Name: 발광 공명 에너지는 포유 동물 세포에 표현 막 단백질의 구조 변화를 연구에 전송 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-09-16T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 31 s
Description: 학습하세요 포유동물 세포에서 막 단백질의 구조 변화를 측정하는 개선된 LRET 기법을. 프로테아제 절단 부위를 도입하여 정제 없이 생리학적 상태에서 단백질 역학을 실시간 관찰할 수 있습니다.

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이 작품은 건강 부여 GM094246, 미국 심장 협회 (American Heart Association) 그랜트 11GRNT7890004 및 국립 과학 재단의 MCB-1110501의 국립 연구소에 의해 지원되었다.

1.이자의 단백질을 포함하는 구조를 만들기 적합한 벡터에 관심 단백질을 발현하는 유전자를 복제. 같은 pcDNA 벡터 시리즈 또는 pRK5로 사용 벡터 그들은 HEK293 및 CHO 세포와 같은 포유류 시스템의 표현에 적합하다로. 형광 태그와 함께 할 수있는 단백질에 사이트를 선택합니다 <ol><li> 단백질 내에서 가능한 구조 변화를 반영 할 수있는 라벨 사이트를 선택합니다. 가능하다면, 이러한 결정을 내릴 수 있도록하는 단백질 또는 상동 단백질의 결정 구조를 사용한다. 없는 결정 구조가 가능한 경우, 단백질의 가능한 구조를 예측하고, 따라서 적절한 사이트에 대한 통찰력을 수신 온라인 소프트웨어를 사용한다. </li><li> 단백질을 표시 할 수 있도록 선택된 잔기의 측쇄는 표면 노출되고, 형광체가 액세스되도록 잔기를 선택. <ol><li> 잔류를 선택하는 것이리간드 결합에 관여하지 않습니다 예를 들어 사이트에 대한 단백질의 기능에 중요하지 않다. </li><li> 시스테인 돌연변이를 도입에서, 단백질 구조로 최소한의 교란을 야기 세린 예를 들면, 유사하다 사이트에 우선권을 준다. </li><li> 라벨 사이트를 선택한 후, 단백질 만이 의도 한 사이트에서 LRET를 제공하도록 돌연변이를 확인합니다. 멀리 잠재적으로 형광 태그 공역을 말레이 미드 바인딩 할 수있는 비 이황화 결합 시스테인 돌연변이 표준 부위 특이 적 변이 프로토콜을 사용합니다. 그들은 단백질의 접힌 형태로 형광 염료와 반응하지 않아야하기 때문에 거리에 이황화 결합 시스테인 및 매장, 무료 시스테인 돌연변이하지 마십시오. </li></ol></li><li> 표준 부위 특이 적 변이 프로토콜을 사용하는 점 돌연변이를 제작하여 원하는 사이트에 시스테인 잔기를 도입. </li><li> 특히 단백질의 시스테인 중 하나를 절단 할 수있는 단백질 분해 효소 절단 부위를 포함합니다. 만약그것은, 보수적 (인식 서열이 LVPRGS) 또는 트롬빈을 갖도록 단백질 돌연변이에 의해 사이​​트를 소개를위한 단백질 서열은 허용 Xa 인자 (인식 서열 IDGR 또는 IEGR) 도입 된 시스테인 가까운 순서 및 분열 프로테아제 액세스; 그렇지 테트라 - 또는 헥사 - 펩타이드 서열은 전체적으로 삽입 될 수있다. 절단시에 도입 된 시스테인 중 하나의 나머지 부분 해리되도록 사이트 선택 단백질 인 특정 경우,이 시스테인 돌연변이를 플 랭킹이 절단 부위를 필요로 할 수있다. </li></ol> 3 시험 단백질의 발현 및 기능 <ol><li> 돌연변이 단백질의 발현을 확인하기 위해 서양 얼룩을 수행합니다. </li><li> 전혀 기능 장애 단백질의 구조 변화를 연구하지 않도록하는 경우, 돌연변이는 최소한의 단백질 기능을 변경했는지 확인하기 위해 단백질의 기능 분석을 수행합니다. 주 : 모든 단백질이 서로 다른 기능을 가지고 있기 때문에, 단일 F가없는 LRET을 위해 특별히 사용되는 unctional 분석; 그러나, 기능 분석의 몇 가지 예는 이온 채널에 대한 효소의 효소 활성 분석, 수용체 리간드 결합 분석 및 전기 생리학 연구를 포함한다. </li></ol> (4) 사용되는 형광을 선택 예상 거리 범위에 기초하여 선택 형광체는 범위 0.5-1x 사이 형광 쌍의 R 0이되도록 측정된다. 참고 :이 일반적으로 훨씬 더 긴 수명을 가진 배경은, 쉬운 공제 할 수 있습니다. 이 쌍에 대한 R 0 53 (표 1)이기 때문에, 예를 들면, 예상 거리 범위가 측정되는 경우 약 35, 도너와 억 셉터로서 알렉사 594로서 테르븀 킬레이트 것이 사용하기 적합한 형광 쌍이다. 일시적으로 포유 동물 세포의 필요한 금액를 transfection하여 단백질을 표현하십시오 ntent는 "&gt; 일시적 일반적인 형질 전환 시약의 하나를 사용하여 선택된 포유 동물 세포에 대한 관심의 단백질을 형질 일반적 HEK 및 CHO 세포주 LRET 실험 당 네 개의 10-cm 접시를 사용]. 그러나,이 양 단백질 발현에 따라 달라질 수 , 안정성 등. 세포가 수확 전 36 ~ 48 시간 동안 단백질을 발현하도록 허용합니다. 6 단백질 레이블 <ol><li> 배양 접시에서 세포를 분리합니다. 단순히 접시의 바닥에 대해 버퍼를 피펫 팅하여 HEK 세포를 분리. 세포 외 버퍼와 미디어를 씻어 셀 스크레이퍼로 CHO 세포를 분리합니다. </li><li> 3 분 1,100 XG에서 원심 분리하여 세포를 수집합니다. 이후 세척 후뿐만 아니라, 라벨링 한 후 세포를 수집하기 위해 이와 같은 원심 분리기 설정을 사용합니다. </li><li> 다음 100-300 nm의 최종 농도까지 몰량 공여체 및 형광 수용체를 추가 외 완충액 3 ㎖에 세포를 일시. 회 전자의 F에 품어또는 실온에서 1 시간. </li><li> 다음, 언 바운드 형광 물질을 제거 LRET 측정을위한 세포 외 버퍼 (일반적으로 2 ml)에 이러한 세포를 일시 중단 세포 외 버퍼 3-4 배 이러한 표지 세포를 씻으십시오. </li><li> 대조군으로 어떤 수용체의 형광 물질을 첨가하지 않고 단지 기증자 형광 (테르븀 킬레이트)와 세포의 별도의 세트를 레이블을 붙입니다. 참고 : 이러한 기증자 전용 실험 데이터 분석을 완료 할 필요가있다. 이러한 실험은 동일 또는 상이한 날에 수행 될 수있다. </li><li> 라벨 과정도 기능은 라벨에 사용되는 위치에 따라 방해 할 수 있습니다로 또 다시, 기능 검증, 라벨 돌연변이 단백질이 시간을 수행합니다. 