포함하는 각 일 : 구슬, DNA를, 단백질, 및 이미지 버퍼를 형광 - 표지. 유동 채널의 구성 요소의 분리는 아령의 효율적인 조립을 할 수 있습니다. 더욱이, 이미징 채널은 몇 나노 미터 정도의 정밀도를 가진 DNA-결합 단백질의 위치 파악에 필요한 높은 신호 대 잡음비를 확산 단백질로부터 배경 형광을 방지하고 달성하는 것이 유용하다. <ol><li> 유입구 (4)와 하나의 출구를 만들기 위해 다이아몬드 팁 현미경 슬라이드 (76 X 76 X 1mm)에서 드릴 직경이 1mm 구멍. </li><li> 청소 일전자 현미경은 에탄올로 슬라이드 삽입 O-링 및 액세스 홀을 둘러싸는 슬라이드에 접착 링 포트 중앙. 이 접착 과정을 방해 할 지문을 방지하기 위해이 단계에서 장갑을 착용하는 것이 필수적입니다. </li><li> 슬라이드에 NanoPorts 클램프, 완전 부착 할 수 있도록 한 시간 동안 180 ° C로 예열 된 오븐에 넣습니다. </li><li> 종이에 플로우 셀의 윤곽 패턴을 그린다. 채널 ~ 3mm 폭하고 현미경 슬라이드의 구멍의 위치와 일치한다. </li><li> 파라 필름의 두 조각의 상단에있는 그림을 놓고 메스로 그린 윤곽선을 따라 선명하고 연속 가공을합니다. 형성하는 돌기를 제거합니다. 단지 깨끗한 지원을 보장하는 데 사용되는 하부 파라 필름 층을 버린다. </li><li> 거꾸로 금속 지원에 첨부 된 NanoPorts를 포함하는 현미경 슬라이드를 놓습니다. </li><li> 조심스럽게 확인 일을, 구멍 파라 필름 챔버 개요를 정렬파라 필름에서 챔버의 입구와 출구를 obtrude하지 않습니다. </li><li> 청소 현미경 커버 슬립 (62 X 56 X 0.15 mm)로 커버 조심스럽게 실을 둘러싼 과잉 파라 필름을 제거합니다. </li><li> 거기에 일정한 압력을 적용하는 흐름 셀의 상단에 이전에 120 ° C로 가열이 열 블록을, 놓습니다. 파라 필름은 약 25 분 동안 녹여 보자. </li></ol></li><li> 압력 탱크 및 버퍼 용기 압력 탱크는 플렉시 글라스 (또는 이와 유사한 것)로 만든 여섯 버퍼 용기의 숙박 시설을 허용해야합니다. 적어도 두 개의 여분의 버퍼를 갖는 용기의 가능성은 기기의 유연성을 향상시킨다. 갇힌 공기 방울의 투명 용기 상당히 흐름 시스템 처리에 도움이 튜브 및 문제 해결을합니다. 플런저는 이전에 제거 된 멸균 일회용 팁 루어 로크 시린지 (2.5 ml)을, 좋은 버퍼 컨테이너와 입구 튜빙과 쉽게 연결할 수있다. 있는지 확인전체 유체 부피는 압력 탱크, 부드럽고 안정한 유동을 얻는 것이 필수 조건 내부 공기량에 비해 작다. <ol><li> 실험 중 또는 해제 버퍼 흐름을 선회에 대한 버퍼 용기의 출구에 차단 밸브를 연결합니다. </li><li> 현미경 무대에 흐름 전지를 탑재합니다. 폴리 에테르 에테르 케톤 튜브 (내경 ~ 150 μm의)와 플랜지가 피팅 유량 용기 입구에 차단 밸브를 연결합니다. 튜브 및 흐름 셀의 NanoPort 어셈블리 사이의 연결로 플루오르 에틸렌 프로필렌 튜브 ~ 3cm (내경 ~ 500 μm의)를 추가합니다. 이 단계는 유리 플로우 셀 또는 NanoPort 박리의 파손을 방지하기 위해 상기 챔버 입구 버퍼 유량을 감소하는 것이 필수적이다. 큰 내경 튜브의 사용은 단독으로, 다른 한편, 생물학적 시료의 큰 볼륨을 필요로한다. </li><li> 대기압에서 열린 팔콘 튜브에 유량 용기 콘센트를 연결합니다. 이튜브는 유동 챔버로부터 유출을위한 버퍼 역할을 폐기. </li></ol></li><li> 압력 제어 시스템 <ol><li> 미세 압력 저장조 내부의 공기압을 조정할 수있는 압력 제어 시스템을 구축. 이것은이 컴퓨터 제어 솔레노이드 밸브 번 +0.5 기압 압력 원에 연결 (압축기) 및 대기압 제를 사용하여 수행 할 수있다. 솔레노이드 밸브는 반복적으로 증가 또는 원하는 값에 도달 할 때까지 라인 내의 압력을 감소시키기 위해 약 7 밀리 개방된다. 참고 :이 방법은 카를로스 부스타 20에서 적응하고 스테핑 모터 주사기 펌프 (21)를 사용하는 것보다 더 부드러운 흐름을 산출 하였다. </li><li> 압력 탱크에 가해지는 유효 압력을 모니터링하는 사용자 지정 작성 소프트웨어에 의해 제어되는 압력 변환기를 추가합니다. 전형적인 작동 압력은 아령 조립체 및 유동 시스템 부품을 세척 200 밀리바 20 밀리바의 순서이다. </li></ol></리&gt; </ol> 바이오틴 데 옥시 시티 딘 3 인산과 4 DNA 미행 (비오틴-dCTP) DNA 분자는 이상 1 μm의이 갇혀 구슬에 대한 흐름과 고정에서의 확장을 용이하게해야한다. 또한, 긴 DNA는 DNA 결합 단백질을 조명으로부터 IR 트래핑 광을 방지 할 수 있습니다. 이는 IR 광의 흡수를 증가 광표백에 흥분된 발색단 결과에서 특별한 관련성이있다. 참고 : 본 연구에서는 DNA 분자가 3.7 μm의 긴이었다. 분자는 기본 연산자 O1의 세 사본이 보조 사업자 O2와 O3의 각 사본이 포함되어 있습니다. 이러한 서열은 이렇게 포획 구슬과 IR 레이저 빔로부터 등거리 결과, 분자의 중간에 삽입되어있다. <ol><li> 비오틴-14-dCTP의 60 pmol의 5 배 터미널 deoxynucleotidyl 트랜스퍼 라 (TDT) 버퍼의 4 μL (1 M 칼륨 캘리포니아와 선형 DNA 3&#39;-말단의 1 pmol의 혼합codylate, 125 mM 트리스, 0.05 % (v / v)로 트리톤 X-100, 5 mM의 CoCl2를 20 μL의 총 볼륨) 및 TDT의 1.5 μL 및 DDH 2 O (25 ° C에서의 pH 7.2). 15 분 동안 37 ° C의 혼합물을 품어. 이 DNA 말단 당 최대 60 개의 뉴클레오티드를 추가하면된다. 