Name: 조직 해리 차동 여과 이식 미토콘드리아의 신속한 분리 및 정제 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-09-06T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 35 s
Description: 배우세요 쥐 조직에서 호흡 기능을 유지하는 순수한 미토콘드리아를 30분 이내에 신속하게 분리하는 방법을. 이 기술은 세포 대사 연구와 ATP 분석에 활용됩니다.

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이 연구는 국립 심장, 폐, 혈액 연구소 그랜트 HL- 103542, 그리고 CAP에 BCH 마취 연구 재단의 고유 선구자 상에 의해 지원되었다.

준비 <ol><li> 한 M K-HEPES 원액을 (KOH와 7.2 산도를 조정) 준비합니다. </li><li> 0.5 M K-EGTA 주식 솔루션 (KOH 8.0의 산도를 조정) 준비합니다. </li><li> 한 M KH 2 PO 4 원액을 준비합니다. </li><li> 한 M MgCl2를 원액을 준비합니다. </li><li> 균질화 완충액 (pH 7.2) 300 MM의 크로스, 10 mM의 K-HEPES 및 1 ㎜ K-EGTA를 준비합니다. 4 ℃에서 보관하십시오. </li><li> 호흡 버퍼 250 MM의 자당을 준비, 2 mM의 KH 2 PO 4, 10 mM의 MgCl2를, 20 mM의 K-HEPES 완충액 (pH 7.2) 및 0.5 mM의 K-EGTA (산도 8.0). 4 ℃에서 보관하십시오. </li><li> 의 NaCl 80g,의 KCl 2g, 나 2 HPO 4의 14.4 g, 1 L 더블 증류수 H 2 O (산도 7.4)에 KH 2 PO 4 2.4 g을 용해시켜 10 배 PBS 원액을 준비합니다. </li><li> 1 L 더블 증류수 H 2 O로 100 ML의 10 배 PBS 피펫 팅에 의해 1X PBS를 준비 </li><li> 서브 틸리의 4 밀리그램을 무게에 의해 서브 틸리 스톡 준비1.5 ML의 microfuge 튜브. 사용할 때까지 -20 ° C에서 보관하십시오. </li><li> 1.5 ml의 미세 원심 분리 튜브에 BSA의 20 밀리그램을 계량하여 BSA 콘텐츠를 준비합니다. 사용할 때까지 -20 ° C에서 보관하십시오. </li></ol> 미토콘드리아 절연 (그림 1) <ol><li> 분리 직전에, 균질화 완충액 1 ㎖에 용해 서브 틸리. </li><li> 분리 직전에, 균질화 완충액 1 ml의 BSA를 녹인다. </li><li> 얼음에 50 ML 원뿔 원심 분리 관에 1X PBS에서 6mm 생검 샘플 펀치와 저장소를 사용하여 두 개의 신선한 조직 샘플을 수집합니다. </li><li> 버퍼 균질화 빙냉 5 ㎖를 함유 해리 C 관 조직이 6mm 펀치를 전송합니다. </li><li> 티슈 dissociator에 해리 C 튜브 피팅에 의해 조직을 균질화하고 미리 설정된 미토콘드리아 분리 사이클 (60 초간 균질화)을 선택한다. </li><li> 얼음 양동이에 해리 C 튜브를 제거합니다. </li><li> 에 서브 틸리 원액의 250 μl를 추가파쇄는 반전하여 혼합하고 10 분간 얼음에 균질 배양. </li><li> 균질화 버퍼 얼음과 사전에 젖은 필터에 50 ML 원뿔 원심 분리 관에 40 μm의 메쉬 필터를 넣고 얼음에 50 ML 원뿔 원심 분리 관에 균질를 필터링 할 수 있습니다. </li><li> 여액에 새로 제조 된 BSA 원액의 250 μl를 추가하고 반전으로 섞는다. 