참고 :이 실험은 동일하거나 다른 일을 수행 할 수 있습니다. </li></ol> (7)은 LRET 실험을 설정 <ol><li> 1 ML의 최소 볼륨 석영 큐벳에 재현 탁 세포를 놓습니다. </li><li> 컴퓨터와 악기의 전원을 켜고 DAT의 매개 변수를 조정그에 따라 수집 프로그램. <ol><li> (테르븀 킬레이트 잘 작동 나노 330-340) 기증자 형광의 흡광도 범위 여기 파장을 설정합니다. </li><li> 수용체 방출을 사용 수용체에 따라 달라집니다 염두에두고, 적절하게 방출 파장을 설정합니다. 중요한 것은, 단지 수용체 방출을 측정하고 블리드를 통해 기증자의 방출에서 포함되지 않은 검출 파장을 선택합니다. 예를 들어, 수용체의 표 1과 같이 알렉사 555 대 565 nm의 파장을 사용한다. 단백질 만 도너하지만 셉터없이 표지시킨 도너 전용 측정치를 들어, 테르븀 킬레이트의 방출을 측정하기 위해 545 nm의 파장을 사용한다. </li><li> 발광 검출의 길이가 긴 수명 성분이 누락되지 않도록 보장하기 위해 최소 3 배 이상 LRET 예상 수명으로 설정. </li></ol></li><li> 스캔을 수행합니다. 99 스윕 적어도 세 검사 결과의 일관성을 보장하기 위해 마십시오. 일 저장텍스트 파일 (* .txt)와 같은 전자 결과. </li><li> (이러한 리간드의 첨가와 같은) 다른 조건과 관련하여 단백질의 구조 변화를 측정하기 위해, 이들 조건을 변경하고 다시 새로운 조건 하에서 동일한 샘플에 99 스위프 각의 적어도 셋 검색을 수행. 글루타메이트 수용체의 글루타메이트의 형태에 미치는 영향을 연구하는 경우, 예를 들면 단계 18.6에서 스캔 동일한 샘플에 1 mm의 글루타메이트를 추가 한 다음 다시 스캔. </li><li> 적절한 단백질 분해 효소의 다섯 대까지 추가 분열이 완료되고 더 이상의 변경이 삼 연속 스캔의 수명에서 볼되지 않을 때까지 지속적으로 검사를 취할. 일반적으로, 분열은이 3 시간에 완료됩니다. Xa 인자 절단 부위가 단백질 분해 효소 절단에 사용되는 경우, 예를 들면, 시료에 Xa 인자의 3 μl를 추가하고, 3 시간 동안 30 분마다 스캔. </li></ol> 제 얻어진 데이터 분석 <ol><li> 데이터 분석 소프트웨어를 엽니 다. </li><li> 형광 수명을로드텍스트 파일을 열 가져 오기 ASCII를 사용하여 데이터를 저장합니다. 하나의 파일로 모든 복제물뿐만 아니라 최종 배경 측정을로드. </li><li> 최종 데이터를 얻기 위해, 각 실험 조건에 대한 모든 검사에서 데이터를 평균. 개별 시험을 포함하는 열을 강조 이렇게하려면 다음 메뉴 바에서 데이터 메뉴 아래에있는 시험의 평균 형광 강도뿐만 아니라 표준 편차와 표준 오차를 표시하는 행에 대한 통계를 클릭합니다. </li><li> 수용체 감응 발광 수명을 나타내는 곡선을 만드는 X 축상의 마이크로 Y 축 및 수명에 대한 형광 강도와 선 그래프로 평균값을 플롯. 데이터의보다 나은 시각화를 허용하도록, 로그 스케일 그래프의 Y-축을 변경. </li><li> 완전한 분열을 나타내는 중첩을 보여 최종 검사를 평균 배경 측정 데이터 단계를 반복 8.3. </li><li> 배경에 평균 데이터를 표시평균화 된 원시 데이터를 포함 동일 플롯. 이렇게하려면, 플롯 메뉴 아래에있는 레이어 제어 대화 상자를 엽니 다. 이어서, 평균 층 콘텐츠 목록으로 배경을 함유 데이터를 전송. </li><li> 평균 원시 데이터에 대한 평균 백그라운드 데이터를 정렬합니다. 이렇게하려면 곱 또는 배경의 꼬리 끝이 원시 데이터의 꼬리 끝과 중첩 될 때까지 필요에 따라 백그라운드 데이터를 분할 수학 메뉴에서 간단한 수학 함수를 사용합니다. NOTE :이 꼬리 끝에서, 관심있는 단백질의 수명은 이미 완전히 감쇄 거리에 위치한다; 무엇을 정렬하는 것은 이전과 단백질 분해 효소 절단 후 모두 단순히 배경 신호 존재한다. </li><li> 또 간단한 수학 함수를 사용하여, 초기 원료 LRET 신호로부터 백그라운드 신호 정렬을 뺀다. </li><li> 지수 붕괴에 데이터를 장착 (하나 또는 여러 개의 지수 함수, 사이트 및 실험 설계에 따라 다름). <ol><li> 종료 후 시작 피팅의 시작 경계를 설정레이저 펄스의. 이후의 모든 곡선 피팅이 동일한 시작점을 사용합니다. </li><li> 단일 지수 함수 감쇠에 대해 다음 수학 식에 수명 맞도록 선택 피팅 함수 대화 상자에서, 지수 형 감쇠를 선택 <img alt="식 사" fo:content-width="2in" src="/files/ftp_upload/51895/51895eq4.jpg" width="200"> 식. 4 , Y는 형광 강도를 나타내고, y를 0 x는 시간이고, t는 형광 수명이며, 하나는 신호 강도를 인해 시스템 노이즈에 배경 강도를 나타내고, X 영 오프셋 시간이다. </li><li> , 배 0-0 수정 피팅 기능을 시작하고 데이터를 맞습니다. NOTE : 실험은 단지 위치의 한 쌍의 신호를 갖도록 설계되는 경우, 결과 데이터를 쉽게 단일 지수 감쇠 8 의하여 적합해야한다. 착용감의 잔류는 적합도를 결정하는 좋은 방법이며 추가 붕괴 수명은의 requir 경우에디션. </li></ol></li><li> 포스터 방정식 (식 (1)과 상기 (2)의 재 배열)을 사용하여 형광 물질 사이의 거리를 계산하는 데이터로부터 얻어진 수명을 사용 <img alt="식 (5)" fo:content-width="2in" src="/files/ftp_upload/51895/51895eq5.jpg" width="200"> 식. 5 참고 : τ DA가 감작 수용체 방출 수명으로 측정 한 가지는 위에서 언급 한 바와 같이 모든 변수입니다. R 0 및 R의 측정에 대한 자세한 내용과 예는 다른 곳에서 7,9,10 찾을 수 있습니다. </li><li> 재현성을 확인하기 위해 실험 데이터 분석보기 적어도 세 번 반복한다. 동일한 측정의 개별적인 반복 간의 불일치 문제로 데이터의 유효성을 호출; 추가 제어 실험이나 반복을 사용합니다. 에서 오류 전파 (토마스 후버 박사에 의해 개발) 자유 구스타브 오류 분석 계산기 또는 유사한 시스템을 사용하여 측정 오차를 계산수명의 맞습니다. </li></ol>

