Name: 애벌레 Zebrafish의 척수 절개 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-05-21T14:45:00.000+00:00
Duration: 6 min 57 s
Description: 배우세요 애벌레 제브라피시의 척수 절단 방법을 통해 신경 재생 메커니즘을 연구하세요. 이 기법은 투명성과 빠른 회복을 활용하여 2일 만에 감각 회복을 관찰하고 면역형광 현미경으로 신경 전구세포 반응을 평가합니다.

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우리는 동물 사육에 대한 유타 대학의 제브라 피쉬의 시설에 빚이있다. RID는 NIH R56NS053897에서 지원하고, LKB는 HHMI 메드 - 속 - 대학원 사업에 의해 지원 predoctoral 연수생이었다.

제브라 피쉬는 표준 절차에 따라 제기 자란 있었다; 실험은 유타 기관 동물 관리 및 사용위원회의 대학에 의해 승인되었습니다. 수술 플레이트 1. 준비 <ol><li> 제조업체의 지침에 따라, 60mm 페트리 접시와 실 가드 184 실리콘 엘라스토머 키트를 사용하여 수술 판을 확인합니다. 반 전체보다는 더 이상 요리를 채우고 중합 할 수 있습니다. 스토어는 실내 온도에 덮여. </li></ol> 마이크로 피펫 2. 준비 <ol><li> 가열 및 마이크로 인젝션 용 바늘을 제조하기위한 동일한 설정을 사용하여 마이크로 피펫 풀러에서 얇은 벽 붕규산 모세관 튜브를 당겨 마이크로 피펫을 제조. </li><li> 해부 현미경, 집게로 직경 약 200 ㎛에 마이크로 피펫의 팁을 떼어냅니다. </li><li> 베벨 깨진 25 °에서의 두 번째 베벨 다음 35 °에 처음 microgrinder와 가장자리. 끝이 날카로운 SMO 있는지 확인OTH. 스토어는 점토의 작은 금액에 페트리 접시에 경 마이크로 피펫을 완료했다. </li></ol> Zebrafish의 유충 3. 준비 <ol><li> 수술 전에 7 일, 남성과 여성의 제브라 피쉬의 짝짓기 탱크를 설정합니다. </li><li> 조명이 최대 수율을 보장하기 위해 어서 3 시간 후, 다음날 아침 배아를 수집합니다. knu3, 28.5 ℃에서 일종의 수정 된 배아 100분의 100 mm 플레이트 E3 25 ㎖의 : 같은 Tg는 (EGFP elevl3)와 같은 유전자 변형 기자 라인을 사용하는 경우 야생형를​​ 사용하는 경우, 정렬 28.5 ℃에서 E3의 25 ㎖에 태아에게 100분의 25 mm 플레이트를 기름지게 </li><li> 기자 회선을 사용하는 경우, 48 HPF에서 형광 발현에 대한 배아를 화면. 확인 된 배아는 28.5 ℃에서 E3의 25 ㎖에 1백분의 25 mm 플레이트의 밀도로 성숙 할 수 있도록 허용 </li><li> 유충은 5 DPF 경우, E2 + 10 ㎎ / L 겐타 마이신 황산염 (GS) + Tricaine과 실 가드을 포함하여 수술 판을 준비합니다. <ol><li> 100mm 페트리 표시에 25 ㎖의 E2 + GS를 추가하여 복구 요리를 준비합니다아. </li><li> 함께 세 면봉 테이핑으로 메스를 준비합니다. 이 세 가지 홈이 삼각형 도구를 형성 할 것이다. </li><li> 홈 중 하나에 테이핑하여 면봉에 준비된 마이크로 피펫을 장착합니다. </li></ol></li><li> E2 + GS와 지우기가 1 ㎖ 주사기 전에 면봉에 설치에 27 G 바늘을 사용하여 때까지 플러시 마이크로 피펫을 다시 사용합니다. </li></ol> 4. 수술 <ol><li> Tricaine와 시간 (25 물고기)에서 애벌레의 1 접시를 마취. 더 이상 터치 반응을 전시하지 않을 때 물고기가 충분히 마취됩니다. 그것은 메스 그들에 닿을 때 그렇지 않으면 그들은 트됩니다, 물고기가 완전히 수술 전에 마취하는 것이 중요합니다. 수술은 해부 현미경으로 수행됩니다. </li><li> 수술 판에 유충을 전송합니다. <ol><li> 이 메스를 들고 손에의 뒷면에 가까운 측면에 위치하도록 최대 배율에서 한 번에 하나의 유충을 돌립니다. </li><li> 그들은 실 가드에 휴식 있도록 위치, 핀셋유충의 폭에 각도. </li><li> 집게의 팔 중 하나에 유리 메스를 보강, 확인 척색의 복부 가장자리를 넘어 절단하지 않는 것, 항문 구멍의 수준에서 애벌레의 등 측면 얼굴로 절단. 척수를 절단하기 위해 메스를 트위스트. </li><li> 나머지 유충으로 반복합니다. 참고 : 유충이 스며들 경우, 수술에서 회복되지 않습니다. 즉시 수술 판에서 유충을 제거하고 Tricaine의 과다 복용을 통해 안락사. </li></ol></li><li> 유생의 배치에서 수술이 완료되면, 전송이 복구 플레이트에 동물을 부상. 이 마취의 청산을 지원하는 것입니다. <ol><li> 주의 : 전송 부상 애벌레를 수집 할 때, 그들은 먼저 머리 또는 꼬리를 수집하고 있는지 확인 : 유충을 절곡하여 부상 사이트를 강조하지 않습니다. 주 : 수술에 사용 된 모든 장치가 마이크로 피펫을 포함하여 재사용 할 수 있습니다. </li></ol></li></ol> 5. 복구 <ol><li> TRansfer 복구 플레이트에서 25/plate의 밀도로 25 ml의 E2 + GS 가득 100mm 접시에 유충을 부상. 28.5 ° C의 배양기에서 복구 할 수 있습니다. </li><li> 병 들고 죽은 동물을 제거, 매일 번호판을 확인합니다. Coleps (담수 원생 동물)가 미디어에 표시 될 때까지 미디어를 변경하지 마십시오. 미디어를 변경하는 경우, 새 접시에 물고기를 전송하지 않는다; 대신, 가능한 한 많은 용지를 제거하고 새로운 미디어와 같은 플레이트를 홍수. Coleps 인구를 줄이기 위해 필요한 경우를 반복합니다. </li><li> 가루 튀김 식품의 소량의 일일 사료. 참고 : 라이브 음식 (예를 들면, paramecia 또는 로티퍼)는 그들이 운동을 회복 할 때까지 부상 유충에 공급 될 수 없다. 그렇지 않으면, 라이브 음식은 부상 사이트를 식민지화하고 유충을 죽일 것입니다. </li></ol>

