June 13th, 2014
정적 점착 분석은 T 림프구 및 다른 세포 유형 간의 상호 작용을 모델링하는 데 사용될 수있는 강력한 도구이다. 상호 작용 플레이트 판독기가 직렬 세척 다음 부착 세포의 수를 정량화하는 데 사용되는 반면, 부착 분자로 코팅 된 웰에 표지 된 T 세포를 주입함으로써 생성된다.
이 절차의 전반적인 목표는 세포 부착을 정량화하는 것입니다. 이는 먼저 두 번째 단계에서 96웰 마이크로플레이트에 접착 분자를 코팅하여 수행됩니다. 일차 인간 T 세포는 혈액에서 분리되어 CFSE로 표지됩니다.
다음으로, T 세포는 접착력에 영향을 미치는 치료법으로 자극됩니다. 마지막 단계에서는 처리된 세포를 마이크로플레이트에 첨가하고 접착이 발생할 수 있도록 합니다. 궁극적으로, 웰당 형광의 양을 측정하여 처리 조건별 부착 세포의 비율을 결정할 수 있습니다.
모델 및 anterium에 T-cell 추가와 같은 기존 방법에 비해 이 기술의 주요 장점은 T-cell과 erl cell의 공동 배양이 필요하지 않다는 것입니다. 이 방법은 특정 약물이 림프구 접착에 어떤 영향을 미치는지와 같은 면역학 분야의 주요 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 방법은 라인 발 생물학에 대한 통찰력을 제공할 수 있지만 호중구와 같은 다른 마이에 세포에도 적용할 수 있습니다.
이 방법의 시각적 시연은 단계를 마스터하기 어렵고 정밀도와 기술이 필요하기 때문에 매우 중요합니다.접착 분자로 마이크로플레이트를 코딩하려면 96웰 플레이트의 24웰을 50마이크로리터의 세척 용액으로 세척한 다음 코팅되지 않은 제어 웰을 제외한 각 웰을 50마이크로리터의 코팅 용액으로 섭씨 37도에서 1시간 동안 배양합니다. 다음으로, 피펫 팁이 웰 바닥에 닿지 않도록 코팅 용액을 부드럽게 흡입합니다. 그런 다음 50마이크로리터의 세척 용액으로 웰을 세척한 후 웰당 50마이크로리터의 접착 용액으로 마이크로플레이트를 배양합니다.
다시 말하지만, 섭씨 37도입니다. 1시간 후, 접착액을 부드럽게 흡인하고 50마이크로리터의 세척액으로 웰을 한 번 더 세척합니다.T세포를 분리하기 위해 먼저 전혈 1밀리리터당 50마이크로리터의 인간 T세포 농축 칵테일을 철저히 혼합한 다음 처리된 혈액을 실온에서 20분 동안 배양합니다. 다음으로, 실온에서 50ml 원추형 튜브에 처리된 혈액 6ml와 1%D 포도당이 풍부한 칼슘 및 마그네슘 프리 PBS를 동일한 부피로 넣고 용액을 부드럽게 혼합합니다.
그런 다음 50mL의 새로운 원뿔형 튜브에 15ml의 림프 준비제를 추가하고 희석된 혈액 샘플을 림프구 분리 배지에 조심스럽게 층을 이룹니다. 세포층을 G 400배, 섭씨 20도에서 20분 동안 분리합니다. 그런 다음 새 페이스트 피펫을 사용하여 상부 층을 제거하고 림프구 층을 계면에서 방해받지 않도록 합니다.
새로운 페스터 피펫을 사용하여 림프구 층을 새로운 원뿔형 튜브로 옮깁니다. 림프구에 9ml의 PBS를 첨가한 다음 세포를 부드럽게 끌어당겨 현탁액 전체에 고르게 분포시킵니다. 세포를 스핀다운한 다음 펠릿을 배지에 다시 현탁시킵니다.
그런 다음 세포를 T 75 배양 플라스크에 분배합니다.20ml의 배양 배지를 사용하여 적절한 배양 기간 후에 세포를 자극합니다. 먼저, 6개의 T 세포에 2.4 곱하기 10에 무혈청 배지를 첨가한 다음 혈청은 섭씨 37도의 인큐베이터에서 세포를 굶깁니다.
2시간 후, 세포를 스핀다운하고 펠릿을 다시 현탁시킵니다. PBS 1밀리리터에 실온에서 8분 동안 어둠 속에서 형광 마커로 세포를 라벨링한 다음 섭씨 37도 PBS 10밀리리터를 첨가하여 반응을 중지합니다. 그런 다음 세포를 회전시킨 후 펠릿을 1.2ml의 예열 접착 용액에 재현탁시킵니다.
