Name: 쥐의 눈물샘을 조작 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-11-18T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 56 s
Description: 배우세요 쥐 눈물샘 발달을 ex vivo 배양과 면역형광 현미경으로 분석하는 방법을. 신호전달 경로 조작을 통해 단백질 발현 변화를 연구하여 안구 건강 연구에 기여합니다.

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저자는 UCSF 자원 할당 프로그램이 제공하는 자금을 인정하고 싶습니다.

모든 동물의 작업은 국립 보건원 (National Institutes of Health)의 실험 동물의 관리 및 사용을위한 설명서의 권장 사항을 엄격히 준수하에 수행되었다. 이 프로토콜은 캘리포니아 대학의 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC), 샌프란시스코에 의해 승인되었습니다. 1. 마우스 배아 눈물샘 (LG) : 수확 및 이외에 Microdissection <ol><li> , 과학 연구 윤리위원회의 기관 동물의 승인 절차를 수행하면 해당 배아 일에 수확 배아 자궁 전위에 의해 확인 다음, 상승 CO 2 흡입 임신 CD-1 (또는 유전자 변형) 여성을 초과 안락사. 질 플러그 검색 E0의 날을 지정합니다. 참고 : 눈물샘 (LGS)은 이후 E14 하나의 꽃 봉오리 단계에서 수확 할 수있다. 그러나, E16 (5-10 싹) 배아는 체외 문화에 대한 가장 일관된 결과를 제공합니다. </li><li> V를 소독70 % 에탄올을 사용하여 마우스의 측면 entral. 피부를 조이고 무균 수술 가위로 중간 선에서 절개를; 피부의 실수로 복강을 노출 복막. 100 U / ㎖ 페니실린과 100 μg의가 / ㎖ 스트렙토 마이신이 보충 된 각각의 자궁 뿔과 장소 차가운 PBS에서 (인산염 완충 식염수) 또는 DMEM의 F12 미디어의 상단에있는 mesometrium을 따라 절단하여 2 자궁 뿔을 제거합니다. </li><li> 집게를 사용하면 (# 5), 양막 낭에서 배아를 제거하고 차가운 PBS를 포함하는 두 번째 멸균 페트리 접시에 놓습니다. 눈이나 머리 부분을 만지지 않도록주의하십시오. </li><li> transillumination 기지와 해부 현미경에 배아를 놓습니다. 1.7 - 배아 &lt;E17 경우, 단계 1.5을 수행합니다. 배아 경우&gt; E17는 다음과 같이 따라서 1.8 단계로 진행, 도움이 될하지 않고 반드시 할 수있다. </li><li> 바로 아랫 부리 아래의 몸통 (단계 1, 그림 2) 날기에서 머리를 절단GA 멸균 메스 (# 10 블레이드). 하악이 해부 접시에 지금이되도록 머리를 돌립니다. 머리와 약 ¼ 뇌 (2 단계, 1 차 컷, 그림 2)의 등 쪽을 제거하는 메스를 안정시키기 위해 집게를 사용하여 -이 연골 E15 주위에 경직되면 특히 중요합니다. </li><li> 메스는 눈 사이의 코를 관통 할 수 있도록 머리의 방향을. 눈은 별도의 절반 (2 단계 2 차 컷, 그림 2)에 지금 그래서, 헤드의 중심을 잘라주십시오. </li><li> 두 # 5 집게 사용하여 머리의 절반을 과잉 조직 (그림 2 단계 3 참조)를 제거합니다. (눈의 낮은 후방 모서리에 위치) LG는이 제거 과정에서 손실되지 않도록 머리를 됐는지 확인하십시오. 초과 뇌, 연골, 비강 조직 주변과 눈 아래를 제거합니다. 선이 시점에서 거의 보이지 때문에, 적절히 과량 조직 수거 t 후에 배향 눈을 보장O LG의 위치를​​ 잃지 마십시오. </li><li> 조심스럽게 뒤, 두 집게로 눈의 하단으로부터 피부를 잡아. 조심스럽게 LG를 노출 할 수있는 집게로 열린 당겨 피부를 제거합니다. LG를 시각화하기 위해 조직 위와 아래에 추가 조명을 사용합니다. 주 : LG 전자, 어두운, 압축 된 중간 엽 내 덕트에 꽃 봉오리 같은 모양으로 구별이 시점에서 볼 수 있어야합니다. </li><li> 조심스럽게 LG 및 관련 중간 엽를 LG 또는 관련 덕트를 잡아 않도록주의하면서, 집게를 사용하여 거리 주변 조직에서 (다이어그램 및 이미지 참조) 해부하기 시작합니다. 글 랜드는 주변 조직에서 무료로되면, 부드럽게 LG 덕트의 바닥에있는 눈을 둘러싸고있는 상피 세포를 양손으로 전체 선을 제거합니다. 압축 된 중간 엽에 상피 invaginates으로 관찰 할 수있는 상피 세포를 둘러싸고있는 중간 엽을 유지하기 위해주의하십시오. 