3&#39;-돌출이 오목 또는 평활 말단보다 더 높은 효율로 꼬리되는 DNA를합니다. </li><li> TDT 반응 버퍼에서의 CoCl2를 제거하는 스핀 열 또는 페놀 / 클로로포름 추출 및 후속 에탄올 침전와 꼬리 DNA를 정화. </li><li> 정제 한 후, DNA는 몇 주 동안 이상 기간 동안 -20 ° C에서 4 ° C에 보관하지만, 반복 해동과 재 냉동을 방지 할 수 있습니다. </li></ol> 5 표지 단백질 ATTO532와 티올 그룹 시스테인 잔기의 수정을 통해 레이블링 단백질의 활동을 변경하지 말아야합니다. 이러한 문제를 극복하기 위해, 우리는 돌연변이의 lacI, LacIQ231C, whic 사용H는 단백질의 안정성을 방해하지 22 것으로 나타났다 위치 231이 돌연변이는 위치 231에 야생형 및 화학적 변형의 동일한 특성을 보존시 단량체 당 하나의 시스테인을 운반. 참고 : 우리는 ATTO532 말레이 미드와 단백질을 표시. <ol><li> 단백질이 7.0-7.5 2에서 10 ㎎ / ㎖ 농도 범위와 pH 범위와 버퍼에 용해되어 있는지 확인합니다. NOTE :이 실험에서의 lacI가 인산 칼륨 0.3 M, 5 % 포도당, pH가 7.5 (A 버퍼)에 용해시켰다. </li><li> 디졸브 트리스 - (2 - 카르복시 에틸) H 2 O.의 100 ㎎ / ㎖의 최종 농도로 포스 핀 히드로 클로라이드 (TCEP) TCEP 솔루션은 사용하기 신선한 전에 준비를해야합니다. </li><li> 조심스럽게 3 μL의 TCEP와 소용돌이와 단백질의 100 μl를 섞는다. </li><li> 낮은 광 조건에서 작동하는 10 ㎎ / ㎖의 최종 농도로 N, N 디메틸 포름 아미드 (DMF)에 색소를 용해. 와동까지 완전히 용해. </li><li> 반응 마일X :주의 깊게 단백질 + TCEP와 소용돌이에 염료의 33 μl를 추가합니다. 패스트 스핀 최대한 용액을 수집한다. </li><li> 20 ° C에서 진탕 (8000 RPM)에서 2 시간 동안 반응 믹스를 품어 (또는 4 ° CO / N에) 빛으로부터 보호. </li><li> L-글루타티온 O. H 2에서 100 ㎎ / ㎖의 최종 농도 (GSH) 환원 용해 반응 혼합물에 3 μl를 첨가하고 15 분 동안 8,000 rpm에서 진탕 배양한다. GSH는 티올 그룹의 반응성을 차단하여 반응을 중지합니다. </li><li> 표준 겔 여과 컬럼, 투석 또는 회전 농축기를 이용하여 표지 된 단백질을 정제 하였다. 참고 :이 실험에서, 표시 Laci 팀이 10 kDa의 컷오프 스핀 집중 장치를 사용하여 정제 하였다. <ol><li> 8000 XG, 1 시간, 4 ° C에서 그것을 버퍼의 최대 12 ml의 반응 혼합물을 희석 집중 장치에 적용, 원심 분리기. 표지의 lacI 따라서 약 500 μL의 최종 부피로 농축시키고, 과량의 염료는 플로로 막을 통과한다w-통해. 플로우 스루 (flow-through) 단계를 반복 5.8.1 최소 세 번 이상 폐기하십시오. </li></ol></li><li> -80 ° C에서 작은 분취 및 저장소로 표시된 단백질을 나눈다. 반복되는 동결 융해을 피하십시오. </li></ol> (6) 복합 광학 트랩 및 단일 분자 형광 이미징 실험 <ol><li> 버퍼 컨테이너에 버퍼의 1 ML을 추가하고, 연결 튜브를 씻어 셀 흐름에 200 mbar의 압력을 적용합니다. DNA, 여기에서 다음과 같은 단계에 결합 된 단백질의 확산을 극대화하기 위해,이 낮은 이온 세기 완충액으로 대체 될 수있다 버퍼. 참고 :이 실험에서 우리는 TBE의 0.5 배를 사용했다. </li><li> 흐름의 매끄러움을 방해 할 수있는 공기 거품의 존재를 확인합니다. 배출 튜브에 부드러운 영화는 남아있는 거품을 제거하는 데 도움이 될 것입니다. </li><li> 20 밀리바에 압력을 낮추고 모든 채널 및 튜브 기포가 분명하고 버퍼가 모든 채널에서 비슷한 속도로 흐르고 있는지 확인합니다. </li><li>300 μL의 최종 볼륨으로 샘플을 준비합니다 스트렙 타비 딘 - 코팅 된 폴리스티렌 비즈 1.87 μm의; 4 절에 따라 모두 사지에 비오틴 선형 DNA의 20 μM의; Laci 팀의 사량의 300 오후 5 절에 따라 ATTO532으로 표시. </li><li> 다음 순서 주사기 용기 중 하나에 각각의 샘플을 추가 구슬 촬상 버퍼 만 (완충액 + 탈산 소제 시스템) 및 제 채널 표지 단백질과 두 번째, 세 번째 채널의 첫 번째 채널, DNA에. </li><li> 3 분 동안 200 밀리바에서 흐름을 켜하면 샘플 유동 채널 내에 도착 할 수 있습니다. 그런 다음 20 밀리바에 압력을 줄일 수 있습니다. </li><li> 명 시야 조명하에 제 채널을 이미징하는 동안, 2 개의 광 핀셋 켜고 각 트랩의 폴리스티렌 비드 타기. </li><li> 다른 구슬이 함정에 빠질 것을 방지하기 위해 상기 제 2 채널로 빠르게 이동합니다. DNA 채널에서 도착 비드 유동의 단부에 의해 쉽게 눈에 띄게되어 있습니다. </li><li> O를 사용하여AOD (NE)는,이 광학적으로 갇혀 비드 사이에서 유동하게 연장 된 DNA의 부착을 허용하도록 앞뒤로 다른 비드에 근접하여 하나의 트랩 (비드)를 이동. DNA 아령 형성 할 때에, 정전기 비드 적극적 앞뒤로 트랩에 의해 이동되는 비드의 움직임을 따라 시작한다. </li><li> 버퍼 채널로 빠르게 이동하고 버​​퍼 흐름을 끕니다. 하나의 DNA 분자의 존재를 확인하기 위해 강제로 확장 곡선 분석 4,23-25을 수행합니다. 두 개 이상의 분자가 존재하는 경우, 덤벨을 폐기하고, 단계 6.7에서 다시 시작하는 (즉, 힘 - 신장 곡선의 위상을 올리는 enthalpic는 DNA 윤곽 길이보다 짧은 길이에서 발생한다). </li><li> 하나의 DNA 아령 구한 후, 다시 흐름을 켜고 단백질 채널에 아령을 이동합니다. DNA와 표지-​​의 lacI의 상호 작용을 모니터링하는 넓은 필드 형광 현미경으로 전환. 흐름을 끄고 수집을 시작합니다. </li></ol>