<ol><li>Houweling, D. A., Bär, P. R., Gispen, W. H., Joosten, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spinal+cord+injury%3A+bridging+the+lesion+and+the+role+of+neurotrophic+factors+in+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Progress+in+brain+research%22%5BJournal%5D)">Spinal cord injury: bridging the lesion and the role of neurotrophic factors in repair.</a> Progress in brain research. 117, 455-471 (1998).</li>
<li>Mikami, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Implantation+of+dendritic+cells+in+injured+adult+spinal+cord+results+in+activation+of+endogenous+neural+stem%2Fprogenitor+cells+leading+to+de+novo+neurogenesis+and+functional+recovery%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+neuroscience+research%22%5BJournal%5D)">Implantation of dendritic cells in injured adult spinal cord results in activation of endogenous neural stem/progenitor cells leading to de novo neurogenesis and functional recovery.</a> Journal of neuroscience research. 76 (4), 453-465 (2004).</li>
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</ol>

저자가 공개하는 게 없다.

처음에이 기술을 학습 할 때, 우리는 하나의 세션에서 더 이상 50 ~ 100 이상 transections을 시도하는 것이 좋습니다. 이 기술을 마스터 한 후, 우리는 시간 당 300 배아까지 절개 할 수있다; 그러나, 처리량이 수준의 주간 연습의 몇 개월을 필요로합니다. 우리는 또한 기자 라인을 연습하고 불완전 척수 절개의 빈도가 1 % 이하로 감소 될 때까지 완전 절개를 확인하는 것이 좋습니다. 성인 제브라 피쉬의 척수 절개는 부상 후 축삭 재성장과 신경을 공부 잘 설립하고 강력한 기술이다. 애벌레 유기체로이 분석을 이동하여, 우리는 생체 내에서 복구를 검사 할 수 있습니다. 또한, 우리는 또한, 예를 들어, 재생 과정에서 Tcf7l1a 12 다양한 유전자의 역할을 검토하는 성인 제브라 피쉬에서 사용할 수없는 유전 적 도구를 활용할 수 있습니다. 원래 D...