참고 : tissu의 일부 추가 제거즉 (임의의 작은 뼈 조각, 근육, 및 결합 조직) 조직 이웃으로부터 / 성장 인자 시그널링을 피하기 위해 필요하다. </li><li> 문화, 수확 4 - 5 땀샘과 판 당 관련 중간 엽 (LGS 즉시 해부에 도금) RT-PCR 6 RNA 용해 버퍼 100 ㎕ 당 14 땀샘의 최소를 수집합니다. </li></ol> 2. 생체 내 문화 플레이트를 준비 이 절차는 현상 침샘 7,8에 대해 사용 된 것과에 기초한다. <ol><li> 바닥이 유리로 된 50mm 직경의 마이크로 웰 요리 (7) 50 ㎍ / ml의 아스코르브 산 50 ㎍ / ㎖의 홀로 트랜스페린과 문화 미디어 (100 U / ㎖ 페니실린 및 100 ㎍ / ml의 스트렙토 마이신으로 보충) DMEM의 F12 200 μl를 추가합니다. 참고 : 우리가 이전에 배아 타액선의 ​​형태 형성을 극대화하기 위해 그것을 발견 DMEM의 F12가 선택되었다. </li><li> 13mm의 POLYCARB 플로트미디어의 상단에 0.1 μm의 기공 네이트 멤브레인 필터. </li><li> 선택적 단계가 : 3 mg / ml의 최종 농도를 만들어 DMEM / F12와 1 (부드럽게 섞어 200 μL 피펫을 사용하여, 원심 분리를 1 분 동안 기포가 나타나는 경우) : 3-D 라미닌 1 희석. 추가이 15 μL 필터하기 위해 3-D의 라미닌을 희석. 주 :이 희석 상피 브랜칭을 손상시키지 않고 3D 상태 LG를 유지하는데 최적 인 것으로 밝혀졌다. 그러나, LG의 배양을위한 필수적인 것은 아니다. </li><li> 필터에 또는 라미닌에 5 LG - 4 놓습니다. 문화 LGS 생체 24 - 48 시간 (그림 3) 또는 (20) qPCR에 의한 추가 분석을 위해 분 또는 면역 염색 (그림 4) 4 % PFA로 고정한다. 배아 유선 조직의 qPCR의 분석을 위해, Rebustini 등의 알을 참조하시기 바랍니다. 2011 년. 배아 선의 조직의 면역 형광 분석을 위해 다음의 인용을 참조하십시오 : 호프만 외, (2002)과 스타인버그 전자.t 알., (2005). </li></ol> 3. 마우스 출생과 성인 눈물샘 (LG) : 해부 <ol><li> 적절한 동물 윤리위원회의 기준에 따라 출생 후 마우스를 안락사. 출생 후의 새끼 하루 8 세 이하의 경우, 멸균 가위로 머리를 절단에 의해 안락사. 출생 후 8 일 또는 그 이상을 위해, 70 % 에탄올 모피 스프레이. </li><li> LG를 찾으려면, 마우스 위에서 조명과 해부 현미경 아래에 좌우 측면 누워. 참고 : 산후 성인 LG는 경동맥, 턱 근육과 진피 (그림 5 참조)과 마주하고 있습니다. </li><li> 작은 해부 가위를 사용하여, 옆으로 LG를 배치 할 위치에서 표피에 작은 절개를합니다. </li><li> 집게를 사용하여 LG를 노출 귀쪽으로 표피를 당겨 엽니 다. </li><li> 부드럽게 주변 조직에서 LG를 풀고 집게를 사용합니다. </li><li> LG가 주변 조직에서 분리되면, 조심스럽게, 덕트가 LG를 제거덕트와 눈을 둘러싸는 상피 (도 1)를 연결하는 지점에 의해 파지. </li><li> RT-PCR을위한 RNA 용해 버퍼에 LGS를 배치, 또는 면역 염색에 20 분 동안 4 % PFA로 고정한다. </li></ol>

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<li>Takasato, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Directing+human+embryonic+stem+cell+differentiation+towards+a+renal+lineage+generates+a+self-organizing+kidney%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+cell+biology%22%5BJournal%5D)">Directing human embryonic stem cell differentiation towards a renal lineage generates a self-organizing kidney.</a> Nature cell biology. 16, 118-126 (2014).</li>
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</ol>

저자가 공개하는 게 없다.