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지난 10 년 동안 단일 분자 조작 및 이미징 기술은 공간과 시간 해상도 측면에서 큰 진전을 보았다. 조작 및 이미징 기법의 조합은 지금 같은 DNA, RNA 또는 세포 골격의 필라멘트와 같은 하나의 생물학적 고분자의 기계적 상태의 제어를 가능하게 강력한 기기의베이스와 같은 중합체와 상호 작용하는 단일 단백질의 동시 위치 파악에 있어요 . 포획 된 중합체의 기계적 조건을 제어하는​​ 것이 특히 중요하다. 사실, 살아있는 세포에서 핵산 연속적 효소와 단백질의 상호 작용에 의한 기계적인 스트레스를 받고있다; 유사하게, 단백질과 상호 작용하는 분자 모터의 복잡한 네트워크는 골격 필라멘트에 장력을 조절한다. 한편, 검출 가능성이 정확하게 핵산과 상호 작용하는 단백질을 지역화 그들의 PO의 함수로서 분자 상호 작용의 측정을 허용DNA 또는 RNA 서열을 따라 구성비. 단일 분자 조작 및 이미징 기술을 결합하여 실험 설정 및 생물학적 구조의 신중한 설계가 필요합니다. 광학 트랩 현탁 중...

단일 분자 (SM) 기술은 크게 전통적인 벌크 용액 측정 1-3의 한계 중 일부를 극복하는 요구에 응답하기 위해 지난 30 년에 걸쳐 개발했다. 단일 생체 분자의 조작은 생체 고분자 (4)의 기계적 특성을 측정하고 단백질 - 단백질 5 및 단백질-DNA 상호 작용의 6,7 기계적 매개 변수를 제어 할 수있는 기회를 만들었다. SM 형광 검출은, 반면에, 로컬 화 및 나노 미터 정밀도로 단일 분자의 추적 가능성 선도, 시험 관내 및 생체 내에서의 단백질의 활성을 연구하는데 대단히 다용도 공구를 나타낸다. SM 이미지에 악기 점 - 확산 함수의 피팅을 통하여, 실제로, 한 정밀도가 신호 대 잡음비 (SNR)에 주로 의존 약 1 나노 미터 8,9의 한계에 도달하여 지역화를 달성 할 수있다. 이 방법은 강력한 찾기모터 단백질의 역학 연구에서 애플리케이션과의 DNA-결합 단백질의 검색 대상을 기초 확산 과정. 대상의 DNA 서열의 기능, 체류 시간으로 확산 상수를 결정하고 정확하게 일차원 확산 이벤트 동안 탐구 DNA 길이를 측정하는 기능, 단백질-DNA 상호 작용의 역학 연구 및 조사를위한 강력한 도구를 대표 특정 대상 검색의 메커니즘. 최근, 이들 두 기술의 조합은 예를 들어 (예를 들어 액틴 필라멘트 또는 DNA 분자) 상호 작용 파트너 효소 및 검출 / 지역화 생물학적 기판의 동시 조작을 가능하게 실험 셋업 10-14의 새로운 세대 (만들어 내고 미오신 또는 DNA-결합 단백질). 이러한 기술의 이점은 주로 ENA 따라서, 포획 된 중합체 위에 기계적 제어를 발휘할 수있는 가능성에 휴식힘 또는 토크 대 상호 작용의 역학 연구를 블링. 또, 방법론은 고전 SM 방법, 즉, 표면에 연구중인 분자의 고정화를위한 필요성 (유리 슬라이드 또는 마이크로 스피어)의 주요 제한을 피하면서 표면으로부터 멀리 생화학 반응을 측정 할 수있다. 두 개의 단일 분자 기술의 조합은 주로 기계적 안정성 및 15 (특히 나노 미터 정밀도로 현지화를 요구하는) 적절한 SNR의 요구 사항에서 발생하는 여러 가지 기술적 인 어려움을 극복해야합니다. 광 핀셋, 노이즈 감소 SM 형광 검출을 결합하고 포착 적외선 레이저 (16) 및 생물학적 착체의 조립 및 실험적 측정 (11)의 성능에 대한 생화학 버퍼로부터 photobleaching에 제어 할 때 특히, 매우 중요하다. 여기서는 성공한 행하는 방법을 설명이중 트래핑 / SM 형광 지역화 설정에서 측정. 방법론은 특정의 lacI 결합 서열 (즉, 오퍼레이터)을 함유 유당 리프레 서 단백질 (의 lacI) 형광 (Atto532로) 분류하고 (2 개의 광 핀셋 사이에 갇혀) DNA 분자에 결합으로서 검출의 예와 함께 도시되어있다. 우리는 목표 탐색 과정에서의 형상을 따라 DNA 및 확산의 lacI의 결합 검출에있어서의 효과를 보여준다. 상기 방법은 DNA 서열 및 DNA-결합 단백질의 임의의 조합뿐만 아니라 다른 시스템 (미세 소관 또는 액틴 필라멘트 및 그들과 상호 작용하는 단백질 모터)에 적용 가능하다.