코팅된 마이크로플레이트를 섭씨 37도로 가열한 다음 셀을 1.5도의 150마이크로리터 분취액 8개로 분할합니다. 밀리리터 튜브는 PMA가 있는 튜브 하나를 밀리리터당 10나노그램으로 자극하여 양성 대조군 역할을 합니다. 자극에 대한 제어, 세척되지 않은 로딩 제어 및 ICAM 1 코팅에 대한 제어를 서비스하기 위해 3 개의 튜브를 처리하지 않고 그대로 두고 항 CD 3 항체의 농도가 다른 4 개의 튜브를 자극합니다.
그런 다음 자극된 세포 혼합물의 웰당 5번째 세포에 1 곱하기 10의 50마이크로리터를 즉시 마이크로플레이트의 적절한 웰에 분취하고 플레이트를 섭씨 37도에서 15분 동안 배양합니다. 부착 세포의 비율을 먼저 측정하려면 150마이크로리터의 따뜻한 접착 용액으로 각 웰을 세척합니다. 플레이트를 몇 초 동안 부드럽게 흔든 다음 피펫 팁으로 웰 바닥을 건드리지 않고 각 웰의 매체를 조심스럽게 흡입합니다.
세척을 세 번 반복하여 각 흡입에 따라 피펫의 각도를 변경합니다. 그런 다음 플레이트 리더를 켜고 작업 메뉴에서 플레이트 판독 소프트웨어를 엽니다. 새로 만들기를 클릭하여 새 프로토콜을 설정합니다.
그런 다음 작업 메뉴에서 읽기 옵션을 선택합니다. fluorescent intensity(형광 강도)를 클릭하고 okay(확인)를 클릭합니다. 여기 파장을 485로, 방출 파장을 528로 입력합니다.
그런 다음 광학 옵션 메뉴에서 하단을 선택하고 확인을 클릭합니다. 그런 다음 작업 메뉴로 돌아가서 온도를 섭씨 37도로 설정하고 확인을 클릭합니다. 마지막으로 마이크로플레이트를 로드하고 실행을 클릭합니다.
결과를 스프레드시트로 내보낸 후 수식을 사용하여 이러한 이미지에서 접착 셀의 백분율을 계산합니다. 다양한 농도의 anti-CD three 항체로 자극된 일차 T 세포를 사용한 접착 분석의 예가 나와 있습니다. 자극되지 않은 세포는 음성 대조군 역할을 합니다.
PMA 처리 된 세포는 양성 대조군 역할을합니다 : 항 CD 3 항체의 경우, 표는 CFSE의 상대 형광 강도를 표시합니다. 서로 다른 용량의 용해성 항 CD 항체로 자극되고 IAM 1 코팅 웰에 도금된 표지된 일차 T 세포. 모든 조건에 대해 3중 우물의 평균 강도를 계산하고 로드된 총 셀의 상대적 백분율로 변환할 수 있습니다.
일반적인 실험에서 부착 PMA 처리 세포의 비율은 40-50 %이고 자극되지 않은 세포의 비율은 5-10 %입니다.자극에 사용되는 항 CD 3 항체의 농도가 증가함에 따라 부착 세포의 비율이 증가합니다. 일단 마스터하면 이 기술을 제대로 수행하면 3시간 이내에 수행할 수 있습니다. 이 절차를 시도하는 동안 형광 입력을 결정하기 위해 세척되지 않은 우물의 형광을 측정하는 것을 기억하는 것이 중요합니다.
데이터 분석에서 중요한 가치입니다. 이 비디오를 시청한 후에는 정적 세포 접착을 정량화하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다. 인간의 혈액 샘플로 작업하는 것은 매우 위험할 수 있으며 이 절차를 수행하는 동안 항상 실험복과 장갑을 착용하는 것과 같은 예방 조치를 취해야 한다는 것을 잊지 마십시오.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
정적 접착 분석은 T 림프구와 다른 세포 유형 간의 상호작용을 연구하는 데 사용되는 방법입니다. 이는 마이크로플레이트를 접착 분자로 코팅하고 형광 측정을 사용하여 접착된 T 세포를 정량화하는 것을 포함합니다.
Quantifying integrin-mediated adhesion in T lymphocytes provides a mechanistic readout for evaluating immunomodulatory compounds that influence immune cell trafficking and synapse formation. This static adhesion assay enables target validation by linking intracellular signaling events to functional adhesive outputs, supporting de-risking of immunomodulator candidates in early discovery. The assay’s adaptability to other integrin-ligand pairs (e.g., VLA-4/fibronectin) extends its utility across inflammatory and autoimmune disease areas.
The assay fits within the discovery continuum from target validation to lead identification, where quantitative adhesion measurements help prioritize immunomodulators based on functional impact on T cell behavior.