Name: T 세포 반응의 평가를위한 형광 대상 배열의 사용 생체 내 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-06-19T15:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 9 s
Description: 학습하세요 형광 대상 배열을 이용한 생체 내 T 세포 반응 평가 방법을. 멀티파라미터 유세포 분석으로 250개 이상의 면역 매개변수를 동시에 측정하여 CTL 및 T 헬퍼 반응을 종합적으로 분석할 수 있습니다.

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이 작품은 프로젝트 보​​조금 # 1010395 (BQ와 CP) 및 # 525431 (CR), 호주, 간염 및 HIV 바이러스학 EOI를 위해 호주 센터의 국립 보건 의학 연구위원회에서 프로그램 부여 # 455395 (CP)에 의해 지원되었다 2012 그랜트 (CR 및 RJJ)와 고든과 그레텔 목동 재단 (BQ와 CR)에서 부여. 우리는 JCSMR FACS 실험실의 그들의 우수한 유지 보수를 위해 Harpreet VOHRA 마이클 Devoy을 감사드립니다, 펩타이드 합성 호주 암 연구 재단 생명 자원 시설, JCSMR, ANU, 박사 데이비드 보일, CSIRO 동물 건강 연구소, 질롱, 호주 부모 HIV 백신의 주식을 제공.

참고 :이 프로토콜에서 사용하는 마우스는 호주 국립 대학교 동물 실험 윤리위원회의 지침과 마우스에 따라 처리 하였다는 자궁 전위에 의해 안락사했다. 1. 염료 및 펩타이드 준비 <ol><li> 염료 준비 참고 : 염료가 분리 된 형광 강도의 세포의 라벨링을 할 수 있도록 서로 다른 농도에서 prediluted됩니다. CFSE 3.5 배 연속 희석을 통해 만든 일곱 농도로 사용하고, CTV와 CPD는 (2-4 표 참조) 3.7 배 시리얼 희석을 통해 만든 여섯 가지 농도로 사용된다. 표 2-4에 나열된 염료 스톡 농도를 표 2-4에 나열된 최종 염료 농도에서 표적 세포에 라벨을 사용한다. 염료는 수성 용액에 노출시 반응. 그것은 병이 이전에 응축에 염료의 노출을 최소화하기 위해 열을 RT 평형을 할 수 있다는 것이 중요하다. <ol><li> CFSE 참고 : CFSE는 카르복시 디 아세테이트 숙신 이미 딜 에스테르 (CFDA, SE, MW 557.47)로 구매되는 일반적으로 25 ㎎ / 유리 병에. <ol><li> 10 mM의 주식 솔루션을 얻기 위해 4.48 ㎖의 DMSO에 CFSE의 25 밀리그램을 Resuspend. </li><li> 직렬 CFSE 희석 : DMSO의 87.5 μL에 10 mM의 CFSE 주식의 35 μl를 추가하고 표 3에 각각의 염료 농도가 묽은 원액이 작업을 반복합니다. </li></ol></li><li> CTV 참고 : CTV는 일반적으로 염료의 10 mM의 솔루션을 생성 할 수 DMSO 10 μL로 재구성 할 수있는 각각의 9 유리 병의 팩 구입. <ol><li> 재구성 및 10 mM의 솔루션을 제공하기 위해 DMSO 90 μL와 CTV의 9 튜브를 풀. </li><li> 직렬 CTV를 희석 : DMSO의 29.7 μL에 10 mM의 CTV 주식의 11 μl를 추가하고 표 2에 각각의 염료 농도가 묽은 원액이 작업을 반복합니다. </li></ol></li><li> CPD 참고 : CPD (MW 792.6)은 전형적인LY는 0.5 ㎎ / 유리 병으로 구입했습니다. <ol><li> 10 mM의 솔루션을 얻을 수 DMSO의 63 ML의 CPD의 재현 탁 0.5 밀리그램. </li><li> 직렬 CPD를 희석 : DMSO의 29.7 μL에 10 mM의 CPD 주식의 11 μl를 추가하고 표 4에 각각의 염료 농도가 묽은 원액이 작업을 반복합니다. 참고 : 염료의 주식은 몇 달 동안 -20 ° C에 저장할 수있는 기능에 상당한 손실없이 여러 번 해동하고 다시 냉동 할 수 있습니다. </li></ol></li></ol></li><li> 펩타이드 준비 주 : 1 μM (표 5)의 시작 농도에서 10 배 희석액을 사용하여 만든 MHC 클래스 I-바인딩 펩타이드는 일반적으로 6 개의 농도에서 표적 세포를 펄스하는 데 사용됩니다. 400 μM (표 5)의 시작 농도의 3 배 희석액을 사용하여 만든 MHC 클래스 II - 바인딩 펩타이드는 일반적으로 6 개의 농도에서 표적 세포를 펄스하는 데 사용됩니다. 각각의 펩티드가 PBS 등 그쪽에서 2X 최종 농도로 만든다T 모든 펩타이드 농도는 250 μL의 최소 볼륨이 있습니다. 펩타이드 주식 이전에 FTA의 건설 준비 및 기능에 상당한 손실없이 -20 ° C에 저장할 수 있습니다. <ol><li> 준비 재고 MHC 클래스-I 결합 펩티드 </li><li> 2 μm의 주식 솔루션 (배 1 μM)에 각각의 펩타이드 항원의 높은 농도를 준비 </li><li> 직렬 MHC 클래스 I-바인딩 펩타이드를 희석 : PBS 400 μL에 2 μM 펩티드 원액의 44.4 μl를 추가합니다. 표 5에 각 펩타이드의 농도가 묽은 원액이 작업을 반복합니다. </li><li> 준비 재고 MHC 클래스-II 결합 펩티드 </li><li> 800 μM 원액 (2 배 400 μM)에 각각의 펩타이드 항원의 높은 농도를 준비합니다. </li><li> 직렬 MHC 클래스 II - 바인딩 펩타이드를 희석 : PBS 300 μL에 800 μM 펩티드 용액 150 μl를 추가합니다. 표 5에 각 펩타이드의 농도가 묽은 원액으로이 과정을 반복합니다 </st룽&gt;. </li></ol></li></ol> 2. FTA 준비 참고 : 아래 절차는 252 뚜렷한 세포 클러스터를 생성하기 위해 6 회 반복 6 개의 농도 (. 즉, 42 셀 클러스터)에서 7 개의 다른 펩티드 에피토프와 펄스 세포로 구성된 FTA의 구조를 설명합니다. 각 반복 내에서 어떤 항원 (무기 호)과 펄스하지 셀 클러스터는 컨트롤로 포함되어 있습니다. 자유 무역 협정은 분석시 항체의 표지에받는 사람의 세포에서 그들의 차별을 허용하는 호스트 동물에서 CD45의 동종 이형의 차이를 가지고하는 것이 도움이됩니다. 그렇지 않으면 자유 무역 협정 (단계 2.6 참조)이 목적에 대한 PKH-26 같은 다른 염료로 표시 할 수 있습니다. 일반적으로 FTA 준비 절차가 앉는 동안 처음부터 끝까지 수행된다. <ol><li> 라벨 (42), 10 ㎖ 원뿔 (예를 들어 표 1에서와 같이) 플라스틱 튜브에게 1-42를 바닥. </li><li> 세포의 준비 <ol><li> 비장 및 / 또는 lymp을 분리마우스의 HNODE가 표시됨. 5 ML의 주사기의 플런저 자체를 논의한 70 μm의를 통해 매쉬업에 의해 조직에서 단일 세포 현탁액을 준비하고 혈구를 사용하여 셀을 계산합니다. </li><li> (RPMI, 또는 동급) 5 % 소 태아 혈청 (FCS)를 포함하는 로체스터 파크 기념 연구소 1640 11.5 ML에서 최대 200 X 10 6 세포 / ml에서 림프구를 Resuspend. 