인간의 척수에 큰 외상은 종종 인해 축삭을 자라게 또는 신경 1,2를 재개 할 수 없다는으로, 영구적 인 마비와 부상의 수준 이하로 감각의 손실이 발생합니다. 포유 동물과는 달리, 그러나, 도롱뇽과 제브라 피쉬 (다니오 rerio) 등의 anamniotes도 완전 척수 절개 3,4 후 강력한 회복을 보여줍니다. 성인 zebrafish의 척수 손상 5-7 다음 복구 프로세스를 연구하기위한 기초가 튼튼한 모델입니다. 완전 척수를 절단 한 다음, 감각 및 기관차 기능의 회복은 육주 후 부상 (8)에 의해 성인 제브라 피쉬에서 관찰된다. 생체 내 재생 과정을 조사하기 위해, 우리는 투명 유생 제브라 9 돌렸다. 여기서 우리는 오일 후 수정 (DPF) 애벌레 제브라 피쉬의 USI의 척수를 절개하는 방법을 제시한다밧의에서 수정 메스로 경 사진 미세 주입 피펫을,, 겨 등. 10이 방법은 높은 처리량, 낮은 사망률과 재현성을 지원합니다. 연습으로, 300 유생 / 시간은 가로로 할 수 있으며, 98.75 % 0.72 % ± 3,600 이상의 동물을 포함 transections 6 개월 이상, 7 일 후 부상 (dpi)로 될 때까지 살아 남았다. 우리의 데이터뿐만 아니라 감각과 운동의 빠른 회복을 보여줍니다 : 1 dpi로에서 부상당한 물고기의 모든 움직임은 가슴 지느러미 운동에 의해 구동된다. 그러나 애벌레 2 dpi로하여 절개에 바늘 터치 꼬리 텅스텐에 응답하기 시작, 3 dpi로하여 C-굽힘 운동을 다시 설정하고, 5 dpi로 (11)에 의해 약탈 수영을 표시합니다. 아세틸 튜 불린에 대한 항체 염색법을 사용하여, 우리는 축삭 1 dpi 해상도에서 부상 사이트에서없는 것을 확인했지만, 5 dpi로하여 부상 사이트를 넘었다. 우리는이 프로토콜은 다음과 같은 부상 척수에있는 축삭 재성장과 신경의 연구를위한 가치있는 기술을 제공 할 것입니다 믿습니다. </p&gt;