참고 : 미토콘드리아 단백질 결정이 필요한 경우이 단계를 생략하십시오. </li><li> 균질화 버퍼 얼음과 사전에 젖은 필터에 50 ML 원뿔 원심 분리 관에 40 μm의 필터를 넣고 얼음에 50 ML 원뿔 원심 분리 관에 균질를 필터링 할 수 있습니다. </li><li> 균질화 버퍼 얼음과 사전에 젖은 필터에 50 ML 원뿔 원심 분리 관에 10 μm의 필터를 넣고 얼음에 50 ML 원뿔 원심 분리 관에 균질를 필터링 할 수 있습니다. </li><li> 10 분에서 9,000 XG에서이 미리 냉장 1.5 ML의 microfuge 튜브와 원심 분리기 여과 액을 전송4 ºC. </li><li> 상층 액을 제거하고 다시 중단하고 차가운 얼음 호흡 버퍼의 1 ml의 알약을 결합한다. </li></ol> ATP 분석 주 : ATP 발광 분석법은 ATP 분석 키트를 사용하여 수행 될 수있다 절연 미토콘드리아 대사 활성을 결정한다. 프로토콜은, 시약 및 표준 분석 키트에 공급되었다. 절차의 개요에 대하여 설명한다. <ol><li> RT에 키트 시약을 평형. </li><li> 이중 증류수 1,170 μL에서 동결 건조 된 ATP 펠렛을 용해시켜 10 mM의 ATP 원액을 준비합니다. ATP에게 얼음에 표준 원액 및 준비 미토콘드리아 샘플을 저장합니다. </li><li> 동결 건조 된 기질 용액 바이알에 기질 완충액 5 mL를 추가한다. 부드럽게 믹스와 어둠 속에서 배치합니다. </li><li> 블랙, 불투명 하단, 96 웰 플레이트의 모든 우물에 호흡 버퍼의 100 μl를 추가합니다. </li><li> 각 준비된 샘플에서 잘 O를 미토콘드리아의 10 μl를 추가FA 블랙, 불투명 하단, 96 웰 플레이트. 참고 : 시료는 세중 도금된다. 표준 및 음성 대조군 (호흡 버퍼)에 대한 세 우물에 대한 행을 포함합니다. </li><li> 표준 및 컨트롤을 포함한 모든 웰에 포유 동물의 세포 용해 용액 50 μl를 추가합니다. </li><li> 125 rpm에서 진탕에 5 분 동안 37 ºC에서 접시를 품어. </li><li> 배양 동안 10 mM의 ATP 원액 0.1 밀리미터, 0.05 밀리미터, 0.01 밀리미터, 0.005 밀리미터, 0.001 밀리미터, 및 0.0001 mM의 ATP의 농도 ATP 표준을 준비합니다. 얼음에 보관 기준. </li><li> 배양 후, 플레이트지도에 표시된 우물을 대응하는 ATP 기준의 10 μl를 추가합니다. 참고 : 표준은 중복 수행됩니다. </li><li> 각 웰에 재구성 된 기질 용액 50 μl를 추가합니다. </li><li> 125 rpm에서 5 분 동안 진탕 기에서 37 ºC에서 접시를 품어. </li><li> 분광 광도계로 연결된 컴퓨터에서 열기 GEN5 1.11 소프트웨어입니다. </li><li> &quot;에서새 항목을 만들 실험 &quot;&quot;클릭 &quot;. </li><li> &quot;기본 프로토콜&quot;을 클릭합니다. &quot;확인&quot;을 클릭합니다. </li><li> 왼쪽 열에서 다음, &quot;절차&quot;를 &quot;프로토콜&quot;을 선택합니다. </li><li> &quot;지연&quot;을 선택합니다. 0시 10분 0초로 설정합니다. &quot;확인&quot;을 클릭합니다. </li><li> 선택 &quot;읽기&quot;. 드롭 다운 메뉴에서 &quot;발광&quot;를 선택합니다. 다음에 다른 설정을 조정 : 유형 엔드 포인트, 통합 시간 공을 읽는다 01.00 MM : SS.ss, 필터 1 세트, 배출 홀, 광학 위치 최고, 감도 100, 최고 프로브 수직 1.00 mm 오프셋. </li><li> 판을 분석 할 준비가되면, 맨 윗줄에있는 &quot;판을 읽고&quot;아이콘을 클릭합니다. &quot;읽기&quot;를 클릭합니다. 분광 광도계가 열리면 왼쪽 상단 모서리에 잘 A1 트레이에 접시를 놓습니다. 온도에 상자가 열립니다. &quot;읽기&quot;를 클릭합니다. 참고 : 값이 높을수록 증가 ATP 수준 높은 신진 대사 활동과 상관 관계. </li></ol>