주 : 셀 3에 염료 독성을 최소화하기 위해 하이 아민 함량으로 버퍼를 사용하는 것이 중요하다. </li></ol></li><li> CTV 라벨링 참고 : 세포가 처음 CTV의 6 농도가 표시되어 있습니다. <ol><li> 철저 튜브를 여러 번 반전시킴으로써, 세포를 재현 탁. 튜브의 위쪽 절반을 적시 않도록주의하면서, 37 ~ 42를 표시 10 ML 튜브의 6 세포 현탁액의 1.9 ML을 추가합니다. </li><li> CTV와 세포 레이블을 지정하려면, 관 뚜껑을 제거하고 수평 튜브를 놓습니다. </li><li> 튜브의 상단에있는 비 젖은 부분에 PBS의 83 μl를 추가하고 여기에 주식 CTV의 17 μl를 추가 (탭보기 참조원액이있는 관)에 할당되는 르 2. 주 : 비 습윤 튜브 염료 용액으로 세포 현탁액 이동 및 세포 용액의 조기 혼합을 방지하기 위해 중요하다. </li><li> 튜브를 씌우고 텍싱하여 신속하고 철저하게 염료로 세포 현탁액을 섞는다. </li><li> 단계를 반복 2.3.2-2.3.4 표 2에 설명 된 지정 튜브 CTV의 주식 솔루션. </li><li> RT (20 ℃)​​에서 최소 5 분에 대한 세포를 품어. </li></ol></li><li> CFSE 라벨 <ol><li> CTV 라벨링 후, 각 튜브에 5 % FCS를 함유하는 RPMI 5 ㎖를 첨가하고 잘 볼 텍싱하여 세포를 재현 탁. <ol><li> 튜브 튜브에 37 전송 세포 현탁액 1 ㎖에서 31, 25, 19, 13, 7, 1. </li><li> 튜브를 튜브 (38) 전사하는 세포 현탁액 1 ㎖를 32, 26, 20, 14, 13, 및 2. </li><li> 튜브 고정상에 전사 39 세포 현탁액 1 ㎖에서 33, 27, 21, 15, 9, 및 3. </li><li> 셀의 튜브 (40) 전송 1 ㎖에서튜브 34, 28, 22, 16, 10, 및도 4를 현탁액. </li><li> 튜브를 튜브 (41) 전사하는 세포 현탁액 1 ㎖를 35, 29, 23, 17, 11, 및 5. </li><li> 관 (42)으로부터 이송 튜브 36, 30, 24, 18, 12 및 6의 세포 현탁액 1 ㎖ 참고 : 단계 2.4.1.1-2.4.1.6 동안 튜브의 위쪽 절반을 적시하지 않도록주의하십시오. </li></ol></li><li> CFSE와 세포 레이블을 지정하려면, 튜브의 캡을 제거하고 수평 튜브를 놓습니다. </li><li> 튜브의 상단에있는 비 젖은 부분에 PBS의 103 ML을 추가하고, 여기에 (원액하는 튜브에 할당 된 표 3 참조) 재고 CFSE 7 ML을 추가합니다. </li><li> 튜브를 씌우고 텍싱하여 신속하고 철저하게 염료로 세포 현탁액을 섞는다. </li><li> 표 3에 기재된 지정된 튜브 CFSE의 스톡 솔루션 단계 2.4.2-2.4.4하세요. </li><li> RT (20 ℃)​​에서 최소 5 분에 대한 세포를 품어. </li><li> 세포를 세척 : 20 ° C의 9 ml의 세포 현탁액을 희석RPMI 포함 5 % FCS, 20 ° C에서 10 분 300 XG에 원심 분리하여 침전물과 전송 피펫으로 흡입하여 상층 액을 제거합니다. </li></ol></li><li> 펩타이드 펄스 및 세포 세척 참고 : 세포 CTV와 CFSE로 표지 한 후, 그들이 MHC 클래스-I 및 / 또는 MHC 클래스 II (1.2에서 준비) 결합 펩타이드와 펄스된다. 세포 집단의 하나는 (표 1의 예. 무기 호) 펩티드로 펄스 및 T 세포 반응의 계산을위한 음성 대조구로 사용할 수 없다. <ol><li> 펩티드 펄스 <ol><li> 5 % FCS를 함유하는 RPMI 중에서 250 ㎕의 총 부피에 재현 탁 세포. 참고 : 일반적으로 세포 현탁액의 50 μL, 스텝 2.4.7의 끝 부분에 상층 액의 흡인 후 남아, 따라서 펠렛 셀에 배지 200 μl를 추가합니다. </li><li> 적절하게 (표 1에서와 같이) 관을 지정하는 (표 5)을 미리 준비 펩타이드 주식 250 μl를 추가 할 쉬르PBS의 제어 튜브를 포함하는 전자는 무기 호 제어로 펩타이드없이 혼자 덧붙였다. </li><li> 소용돌이와 세포 현탁액을 섞는다. 주 : 각 펩티드 에피토프 각 펩타이드의 농도는 하나의 튜브에 할당되는 것이 중요이이 클러스터의 형광 서명이 표에서와 같이 (이 펩티드를 정의하는 것이기 때문에,이 관의 세포의 예상 된 형광 기반으로 분명히 기록 예를 들어 1). </li><li> 1 시간 동안 37 ° C에서 세포를 품어. </li></ol></li><li> 셀 세척 <ol><li> 얼음 냉 5 ㎖를 (4 ° C) RPMI 튜브를 반전하여 세포 현탁액과에 resuspend 세포를 5 % FCS를 포함하는 추가합니다. 조심스럽게 얼음 감기 (4 ° C) FCS 3 ㎖와 세포 현탁액을 밑받침. </li><li> 4 ℃에서 10 분 동안 300 XG에서 원심 분리하여 세포를 침전 FCS의 인터페이스를 보장하기 위해 느린 가속 및 제동을 사용하여 세포 현탁액을 용액으로 유지된다. </li><li> 조심스럽게 다음 RPMI를 대기음방해받지 않고 세척 세포 펠렛을 떠나는 전송 피펫과 FCS. 참고 : 세포를 씻어 FCS 언더의 사용은 많은 펩티드 용액이 가능한 세포에서 제거되었는지 확인하는 데 도움이 세포가 풀링 할 때 이에 여러 무료 펩티드에 세포 인구의 노출을 제한. </li><li> 다시 세포를 씻어 : 5 % FCS를 포함하는 4 ° C RPMI 10 ㎖의 세포 펠렛을 Resuspend. 4 ℃에서 10 분 동안 300 XG에서 원심 분리하여 세포를 침전 상층 액을 붓는다. </li><li> 풀의 모든 세포 함께 5 % FCS를 포함하는 4 ° C RPMI 6 ㎖를 사용하여 피펫 하나의 튜브에 인구. 침전물은 4 ℃에서 10 분 동안 300 XG에서 원심 분리하여 세포를 풀링 전송 피펫으로 뜨는을 대기음. </li></ol></li></ol></li><li> CPD 셀 라벨 참고 :이 시점에서 여섯 내부 분석은 복제가 CPD의 6 가지 농도로 표시 펩타이드 펄스 세포에 의해 생성 될 수있다. <ol><li> 20 ° C의 11.4 ML을 추가RPMI 철저 피펫을 사용하여 풀링 된 세포 펠렛을 재현 탁하고 5 % FCS를 함유. </li><li> 튜브의 위쪽 절반을 적시 않도록주의하면서, 10 ㎖ 튜브 AF를 표시, 6 세포 현탁액의 1.9 ML을 추가합니다. </li><li> CPD와 세포 레이블을 지정하려면, 관 뚜껑을 제거하고 수평 튜브를 놓습니다. </li><li> 튜브의 상단에있는 비 젖은 부분에 PBS의 92 μl를 추가하고 여기에 (각 튜브에 할당 된 원액의 양은 표 4 참조) 재고 CPD를 추가합니다. </li><li> 튜브를 씌우고 텍싱하여 신속하고 철저하게 염료로 세포 현탁액을 섞는다. </li><li> . CFSE와 CTV 달리 CPD 라벨링 농도가 정확하게 직선 표지화 된 세포의 결과 형광 강도에 관련되지 않고, 표 4에 기재된 지정된 튜브 CPD의 스톡 솔루션 단계 2.6.3-2.6.5 주 마 그래서 여러 레이블 인구의 등거리 형광 피크를 얻기 위해 사용되는 라벨의 농도가있다(표 4 참조) 경험적으로 결정. </li><li> RT (20 ℃)​​에서 최소 5 분에 대한 세포를 품어. </li><li> 두 번 세포를 씻으을 Resuspend 세포를 10 ㎖에 20 ° C RPMI 5 % FCS를 함유하는. 20 ℃에서 10 분 동안 300 XG에서 원심 분리하여 세포를 침전 전송 피펫으로 뜨는을 대기음. 