<table><tbody><tr><td>60mm 페트리 접시</td><td>VWR</td><td>82050-544</td><td></td></tr><tr><td>100mm 페트리 접시</td><td>VWR</td><td>89038-968</td><td></td></tr><tr><td>PDMS, Sylgard 184 실리콘 엘라스토머 키트</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC9644388</td><td></td></tr><tr><td>붕규산 모세관 튜브: OD 1.00mm, ID 0.78mm</td><td>Warner Instruments Inc.</td><td>64-0778</td><td></td></tr><tr><td>집게</td><td>파인 사이언티픽 툴 Inc.</td><td>11252-30</td><td></td></tr><tr><td>해부 현미경</td><td>니콘</td><td>SMZ6454</td><td></td></tr><tr><td>마이크로 그라인더</td><td>나리시게</td><td>EG-44</td><td></td></tr><tr><td>겐타마이신 황산염</td><td>Amresco Inc.</td><td>0304-5G</td><td>는 물 10 mg/ml에 녹이고 -20°C에서 보관하십시오. C</td></tr><tr><td>Tricaine</td><td>Acros Organics</td><td>118000100</td><td></td></tr><tr><td>Cotton tipped 애플리케이터, 목재, 6인치</td><td>Fisher Scientific</td><td>23-400-101</td><td></td></tr><tr><td>1 ml 주사기</td><td>BD</td><td>309625</td><td></td></tr><tr><td>27 G 바늘</td><td>BD</td><td>305109</td><td></td></tr><tr><td>프라이 식품</td><td>Argent Labs</td><td>F-ARGE-PTL-CN</td><td>-20 &deg; C</td></tr><tr><td>마이크로 피펫 풀러</td><td>Sutter Instrument Co.</td><td>모델 P-97</td><td>상자 필라멘트 FB330B</td></tr><tr><td colspan="4">20x E2 (1 L); RT</td></tr><tr><td>17.5 g NaCl</td><td>Fisher Scientific</td><td>S671-500</td><td></td></tr><tr><td>0.75 g KCl</td><td>Fisher Scientific</td><td>P217-500</td><td></td></tr><tr><td>2.90 g CaCl2&middot;>< 2H2O</td><td>Sigma</td><td>C7902-500G</td><td></td></tr><tr><td>4.90 g MgSO4&middot; 7H2O</td><td>Merck</td><td>MX0070-1</td><td></td></tr><tr><td>0.41 g KH2PO4</td><td>Fisher Scientific</td><td>P285-500</td><td></td></tr><tr><td>0.12 g Na2HPO4</td><td>Sigma</td><td>S0876-500G</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">500x NaCO3 (10 ml); < / 강력 > 신선하게 만들기, 여분의</td></tr><tr><td>0.35g NaCO3</td><td>Sigma</td><td>S5761</td><td></td></tr><tr><td colspan = "4">1x E2 (1 L); RT</td></tr><tr><td>50 ml 20x E2</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>2 ml 신선한 500x NaCO3</sub에 저장></td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

애벌레 zebrafish의 척수 절개

Spinal Cord Transection in the Larval Zebrafish

포유 동물에 의한 부상의 수준 이하로 축삭 재성장의 부족뿐만 아니라 척추 신경을 재개하는 무능력에 척수 손상을 다음과 감각과 운동 회복에 실패합니다. 그러나, 척수의 완전 절개 후 감각과 기능 회복을 모두 제브라 다니오의 rerio 전시 등 일부 anamniotes. 성인 zebrafish의 6 주 후 부상으로 감각과 운동 회복, 척수 손상 후 재생을 연구하기위한 설립 모델 생물이다. 투명 애벌레 제브라 피쉬에서 사용할 수있는 재생 과정의 생체 내 분석의 장점뿐만 아니라 성인의 유전 도구에 액세스 할 수 없습니다를 사용하려면, 우리는 척수를 절단 한 후 재생을 연구하는 애벌레 제브라 피쉬를 사용합니다. 여기에서 우리는 재생 가능하고 검증 가능한 애벌레 척수에 병행하는 방법을 보여줍니다. 절개 한 후, 우리의 데이터도 2 일 후 부상 수 (dpi)에 감각 복구 시작을 보여줍니다, 재치H 3 dpi로 5 dpi로 무료 수영의 재개에 의해 검출 C-굽힘 운동. 따라서 우리는 척수 손상 후 복구의 연구를위한 성인 제브라 피쉬에 동반자 도구로 애벌레 제브라 피쉬를 제안한다.

부상 사이트를 주변 조직 손상의 심각도를 감소시키기 위해, 마이크로 피펫의 적절한 베벨 중요합니다. 그림 1A는 제대로 경 팁을 보여줍니다. 너무 좁 팁 (그림 1C)이 아니라 조직을 절단보다 피부 떨어져 눈 경향이있는 동안 너무 넓 팁 (그림 1B)를 사용하면, 때문에 등쪽 대동맥을 새김의 증가 가능성에 높은 사망자가 발생하는 경향이있다. 1 dpi 해상도에서 제브라 피쉬. 그림 2A 라이브의 Tg (EGFP elevl3)의 완전히 가로로 척수를 보여 척수를 시각화하는 knu3 :이 기술을 연습 할 수있는, 이러한 Tg는 (EGFP elevl3)로 리포터 줄을 사용하는 것이 유리하다 . 물고기의 공동을 갖는 그림 2B는</st...