<ol><li>van Loo, G., Saelens, X., van Gurp, M., MacFarlane, M., Martin, S. J., Vandenabeele, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+mitochondrial+factors+in+apoptosis%3A+a+Russian+roulette+with+more+than+one+bullet%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Death+Differ%22%5BJournal%5D)">The role of mitochondrial factors in apoptosis: a Russian roulette with more than one bullet.</a> Cell Death Differ. 9 (10), 1031-1042 (2002).</li>
<li>Szabadkai, G., Duchen, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitochondria%3A+the+hub+of+cellular+Ca2%2B+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Physiology+%28Bethesda%29%22%5BJournal%5D)">Mitochondria: the hub of cellular Ca2+ signaling.</a> Physiology (Bethesda). 23, 84-94 (2008).</li>
<li>Chan, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitochondria%3A+Dynamic+Organelles+in+Disease%2C+Aging%2C+and+Development%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Mitochondria: Dynamic Organelles in Disease, Aging, and Development.</a> Cell. 125 (7), 1241-1252 (2006).</li>
<li>Picard, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitochondrial+structure+and+function+are+disrupted+by+standard+Isolation+methods%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Mitochondrial structure and function are disrupted by standard Isolation methods.</a> PLoS ONE. 6 (3), e18317(2011).</li>
<li>Bensley, R. R., Hoerr, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Studies+on+cell+structure+by+freeze-drying+method%3B+preparation+and+properties+of+mitochondria%5BTitle%5D)+AND+%22Anat+Rec%22%5BJournal%5D)">Studies on cell structure by freeze-drying method; preparation and properties of mitochondria.</a> Anat Rec. 60, 449-455 (1934).</li>
<li>Claude, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fractionation+of+mammalian+liver+cells+by+differential+centrifugation+II.+Experimental+procedures+and+results%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">Fractionation of mammalian liver cells by differential centrifugation II. Experimental procedures and results.</a> J Exp Med. 84 (1), 61-89 (1946).</li>
<li>Hogeboom, H., Schneider, W. C., Palade, G. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytochemical+studies+of+mammalian+tissues%3B+isolation+of+intact+mitochondria+from+rat+liver%3B+some+biochemical+properties+of+mitochondria+and+submicroscopic+particulate+material%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Cytochemical studies of mammalian tissues; isolation of intact mitochondria from rat liver; some biochemical properties of mitochondria and submicroscopic particulate material.</a> J Biol Chem. 172 (2), 619-635 (1948).</li>
<li>Ernster, L., Schtaz, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitochondria%3A+a+historical+Review%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Mitochondria: a historical Review.</a> J Cell Biol. 91 (3 Pt 2), 227s-255s (1981).</li>
<li>Pallotti, F., Lenaz, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+subfractionation+of+mitochondria+from+animal+cells+and+tissue+culture+lines%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Isolation and subfractionation of mitochondria from animal cells and tissue culture lines.</a> Methods Cell Biol. 80, 3-44 (2007).</li>
<li>Schmitt, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+semi-automated+method+for+isolating+functionally+intact+mitochondria+from+cultured+cells+and+tissue+biopsies%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Biochem%22%5BJournal%5D)">A semi-automated method for isolating functionally intact mitochondria from cultured cells and tissue biopsies.</a> Anal Biochem. 443 (1), 66-74 (2013).</li>
<li>Fernández-Vizarra, E., Ferrín, G., Pérez-Martos, A., Fernández-Silva, P., Zeviani, M., Enríquez, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+mitochondria+for+biogenetical+studies%3A+An+update%5BTitle%5D)+AND+%22Mitochondrion%22%5BJournal%5D)">Isolation of mitochondria for biogenetical studies: An update.</a> Mitochondrion. 10 (3), 253-262 (2010).</li>
<li>Graham, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chapter+3%2C+Unit+3.3%2C+Isolation+of+mitochondria+from+tissues+and+cells+by+differential+centrifugation%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Protoc+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Chapter 3, Unit 3.3, Isolation of mitochondria from tissues and cells by differential centrifugation.</a> Curr Protoc Cell Biol. , (2001).</li>
<li>Frezza, C., Cipolat, S., Scorrano, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organelle+isolation%3A+functional+mitochondria+from+mouse+liver%2C+muscle+and+cultured+fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Organelle isolation: functional mitochondria from mouse liver, muscle and cultured fibroblasts.</a> Nat Protoc. 2 (2), 287-295 (2007).</li>
<li>Wieckowski, M. R., Giorgi, C., Lebiedzinska, M., Duszynski, J., Pinton, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+mitochondria-associated+membranes+and+mitochondria+from+animal+tissues+and+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Isolation of mitochondria-associated membranes and mitochondria from animal tissues and cells.</a> Nat Protoc. 4 (11), 1582-1590 (2009).</li>
<li>Gostimskaya, I., Galkin, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+highly+coupled+rat+heart+mitochondria%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Preparation of highly coupled rat heart mitochondria.</a> J Vis Exp. (43), (2010).</li>
<li>Gross, V. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+functional+mitochondria+from+rat+kidney+and+skeletal+muscle+without+manual+homogenization%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Biochem%22%5BJournal%5D)">Isolation of functional mitochondria from rat kidney and skeletal muscle without manual homogenization.</a> Anal Biochem. 418 (2), 213-223 (2011).</li>
<li>Masuzawa, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transplantation+of+autologously+derived+mitochondria+protects+the+heart+from+ischemia-reperfusion+injury%5BTitle%5D)+AND+%22American+J+Physiol+Heart+and+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Transplantation of autologously derived mitochondria protects the heart from ischemia-reperfusion injury.</a> American J Physiol Heart and Circ Physiol. 304 (7), (2013).</li>
<li>McCully, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Injection+of+isolated+mitochondria+during+early+reperfusion+for+cardioprotection%5BTitle%5D)+AND+%22American+J+Physiol+Heart+and+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Injection of isolated mitochondria during early reperfusion for cardioprotection.</a> American J Physiol Heart and Circ Physiol. 296 (1), 94-105 (2009).</li>
<li>Olson, M. S., Von Korff, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Changes+in+endogenous+substrates+of+isolated+rabbit+heart+mitochondria+during+storage%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Changes in endogenous substrates of isolated rabbit heart mitochondria during storage.</a> J Biol Chem. 242 (2), 325-332 (1967).</li>
<li>Diepart, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+methods+for+measuring+oxygen+consumption+in+tumor+cells+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Biochem%22%5BJournal%5D)">Comparison of methods for measuring oxygen consumption in tumor cells in vitro.</a> Anal Biochem. 396 (2), 250-256 (2010).</li>
<li>Lanza, I. R., Nair, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+assessment+of+isolated+mitochondria+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Functional assessment of isolated mitochondria in vitro.</a> Methods Enzymol. 457, 349-372 (2009).</li>
</ol>