<ol><li>Selvin, P. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Principles+and+biophysical+applications+of+lanthanide-based+probes%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Biophysics+and+Biomolecular+Structure%22%5BJournal%5D)">Principles and biophysical applications of lanthanide-based probes.</a> Annual Review of Biophysics and Biomolecular Structure. 31, 275-302 (2002).</li>
<li>Stryer, L., Haugland, R. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Energy+transfer%3A+a+spectroscopic+ruler%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Energy transfer: a spectroscopic ruler.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 58, 719-726 (1967).</li>
<li>Stryer, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescence+energy+transfer+as+a+spectroscopic+ruler%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Fluorescence energy transfer as a spectroscopic ruler.</a> Annual Review of Biochemistry. 47, 819-846 (1978).</li>
<li>Selvin, P. R., Hearst, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Luminescence+energy+transfer+using+a+terbium+chelate%3A+improvements+on+fluorescence+energy+transfer%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Luminescence energy transfer using a terbium chelate: improvements on fluorescence energy transfer.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 91, 10024-10028 (1994).</li>
<li>Chen, J., Selvin, P. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thiol-reactive+luminescent+chelates+of+terbium+and+europium%5BTitle%5D)+AND+%22Bioconjugate+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Thiol-reactive luminescent chelates of terbium and europium.</a> Bioconjugate Chemistry. 10, 311-315 (1999).</li>
<li>Ge, P., Selvin, P. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thiol-reactive+luminescent+lanthanide+chelates%3A+part+2%5BTitle%5D)+AND+%22Bioconjugate+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Thiol-reactive luminescent lanthanide chelates: part 2.</a> Bioconjugate Chemistry. 14, 870-876 (2003).</li>
<li>Gonzalez, J., Rambhadran, A., Du, M., Jayaraman, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((LRET+investigations+of+conformational+changes+in+the+ligand+binding+domain+of+a+functional+AMPA+receptor%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">LRET investigations of conformational changes in the ligand binding domain of a functional AMPA receptor.</a> Biochemistry. 47, 10027-10032 (2008).</li>
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<li>Rambhadran, A., Gonzalez, J., Jayaraman, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conformational+changes+at+the+agonist+binding+domain+of+the+N-methyl-D-aspartic+acid+receptor%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Conformational changes at the agonist binding domain of the N-methyl-D-aspartic acid receptor.</a> The Journal of Biological Chemistry. 286, 16953-16957 (2011).</li>
<li>Rambhadran, A., Gonzalez, J., Jayaraman, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subunit+arrangement+in+N-methyl-D-aspartate+%28NMDA%29+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Subunit arrangement in N-methyl-D-aspartate (NMDA) receptors.</a> The Journal of Biological Chemistry. 285, 15296-15301 (2010).</li>
<li>Kokko, T., Kokko, L., Soukka, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Terbium%28III%29+chelate+as+an+efficient+donor+for+multiple-wavelength+fluorescent+acceptors%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Fluorescence%22%5BJournal%5D)">Terbium(III) chelate as an efficient donor for multiple-wavelength fluorescent acceptors.</a> Journal of Fluorescence. 19, 159-164 (2009).</li>
</ol>

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LRET 과학자들이 단일 단백질 내에서뿐만 아니라, 다중 체 단백질의 서브 유닛 사이의 도메인 간 거리를 측정 할 수있는 강력한 기술이다. 이와 같이, LRET는 단백질이나 다른 거대 분자의 구조 변화와 역학 조사에 잘 적합합니다. 위의 프로토콜은 쉽게 자신의 가설을 테스트하기 위해 제대로 갖춘 실험실을 허용한다; 그러나 새로운 조사를 괴롭히는 수있는 오류의 많은 일반적인 소스가 있습니다. 거의 또는 전혀 LRET 신호를 볼 경우, 먼저 사용 파장 설정을 확인합니다. 여진 테르븀 (330-340 nm의)의 흡수 범위 내에 있어야한다. 도너 - 억 셉터 측정을 위해, 발광 파장이 셉터 형광 일치해야하는 동안 샘플 만 도너 형광 단으로하고 셉터 형광 물질없이 표지 된에 도너 단지 측정의 경우, 발광 파장이,도 1에 도시 된 피크 중 하나이어야 표 1을 사용. wavele 경우ngth 설정이 올바른지, 버퍼의 호환성을 확인합니다. 일부 형광 특정 버퍼 또는 특정의 pH 범...