<table><tbody><tr><td>엘라스토머 아이솔레이터</td><td>Newport</td><td>Newdamp</td><td>현미경의 무게와 공진 주파수에 따라 적절한 Newdamp 엘라스토머 선택</td></tr> 연구<tr><td>용</td><td>광학</td><td>IO-3-YAG-VHP</td><td></td></tr><tr><td>Nd:YAG 레이저, 1,064nm 파장</td><td>스펙트럼 물리학</td><td>밀레니엄 IR</td><td></td></tr><tr><td>음향 광학 디플렉터(AOD)</td><td>A& 광전자</td><td>DTS-XY 250</td><td></td></tr><tr><td>직접 디지털 신디사이저</td>, <td>아날로그 디바이스</td><td></td><td></td></tr>, <tr><td>사분면 검출기, 포토다이오드,</td><td>OSI, 광전자,</td><td>SPOT-15-YAG</td><td></td></tr>, <tr><td>DIO 및 FPGA 보드</td><td>, 내쇼날인스트루먼트</td>, <td>NI-PCI-7830R</td><td></td></tr><tr><td>, 할로겐 램프</td>, <td>Schott</td>, <td>KL 1500, LCD</td><td></td></tr><tr><td>콘덴서</td>, <td>Olympus</td>, <td>U-AAC, 1.4NA Aplanat Apchromat</td><td></td></tr><tr><td>Objective</td><td>Nikon</td><td>CFI Plan Apochromat 60x 1.2NA water immersion</td><td></td></tr><tr><td>532 nm 레이저</td><td>Coherent</td><td>Sapphire</td><td></td></tr><tr><td>CCD 200X 및 2000X</td><td>Hamamatsu&nbsp;</td><td>XC-ST70 CE</td><td></td></tr><tr><td>전자 곱셈 CCD</td><td>하마마츠&nbsp;</td><td>C9100-13</td><td></td></tr><tr><td>피에조 스테이지 nm-정확도</td><td>Physik Instrumente</td><td>P-527.2CL&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>방출 필터</td><td>Chroma Technologies</td><td>600/100m</td><td></td></tr><tr><td>실리카 비드 (1.54 mm)</td><td>Bangs Laboratories</td><td>SS04N/5303</td><td></td></tr><tr><td>소 세럼에서 추출한 알부민 (BSA)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>B4287</td><td></td></tr><tr><td>펜틸 아세테이트&nbsp;</td><td>Sigma Aldrich</td><td>46022</td><td>가연성 액체 및 증기 (No 1272/2008)</td></tr><tr><td>니트로셀룰로오스</td><td>Sigma Aldrich</td><td>N8267-5EA</td><td>가연성 고체&nbsp; (번호 1272/2008)</td></tr><tr><td>열 블록</td><td>MPM Instruments Srl</td><td>M502-HBD</td><td>는 2개의 탈착식 블록이 있습니다; 120°C로 예열; C</td></tr><tr><td>NanoPort 어셈블리</td><td>Upchurch Scientific Inc.</td><td>N-333</td><td></td></tr><tr><td>폴리에테르에테르케톤 튜빙&nbsp;</td><td>업처치 사이언티픽 Inc.</td><td>1535</td><td></td></tr><tr>Plexiglass <td></td><td></td><td></td>Luer 잠금 팁 주사기<td>로 만든 플로우 챔버 압력 저장소 조립용 홈메이드 메탈 홀더</td></tr><tr><td>2.5 ml</td><td>Terumo</td><td>SS 02LZ1</td><td></td></tr><tr><td>차단 밸브&nbsp;</td><td>업처치 사이언티픽, Inc.</td><td>P-732</td><td></td></tr><tr><td>플랜지리스 피팅&nbsp;</td><td>업처치 사이언티픽, Inc.</td><td>LT-111</td><td></td></tr><tr><td>플루오르화 에틸렌 프로필렌 튜빙&nbsp;</td><td>업처치 사이언티픽, Inc.</td><td>1549</td><td></td></tr><tr><td>두 개의 컴퓨터 제어 솔레노이드 밸브</td><td>Clippard, Cincinnati, USA</td><td>ET-2-H-M5</td><td></td></tr><tr><td>압력 변환기</td><td>Druck LTD</td><td>PTX 1400</td><td></td></tr><tr><td>biotin-14-dCTP&nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>19518-018</td><td></td></tr><tr><td>말단 데옥시뉴클레오티딜 트랜스퍼라제 (TdT)</td><td>열과학</td><td>EP0161</td><td></td></tr><tr><td>ATTO532 말레이미드</td><td>시그마 알드리치</td><td>68499</td><td></td></tr><tr><td>N,N-디메틸포름아미드 (DMF)&nbsp;</td><td>Sigma Aldrich</td><td>227056</td><td>가연성 액체, 피부 흡수에 유해합니다. 자극성, 기형 유발 물질. H226; H303; H312; H316; H319; H331; H360; P201; P261; P280; 305쪽; P351; P338; P311</td></tr><tr><td>트리스-(2-카르복시에틸)포스핀 하이드로클로라이드(TCEP)&nbsp;</td><td>Sigma Aldrich</td><td>C4706</td><td></td></tr><tr><td>L-Glutathione reduced (GSH)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>G4251</td><td>급성 독성, 경구 (카테고리 5), H303</td></tr><tr><td>Amicon Ultra-15, PLQK Ultracel-PL Membrane, 10&nbsp; kDa 컷오프 스핀 농축기</td><td>Merck Millipore</td><td>UFC901024</td><td></td></tr><tr><td>Streptavidin-coated polystyrene beads 1.87 &micro; m</td><td>스페로텍, Inc.</td><td>SVP-15-5</td><td></td></tr></tbody></table>