모든 동물은 현재 기관 가이드 라인에 따라 처리 하였다. 우리는 공개 경쟁 금융 이익을 더이 없습니다.

성공적으로 미토콘드리아 생존을 유지하기 위해 얼음에 모든 솔루션과 조직 샘플을 유지하는 것이 필수적입니다이 프로토콜을 사용하여 미토콘드리아를 분리합니다. 얼음에서 유지하더라도, 절연 미토콘드리아는 19 시간에 걸쳐 기능적 활성의 감소를 나타내는 것이다. 우리는 솔루션 및 추가가 미리 준비하는 것이 좋습니다. 우리는 - 무게 사전 및 1.5 ml의 미세 원심 분리 튜브에 4 밀리그램 분량 씩 서브 틸리를 저장하고 -20 ° C에 저장합니다. 마찬가지로 BSA는 미리 무게를 -20 ° C에 저장할 수 있습니다 1.5 ml의 미세 원심 분리 튜브에 20 mg을 분취에 저장됩니다. 튜브를 사용 직전는 -20 ° C에서 제거되고 서브 틸리 및 BSA는 미토콘드리아 분리 과정에 사용하기 위해 균질화 완충액 1 ㎖에 용해시킨다. 골격 근육 조직에서 두 생검 펀치는 6mm 생검 펀치 치료 개입 (17)에 대한 임상 적 및 외과 적 치료에 사용하기 위해...

A correction was made to: <a href="http://www.jove.com/video/51682">Rapid Isolation And Purification Of Mitochondria For Transplantation By Tissue Dissociation And Differential Filtration.</a> An optional step was added to step 7 of the &#39;Mitochondrial Isolation&#39; section of the protocol. The step is:
1. Optional in the case that the tissue is fibrous: Centrifuge the solution at 750 x g for 4 min.