발광 공명 에너지 전달 (LRET)는 잘 알려진 형광 공명 에너지 전달 (FRET) 기술을 하나의 유도체이다. FRET 마찬가지로, 10-100 LRET는 1-3의 범위 내에서 관심있는 단백질의 특정 위치에 부착 된 도너와 억 셉터 형광체 사이의 거리 및 거리의 변화를 측정하는데 사용될 수있다. LRET의 원리는 도너의 형광 방출 스펙트럼은 셉터 형광체의 흡수 스펙트럼과 중첩 될 때 두 기단 사이에서 발생하는 형광도 공명 에너지 전달에 FRET 유사하다. 이 전사의 효율은 다음 식에 의해이 형광체 사이의 거리와 관련된다 : <img alt="식 (1)" fo:content-width="1.2in" src="/files/ftp_upload/51895/51895eq1.jpg" width="120"> 식. 1 R은 두 형광체 사이의 거리이고, E는 EN의 효율이다후술 ergy 전송, R 0는, 전사 효율의 반 극대되는 거리 즉 형광 쌍에 대한 포스터 반경이다. 이런 식으로, 하나는 그 효율이 역 여섯째 전원 (1)에 발생하는 거리의 크기에 관련되어 볼 수있다. 이 때 FRET 쌍의 R 공 근처에 아주 작은 거리 변화에 정교하게 민감하게 FRET와 LRET 측정을 위해 허용이 역 여섯째 전력 의존성이다. 특히 단백질이나 다른 고분자에 원하는 사이트에 라벨을 할 수있는 능력은 하나의 구조 변화를 모니터링하기 위해이 감도을 활용할 수 있습니다. 종래의 유기 색소 분자를 사용 FRET, 비교하면, LRET 추가적인 이점을 제공한다. LRET에서는 대신 도너 형광 단, 란탄 족 양이온, 일반적으로 결핵 3+ 또는 Eu를 3 이상으로 유기 색소를 사용하는 1,4-6 사용된다. U 가을 형광파인더이 범주는, 예를 들어, 테르븀 킬레이트는 또한 그들이 수용체의 형광의 넓은 범위에서 사용할 수있는 매우 다양한 있습니다. 란탄 족 킬레이트의 방출 스펙트럼은 다수의 날카로운 발광 피크를 포함하기 때문에 유연성 셉터 형광체의 다양한 중 하나와 함께 사용할 수 도너 형광 물질의 하나의 종을 허용 가능하게된다. 따라서, 감응 형 수용체 방출 기증자 방출 5에서 잘린 오염의 두려움없이 검출 할 수있다. 실험자들은이 형광체 (도 1 및 표 1) 사이의 거리에 기초하여 예상되는 특정 수용체를 선택한다. 이러한 킬레이트 화 란탄 형광체에서, 금속 이온이 고분자 하나의 특정 작용기에 이온 밧줄하기 bioreactive 관능기뿐만 아니라의 여기하는 통상 저조한 흡수 란탄을 민감하게 안테나 그룹을 포함하는 분자에 의해 킬레이트 화된다 5,6. ONC흥분 즉, 란탄 족은 밀리 초 범위의 붕괴 속도와 광자의 방출을 통해 바닥 상태로 이완. 붕괴 중항 투 중항 이완이나 삼중 항 - 대 - 일 중항 이완도 있기 때문에, 광자의 방출이 제대로 형광 또는 인광을 호출 할 수는 없지만, 하나 이상의 발광 적절히 불린다. 란탄 족 발광의 긴 감쇠가 크게 수명 측정에 도움이됩니다. 수명 측정은 다음 관계식을 통해 효율을 결정하는데 사용될 수있다 : <img alt="식 (2)" fo:content-width="1.2in" src="/files/ftp_upload/51895/51895eq2.jpg" width="120"> 식. 이 여기서, E는 전송의 효율이고, τ의 D는 에너지 전달에 참여하지 도너 (킬레이트 화 란탄)의 수명이고, 수용체와의 에너지 전달에 참여하는 경우 τ DA는 도너의 수명이다. LRET으로, 다음 τ의 DA는 알 수테르븀의 수명이 훨씬 더 큰 유기 수용체의 형광보다 때문에 이렇게 감작 된 수용체 방출의 수명으로 측정 될 수있다. 수용체는 선동 여기 (기증자 란탄 족)과 같은 수명을 방출하고, 받아들이 자신의 고유 형광 수명에서 수명에 대한 기여도는 상대적으로 무시할 수있다. 도너 억 셉터에 1 비율 공여자 발광 오히려보다 감응 발광을 측정함으로써, 우리는 또한 정확히 하나에 라벨링을 확보 할 필요성을 제거한다. 단백질 대신 수용체와 기증자 형광 모두를 동시에 표시 할 수 있습니다. 이질 표시 인구가 발생할 수 있지만 두 번 기증자 표지 단백질 수용체의 파장이 발생하지 않 두 번 수용체 표지 단백질이 흥분하지 않습니다. 또한, 형광 물질 사이의 거리에 관계없이 도너로서 등방성 란탄을 이용 특히 주어진 형광 물질이 부착되는 위치의 시스테인, 동일하므로 성은해야d는 기증자 또는 수용체 중 하나가 불필요받을 수있는 특정 사이트를 지정합니다. 강도는 이기종 인구에 영향을 줄 수 있습니다,하지만 여전히 감지하기에 충분한 것보다 더해야합니다. 실험을 계획 할 때, 형광 물질의 선택은 한 쌍의 R 0 값뿐만 아니라, 예상 거리 범위에 의해 결정되어야한다 측정된다. R 0 값은 다음 식으로 정의된다 : <img alt="식 (3)" fo:content-width="2.5in" src="/files/ftp_upload/51895/51895eq3.jpg" width="250"> 식. 3 여기서, R 0는 옹스트롬 포스터 반경이며,이 κ하면 (보통 2/3 것으로 가정)이 염료의 배향 계수는, φ D가 도너의 양자 수율이며, J는 도너의 사이 적분 스펙트럼 오버랩은 M의 발광 스펙트럼과 수용체의 흡광도 스펙트럼 - 1cm -1 내지 4이고, n 매체 (1)의 굴절율이다. 우리 연구소는 검사 대상인 단백질에 기증자 및 수용체 라벨 사이트 사이에 단백질 분해 효소 인식 부위를 도입하여 기존의 LRET 기술에 대한 수정을 추가했다. 이 수정은 모든 포유 동물 세포 7과 같은 비 정제 시스템의 조사를 할 수 있습니다. 시스테인도 표시되어있다 세포 시스테인 설프 하이 드릴 기, 다른 단백질에 결합하는 말레이 미드 공액 염료 라벨링 과정 이후, 표지 용 사이트로 시스테인을 사용하는 경우이 방법이 특히 유용하다. 그러나, 관심있는 단백질에 단백질 분해 효소 절단 부위를 포함하고 전과 후에 절단 수명을 측정함으로써, 실험자 정량적 원시 신호로부터 프로테아제 절단 후의 배경 신호를 감산 할 수있다. 이러한 감산은 (도 관심의 단백질에서 발생하는 특정 신호를 분리우레 2). 상술 한 변형 예를 사용하여, LRET는 테르븀 킬레이트 공여체 및 단백질에 대한 수용체 프로브 사이의 거리의 변화를 측정하고, 이와 같이 정제에 대한 요구없이 단백질의 근처 생리적 상태의 구조 변화를 모니터링하는데 사용될 수있다. <img alt="그림 1" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51895/51895fig1highres.jpg" width="500"> 그림 1. 흡수와 검은 색 킬레이트 테르븀뿐만 아니라 빨간색으로 대표 수용체, 알렉사 488의 발광 스펙트럼. 다수의 발광 피크 테르븀 킬레이트의 각 피크에 대한 날카로운 좁은 배출 범위를 알 수 있습니다. 이 패턴이 테르븀 셉터 형광체의 다양한 사용되도록 허용 테르븀 더 발광을 보여주지 그 범위 내에서 민감화 발광의 측정을 용이하게한다. 와 아주 잘 겹쳐 nm의 486에서 테르븀의 발광 피크 이 사이에 발생하는 형광 공명 에너지 전달을 허용 알렉사 488 bsorption 피크. 515 nm의 파장은 테르븀 방출 피크 사이의 골짜기에서, 그리고 확실히 520 nm 인 알렉사 488의 발광 피크 근처로이 쌍 민감화 방출을 탐지하는 우수한 선택이다. 수용체 피크 근처에있는 바람직하지만, 그렇지 필요-565의 나노 여전히 또한 테르븀 방출을 검출하지 않고 알렉사 488 방출을 감지 할 수 있습니다. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="374"><tbody><tr height="27"><td height="27" style="height:27px;width:147px;"> 채택 형광 </td><td style="width:45px;"> R 0 (A) </td><td style="width:183px;"> 방출 파장 (nm) </td></tr><tr height="23"><td height="23" style="height:23px;width:147px;"> 아토 465 </td><td align="right" style="width:45px;"> 36 </td>3px; "&gt; (508) </tr><tr height="22"><td height="22" style="height:22px;width:147px;"> 형광 </td><td align="right" style="width:45px;"> 45 </td><td align="right" style="width:183px;"> 515 </td></tr><tr height="22"><td height="22" style="height:22px;width:147px;"> 알렉사 488 </td><td align="right" style="width:45px;"> 46 </td><td align="right" style="width:183px;"> 515 </td></tr><tr height="22"><td height="22" style="height:22px;width:147px;"> 알렉사 680 </td><td align="right" style="width:45px;"> 52 </td><td align="right" style="width:183px;"> 700 </td></tr><tr height="22"><td height="22" style="height:22px;width:147px;"> 알렉사 594 </td><td align="right" style="width:45px;"> 53 </td><td align="right" style="width:183px;"> 630 </td></tr><tr height="22"><td height="22" style="height:22px;width:147px;"> 알렉사 555 </td><td align="right" style="width:45px;"> 65 </td><td align="right" style="width:183px;"> 565 </td></tr><tr height="22" style="height:22px;width:147px;"> 를 Cy3 <td align="right" style="width:45px;"> 65 </td><td align="right" style="width:183px;"> 575 </td></tr></tbody></table> 표 1 LRET 기증자 11로 테르븀 킬레이트를 사용하는 일반적으로 사용되는 수용체의 형광의 목록입니다. 도너 및 억 셉터는 AMPA 수용체의 수용성 작용제 결합 도메인에 연결되었을 때 R 0의 값을 측정 하였다. 그것은 각각의 새로운 시스템이 연구되고 다시 R 0 값을 측정하기에 적합합니다. <img alt="그림이" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51895/51895fig2highres.jpg" width="500"> 도 2에 제시된 LRET 방법 개요. (A) AMPA 수용체는 리간드 - 결합시에 형태 적 변화를 겪는다 세포막 단백질이다. 대합 조개 껍질 모양의 리간드 - 양방향찾아내는 도메인은 빨간색으로 여기 원으로. (B) 단백질에 결합하지 AMPA의 리간드 결합 도메인은 오픈 형태 (왼쪽)에 존재합니다. 글루타메이트 리간드 바인딩 할 때, 단백질은 리간드 (오른쪽)의 주위에 닫습니다. LBD에 대한 증거가 될 부위에서 형광을 배치하여,이 형태 적 변화의 본성은 형광 수명에 영향을 미칠 것이다 형광 변화 간의 거리로 볼 수있다. (C) 라벨링 전체 세포, 관심의 단백질뿐만 아니라 배경 막 단백질 양의 라벨링 (왼쪽)이 발생할 수있는 경우. 단백질 분해 효소 절단 후, 관심있는 단백질에서 LRET 신호가 배경 신호 그대로 (오른쪽)를 떠나 인해 가용성 단편의 릴리스로 사라집니다. 이러한 배경 신호는 원시 신호로부터 감산 될 수있다.