반복합니다. </li><li> 풀 함께 펫을 5 % FCS를 포함하는 8 ㎖를 4 ° C의 RPMI를 사용하여 하나의 튜브에 모든 셀. 침전물은 4 ° C에서 10 분 300 XG에서 원심 분리하여 세포를 모아서 전송 피펫으로 뜨는을 대기음. </li></ol></li><li> (선택 사항) PKH-26 셀 라벨 참고 : FTA에 쥐를 호스팅하는 CD45 allotypic 차이를 발현하는 세포를 생성 할 수없는 경우,받는 사람의 세포에서 그들의 차별을 허용하는 PKH-26으로 표시 할 수 있습니다. <ol><li> 풀링 된 세포 펠렛 2.9 20 ° C PBS의 ML을 추가하고 펫을 철저하게 재현 탁. </li><li> 노에 세포 현탁액을 추가n은 튜브의 위쪽 절반을 적시 않도록주의하면서, 10 ㎖ 튜브를 침수. </li><li> 튜브의 캡을 제거하고 수평 튜브를 놓습니다. </li><li> 튜브의 상단에있는 비 젖은 부분에 (PKH-26 염료 키트) 희석제 C의 58 μl를 추가하고, 여기에 1 ㎜ 주식 PKH-26의 42 μl를 추가합니다. </li><li> 튜브 캡을 철저하게 소용돌이로 교반하여 염료로 세포 솔루션을 섞는다. </li><li> RT (20 ° C)에서 10 분의 최소 세포를 품어. </li><li> 두 번 세포를 씻으을 Resuspend 세포를 10 ㎖에 20 ° C RPMI 5 % FCS를 함유하는. 20 ℃에서 10 분 동안 300 XG에서 원심 분리하여 세포를 침전 전송 피펫으로 뜨는을 대기음. 반복합니다. </li></ol></li><li> 호스트 동물로 자유 무역 협정을 주입 주 : 생체 내 T 세포 반응을 측정하기 위해 FTA 체결은 활성 면역 반응을 가지고 있고, 최대 24 시간 동안 동일 반응계에서 왼쪽 동물에 주입된다. 그것은 자유 무역 협정도 부정적인 컨트롤과 같은 순진한 동물에 주입하는 것이 중요합니다.<ol><li> 카운트와 PBS에 ML 당 2.5 × 10 8 세포에서 세포를 재현 탁. 컨트롤과 같은 순진한 동물을 포함, 정맥 호스트 생쥐에 세포를 200 μl를 주입한다. </li></ol></li></ol> 3. 유동 세포 계측법 <ol><li> FTA 주입 수확 혈액 또는 비장 (또는 관심의 다른 조직) 호스트 마우스의 후 18 ~ 24 시간. </li><li> 70 μm의를 통해 매쉬업에 의해 조직에서 단일 세포 현탁액을 준비는 5 ML의 주사기의 플런저 자체를 논의한. </li><li> 0.1 % BSA가 포함 된 PBS에서 최대 65 X 10 6 세포 / ML에 세포를 Resuspend. </li><li> 항체 라벨링 마이크로 타이 플레이트의 우물에 세포 현탁액 100 ㎕의 분취 량을 분배. </li><li> CFSE, CTV 및 CPD에 스펙트럼 호환 형광과 형광 색소 표지 항체와 형광 생존 프로브와 라벨 세포. 참고 사항 : B220과 같은 CD69 등의 활성화 마커로 세포 마커를 B에 대한 항체는 FT를 사용하는 경우 B 세포의 활성화를 측정하는 것이 필수적입니다T H 세포 반응을 측정하는 2. 자유 무역 협정과 호스트 마우스 CD45 allotypic 차이가있는 경우 CD45.1 및 / 또는 CD45.2에 대한 항체를 포함합니다. </li><li> 잘 혼합하고 30 분 동안 얼음 (4 ° C)에서 배양, 세포 100 μL 씩 분주로 (0.1 % BSA가 포함 된 PBS의) 항체 / 생존 염료의 2 배 원액 100 μl를 추가합니다. </li><li> 4 ° C에서 5 분 300 XG에서 원심 분리하여 침전물 세포와 뜨는을 제거 : 세포를 씻으십시오. 4 ° C에서 5 분 300 XG에서 원심 분리하여 200 0.1 % BSA가 포함 된 PBS의 μL, 침전 세포에서 세포를 재현 탁하고 뜨는을 제거합니다. </li><li> 70 ㎛의 메쉬를 통해 0.1 % BSA, 필터 세포를 포함하고 관련 형광 염료와 접합체를 검출 할 수있는 플로우 사이토에서 유세포 분석 PBS 400 μl의 총 부피에 재현 탁 세포. 각 FTA 세포 클러스터를 해결하기 위해 3 × 10 6 림프구 이벤트까지 수집 및 통계적위한 충분한 세포를 얻을 수칼 분석. 참고 : 흐름 (예 : 하나의 스테인드 컨트롤과 같은) 모든 일반적인 컨트롤을 확인 세포 계측법에 사용된다. 일반적으로, CFSE는 블루 레이저 소스 (일반적으로 488 nm의)와 520 nm의 위에 중심 대역 통과 필터를 탐지에서 자극을 필요로; CTV는 바이올렛 레이저 소스 (일반적으로 405 nm의) 450 nm의 위에 중심 대역 통과 필터를 사용하여 검색에서 여기가 필요; 와 CPD는 빨간색 레이저 소스 (일반적으로 633 nm의 640 nm의)와 670 nm의 위에 중심 대역 통과 필터를 탐지에서 여기가 필요합니다. </li></ol> 4. 데이터 분석 <ol><li> 표준 유동 세포 계측법 소프트웨어를 사용하여 데이터 유세포 분석 (고용 게이팅 전략의 유형의 예를 들어 대표적인 결과 참조). </li><li> % 특정 죽이는, MHC 클래스 I-결합 펩타이드 ( &quot;무기&quot;) 펄스 펩타이드되지 않은 FTA 클러스터와 펄스 각각의 FTA 세포 클러스터에있는 세포의 수를 계산하고 계산하려면 다음 공식을 사용하여% 특정 살해. % 특정 살해 <img alt="공식" fo:content-width="2in" src="/files/ftp_upload/51627/formula.jpg" width="200" /> 참고 : &quot;준비가 끝났다&quot;위의 공식은 &quot;순진&quot;는 &quot;펩타이드는&quot;펩타이드 &quot;무기&quot;로 펄스 대상을 의미한다, 순진한 동물에서 대상을 지칭 대상 펩타이드에 대한 면역 반응이 생각하는 동물에서 대상을 의미에서 어떤 펩타이드와 펄스하지 대상을 의미한다. </li><li> B 세포 활성화를 들어 T의 H 활성의 척도로서,의 GMFI 빼기 &quot;프라이머&quot;동물에서 MHC 클래스 II-결합 펩타이드 및 이로부터 펄스 FTA B 세포상의 CD69 항체 형광의 기하 평균 형광 강도 (GMFI)를 계산 T의 H 활동의 측정 값을 제공하기 위해 &quot;원시적&quot;동물에 대응 FTA B 세포상의 CD69 발현. </li><li> 단계 4.2 및 4.3, 사용에서 발생하는 통계에서이러한 곡선과 EC 50 아래 지역 (이러한 계산은 AUC에 대해 수행하는 방법에 대한 깊이있는 설명과 다른 양적 및 질적 매개 변수를 계산하는 등의 그래프 패드 프리즘과 같은 수학 스프레드 시트 소프트웨어에서 찾을 수 있습니다 http://graphpad.com/guides/prism/6/statistics/index.htm?stat_area_under_the_curve.htm 및 EC50 점 : http://www.graphpad.com/guides/prism/6/curve-fitting/index. HTM? reg_the_ec50.htm). </li></ol>