척추 절개 한 후, 성인 zebrafish의 육주 후 손상에 의한 기능 회복이있다. 유생의 투명성과 빠른 복구를 이용하려면, 우리는 애벌레 척수에 병행하는 방법을 제시한다. 절개 한 후, 우리는 3 일 후 부상으로 이일 후 상해에서 시작 감각 회복을 관찰하고 C-굴곡 운동.

애벌레 Zebrafish의 척수 절개

Mammals fail in sensory and motor recovery following spinal cord injury due to lack of axonal regrowth below the level of injury as well as an inability ...

이 절차의 전반적인 목표는 생존율을 최대화하면서, 비교적 높은 처리량과 재현 가능한 방법을 통해 제브라피쉬 치어의 척수를 완전히 절단하는 것입니다. 이는 먼저 적절한 유전자형의 성체를 교배하고 필요에 따라 스크리닝함으로써 달성됩니다. 두 번째 단계는 수정 후 5일까지 배아를 사육하는 것입니다.다음으로, 경사형 미세주입 피펫을 사용하여 절단술을 수행합니다. 마지막으로, 부상을 입은 물고기를 실험 종료 시까지 항생제 처리된 배지에서 회복시킵니다. 최종적으로, 면역형광 현미경을 사용하여 부상에 대한 신경 전구세포의 반응을 확인합니다.Becker 및 fetcher 연구실에서 개척한 기존 방법들과 비교하여 이 기술이 갖는 주요 장점은 연구 가능한 동물의 수가 더 많고, 회복 시간이 짧으며, 성체 제브라피시에서는 일반적으로 사용할 수 없는 유전적 도구들을 사용할 수 있다는 점입니다. 이 방법은 손상에 대한 신경 전구세포의 반응과 같이 재생 분야의 핵심 질문들에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 60 millimeter 페트리 접시와 to cell guard 180 4 실리콘 엘라스토머 키트를 사용하여 수술 플레이트를 제작함으로써 준비 과정을 시작하십시오.제조사의 지침에 따라 디쉬의 절반 이하로 채운 후 중합되도록 둡니다. 그 다음 덮개를 덮어 실온에서 보관하십시오.다음으로, 해부 현미경 하에서 미세주입 바늘을 제작할 때와 동일한 설정을 사용하여, 마이크로 피펫 풀러(micro pipette puller)로 박벽 붕규산 유리 모세관을 가열 및 인발하여 마이크로 피펫을 제작합니다. 핀셋을 사용하여 마이크로 피펫의 끝부분을 지름 약 200 microns가 되도록 부러뜨려 절단합니다. 그런 다음 마이크로 그라인더를 사용하여 부러진 단면을 처음에는 35도로, 연마 소음이 멈추면 다시 25도로 2차 베벨링(beveling) 처리합니다.해부 현미경으로 팁이 날카롭고 매끄러운지 확인하십시오. 팁이 너무 넓으면 등쪽 대동맥을 손상시킬 가능성이 높아져 치사율이 높아지는 경향이 있습니다. 반면, 팁이 너무 좁으면 조직을 절개하지 못하고 피부에서 미끄러지는 경향이 있습니다. 적절하게 베벨 처리된 마이크로 피펫은 수술 7일 전에 소량의 점토를 넣은 페트리 접시에 보관하십시오.수컷과 암컷 spr. Fish의 교배 수조를 준비합니다. 조명이 켜진 후 3시간이 지난 다음 날 아침에 수정란을 수집합니다. 이는 최대 수율을 확보하기 위함입니다.혼합 유전자형을 가진 형질전환 리포터 라인을 사용하는 경우, 플레이트당 배아 100개를 넣고 28.5 °C에서 배양하십시오. 리포터 라인을 사용하는 경우, 수정 후 48시간에 배아의 형광 발현 여부를 스크리닝하십시오.