단백질-dna 상호 작용의 연구에 대한 단일 분자 조작 및 이미지를 결합

Combining Single-molecule Manipulation and Imaging for the Study of Protein-DNA Interactions

이 논문은 단백질-DNA 상호 작용 연구를 위한 광학 핀셋과 단일 분자 형광 검출의 조합을 설명합니다. 이 방법은 용액에서 발생하는 상호 작용을 조사하고(따라서 다른 단일 분자 방법과 같이 근접 표면으로 인한 문제를 방지), DNA 확장을 제어하고 기계적 매개변수와 DNA 염기서열의 함수로 상호 작용 역학을 추적할 수 있는 기회를 제공합니다. 성공적인 광학 트래핑 및 단일 분자의 나노미터 국소화를 확립하는 방법이 설명되어 있습니다. 우리는 Atto532로 표지된 유당 억제제(lacI)와 LacI 결합을 위한 특정 표적 서열(연산자)을 포함하는 DNA 분자의 상호 작용에 대한 연구를 허용하는 실험 조건을 설명합니다. 이 방법을 사용하면 작업자의 특정 상호 작용을 관찰할 수 있을 뿐만 아니라 표적 검색 과정에서 단백질의 1차원 확산을 관찰할 수 있습니다. 이 방법은 단백질-DNA 상호 작용 연구뿐만 아니라 파트너 트랙 폴리머(예: 액틴 또는 미세소관)에 가해지는 장력 제어가 바람직한 분자 모터에도 광범위하게 적용할 수 있습니다.

성공적인 실험에서, 하나 (또는 그 이상)의 표지 단백질은 DNA 분자 (도 3a)을 따라 / 바인딩 해제 및 / 또는 확산 monodimensional 바인딩 거친다. DNA 분자에 따라 단백질의 지역화는 DNA 서열의 함수로서 운동 매개 변수의 정량화를 허용한다. 1D 확산을 일으키는 버퍼 조건이 적용될 때, 확산 계수 D (1D), 예를 들어, 단백질의 궤적을 따르고, 결정하는 것이 가능하다. 단일 스폿의 정확한 위치는, 각 프레임에서, 더 빠른, 최근 발표 된 알고리즘으로, 대용량 데이터 세트를 처리 할 때 (대안 적 방사형 bidimensional 가우시안 함수와 점 분포 함수 (PSF)를 피팅 또는 의해 결정될 수있다 대칭 센터, RSC) (26, 27). 후자의 방법은 가우스 피팅 일반적으로 비교할 현지화 정밀도를 달성, 이미지의 최대 방사 대칭의 지점을 결정합니다. 보일 예는, 추적 ...