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</ol>

저자는 더 경쟁 재정적 이익이 없다는 것을 선언합니다.

FTA 기반 분석의 장점은 유동 세포 계측법에 의해 하나의 호스트 동물에서&gt; (250) 실행 가능하고 완전한 기능을 대상 세포 집단의 차별을 허용하는 것입니다. 이는 이전에 불가능했습니다 생체 유동 세포 계측법 기반 분석의 복잡성의 수준을 제공합니다. 이 6 농도에서 7 별개의 바이러스 항원에 대한 반응 등 AUC와 EC 50과 같은 매개 변수가 생체 내에서 T 세포 반응에 대해 결정 할 수 있도록 하나의 동물에서 동시에 6 복제물 모니터링 할 수있는 위의 2 동물 실험에서 강조 . 생체 내에서 T 세포 반응을 측정하는 이외에, FTA 기반 분석법은 시험관 내에서 하나의 응답을 측정하기 위해 수정 될 수있다. 이것은 본질적으로 체외에서 몇 시간에 걸쳐 반응을 측정하기 위해 문화에서 T 세포에 자유 무역 협정을 추가하는 작업이 포함됩니다. 자유 무역 협정...

T 세포는 적응성 면역 반응에서 중심적인 역할을하고 종종 면역 요법의 조작 대상이된다. CD4 + 이펙터 T 세포는 면역의 여러 측면을 조절하고 직접 항체를 생산하는 B 세포를 도울 수 사이토 카인을 분비하여 외부 항원에 반응한다. CD8 + 세포 독성 T 세포 (CTL을)도 사이토 카인을 분비뿐만 아니라 직접 외국 항원을 발현하는 세포를 죽이는의 중심 역할을하여 외부 항원에 응답 할 수 있습니다. 이러한 T 세포의 효과기 기능을 개시 기본적인 상호 작용은 세포의 표면에서 MHC 분자에 표시 외래 펩티드와 T 세포 수용체 (TCR)의 상호 작용을 수반한다. CD4 + T 세포는 일반적으로 미생물에 감염된 세포에 표시되는 MHC 클래스-I 분자에 표시된 펩티드를 인식하는 항원 제시 세포 및 CD8 + T 세포의 MHC 클래스 II 분자에 표시된 펩티드를 인식한다. 순서대로T 세포는 면역 반응에서 재생 역할을 평가하기 위해, 그들의 이펙터 기능은 신뢰성과 민감한 기술에 의해 측정하는 것이 필수적이다. T 세포 반응 평가를위한 일반적인 방법은 다음과 같습니다; MHC class-I/II/peptide 사량의 반응; ELISPOT 및 세포 내 사이토 카인 염색에 의한 사이토 카인 생성; 51 크롬 출시 분석하여 용량을 죽이는. 이러한 분석은, 그러나, 일반적으로 시험관 내 자극 생체를 수행하거나, T 세포 기능에 한정 통찰력을 제공한다. T 세포 반응을 측정 할 때 시험 관내 자극을 통해 발생할 수있는 기능적인 파라미터 변화를 피하기 위하여 그들이 T 세포에 대한 조작에 따라 발생하는 이상적으로는 생체 내에서, 원위치에서 그들을 평가하는 것이 유익 할 것이다. 가장 일반적으로 생체 내 T 세포 기능 분석에 사용 된 일부는 생체에 열거되어 MHC 클래스 I 결합 펩티드로 펄스 표적 세포의 CTL 매개 살해를 측정에 기초같은 CFSE 같은 중요한 염료와 형광 표지를 통해 자신의 감지를 통해. 이들은 생체 내에서 일어날 때 분석법 이러한 유형의 표적 CTL 매개 살해를 모니터링 할 수 있지만, 이들은 이전 정성 파라미터는 허용하도록 요구되는 다른 농도와 펩타이드 에피토프의 다른 유형을 제시하는 복수의 타겟의 살해를 평가하는 비교적 제한된 용량 있었다 같은 기능 갈망과 에피토프 변형 교차 반응을 평가한다. 이 분석은 또한 CD4 + T 세포 매개 반응에 대한 정보를 제공하지 않습니다. 우리가 최근에 의해 동물에서 일제히&gt; 250 표적 세포에 대한 T 세포 반응의 모니터링을 허용 형광 타겟 어레이 (의 FTA)에 기초하여 다중 분석법을 개발, T 세포 반응을 평가하기 위해 사용되는 현재의 방법에 많은 한계를 극복하기 위해 1, 2, 유동 세포 계측법. 자유 무역 협정은 SEV으로 표시 림프구로 구성되어 있습니다독특한 형광&gt; 250 셀 클러스터가 생성 될 수 있도록 CFS​​E, CTV 및 CPD 같은 중요한 염료 ERAL 농도 및 이들의 조합. 이러한 세포가 생존하고 완전한 기능을 유지하기 때문에, 이들은 생체 소재 효과기 T 세포와의 상호 작용의 모니터링을 허용하는 동물에 주입 될 수있다. 예를 들어, FTA 셀 클러스터는 표적 세포의 한 항원 특이 CTL 매개 살해의 평가를 허용하는 MHC 클래스-I 결합 펩티드로 펄스 화 될 수있다. 또한, FTA 세포 클러스터는 허용, MHC 클래스-II 결합 펩타이드와 펄스 수있는 항원 특정 T 헬퍼 세포와 같은 CD69, CD44 및 / 또는 활성 마커의 평가에 의해 (활성을 평가하여 (T H) 활동의 평가 동족 펩타이드 2 베어링 FTA 내에서 B 세포의 CD62L). 250 개 이상의 타겟을 동시에 검출 할 수 있기 때문에, N으로 펄싱 많은 타겟 셀 클러스터에 대해 CTL 및 T H 응답을 측정 할 수있다상이한 농도의 많은 반복 실험의 포함에 umerous 펩타이드. FTA 분석은 따라서 생체 내에서 T 세포 이펙터 반응 평가의 전례없는 수준을 제공합니다. 여기서는 상세히 FTA의 구성을 설명하고 그들이 생체 내 T 세포 반응을 평가에 적용 할 수있는 방법을 보여준다. 절차는 MHC 클래스-I 및 II-​​결합 펩티드와 펄싱 42 셀 클러스터 6 반복으로 구성된 세 개의 중요한 염료의 사용을 통해 (252) 뚜렷한 세포 클러스터로 구성 FTA의 구성을 설명한다. 라벨의 양을 줄임으로써 필요한 42 셀 클러스터의 라벨이 튜브 바닥 10 ㎖ 원추형 발생하고, 표 1에 나타낸 바와 같이 튜브 랙에 이러한 레이아웃에 도움이된다.이 방법은 식별 가능한 클러스터의 작은 숫자 조정될 수있다 각 염료 1을 수행 하였다. 우리는 응 답을 측정 할 수있는 방법을 표시하여 분석의 유용성을 강조생쥐의 작은 일대에 여러 항원에 대한 재조합 수두 바이러스 예방 접종에 의해 생성 된 에스. 이것은 FTA 분석은, 각각을 통해 곡선 (AUC) 평가 및 반 최대 응답 (EC 50)을 생성하는 데 필요한 효과적인 펩타이드 농도 측정 용 영역의 사용을 누적 반응과 기능적 결합력을 측정하기 위하여 이용 될 수 있는지 보여준다.

<table><tbody><tr><td>RPMI</td><td>Sigma</td><td>R8758</td><td></td></tr><tr><td>태아 송아지 혈청</td><td>Serana</td><td>FCS-500</td><td></td></tr><tr><td>CTV</td><td>Invitrogen</td><td>C34557</td><td></td></tr><tr><td>CFDA, SE</td><td>Invitrogen</td><td>C1157</td><td></td></tr><tr><td>CPD</td><td>eBioscience</td><td>65-0840-90</td><td></td></tr><tr><td>anti-B220 PerCp-Cy5.5</td><td>eBioscience</td><td>110730</td><td></td></tr><tr><td>anti-CD69 brilliant violet 605</td><td>Biolegend</td><td>104529</td><td></td></tr><tr><td>PKH-26</td><td>Sigma</td><td>PKH26GL-1KT</td><td></td></tr><tr><td>Vortex</td><td>Scientific Industries Inc</td><td></td><td></td></tr><tr><td>원심분리기</td><td>Eppendorf</td><td></td><td></td></tr><tr><td>유세포 분석기 (Fortessa 또는 파란색, 빨간색 및 보라색 레이저 소스와 동급)BD</td> <td>Bioscience</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