A correction was made to: Rapid Isolation And Purification Of Mitochondria For Transplantation By Tissue Dissociation And Differential Filtration.

Erratum: Rapid Isolation And Purification Of Mitochondria For Transplantation By Tissue Dissociation And Differential Filtration

미토콘드리아는 적혈구를 제외한 체내 모든 세포에 존재하는 세포 및 중요한 대사 과정 1-4의 다수에 관여한다. 때문에 이러한 많은 기능의 미토콘드리아 손상이 해로운 영향 삼을 수 있습니다. 미토콘드리아 기능 부전 여러 미토콘드리아 분리 방법을 조사하기 위해서 설명되었다. 1940 5-8로 미토콘드리아 격리 날짜의 최초의 공표를 차지한다. 제 문서화 시도가 저속 5,8에서 염 용액에 원심 분리 박격포 간 조직을 분쇄하여 미토콘드리아 아이솔레이션을 보여 주었다. 나중에, 다른 그룹은 원래의 절차에 따라 팽창 차등 원심 6-8에 기초하여 조직 분획을 보여 주었다. 이러한 초기 방법은 종종 균질화, 및 / 또는 차등 원심 9-15 통합 현재 기술의 기초를 형성. homogenizati의 수단계와 원심 분리 프로토콜마다 다릅니다. 이러한 반복적 인 단계들은 미토콘드리아 분리를 위해 시간을 증가시키고, 궁극적으로 생존 능력을 감소시킨다. 제대로 10,16 제어하지 않을 경우 또한, 수동 균질화는 미토콘드리아 손상과 일치하지 않는 결과가 발생할 수 있습니다. 최근에, 우리는 심근 조직 (17, 18)에 이식 미토콘드리아를 분리 균질화 및 차등 원심 분리를 사용했다. 이 긴 분리 절차를 수행하는 데 약 90 분을 요구하고이 방법의 임상 적용 가능성 때문에 제한되었다. 임상 및 수술 적 치료에서의 급성 치료 적 사용을 허용하기 위해, 우리는 30 분 미만으로 수행 될 수있는 신속한 미토콘드리아 분리 과정을 개발 하였다. 이 프로토콜의 주요 장점은 표준화 된 조직 해리가 균일하고 쉽게 수동 균질화 달성되지 않은 조직의 일관성 균질화 수 있다는 것입니다. 와 T에서이온 차등 원심 분리 대신에 차동 여과의 사용은 시간이 많이 소요되고 고도로 정제 실용적이고 유능한 미토콘드리아 호흡의 더 신속한 분리를 허용 반복 원심 분리 단계를 제거한다. 미만 30 분에 실행 가능하고 호흡 능력 미토콘드리아를 분리 할 수​​있는 능력은 임상 적 적용이 가능합니다. 이 분리 프로토콜은 관상 동맥 우회 이식 수술 (CABG) 등의 치료 과정에 사용 목적이 가능성이있다.

<table><tbody><tr><td>설탕</td><td>시그마 알드리치</td><td>84100</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>시그마 알드리치</td><td>H4034</td><td></td></tr><tr><td>EGTA</td><td>시그마 알드리치</td><td>E4378</td><td></td></tr><tr><td>substilsin A</td><td>시그마 알드리치</td><td>P5380</td><td></td></tr><tr><td>BSA</td><td>시그마 알드리치</td><td>A7906</td><td></td></tr><tr><td>KH2PO4</td><td>Sigma 알드리치</td><td>P5379</td><td></td></tr><tr><td>MgCl2</td><td>Sigma Aldrich</td><td>M8266</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S6191</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>Fisher Scientific</td><td>P2173</td><td></td></tr><tr><td>Na2HPO4</td><td>Fisher Scientific</td><td>S374</td><td></td></tr><tr><td>ATPlite 발광 분석 시스템, 1,000 분석 키트</td><td>Perkin Elmer</td><td></td><td></td>6016941</tr><tr><td>50 ml 원뿔 튜브</td><td>BD</td><td>352098</td><td></td></tr><tr><td>40 &mu; m 나일론 필터</td><td>BD&nbsp;</td><td>352340</td><td></td></tr><tr><td>GentleMACS C 튜브</td><td>Miltenyl Biotech</td><td>120-005-331</td><td></td></tr><tr><td>1.5 ml Eppendorf 튜브</td><td>Fisher Scientific</td><td>05-408-129</td><td></td></tr><tr><td>6mm 생검 펀치</td><td>Miltex</td><td>33-36</td><td></td></tr><tr><td>10 &mu; m Pluristrainer</td><td>Pluriselect</td><td>43-500-10-03</td><td></td></tr><tr><td>Eppendorf Centrifuge 5415C</td><td>Marshall Scientific</td><td>EP-5415C&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>GentleMACS 분리기&nbsp;</td><td>Miltenyl Biotech</td><td>130-093-235</td><td></td></tr><tr><td>96-웰 플레이트, 조직 배양 처리</td><td>VWR</td><td>82050-732</td><td></td></tr><tr><td>Rotomax 120 오비탈 쉐이커</td><td>Heidolph</td><td>544-41200-00</td><td></td></tr><tr><td>Synergy H4 하이브리드 멀티모드 &nbsp; 마이크로플레이트 리더</td><td>BioTek</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Multisizer 4 쿨터 카운터</td><td>Beckman Coulter</td><td>A63076</td><td></td></tr><tr><td>Oxytherm 시스템</td><td>Hansatech Instruments</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hemacytometer</td><td>Fisher Scientific</td><td>267110</td><td></td></tr></tbody></table>