여기에서 우리는이 광학적으로 포획 된 마이크로 스피어 사이 일시 중지 하나의 DNA 분자와 상호 작용하는 하나의 형광 표지 단백질 분자를 검출하기위한 장비 및 방법에 대해 설명합니다.

단백질-DNA 상호 작용의 연구에 대한 단일 분자 조작 및 이미지를 결합

The paper describes the combination of optical tweezers and single molecule fluorescence detection for the study of protein-DNA interaction. The method ...

본 실험 절차의 전반적인 목적은 단일 DNA 결합 단백질과 DNA 분자 사이의 역동적인 상호작용을 관찰하는 것입니다. 이는 사용자 정의 제작된 현미경에서 두 가지 단일 분자 기술인 이중 광집게와 형광 현미경법을 결합하여 달성됩니다. 이 장치에는 시각화를 위한 명시야 조명과 시료의 나노미터 단위 안정화 기능이 함께 갖춰져 있습니다.두 번째 단계로, 최대 4개의 층류가 실험에 필요한 모든 구성 요소를 효율적으로 모집하고 조립할 수 있도록 마이크로 유체 시스템에 통합된 다채널 플로우 셀을 구축합니다. 다음으로, 실험을 수행하기 위해 단일 분자 구조체를 조립합니다. 먼저, 첫 번째 채널에서 이중 광학 집게를 사용하여 strip titin이 코팅된 두 개의 미세구체를 포획합니다.그 후 트랩된 두 비드를 두 번째 채널로 이동시켜 양 끝단에 비오틴이 표지된 DNA 템플릿을 부착시킵니다. 세 번째 채널에서 DNA 힘-신장 분석(DNA force extension analysis)을 통해 단일 DNA 분자의 존재 여부를 확인합니다. 마지막으로, DNA 덤벨(DNA dumbbell)이라고 불리는 비드-DNA-비드 구조체를 형광 표지된 락토스 억제 단백질이 존재하는 단백질 채널로 이동시킵니다.단일 신장 DNA 분자 위에서 단일 LAC eye 분자의 확산 및 특이적 결합을 보여주는 결과와 LAC eye 운동의 역학적 파라미터에 대한 정량화 결과가 도출되었습니다. 기존의 단일 분자 분석법과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은 분자에 가해지는 장력을 조절할 수 있다는 점, 나노미터 단위로 안정된 지점에서 결합 단백질의 움직임을 정밀하게 추적할 수 있다는 점, 그리고 커버 슬립 표면에서 충분히 떨어진 상태로 작동이 가능하다는 점입니다. 이 방법은 단백질-DNA 상호작용, 특히 유전자 발현 조절의 메커니즘뿐만 아니라 표적 탐색 메커니즘에서 DNA를 따라 일어나는 단백질 확산의 역학에 관한 핵심적인 질문들에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다.이 방법의 시연은 플로우 셀 샘플 처리 장치의 구축과 DNA 비드 구조체 조립의 실질적인 측면을 보여주는 데 매우 유용합니다. 이 비디오에서는 먼저 커버 슬립 표면에 부착된 마이크로 비드를 기준으로 사용하여 두 트래핑 레이저의 지향 안정성을 확인하는 방법을 보여줍니다. 광학 집게 설정의 설계 및 구축에 관한 자세한 내용은 동반된 프로토콜 텍스트에서 확인할 수 있습니다.24 by 60 mm 커버슬립을 사용하여 24 by 32 mm 커버슬립 표면에 2 µL의 실리카 비드를 도포합니다. 양면테이프 두 조각을 사용하여 24 by 32 mm 커버슬립을 현미경 슬라이드 위에 부착함으로써 플로우 셀을 제작합니다.플로우 셀을 50 millimolar 인산염 완충액으로 채우고 실리콘 그리스로 밀봉합니다. 명시야 현미경 하에서 약 2000배 배율로 실리카 비드 하나를 관찰합니다. 시야는 약 7 by 5 micrometers여야 하며, 비드 이미지의 지름이 약 190 pixels가 되도록 768 by 576 pixels로 획득합니다. 이미지 중심에서 XY 위치를 계산하고 회절 링에서 Z를 계산하여 드리프트를 보정하는 피드백 소프트웨어로 열 드리프트를 보정합니다.나노미터 수준 또는 그 이상의 정밀도로 피조 스테이지(pizo stage)를 이동시켜 왼쪽 트랩의 중심을 비드 중심과 겹치게 한 뒤, 쿼드런트 검출기 포토다이오드(QDP)를 통해 위치 노이즈와 그 표준 편차를 측정합니다. 오른쪽 트랩에 대해서도 측정을 반복합니다. DNA 결합 단백질의 정밀한 국소화를 가능하게 하여 플로우 셀을 제작하려면, 위치 노이즈의 표준 편차가 수 나노미터 이내여야 합니다.먼저 다이아몬드 팁을 사용하여 76 x 76 x 1 mm 크기의 현미경 슬라이드에 직경 1 mm의 구멍을 뚫어 4개의 유입구와 1개의 유출구를 만듭니다. 이를 통해 최대 4개의 완충액을 병렬로 흐르게 할 수 있습니다.각각 실험에 필요한 서로 다른 성분인 비즈, 형광 표지 DNA 단백질 및 이미징 버퍼를 포함하고 있습니다. 에탄올로 현미경 슬라이드를 세척하고, O-링이 삽입된 포트를 액세스 홀 주변의 슬라이드 접착 링 중앙에 맞춥니다. 접착 과정에 방해가 될 수 있는 지문을 방지하기 위해 이 단계에서는 반드시 장갑을 착용해야 합니다.두 번째 슬라이드 클램프를 사용하여 나노 포트를 슬라이드에 고정하고, 완전히 부착될 수 있도록 180 °C로 예열된 오븐에 1시간 동안 넣습니다. 그동안 종이에 플로우 셀의 외곽 패턴을 그립니다. 채널의 너비는 약 3 mm여야 하며, 현미경 슬라이드의 홀 위치와 일치해야 합니다.도면을 두 개의 perfil 위에 놓고, 메스로 그려진 외곽선을 따라 날카롭고 연속적으로 절개합니다. 형성된 돌출부를 제거하고, 깨끗한 지지대를 보장하기 위해 사용된 하단 parfum 층은 폐기하십시오. 다음으로 나노 포트가 부착된 현미경 슬라이드를 금속 지지대에 뒤집어서 배치합니다.파라필름 챔버 윤곽을 구멍에 정밀하게 맞추고, 파라필름이 챔버 커버의 유입구와 유출구를 가리지 않도록 주의하며 깨끗한 현미경 커버글라스를 사용하여 챔버 주변의 과잉 파라필름을 조심스럽게 제거합니다. 이전에 120 °C로 가열한 히팅 블록 두 개를 플로우 셀 위에 올려 균일한 압력을 가합니다. 파라필름이 약 25분 동안 녹도록 둡니다.다음 단계는 가압 저장소와 완충액 용기를 준비하는 것입니다. 가압 저장소는 플렉시글라스로 제작되었으며 최대 6개의 완충액 용기를 수용할 수 있습니다. 