형광 배아를 28.5 °C에서 유생이 되거나 수정 후 5일이 될 때까지 성숙시킵니다. Cell guard를 E2 및 10 mg/L gentamicin sulfate와 trica로 덮어 수술 플레이트를 준비합니다. 또한, 100 mm Petri dish에 25 mL의 E2와 Gentamycin sulfate를 추가하여 회복 접시를 준비합니다.다음 단계는 면봉 세 개를 테이프로 함께 붙여 메스 핸들을 준비하는 것입니다. 이렇게 하면 세 개의 홈이 있는 삼각형 도구가 만들어집니다. 그다음, 준비된 마이크로 피펫을 홈 중 하나에 테이프로 고정하여 면봉에 장착함으로써 메스를 완성하고, 마이크로 피펫은 필요할 때까지 옆에 둡니다.한 번에 25마리의 유충이 담긴 플레이트 하나를 마취하며 수술을 시작합니다. trica를 사용할 경우, 유충이 더 이상 접촉 반응을 보이지 않으면 충분히 마취된 것입니다. 유충을 수술용 플레이트로 옮긴 후, 플레이트를 해부 현미경 아래에 놓습니다.최대 배율에서 유충 한 마리를 회전시켜, 메스를 잡은 손과 유충의 등이 가장 가깝게 닿도록 옆으로 눕힙니다. 핀셋이 셀 가드(cell guard) 위에 놓이도록 배치합니다. 유충의 너비에 맞춰 각도를 조절하고, 유리 메스를 핀셋의 한쪽 암(arm)에 지지시킵니다.항문공 높이에서 유충의 등외측면을 절개합니다. 이때 척색의 복측 가장자리를 넘어서 절개하지 않도록 주의하십시오. 그런 다음 메스를 비틀어 척수를 절단합니다.필요한 회전 각도는 보통 90도보다 훨씬 작습니다. 나머지 유충들을 대상으로 척수 절단술을 반복하십시오. 해당 유충 집단에 대한 수술이 완료되면, 후방 피펫과 피펫 펌프를 사용하여 손상된 개체들을 회복 플레이트로 옮기십시오.마취 상태를 해소하기 위해, 옮기는 과정에서 유충의 머리나 꼬리를 먼저 잡도록 하십시오. 마취가 풀린 후에는 유충을 구부려 손상 부위에 자극을 주지 마십시오. 회복 플레이트에서 손상된 유충을 25 mL의 E2 및 gentamycin sulfate가 채워진 100 mm 플레이트로 플레이트당 25마리의 밀도로 옮깁니다.그런 다음 상처가 치유되는 동안 28.5 °C 인큐베이터에 넣습니다. 플레이트를 매일 확인하여 병들거나 죽은 동물은 제거합니다.배지 내에 담수 원생동물 coop이 보일 때까지 배지를 교체하지 마십시오. 배지를 교체할 때 물고기를 새 플레이트로 옮기지 마십시오. 대신, 가능한 한 많은 배지를 제거한 후 동일한 플레이트에 새 배지를 가득 채우십시오.코옵스(coops) 개체수를 줄이기 위해 필요에 따라 배지 교체를 반복합니다. 치어용 가루 사료를 소량씩 매일 유생에게 공급합니다. 여기 척수가 완전히 절단된 지 1일이 경과한 제브라피시가 제시되어 있습니다.손상 후 모든 뉴런에서 GFP가 발현되며, 노란색 화살표는 손상 부위를 나타냅니다. 여기에는 척수가 완전히 절단된 제브라피쉬의 손상 후 3일째 모습이 제시되어 있습니다. 고정된 UCD 표지 제브라피쉬의 모습에서 척수가 완전히 절단된 것을 확인할 수 있습니다.노란색 화살표는 다시 한번 손상 부위를 나타냅니다. 이와 대조적으로, 척수의 복측 가장자리를 따라 신경세포 라벨링이 연속적으로 나타납니다. 손상 후 3일이 지난 고정된 제브라피시의 이 모습은 불완전 절단을 나타냅니다.이 기술을 숙달하면 시간당 300마리의 유충을 처리할 수 있습니다.