조직 해리 차동 여과 이식 미토콘드리아의 신속한 분리 및 정제

Rapid Isolation And Purification Of Mitochondria For Transplantation By Tissue Dissociation And Differential Filtration

차동 원심 분리 및 / 또는 피콜 구배 원심 분리를 사용하여 이전에 기술 된 미토콘드리아 분리 방법은 완료 60-100 분을 필요로한다. 우리는 상업적 조직 dissociator 및 차등 여과하여 포유류의 조직 검사에서 미토콘드리아의 신속한 분리를위한 방법을 설명한다. 이 프로토콜에서 수동 균질화는 조직 dissociator의 표준화 균질화 사이클로 대체됩니다. 이 균일하고 쉽게 수동 균질화 달성되지 않은 조직의 일관성 균질화 수 있습니다. 티슈 해리 다음, 균질 반복 원심 분리 단계를 제거 나일론 메쉬 필터를 통해 여과된다. 그 결과, 미토콘드리아 절연은 30 분 미만으로 수행 될 수있다. 이 분리 프로토콜은 0.18 ± 0.04 g (습 중량) 조직 샘플에서 약 2 × 10 10 실행 가능하고 호흡 능력 미토콘드리아를 얻을 수 있습니다.

티슈 해리 및 차등 여과를 이용하여 미토콘드리아 격리에서 절차 단계를 개략적 인 그림이도 1에 도시된다. 전체 절차 시간을 30 분 미만이다. 조직 샘플은 6mm 생검 펀치를 사용하여 수득 하였다. 조직의 무게는 0.18 ± 0.04 g (습 중량)이었다. 입경 계수에 의해 결정으로서 단리 미토콘드리아의 수는 2.4이었다 × 10 10 ± 0.1 × 10 10 골격근 미토콘드리아 간 제제 2.75 × 10 10 ± 0.1 × 10 10 미토콘드리아 (도 2A). 비교 미토콘드리아의 수는 혈구에 의해 결정되었다 허용합니다. 0.11로 혈구에 의해 결정되는 미토콘드리아 수가 과소 평가 된 10 × 10 × 10 ± 0.04 10 골격근위한 미토콘드리아 0.34 X 간 제제 미토콘드리아 10</s...

포유 동물 조직 생검에서 미토콘드리아의 신속한 분리를위한 방법을 설명한다. 쥐 간 또는 골격근 제제 상용 조직 dissociator 균질화하고, 미토콘드리아는 나일론 메쉬 필터를 통한 여과에 의해 미분을 분리 하였다. 대안적인 방법을 사용하여 100 분간 - 미토콘드리아 분리 시간은 60 비교 &lt;30 분이다.

Previously described mitochondrial isolation methods using differential centrifugation and/or Ficoll gradient centrifugation require 60 to 100 min to ...