<table><tbody><tr><td>LanthaScreen 티올 반응성 Tb 킬레이트</td><td>생명 기술</td><td>PV3579</td><td></td></tr><tr><td>수용체 플루오로포어-플루오레세인-5-말레이미드</td><td>생명 과학&nbsp;</td><td>F-150</td><td>수용체의 선택은 특정 실험에 따라 다릅니다.</td></tr> 수용<tr><td>체 플루오로포어-알렉사 플루오르 488 C5 말레이미드</td><td>생명 기술&nbsp;</td><td>A-10254</td><td>수용체의 선택은 특정 실험에 따라 다릅니다.</td></tr> 수용<tr><td>체 플루오로포어-Alexa Fluor 555 C2 Maleimide</td><td>Life Technologies&nbsp;</td><td>A-20346</td><td>특정 실험에 따라 수용체의 선택이 달라집니다.</td></tr><tr><td>Acceptor fluorophore-Alexa Fluor 594 C5 Maleimide</td><td>Life Technologies&nbsp;</td><td>A-10256</td><td>수용체의 선택은 특정 실험에 따라 다릅니다.</td></tr> 수용<tr><td>체 플루오로포어-Alexa Fluor 680 C2 Maleimide</td><td>Life Technologies&nbsp;</td><td>A-20344</td><td>수용체의 선택은 특정 실험에 따라 다름</td></tr><tr><td>QuantaMaster 3-SS</td><td>Photon Technology International</td><td></td><td>분광형광측정기는 밀리초 범위의 수명을 측정할 수</td></tr> 있는 <tr><td>FluoreScan 2.0</td><td>Photon Technology International</td><td></td><td>Data Acquisition Software가 원고에 사용되는 펄스 여기를 가져야 합니다. 형광 기기</td></tr><tr><td>Origin 8.6</td>과 함께 제공되는 소프트웨어 <td>OriginLab</td><td></td><td>Origin은 프로토콜에 사용되는 데이터 분석 소프트웨어입니다. 다른 유사한 데이터 분석 소프트웨어를 사용할 수 있습니다</td></tr><tr><td>. 석영 큐벳</td><td>Starna Cells, Inc</td><td>3-Q-10</td><td></td></tr><tr><td>스티어 바&nbsp;</td><td>Bel-Art Products</td><td>F37119-0007</td><td>세포를 현탁액으로 유지하기 위해 큐벳에 사용됩니다. 큐벳에 맞는 모든 교반 막대를 사용할 수 있습니다.</td></tr></tbody></table>