spinal-cord-transection-in-the-larval-zebrafish

Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

여기에 제시된 방법은 고 에너지 레이저 펄스와 시간을 통해 이러한 부상과 회복의 후속 분석 라이브 zebrafish 배아의 정확한 부상을 포함한다. 우리는 또한 유전자 하나의 표시 또는 골격근 세포의 그룹이 동안 레이저 광 유도 손상 후 추적 할 수있는 방법을 보여줍니다.

Zebrafish 배아 골격근의 레이저 쏜 부상

이러한 확산, 패턴, 차별화, 그리고 축삭지도 등의 발달 과정은 쉽게 제브라 피쉬의 척수에서 모델링 할 수 있습니다. 이 문서에서는, 우리는 이러한 이벤트의 시각화를 최적화하는 제브라 피쉬 배아에 대한 설치 절차를 설명합니다.

해부 및 제브라 피쉬 배아의 측면 장착 : 척수 개발의 분석

칠성 장어는 완전 척수 손상 후 운동을 복구 할 수 있습니다. 그러나 일부 척추 - 투사 뉴런 좋은 재생기하고 다른 사람은 없습니다. 이 문서는 완전한 척수 transections 생산 및 현장 하이브리드에 대한 wholemount 뇌와 척수를 준비, 주택 바다 칠성 장어 유생 (최근 변화 성인)에 대한 기술을 보여줍니다.

이후 Wholemount을위한 완벽한 척수 손상 및 뇌 해부 프로토콜<em&gt; 제자리에서</em&gt; 애벌레 바다 장어의 하이브리드

제브라피시 성체 신경 발생 및 재생의 세포 및 분자 메커니즘을 밝히기 위해 우리는 제브라피시 성체 텔렌스팔론에서 기계적 손상을 일으키는 침습적 수술과 면역조직화학 또는 현장 교잡화에 의한 찌른 반구의 변화를 모니터링하는 프로토콜을 개발했습니다.

Zebrafish의 성인 Telencephalon의 자상 부상 : 척추 동물의 뇌 신경 발생과 재생을 조사하는 방법

이 원고는 제브라 피쉬 배아 및 유충의 척수 신경 세포에서 전기 생리 녹음하는 방법을 설명합니다. 준비는 현장에서 뉴런을 유지하고 자주 최소 절개를 포함한다. 이 방법은 초기 애벌레 단계를 통해 초기 전기 흥분의 인수, 척추 신경의 다양한 전기 생리학 연구 할 수 있습니다.

Zebrafish의<em&gt; 시츄</em&gt; 척수 척추 감각과 운동 뉴런 전기 생리 녹음 준비

우리는 모델 척추 동물 머리 세포 시스템에서 모터 명령 중 발포성 뉴런 활동의 변화를 모니터링하는 프로토콜을 설명합니다.

얼룩말피에서 수영하는 동안 후방 측면 라인 발신 신경의 활동

척수 손상 후 기능적 회복이 가능한 성인 제브라피쉬는 신경 재생의 선천적 메커니즘을 밝히는 최고의 모델 시스템입니다. 여기에서는 수영 지구력과 수영 행동 분석을 척수 재생의 기능적 판독으로 설명합니다.

성인 제브라 피쉬의 수영 지구력 및 수영 행동 평가

본 프로토콜은 유충 취급을 위한 자동화된 미세유체 플랫폼과 결합된 레이저 병변 시스템을 사용하여 제브라피쉬 유충에서 조직 특이적이고 재현성이 높은 부상을 유도하는 방법을 기술한다.

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Xenopus laevis 올챙이 척수 transection은 흉부 수준에서 척수를 완전히 절단하는 횡단 절단을 만들어 척수 손상 및 재생을 연구하는 관련 손상 방법입니다.

Xenopus laevis Tadpoles의 척수 Transection

이 프로토콜은 성인 제브라피쉬에서 여러 꼬리 근소체의 심각한 손상을 유도하는 냉동 손상 모델을 설명합니다. 이 방법은 비포유류 척추동물에서 심각한 조직 손실 후 골격근 재생을 연구하기 위한 새로운 접근 방식을 제공합니다.

성인 제브라피쉬에서 꼬리 꽃자루의 골격근 재생을 연구하기 위한 냉동 손상 모델

여기에서 우리는 수정 후 최소 1일에서 7일 사이의 모든 단계에서 제브라피시 배아와 유충에서 높은 공간적 및 시간적 해상도로 세포를 이식하기 위한 프로토콜을 제시합니다.

배아 및 유충 제브라피시에서의 고분해능 세포 이식

배우세요 애벌레 제브라피시의 척수 절단 방법을 통해 신경 재생 메커니즘을 연구하세요. 이 기법은 투명성과 빠른 회복을 활용하여 2일 만에 감각 회복을 관찰하고 면역형광 현미경으로 신경 전구세포 반응을 평가합니다.

애벌레 Zebrafish의 척수 절개

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