이 절차의 전체적인 목표는 쥐 조직으로부터 순수하고 호흡 능력이 있는 미토콘드리아를 빠르게 분리하는 것입니다. 이는 먼저 조직 샘플을 결합하고 균질화함으로써 수행됩니다. 다음 단계는 균질액에 subin A를 혼합하여 얼음 위에서 배양하는 것입니다.이어서 균질액을 BSA와 혼합하여 여과한 후, 다시 한번 여과합니다. 마지막 단계로 여과액을 원심 분리하고 미토콘드리아 펠릿을 호흡 완충액(respiration buffer)에 재현탁합니다. 최종적으로, 호흡 분석과 ATP 발광 분석(ATP luminescence assay)을 통해 분리된 미토콘드리아가 생존해 있으며 호흡 능력이 있음을 확인할 수 있습니다.미토콘드리아 분리 시간이 60분에서 100분까지 소요되는 기존 방법들과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은, 생존 가능하고 호흡 능력이 있는 미토콘드리아를 30분 이내에 분리할 수 있다는 점입니다. 협력 연구실의 기술자인 Allison mackay가 시작 직전에 ATP 발광 분석법(ATP luminescence assay)을 시연할 예정입니다. subin A를 균질화 버퍼 1 mL에 녹이고, BSA 또한 균질화 버퍼 1 mL에 녹이십시오.이제 6mm 생검 펀치를 사용하여 신선한 조직 샘플 두 개를 채취하고, 50mL 원심분리 튜브에 담긴 XPBS 내의 얼음 위에 보관하십시오. 준비가 되면 조직을 5mL의 차가운 균질화 완충액이 들어 있는 해리 튜브로 옮깁니다. 그런 다음 튜브를 조직 해리 장치에 장착하고 미리 설정된 미토콘드리아 분리 사이클을 선택하여 조직을 균질화하십시오.완료되면 튜브를 다시 얼음 위에 놓고 250 µL의 sub to lyin 스톡 솔루션을 첨가합니다. 도립 혼합하여 섞어줍니다. 혼합물이 균일하게 분포된 것으로 보이면, 균질액을 얼음 위에서 10분 동안 배양합니다.다음으로, 50 milliliter 원추형 원심분리 튜브에 40 micron 메쉬 필터를 장착하고 이를 얼음에 박아둡니다. 균질화 완충액으로 필터를 적신 후, 해당 완충액은 폐기물 용기에 버립니다. 모든 준비가 완료되면, 균질액을 부어 여과액을 수집합니다.BSA 스톡 솔루션 250 µL를 첨가하고 뒤집어서 혼합합니다. 단, 미토콘드리아 단백질 분석의 경우 이 단계는 생략해야 합니다. 이제 두 개를 더 준비하십시오.얼음 위에 50 milliliter 원뿔형 원심분리 튜브 두 개를 준비하여, 하나에는 40 micron 필터를, 다른 하나에는 10 micron 필터를 장착합니다. 두 필터 모두 소량의 균질화 버퍼(homogenizing buffer)로 적신 후, 이 버퍼는 버립니다. 그다음 균질액을 먼저 40 micron 필터에 통과시키고, 이어서 10 micron 필터에 통과시킵니다.이러한 여과 단계는 미토콘드리아의 순도를 상당히 높여줍니다. 이제 여과액을 미리 냉각된 1.5 milliliter 마이크로 원심분리 튜브 두 개에 나누어 담고, 4 °C에서 9,000 Gs로 10분 동안 원심분리합니다. 그 다음 상층액을 제거하고, 정제된 두 개의 미토콘드리아 펠릿을 재부유하여 하나로 합칩니다.1 mL의 얼음처럼 차가운 호흡 완충액 내에서, 전체 과정이 4 °C에서 수행되는 것이 매우 중요합니다. 이제 정제된 미토콘드리아를 통해 분리된 미토콘드리아의 대사 활성을 측정할 수 있습니다. ATP assay 키트를 사용하여 ATP 발광 분석을 수행할 수 있습니다.먼저, 키트 시약을 상온으로 맞춥니다. 다음으로, HT P 표준 용액을 준비하여 얼음에 둡니다. 그다음 단계는 동결 건조된 기질 용액에 5 mL의 기질 완충액을 첨가하는 것입니다.이를 부드럽게 혼합한 후 암소에 보관하십시오. 