t 세포 반응의 평가를위한 형광 대상 배열의 사용<em&gt; 생체 내</em

The Use of Fluorescent Target Arrays for Assessment of T Cell Responses In vivo

생체 내에서 T 세포 반응을 모니터링 할 수있는 능력은 면역 반응에 대한 이해의 개발 및 면역 요법의 설계에 중요하다. 과 적색 레이저 흥분 염료 (셀 확산 염료 eFluor 670 : 여기 우리는 카르복시 숙신 에스테르 (CFSE), 바이올렛 레이저 흥분 염료 (CTV CellTrace 바이올렛)과 같은 중요한 염료를 활용 형광 대상 배열 (FTA) 기술의 사용을 설명 CPD )&gt; 250 뚜렷한 형광 세포 클러스터로 레이블 마우스 림프구 된 조합입니다. 이러한 자유 무역 협정 내에서 세포 클러스터는 주요 조직 적합성 (MHC) 클래스-I과 MHC 클래스 II 바인딩 펩타이드와 펄스함으로써 각각 CD8 +와 CD4 + T 세포에 대한 표적 세포의 역할을 할 수있다. 이러한 FTA 세포는 실행 가능하고 완전한 기능을 유지하며, 따라서 FTA 대상 세포와 CD4 + T 세포 묵상 헬의 CD8 + T 세포 - 매개 살인의 평가를 할 수 있도록 마우스로 관리 할 수 있습니다유동 세포 계측법에 의해 생체 내에서 실시간으로 FTA B 세포 표적 세포의 P. &gt; 250 표적 세포가 동시에 평가 될 수 있기 때문에, 기술은 여러 가지 농도의 복수 복제물 여러 항원 에피토프 대한 T 세포 반응의 모니터링을 허용한다. 이와 같이, 기술은 정량적 (반응의 예 누적 크기) 및 정 성적 (예. 기능적 결합력 및 응답의 에피토프 - 교차 반응성) 수준 모두에서 T 세포 반응을 측정 할 수있다. 여기서, 우리는 이들의 FTA가 생성 그들은 재조합 수두 바이러스 백신에 의해 유도 된 T 세포 반응을 평가하기 위해 적용 할 수있는 방법의 예를 제공하는 방법을 설명한다.

FTA 분석의 사용 예를 들어, BALB / C 마우스는 HIV-I CTL의 항원 결정기에 HIV-I 항원 결정기 (VV-HIV)과 응답을 표현하는 재조합 우두 바이러스 (VV)와 예방 접종을하고, 발언 금지, 발언 금지 MUT, 봉투와 폴, VV CTL 에피토프 F2L과 F2L의 MUT 및 HIV-I T H 세포 에피토프, 개그 목은 (2에 설명 된대로) 252 매개 변수 FTA 분석 (그림 1B)를 사용하여 평가 하였다. 개그 (개그 MUT) 및 F2L (F2L의 MUT)의 에피토프 변종은 VV-HIV 벡터로 표현하기 때문에 이러한 항원에 대한 반응은 항원의 변형 교차 반응성 T 세포 반응의 반사되어 있지 않습니다. 순진 마​​우스는 음의 컨트롤과 FTA 주사했다. FTA는 유동 세포 계측법 (그림 1A 및 1B)를 통해 B220 항체 염색으로 차별 PKH-26 라벨 및 FTA B 세포에 의해 ...

생체 내에서 상세히 T 세포 반응을 모니터링 할 수있는 능력은 면역 반응에 대한 이해의 발전을 위해 중요하다. 여기에서 우리는 유동 세포 계측법에 의해 동시에&gt; 250 매개 변수를 평가하는 생체 내 T 세포의 분석에서 형광 타겟 어레이 (FTA 체결)의 사용을 설명한다.

T 세포 반응의 평가를위한 형광 대상 배열의 사용<em&gt; 생체 내</em

The ability to monitor T cell responses in vivo is important for the development of our understanding of the immune response and the design of ...