발광 공명 에너지는 포유 동물 세포에 표현 막 단백질의 구조 변화를 연구에 전송

Luminescence Resonance Energy Transfer to Study Conformational Changes in Membrane Proteins Expressed in Mammalian Cells

발광 공명 에너지 전달, 또는 LRET는, 10 ~ 100 (A)의 거리 범위 내에서 단백질 두 사이트들 사이의 거리를 측정하는 데 사용하는 강력한 기술이다. 다양한 조건 하에서 결찰 거리를 측정함으로써, 단백질의 구조 변화가 용이하게 평가 될 수있다. LRET, 란탄, 대부분 킬레이트 테르븀과 같은 이상 도너 전용 발광 수명 여러 셉터 형광체를 사용할 수있는 유연성 및 쉬운 방법으로서 민감화 셉터 방출을 검출하는 계기로 이점을 수득, 도너 형광 물질로서 사용 또한 도너 전용 신호를 검출하는 위험없이 에너지 전이를 측정한다. 여기서는 막 단백질 발현 및 본래 포유 동물 세포의 표면 상에 정량 LRET를 사용하는 방법을 설명한다. 우리는 LRET의 형광 쌍 사이에 단백질 분해 효소 절단 부위를 소개합니다. 원래 LRET 신호를 얻는 후, 해당 사이트의 단리는 단백질에서 특정 LRET 신호를 제거우리가 정량적으로 절단 후 남아있는 배경 신호를 뺄 수 있도록 관심. 이 방법은 더 중요한 생리 학적 측정은 단백질의 정제를 필요로하지 않고 제작 될 수 있습니다.

란탄 공여체와 성공적인 LRET 측정은 밀리 초 시간 범위에서만 수명 도너를 가져야한다. 도너 및 억 셉터 모두로 표지 단백질 민감화 LRET 방출 수명. 배경 감산도 3 이후 마이크로 범위의 수명과 함께, 현저하게 짧을 수 (시간이 지남에 안정되어 있어야 수명 증가 벽개 결과 프로테아제 것 즉, 더 이상 프로테아제 절단이 완료도 4임을 보여주는)을 변경하지. LRET 신호 사이트 중 하나의 세트로부터 오는 경우, 배경의 감산 후 얻어진 발광 수명은 단일 지수 수명을 제공한다. 구조 변화를 측정 할 경우, 특정 LRET 신호 측정도 3의 오차 밖에 수명 변화를 표시한다. 측정 에러는 에러의 전파에 의해 계산 될 수있다수명의 착용감과 관련된 s의. 수학 식 4, 수명 τ에 기재된 감쇠 지수 함수의 최소 수에 데이터를 피팅 한 후 결정될 수있다. LRET 쌍 테스트 조건이 ...

우리는 여기에 우리가 기증자와 수용체 형광 사이트 사이의 단백질 분해 효소 절단 부위를 소개 향상된 발광 공명 에너지 전달 (LRET) 방법을 설명합니다. 이 변형은 우리가 단백질의 정제없이 막 단백질의 연구를 허용 관심 막 단백질에서 발생하는 특정 LRET 신호를 획득 할 수있다.

Luminescence Resonance Energy Transfer, or LRET, is a powerful technique used to measure distances between two sites in proteins within the distance range ...