그다음 불투명한 검정색 96 웰 플레이트의 각 웰에 100 µL의 호흡 완충액을 첨가하십시오. 준비된 미토콘드리아 10 µL를 ATP 표준 시료 아래의 웰들에 첨가하십시오.각각의 고유한 미토콘드리아 샘플은 3반복으로 플레이팅해야 하며, 음성 대조군으로서 호흡 완충액만 들어있는 웰 3개를 함께 플레이팅합니다. 로딩이 완료되면 모든 웰에 포유류 세포 용해액 50 µL를 첨가합니다. 플레이트를 120 RPM의 오비탈 셰이커에서 37 °C로 5분간 배양합니다.인큐베이션 동안, 0.1 mM에서 0.1 µM 범위의 ATP 표준액 희석액을 준비합니다. 인큐베이션 후, 각 ATP 표준액 10 µL를 플레이트 맵에 표시된 해당 웰에 첨가합니다. 다음으로, 각각에 재구성된 기질 용액 50 µL를 첨가합니다.그 다음, 이전과 동일하게 플레이트를 5분 동안 다시 배양하십시오. 플레이트 리더기에서 플레이트를 검사하는 단계를 진행하십시오. 아래의 소프트웨어를 실행하십시오.새 항목을 생성합니다. 실험을 클릭하십시오. 그런 다음 기본 프로토콜을 클릭하고 확인을 클릭하십시오.왼쪽 열에서 프로토콜을 선택하십시오. 그런 다음 절차를 선택하고 Next를 누릅니다. 다음으로 지연 시간을 선택하고 10분으로 설정하십시오. 그런 다음 입력 사항을 확인(okay)하십시오.이제 선택 후, 드롭다운 메뉴에서 luminescence를 읽기 항목으로 선택하십시오. 나머지 설정은 다음과 같이 조정합니다. Read type은 endpoint, integration time으로 설정하십시오.1초로 설정하십시오. 필터 세트의 방출 홀 광학 위치를 설정하고, 최고 감도를 100으로, 상단 프로브 수직 오프셋을 1 mm로 설정하십시오. 이러한 설정 변경을 완료한 후 확인을 클릭하십시오.플레이트 레이아웃을 클릭하고 그에 맞게 설정하십시오. 확인을 클릭합니다. 모든 설정이 완료되면, 상단 행의 플레이트 읽기 아이콘을 클릭하고 읽기를 클릭하십시오.분광광도계가 열리면, A1 웰이 왼쪽 상단 모서리에 오도록 플레이트를 트레이에 놓습니다. 이제 온도를 표시하는 상자가 나타나면 확인을 클릭한 후 데이터 분석을 진행합니다. 입자 크기 계수를 기준으로, 습중량 약 0.18 g의 골격근 샘플에서 약 240억 개의 미토콘드리아가 얻어졌습니다.동일한 크기의 간 샘플에서 수십 억 개가 더 얻어졌습니다. 입자 계수기를 사용했을 때 미토콘드리아 혈구계수기 측정값이 과소평가되었습니다. 대표적인 추적 곡선을 얻었으며, 이는 분리된 미토콘드리아가 평균 직경 약 0.4 µm의 단일 피크 아래에 국한되어 있음을 보여줍니다.이는 bi acid assay를 이용한 이전 보고들과 일치합니다. 골격근과 간 조직의 미토콘드리아 단백질은 조직 1g당 수 mg으로 측정되었습니다. 생성물은 생존 가능했으며 호흡 능력을 갖추고 있었습니다.임상 및 외과적 치료 개입에 적합한 시간 범위 내에서 미토콘드리아를 분리하였습니다. 투과전자현미경 사진 확인 결과, 분리된 미토콘드리아는 모두 전자 밀도가 높았으며 손상률은 10,000개당 1개 미만이었고, ATP 분석 결과 오염도는 100,000개당 1개 미만이었습니다. 분석 결과 미토콘드리아는 활성 상태였으며, ATP 함량은 미토콘드리아 단백질 mg당 약 11 또는 15 nanomoles였습니다.Clark 타입 전극을 사용하여 미토콘드리아 호흡 분석을 수행한 결과, 산소 소비량은 미토콘드리아 단백질 1 mg당 분당 약 180 nmol의 산소로 나타났습니다. RCI 값은 각각 약 2.5였으며 간 점수가 약간 더 높았습니다. 이 기술을 숙달하면 적절하게 수행했을 때 30분 이내에 완료할 수 있습니다.

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