이 실험 절차의 전반적인 목표는 다매개변수 유세포 분석법을 이용한 면역 분석을 위해 최대 252개의 서로 다르게 표지된 형광 표적 세포 어레이를 생성하는 것입니다. 이는 먼저 CFSE 및 CTV와 같은 생존 염료를 고유한 조합과 강도로 표적 림프구에 표지함으로써 수행됩니다. 다음 단계로, 각각의 구별된 표적 림프구 집단에 후보 MHC 클래스 I 및 MHC 클래스 II 결합 펩타이드 에피토프를 펄스 처리합니다.그 다음으로 에피토프의 특이성을 유지하기 위해 세포를 충분히 세척한 후, 세포들을 모아 동물에 주입합니다. 마지막 단계는 특정 조직에서 형광 표지 어레이 세포를 회수하고, 이를 라벨링하여 MHC 펩타이드 특이적 반응을 평가하는 것입니다. 최종적으로, 유세포 분석 결과를 통해 표적 세포의 사멸을 측정함으로써 CTL 반응을 확인할 수 있으며, B 세포 표적의 활성화 마커 상향 조절을 측정함으로써 CD4 양성 T 헬퍼 반응을 확인할 수 있습니다. 기존의 in vivo CTL 분석법과 비교하여 이 기술의 주요 장점은 한 마리의 동물에서 250개 이상의 표적 세포를 동시에 측정할 수 있다는 점이며, 본 절차는 제 연구실의 연구원인 Ben Quire가 시연할 것입니다.이 절차에는 마우스의 분리된 비장 및/또는 림프절에서 수집되어 여과된 후, 5% fetal calf serum이 포함된 RPMI 11.5 mL에 mL당 최대 2,000만 개의 세포로 재현탁된 림프구가 필요합니다. FDA 준비는 라벨링부터 시작됩니다. 1번부터 42번까지 총 42개의 10 mL 원추형 바닥 플라스틱 튜브에 담긴 모든 세포는 6가지 서로 다른 농도의 7가지 서로 다른 펩타이드 에피토프로 자극하며, 이를 6회 반복하여 총 252개의 구별 가능한 세포 클러스터를 생성합니다.이제 튜브를 여러 번 뒤집어 림프구를 완전히 재현탁합니다. 그다음, 튜브 상단 절반이 젖지 않도록 주의하면서 37번부터 42번까지 표시된 10 mL 튜브에 세포 현탁액 1.9 mL를 각각 넣습니다.이제 튜브 38의 캡을 열고 튜브 38의 상단에 수평으로 눕힙니다. PBS 83 µL를 추가합니다. 그런 다음 텍스트 프로토콜의 표 2에 제시된 적절한 CTV 스톡 17 µL를 추가합니다.튜브에 분주가 완료되면 볼텍싱합니다. 튜브 39번부터 42번까지 이 과정을 반복하며, 표 2에 기재된 대로 각 튜브에 서로 다른 CTV 스톡이 들어가도록 합니다.이제 세포를 상온에서 최소 5분 동안 배양합니다. 그런 다음 각 튜브에 5% FCS가 함유된 RPMI 5 mL를 첨가합니다. 각 튜브를 볼텍싱하여 세포를 완전히 재부유시킵니다. 텍스트 프로토콜에 설명된 권장 로딩 패턴에 따라 부유액 1 mL를 다른 6개의 튜브로 옮깁니다. 매 전이 과정마다 로딩된 튜브의 윗부분이 젖지 않도록 주의하는 것이 중요합니다. 세포를 CFSE로 표지하기 위해, 세포 1 mL가 들어 있는 31번부터 36번 튜브의 캡을 제거하고 튜브들을 각 튜브 옆에 수평으로 놓습니다.먼저 PBS 103 µL를 첨가하여 건조한 상단 벽면에 분사합니다. 그다음 텍스트 프로토콜의 표 3에 따라 적절한 CFSE 스톡 7 µL를 첨가하고 즉시 튜브를 볼텍싱합니다. 표 3에 그룹화된 다른 튜브들에 대해서도 이 과정을 반복합니다.각 튜브에 서로 다른 CFSE 스톡이 들어가도록 합니다. 모든 튜브를 상온에서 최소 5분 동안 배양합니다. 5분 후, 세포를 세척하여 라벨링을 완료합니다.각 현탁액을 실온의 5% FCS가 포함된 RPMI 9 mL로 희석합니다. 실온에서 300 g로 10분 동안 원심분리하여 세포를 펠렛화하고, 트랜스퍼 피펫을 사용하여 상층액을 흡입 제거합니다. MHC Class one 및 MHC class two 결합 펩타이드의 준비 과정은 텍스트 프로토콜에 제시되어 있습니다. 본 섹션에서는 이러한 펩타이드를 사용하여 세포를 펄스 라벨링하는 방법을 설명합니다.먼저, 튜브를 그릴에 대고 굴리는 등의 방법으로 잔류 배지 내에서 세포 펠릿을 재현탁합니다. 그 다음, 5% FCS가 포함된 PMI를 사용하여 세포 현탁액의 총 부피를 250 microliters로 맞춥니다. 각 세포 펠릿에는 약 200 microliters의 배지가 필요합니다.다음으로, 표 5에 나열된 미리 준비한 펩타이드 스톡 250 µL를 지정된 튜브에 첨가합니다. 표 1에 제시된 패턴을 따르며, T 세포 반응 계산을 위해 PBS만 포함된 대조군 튜브를 반드시 포함하십시오. 각 펩타이드 에피토프와 각 펩타이드 농도가 단일 튜브에 할당되어야 하며, 해당 튜브 내 세포의 예상 형광 값을 기준으로 이를 명확하게 기록하는 것이 중요합니다.