먼저, 완충액 용기 출구에 있는 차단 밸브를 연결하십시오. 밸브 레버가 수직 위치에 있으면 완충액 흐름이 시작되고, 시계 방향으로 회전한 위치에 있으면 흐름이 차단됩니다.실험 중에 플로우 셀을 현미경 스테이지에 장착합니다. 그런 다음 폴리에테르에테르케톤(poly ether ether ketone) 또는 PEEK 튜빙을 통해 차단 밸브를 연결하고, 플랜지리스 스피닝을 플로우 챔버 입구에 연결합니다. PEEK 튜빙의 내경은 약 150 µm이며, 내경 약 500 µm의 불소화 에틸렌 프로필렌(fluorinated ethylene propylene) 튜빙 약 3 cm를 PEEK 튜빙과 플로우 셀의 나노 포트 어셈블리 사이의 연결부로 사용합니다.이는 챔버 입구에서의 버퍼 흐름을 줄여 플로우 셀의 파손이나 유리로부터의 나노 포트 탈착을 방지하기 위해 필수적입니다. 반면에 내경이 큰 튜빙만 사용할 경우, 다량의 생물학적 시료가 필요하게 됩니다. 플로우 챔버 출구를 대기압 상태의 열린 Falcon 튜브에 연결하십시오.이 튜브는 유동 챔버에서 흘러나오는 버퍼를 폐기하는 용도로 사용됩니다. 이 절차를 시작하려면, 각 버퍼 용기에 1 mL의 버퍼 A를 넣고 200 mbar의 압력을 가하여 연결 튜브와 유동 셀을 세척하십시오. 압력 제어 시스템을 사용할 수 있습니다.마지막으로, 압력 저장조 내부의 공기압을 조정합니다. 흐름의 원활함을 방해할 수 있는 기포의 존재 여부를 확인하십시오. 배출 튜브를 가볍게 튕겨 남은 기포를 제거하고, 압력을 20 millibars로 낮춘 뒤 모든 채널과 튜브에 기포가 없는지, 그리고 모든 채널에서 버퍼가 유사한 속도로 흐르는지 확인합니다.시료를 최종 부피 300 microliters가 되도록 준비합니다. 이 실험에는 strept 코팅 폴리스티렌 비드, 락토스 억제제 결합을 위한 특정 표적 서열을 포함하며 양 끝단이 비오틴화된 선형 DNA, 그리고 형광 표지된 락토스 억제제 단백질이 사용됩니다. 각 시료를 다음 순서대로 시린지 컨테이너에 추가합니다. 첫 번째 채널에는 비드, 두 번째 채널에는 DNA, 세 번째 채널에는 이미징 버퍼, 네 번째 채널에는 표지된 단백질을 넣습니다.유량을 20 millibars로 설정하여 켜고, 차단 밸브를 열어 샘플이 유로 내부로 들어오게 합니다. 이는 비드 채널에서 쉽게 확인할 수 있습니다. 명시야 조명 하에서 첫 번째 채널을 이미징하는 동안, 두 개의 광학 집게를 켜서 각 트랩에 폴리스티렌 비드를 하나씩 포획합니다.다른 비드가 트랩에 빠지는 것을 방지하기 위해 두 번째 채널로 빠르게 이동하십시오. DNA 채널에 도착하면 비드 흐름이 끝나므로 쉽게 확인할 수 있습니다. 하나의 AO 광 편향기(optic deflector) 또는 OD 이동을 사용하여, 광학적으로 트랩된 두 비드 사이에 흐름으로 확장된 DNA가 부착될 수 있도록 한쪽 트랩 비드를 다른 비드 근처에서 앞뒤로 움직이십시오.DNA 덤벨이 형성되면, 정지된 비드가 트랩에 의해 앞뒤로 능동적으로 이동하는 비드의 움직임을 따라가기 시작합니다. 빠르게 버퍼 채널로 이동하여 버퍼 흐름을 끕니다. 힘-신장 곡선(force extension curve) 분석을 수행하여 단일 DNA 분자의 존재를 확인합니다.이는 DNA 인장력을 측정하는 동안 두 비드를 서로 분리함으로써 수행됩니다. 단일 DNA 덤벨이 확보되면, 유동을 다시 켜고 덤벨을 단백질 채널로 이동시킵니다. 광시야 형광 현미경으로 전환하여 표지된 락토스 억제 단백질과 DNA의 상호작용을 관찰하고, 유동을 끈 후 획득을 시작하십시오.이 방법은 신장된 DNA 분자와 상호작용하는 단일 lactose repressor 또는 lac eye 분자의 검출을 가능하게 합니다. 이 대표적인 CH 도표에서, 하나의 lac eye 분자는 비특이적 DNA 서열을 따라 확산하는 반면, 다른 lac eye 분자는 DNA 분자의 중앙에 위치한 하나의 오퍼레이터에 특이적으로 결합되어 있습니다. 이 그래프는 두 트랩의 중심을 연결하는 방향을 따라 두 lac eye 분자의 위치를 보여줍니다.시간의 함수로서, 분자들의 위치는 방사 대칭 중심 알고리즘(radial symmetry center algorithm)에 의해 결정되었습니다. 여기 표시된 그래프는 신장된 DNA 분자를 따라 확산하는 단일 lacI 분자의 시간 대비 평균 제곱 변위(mean square displacement, MSD)를 나타냅니다. 단백질의 확산 계수는 데이터의 선형 회귀 분석을 통해 쉽게 얻을 수 있습니다. 조작 및 이미징 기술의 결합은 DNA, RNA 또는 세포골격 필라멘트와 같은 단일 생체 고분자에 대한 기계적 제어와, 해당 고분자와 상호작용하는 단일 단백질 분자의 동시 국소화를 가능하게 하는 강력한 방법입니다.본 실험 절차를 수행할 때, 단일 분자 조작 및 이미징 기술을 결합하려면 현수된 폴리머의 나노미터 수준 안정성을 보장하기 위해 실험 장치를 세심하게 설계해야 한다는 점을 기억하는 것이 중요합니다. 한편, 트래핑 G 레이저와 형광 프로브 사이의 공간적 분리를 보장하기 위해 생물학적 프로브의 적절한 설계가 필요합니다. 자세한 내용은 함께 제공되는 프로토콜 텍스트를 참조하십시오.이 영상을 시청한 후, 귀하는 두 개의 광학적 급속 비트 사이에 DNA 분자를 조립하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다. 이러한 구조체의 조립은 상세한 설명이 제공된 다채널 유체 셀을 사용하여 수행하는 것이 더 효과적입니다. 또한, 실험 결과에 영향을 줄 수 있는 기포를 제거하고 버퍼 흐름을 최적화하는 방법도 안내하였습니다.결합 텍스트 프로토콜에서 streptavidin 코팅 비즈와의 조립에 필요한 bioTE를 이용한 DNA 라벨링 프로토콜과 단백질 라벨링 프로토콜을 확인할 수 있습니다. 마지막으로, 신장된 DNA 분자 상에서 단일 lactose repressive protein의 결합 및 확산을 정량화하기 위한 단계별 조작 과정을 설명하였습니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