다음 실험의 전반적인 목표는 생리학적 상태에서 막 단백질의 확인 변화를 측정하는 것입니다. 이는 막 단백질의 부위 특이적 표지를 통해 LRE 수명을 측정하여 두 부위 사이의 거리를 측정함으로써 달성됩니다. 두 번째 단계로, 리간드를 추가하여 측정할 수 있는 확인 변화를 유도합니다.다음으로, 적절한 프로테아제를 첨가하여 4층 중 하나를 절단하고 배경 신호를 얻습니다. 궁극적으로, 결과 상주 에너지 전달로 인한 형광 수명의 변화를 측정하여 단백질 구조에서 발생하는 확인 변화를 측정할 수 있습니다. X extra crystallography와 같은 기존 방법에 비해 이 기술의 주요 장점은 이 방법을 사용하면 생리학적 상태에서 단백질의 동적 변화를 측정할 수 있다는 것입니다.이 방법은 수축성 라이드 수용체 또는 아세이 감지 이온 채널에 대한 통찰력을 제공할 수 있지만 NICO 수용체와 같은 다른 유형의 단백질에도 적용할 수 있습니다. 우리는 특히 포유류 세포에서 막 단백질의 확인 변화를 연구하는 맥락에서 발광, 응력 및 에너지 전달 기술을 보여줄 것입니다. 제 학생 인 Dino와 Swara Swami는 실험을 시작하기 전에 절차를 시연 할 것입니다.단백질 내에서 가능한 구조적 변화를 반영할 수 있는 라벨링 부위를 선택하는 것이 중요합니다. 가능하면 단백질 또는 상동 단백질의 결정 구조를 사용하여 이러한 결정을 내리십시오. 선택한 잔류물의 곁사슬이 표면에 노출되고 Fluor fours에 접근할 수 있도록 잔류물을 선택하여 단백질을 라벨링할 수 있습니다.단백질 염기서열에서 허용하는 경우 단백질에서 시스틴 중 하나를 특이적으로 절단할 수 있는 단백질 분해 효소 절단 부위를 포함합니다. 단백질을 보수적으로 돌연변이시켜 트롬빈 또는 인자 10(도입된 시스틴에 가까운 서열)을 가지며 단백질 분해효소 절단에 접근할 수 있도록 하는 부위를 소개합니다. 절단 시 도입된 시스틴 중 하나가 나머지 단백질과 분리되도록 하는 부위를 선택하십시오.어떤 경우에는 돌연변이된 시스틴(cystine) 옆에 두 개의 절단 부위가 필요할 수 있습니다. 측정되는 예상 거리 범위를 기준으로 범위가 플로어 4 쌍의 R 0의 0.5에서 1배 사이가 되도록 4층 플로어를 선택합니다. 이를 통해 일반적으로 약 35옹스트롬 범위에 대해 훨씬 더 긴 수명을 갖는 배경을 더 쉽게 뺄 수 있으며 적절한 층 4 쌍은 공여체로 킬레이트이고 Alexa 5 94는 53 옹스트롬의 R 0을 가진 수용체입니다.관심 단백질이 선택되면 접시 바닥에 완충액을 피펫팅하여 HEK 세포를 분리합니다. 그런 다음 세포를 스핀다운하고 펠릿을 3ml의 세포외 완충액에 재현탁합니다. 다음으로, 기증자의 세포를 배양하고 그 바닥을 받아들입니다.등몰의 4는 실온에서 1시간 동안 회전기에서 최종 농도 100-300나노몰까지 도달합니다. 라벨링 후, 세포외 완충액으로 세포를 3-4회 세척하여 결합되지 않은 형광을 제거하고 펠릿을 2ml의 새로운 세포외 완충액에 재현탁합니다. 세포의 lre를 측정하려면 세포 현탁액을 최소 부피가 1ml인 석영 vete로 옮기고 광발광 분광계의 여기 파장을 donor fluoro four의 흡광도 범위로 설정합니다.방출 파장을 적절하게 설정합니다. 그런 다음 방출 감지 길이를 예상 LRE 수명의 최소 3배로 설정하여 수명이 긴 구성 요소가 누락되지 않도록 하고 일관된 결과를 보장하기 위해 99개의 스윕을 최소 3회 스캔합니다. 결과를 텍스트 파일로 저장한 다음 리간드 추가에 대한 반응으로 단백질의 확인 변화를 측정합니다.리간드를 추가하고 이 새로운 조건에서 동일한 샘플에 대해 각각 99회 스윕을 최소 3회 수행합니다. 그런 다음 적절한 프로테아제를 최대 5단위까지 첨가합니다. 분열이 완료되고 수명 동안 더 이상의 변화가 보이지 않을 때까지 LRE 데이터를 분석하기 위해 약 2-3시간 동안 3회 연속 스캔을 수행합니다.먼저 평균값을 Y축에 형광 강도가 있고 x축에 수명이 마이크로초 단위인 선 그래프로 설정하여 수용체의 감광 방출 수명을 나타내는 곡선을 만듭니다. 플롯의 Y축을 로그 스케일로 변경합니다. 그런 다음 플롯 메뉴에서 레이어 컨트롤 대화 상자를 열고 배경 평균이 포함된 데이터를 레이어 내용 목록으로 전송합니다.다음으로, 수학 메뉴에서 간단한 수학 함수를 사용하여 배경의 꼬리 끝이 원시 데이터의 끝 끝과 겹쳐져 단백질 절단 전후의 배경 신호가 남을 때까지 필요에 따라 배경 데이터를 곱하거나 나눕니다. 그런 다음 간단한 수학 함수를 다시 사용하여 초기 원시 LRE 신호에서 정렬된 백그라운드 신호를 빼고 데이터를 지수 감쇠에 맞춥니다. 레이저 펄스가 끝난 후 피팅이 시작되도록 시작 경계를 설정합니다.그런 다음 select fitting function 대화 상자에서 exponential decay를 선택하여 단일 exponential decay에 대한 방정식에 수명을 맞춥니다. 여기서 Y는 형광 강도를 나타내고, Y 0은 시스템의 노이즈로 인한 배경 강도를 나타냅니다. A는 신호 강도, T는 형광 수명, X는 시간, X 0은 시간 오프셋입니다.마지막으로 X를 0으로 고정합니다. 피팅 함수를 시작하고 데이터에서 얻은 수명을 사용하여 데이터를 피팅합니다. 임업 방정식을 사용하여 4층 사이의 거리를 계산합니다.라하네 기증자를 사용한 성공적인 LRE 측정은 밀리초 시간 범위에서 기증자 수명만 가져야 합니다. 확인 변화를 측정할 때 특정 LRE 신호는 측정 오류 이외의 수명 변화를 표시해야 하며, 이는 수명 맞춤과 관련된 오류의 전파에 의해 계산될 수 있습니다. donor와 accepter 모두로 표지된 단백질에 대한 sensitized LRE 방출의 수명은 밀리초 범위의 수명으로 현저하게 짧아질 것입니다.background, subtraction, protease cleavage 후에는 시간이 지남에 따라 안정되어야 하는 수명이 증가하여 protease cleavage가 완료되었음을 나타냅니다. LRE 신호가 한 세트의 사이트에서만 오는 경우 배경을 뺀 후 결과 방출 수명은 단일 지수 수명을 제공해야 합니다. 이 기술을 한 번 숙달하면 제대로 수행하면 4-5시간 안에 완료할 수 있습니다.이 절차를 시도하는 동안 개발 후 스테로이드 매개변수, 파장 및 스테로이드 속도를 모니터링하는 것이 중요합니다. 이 기술은 신경 생리학적 상태에서 막 단백질의 구조적 변화를 연구하기 위한 길을 열었습니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Bioengineering

생명공학

우리는 하나의 세포에서 형광을 사용하여 conformational 변화의 특정 사이트 분석과 함께 막 단백질의 이온 전달의 속도론을 측정하는 방법을 설명합니다. 이 기술은 이온 채널 전송기 및 이온 펌프에 적응하고 단백질 subunits 사이의 거리 제한을 결정하기 위해 이용하실 수 있습니다.