이 클러스터의 형광 시그니처가 이 펩타이드를 정의하게 되므로, 각 세포 현탁액을 볼텍싱하여 혼합한 후 37 °C에서 1시간 동안 세포를 배양하십시오. 배양이 끝나면 세포를 세척하기 위해 세척 과정을 진행합니다. 먼저, 각 세포 현탁액에 5% FCS가 포함된 얼음처럼 차가운 RPMI 5 mL를 첨가하고 튜브를 반전시켜 세포를 재현탁하십시오.그 다음, 각 세포 현탁액 아래에 4°C에서 300 G로 10분간 원심분리하여 얻은 차가운 FCS 침전물 3 mL를 조심스럽게 층으로 깔아줍니다. 각 튜브에서 용액의 계면이 유지될 수 있도록 가속 및 감속 속도를 낮게 설정하십시오. 세척된 세포 펠릿이 흐트러지지 않도록 주의하며 RPMI를 흡입하여 제거한 후, FCS를 흡입하여 제거합니다.펠렛을 분리한 후, 두 번 세척한 세포 펠렛 현탁액의 세포를 다시 세척합니다. 5% FCS가 포함된 얼음처럼 차가운 RPMI 10 mL에 세포를 현탁하고 원심분리를 반복한 후 상층액을 따라냅니다. 그런 다음, 5% FCS가 포함된 얼음처럼 차가운 RPMI 6 mL가 들어있는 새로운 10 mL 튜브에 모든 세포 집단을 함께 모읍니다. 원심분리로 모은 세포를 침전시키고 전이 피펫으로 상층액을 흡입하여 제거하며, 이 단계로 전체 과정을 마무리합니다.CPD의 여섯 가지 서로 다른 농도로 펩타이드 펄스 세포를 라벨링하여 6개의 분석 내 반복 시료를 생성할 수 있습니다. 먼저, 5% FCS가 포함된 상온의 RPMI 11.4 milliliters를 모아둔 세포 펠릿에 첨가하고 피펫팅을 통해 충분히 재현탁합니다. 둘째, 튜브의 상단 절반이 젖지 않도록 주의하며, 1.9 milliliters의 세포 현탁액을 A부터 F까지 표시된 6개의 새로운 10 milliliter 튜브에 각각 첨가합니다.CPD 캡이 없는 튜브 B로 세포 라벨링을 시작하려면, 먼저 튜브를 건조한 벽면에 따라 수평으로 눕힙니다. 먼저 92 µL의 PBS를 넣은 다음, 표 4에 따라 해당 부피의 CPD 스톡을 추가합니다. 그런 다음 혼합물을 볼텍싱합니다. 튜브 C부터 F까지 이 단계를 반복하며, 표 4와 같이 각 튜브에 서로 다른 CPD 스톡이 들어가도록 합니다.모든 튜브를 혼합한 후, 실온에서 5분 동안 배양합니다. 그다음 세포를 두 번 세척하는데, 먼저 실온의 배지 10 mL에 세포를 재부유시킵니다. 둘째로 원심분리하여 가라앉히고, 셋째로 전이 피펫을 사용하여 상층액을 흡입하여 제거합니다.그런 다음 이 과정을 반복합니다. 이제 튜브 A부터 F까지의 모든 세포를 8 mL의 ice-cold 배지가 담긴 단일 튜브에 함께 모읍니다.세포를 원심 분리하여 수집한 후, 동물에 세포를 주입하고 이후 유세포 분석을 진행합니다. 자세한 내용은 텍스트 프로토콜에 기술되어 있습니다. BC 마우스에 HIV V one 에피토프를 발현하는 재조합 백시니아 바이러스를 면역화하였으며, 252개 파라미터 FTA 분석을 사용하여 다양한 에피토프에 대한 반응을 평가하였습니다.두 가지 에피토프 변이체인 gag mute와 FTL mute는 벡터에서 발현되지 않았으며, 나이브 마우스에도 FTA를 주입하였습니다. TA는 PKH 26 표지를 통해 숙주 마우스 세포와 구별하였고, FTAB 세포는 유세포 분석을 통한 B220 항체 염색으로 구별하였습니다. 6개의 동물 내 반복 실험 각각은 CPD 형광을 기준으로 게이팅하였으며, 다양한 농도의 에피토프를 발현하는 FTA 표적은 CFSE 및 CTV 형광을 기준으로 게이팅하였습니다.각 반복 실험의 특이적 살상 분율은 프라이밍된 동물의 FTA 클러스터 세포 사멸을 나이브 동물의 해당 FTA 클러스터와 비교하여 평가하였습니다. 헬퍼 T 세포 활성은 프라이밍된 동물의 FTA B 세포 내 CD 69 상향 조절을 나이브 동물의 해당 FTA B 세포 클러스터와 비교하여 평가하였습니다. 이 분석 결과, V-V-H-I-V 감염은 면역 우세 VV 에피토프 F two L에 대해 가장 강력한 CTL 반응을 유도하였으며, 0.001 micromolar 이상의 에피토프가 펄스된 FDA 표적 세포의 100%가 비장에서 제거되었습니다.CTL 반응 외에도, FTA 분석은 H-I-V-M-H-C 클래스 2 결합 에피토프 HIV gag th를 발현하는 FTAB 세포의 활성화를 평가함으로써 헬퍼 T 반응을 측정했습니다. 이는 프라이밍된 동물에서 항원 특이적 B 세포 활성화가 일어났음을 보여주며, HIV gag T 특이적 헬퍼 T 세포 이펙터가 생성되었음을 시사합니다. 이 영상을 시청하고 나면 250개 이상의 표적 세포로 구성된 형광 표적 어레이를 생성하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Immunology and Infection