플라스미드 DNA, 세포질 단백질과 DNA - 단백질 단지의 시각화를위한 감청 모드 원자 힘 현미경 (AFM) 방법을 설명합니다. 방법은 다음과 같은 생화 학적 조작 AFM 이미징을위한 샘플을 준비 대체 방법을 제공합니다. 특정 단백질 상호 작용하는 지역을 포함하는 DNA는 거의 physiologic 버퍼 조건에서 관찰됩니다.

원자 힘 현미경을 사용하여 재조합 DNA와 단백질 단지의 시각화

이 비디오는 단일 분자 이미징을 사용하여 특정 유전자 자리에서 DNA 분자의 융합 단백질 응축물 어셈블리를 시각화하는 방법을 설명합니다. 이러한 응축물은 LCD-LCD 및 LCD-DBD 상호 작용으로 인해 형성되며, 이를 통해 RNA 중합효소 II를 동원하고 유전자 전사를 향상시킬 수 있습니다.

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단일 분자 추적과 함께 Photoactivated 현지화 현미경 (PALM)은 허용 라이브 대장균 세포에서 단백질-DNA 상호 작용의 직접 관찰 및 정량화.

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여기, 선물이 총 내부 반사 형광 현미경 (TIRFM) site-specifically 수정된 λ DNA 기판 및 양자 점 단백질 분류를 사용 하 여 DNA 단백질 상호 작용을 공부 하는 프로토콜.

Qdot 표시 된 단백질과 단일 분자 수준에서 Site-specifically 수정된 λ DNA 사이 상호 작용을 시각화

quantum-dot-labeled DNA와 total internal reflection fluorescence microcopy를 사용하여 unlabeled protein을 사용하면서 restriction endonucleases의 반응 메커니즘을 조사할 수 있습니다. 이 단일 분자 기법을 사용하면 개별 단백질-DNA 상호 작용을 대규모로 다중화하여 관찰할 수 있으며, 데이터를 풀링하여 잘 채워진 체류 시간 분포를 생성할 수 있습니다.

Single-Molecule Dwell-Time Analysis of restriction Endonuclease-mediated DNA cleavage(제한 엔도뉴클레아제 매개 DNA 절단의 단일 분자 체류 시간 분석)

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단일 분자 연구를 위한 이중 광학 핀셋 및 미세 유체 공학 사용

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