막 단백질의 Conformational 역학 검사 현장에서 사이트 이동 형광 라벨링과

우리는 우리가 살아있는 세포의 공 촛점 이미징에 의해 소포체 (ER)에 거주 형질 전환 형광 단백질의 분포와 이동을 조사하는 데 사용하는 이미징 방법을 설명합니다. 우리는 또한 ultrastructurally이 세포 내 구획의 구조에 대한 자신의 표현의 효과를 분석 할 수 있습니다.

배양 된 세포의 소포체 하위 도메인의 시각화

단백질 사이의 상호 작용은 모든 세포 과정에 기본적이다. 생물 발광 공명 에너지 전달을 사용하여, 단백질의 쌍 사이의 상호 작용이 생균에 실시간으로 모니터링 할 수있다. 또한, 병원성 돌연변이의 효과가 평가 될 수있다.

생물 발광 공명 에너지 전달을 이용하여 살아있는 세포에서 단백질 - 단백질 상호 작용을 조사

우리는 단일 T 림프구에서 힘 조절 단일 수용체-리간드 결합 역학과 칼슘 신호의 실시간 이미징을 동시에 측정하는 기술을 설명합니다.

형광 생체막 포스 프로브 : 하나의 세포에서 수용체 - 리간드 속도론의 동시 정량 및 바인딩에 의한 세포 내 신호

pH가 민감한 형광으로 막 단백질의 세포 외 도메인에 레이블, superecliptic pHluorin (-9 월), 세포 내 현지화, 표현, 인신 매매를 결정할 수 있습니다. 촬상 전반사 형광 현미경 (TIRFM)으로 단백질을 -9 월 표지 주연 ER 및 세포막에서 단백질 농도의 정량 분석을 가능하게한다.

pHluorin 태그가 수용체를 활용하여하는 세포 현지화 및 인신 매매를 모니터링하기

단백질 단백질 상호 작용은 생물 학적 시스템에 대 한 중요 한 고 단백질 복합물의 기능과 역학에 대 한 통찰력을 제공 하는 바인딩 활동의 연구. 형광 공명 에너지 전달 및 중지 흐름 기법을 사용 하 여 복잡 한 단백질의 운동 매개 변수를 수량화 하는 방법을 설명 합니다.

체 외 형광 공명 에너지 전달에 밀리초 시간 규모에서 단백질 복합물의 역학을 공부 하는 사용 하 여

단일 분자 형광 에너지 전달은 리보소말 단백질 합성 시 tRNA 역학을 추적하는 방법입니다. 개별 리보솜을 추적함으로써, 불동성 집단 집단이 식별되어 메커니즘에 빛을 비추게 됩니다. 이 방법은 다른 많은 복잡한 생물 시스템에서 동적 기능 관계를 밝히기 위해 일반적으로 생물학적 형성 변화를 추적하는 데 사용할 수 있습니다. 단일 분자 방법은 평균 효과로 인해 기존의 앙상블 방법에 의해 접근할 수 없는 비비율 제한 단계 및 낮은 인구밀도키 중간체를 관찰할 수 있다.

리보솜 단백질 합성의 단일 분자 형광 에너지 전송 연구

우리는 현대 형광 라벨링 기술을 사용하여 살아있는 세포에서 멤브레인 수용체 역학을 연구하기 위해 Förster 공명 에너지 전송 (FRET)과 결합 된 라이브 셀 이중 색 형광 교차 상관 분광법 (FCCS)을 수행하기 위해 실험 프로토콜 및 데이터 분석 워크플로우를 제시합니다.

살아있는 세포에서 단백질 단백질 상호 작용 및 단백질 역학을 연구하기 위한 이중 색 형광 교차 상관 분광법

이 연구는 라벨링 사이트 선택, 염료 선택, 수집 및 데이터 분석을 포함한 FRET 매핑의 방법론을 자세히 설명합니다. 이 방법론은 단백질 시스템에서 결합 부위, 형태 변화 및 동적 운동을 결정하는 데 효과적이며 기존 3-D 구조 정보와 함께 수행 할 때 가장 유용합니다.

Förster 공명 에너지 전달 매핑: 글로벌 구조적 특징을 밝히기 위한 새로운 방법론

이 연구는 비천연 아미노산(UAA) 통합을 통한 부위 특이적 표지를 사용하여 G 단백질 결합 수용체(GPCR)에 대한 단일 분자 형광 공명 에너지 전달(smFRET) 실험을 수행하는 자세한 절차를 제시합니다. 이 프로토콜은 smFRET 샘플 준비, 실험 및 데이터 분석을 위한 단계별 가이드를 제공합니다.

단일 분자 FRET를 사용한 막 수용체의 구조적 역학 시각화

이 프로토콜은 살아있는 세포에서 14-3-3 단백질과 CRAF 키나아제의 상호 작용을 측정하기 위한 BRET 기반 분석을 설명합니다. 이 프로토콜은 셀 준비, BRET 배출량 판독 및 데이터 분석을 위한 단계를 간략하게 설명합니다. 적절한 대조군을 식별하고 분석 최적화를 위한 문제 해결을 위한 결과의 예도 제시됩니다.

살아있는 세포에서 14-3-3 단백질과 CRAF의 상호 작용을 측정하기 위한 생물발광 공명 에너지 전달(BRET) 기반 분석

학습하세요 포유동물 세포에서 막 단백질의 구조 변화를 측정하는 개선된 LRET 기법을. 프로테아제 절단 부위를 도입하여 정제 없이 생리학적 상태에서 단백질 역학을 실시간 관찰할 수 있습니다.

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