면역학 및 감염학

따라서, 그것이 관여 단백질의 공간적 및 시간적 행위를 파악하는 것이 중요 신호 전달 이해하기 위해, 플라즈마 막 내에서 또는 세포 내 위치에 두 단백질의 compartmentalization 크게 신호 결과에 영향을 미칠 수있는 규제 메커니즘입니다. 우리는 여기서 T 세포의 신호 전달을 연구하는 TIRF 현미경 기반 시스템을 설명하지만, 광범위하게 적용됩니다.

실시간, TCR의 동시 이미징 및 관련 신호 전달 단백질에 대한 TIRF 현미경 기법

이 동영상은 형광 기반 분석을 통한 면역 조절 화합물의 스크리닝을 보여줍니다. 녹색 형광 단백질 발현 카세트를 가진 형질전환 마우스 유래 T 림프구는 이러한 화합물로 처리됩니다. 향상된 GFP 신호와 감소된 GFP 신호를 통해 화합물의 자극 및 억제 효과를 각각 식별할 수 있습니다.

면역조절 화합물 스크리닝을 위해 엔지니어링된 림프구를 사용한 형광 기반 분석

우리는 종양 대상 세포와 incubated 때 T 세포의 세포 독성을 측정 할 수있는 단일 셀 높은 처리량 분석을 설명합니다. 이 방법은 spatially 정의 비율에서 T 세포와 대상 세포를 한정하는 하위 nanoliter 우물 (~ 100,000 우물 / 배열)의 조밀 한, 탄성 배열을 사용하고 이펙터 - 대상 활용 및 후속 apoptosis를 모니터링하는 형광 현미경에 연결된다.

T 세포 양적 높은 처리량 단일 세포 세포 독성 분석

쥐 백신 접종 모델에서 나노 입자를 사용한 면역에 대한 반응으로 항원 특이적 CD8+ T 세포의 확장을 모니터링하기 위한 전체 동물 이미징 및 유세포 분석 기반 기술에 대해 설명합니다.

나노 입자 백신 접종 후 분석 항원 특이 CD8 + T 세포 반응에 대한 전체 동물 이미징 및 유세포 기술

이 원고는 기능화된 평면 지지 지질 이중층과 접촉하는 T 세포의 면역학적 시냅스 내에서 발생하는 T 세포 항원 수용체(TCR)와 항원 펩타이드 적재 MHC 분자 사이의 결합 역학을 측정하기 위해 (단일 분자) Förster Resonance Energy Transfer(FRET) 기반 분석을 수행하는 방법을 설명합니다.

TCR-pMHC 바인딩 측정<em&gt; 현장에서</em&gt; FRET 기반의 현미경 분석을 사용하여

염증 부위에서 이펙터 CD4 T 세포의 삽입 운동을 제어하는​​ 메카니즘은 상대적으로 알려져 있지 않다. 우리는 시각화 현장에서 이러한 세포의 동적 거동의 연구를 허용 염증 귀 진피의 시험 관내 -primed CD4 T 세포에서 조작하는 비 침습적 방법을 제시한다.

염증이 진피의 이미징 CD4 T 세포 간질 마이그레이션

우리는 현재의 연구에서 형질 전환 마우스에서 파생 된 림프구를 사용하여 새로운 형광 기반의 분석을 제시한다. 이 분석은 억제 또는 림프구의 활성을 촉진하거나 용량을 부여 소분자의 고 처리량 스크리닝 (HTS)에 적합하다.

작은 분자의 높은 처리량 스크리닝 적합한 형광 계 분석 림프구

이 프로토콜에서는 이미지 거주 종양 침투 CD8 T 세포 인간 폐 종양 조각 내 붙일 결합 된 항 체와 함께 표시 하는 방법을 설명 합니다. 이 기술은 confocal 현미경 검사 법을 사용 하 여 CD8 T 세포 이동의 실시간 분석을 허용 한다.

전 비보 인간의 폐 종양에 거주 CD8 T 림프 톨의 이미징 조각 사용 하 여 Confocal 현미경 검사 법

이 프로토콜 photoactivatable 펩 티 드-MHC T 세포 활성화의 정확한 spatiotemporal 제어 활성화를 사용 하 여 T 세포를 활성화 하는 영상 기반 방법을 설명 합니다.

Photoactivatable 길 항 제를 사용 하 여 T 세포 활성화의 공간 및 시간 제어

이 프로토콜은 임상적으로 이용가능한 플랫폼으로 생체내에서 키메라 항원 수용체를 발현하도록 유전적으로 조작된 T 세포를 비침습적으로 추적하는 방법론을 기술한다.

키메라 항원 수용체 T 세포의 동적 이미징 [18F]테트라플루오로보레이트 양전자 방출 단층 촬영/컴퓨터 단층 촬영

학습하세요 형광 대상 배열을 이용한 생체 내 T 세포 반응 평가 방법을. 멀티파라미터 유세포 분석으로 250개 이상의 면역 매개변수를 동시에 측정하여 CTL 및 T 헬퍼 반응을 종합적으로 분석할 수 있습니다.

T 세포 반응의 평가를위한 형광 대상 배열의 사용

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