문화 다양성과는 LG 전 생체 내 개발 연구를위한 중요한 이점을 제공 조작 할 수 있습니다. 이는 연구자가 가설과, 신경, 및 mesencyhmal 내피 세포 기관을 형성하기 위해 상호 작용하는 방법 상피 평가하기 위해 수행 될 수있는 다수의 섭동을 테스트 할 수있는 속도를 포함한다. 이 모델을 이용할 때 그러나,주의의 수가 존재한다. 첫째, 격리 덕분에 선이 더 이상은 신경이나 혈관 (9, 10)에 의해 전달 신호와 함께 작업하는 경우 신호 전달 경로가 테스트되고 영향을 미칠 수있는 주변 혈관이나 신경 계통에 연결되지 않습니다. 둘째, 주변의 비 - LG LG 조직 개발 4 조절 인자를 제공 할 수있다. 이 아닌 다른 중간 엽 조직 구성 요소가 문화 이전에 제거해야합니다 방지하려면. 셋째, 현재 우리는 완전한 cytodifferent에 필요한 조건을 제공 할 수 없다완전한 기능의 조직으로 iation. 이는 생체 내 모든 장기 전 배양의 ...

누선 (LG)는 시력과 건강 유지 및 안구 표면의 세포의 보호에 중요한 수성 눈물 분비를 담당한다. 안구 자극, 빛 감도 특징과 비전 (1)를 감소 수성 결핍 안구 건조 질환 : 가장 일반적이고 쇠약 안구 질환 중 하나 LG 부전 결과. 인간에서 LG는 눈의 측면 끝 위의 궤도에 상주하는 3 - 안구 표면에 5 배설 덕트 예금 눈물. 마우스가 주요 안구 땀샘이 세 켤레를 가지고,이 대부분의 연구는 하나의 배설 덕트를 통해 눈에 여행 눈물 귀 (exorbital)에 눈물샘 (LG)에 위치한 전방 및 복부입니다. 다른 선의 기관과 마찬가지로, LG는 압축 된 중간 엽 내의 단일 상피 꽃 봉오리가 여러 새싹의 라운드와 용 덕트 형성을 겪게되는 상피 분기 형태 형성의 과정을 통해 개발(그림 1) 분비 샘 꽈리와 덕트의 복잡한 상호 연결된 네트워크를 평방 미터. 개발 과정에서 상피 세포는 혈관된다뿐만 아니라 크게와 우수한 경추 신경절 3에서 교감 신경에 의해 pterygopalatine 신경절의 부교감 신경에 의해 낮은 정도에 분포하는. 유형은 신경 상피, 내피 세포 및 간엽 즉 이들 세포 간의 상호 작용은 각각, 함수 및 성인 조직의 유지에 필수적이다. 그러나, 인터 ​​- 셀 타입의 통신이 이러한 프로세스를 안내하는 방법뿐만 아니라 LG 발달 및 재생을 조정 기본 분자 메커니즘은 확실하지 않다. 배아 체외 배양 기술의 출현은 다수의 분기 장기 4의 발달 및 재생 경로의 식별을 허용했다. 생체 외에서 배양하면 연구자에게 (나 기관을 조작하는 기능을 제공기계적인, 유전 물질 또는 화학 물질) 정의 된 조건에서뿐만 아니라 실시간으로 장기 개발 및 세포 - 세포 상호 작용의 특성을. 마우스의 exorbital LG 전자는이 기술에 매우 의무가 최근 연구 개발 2.5을 조절하는 신호 시스템 정의했습니다. 그러나, LG 개발 및 재생을 뒷받침 분자 단서를 이해 할 필요에도 불구하고 현재 가능성 때문에 장기를 단리에 기술적 인 문제로 남아 파악 하였다. 이 논문에서, 우리는 분리와 개발 프로그램을 정의하기 위해 배아 쥐 LG의 체외 배양을 수행하는 방법에 대해 설명합니다.

<table><tbody><tr><td>HEPES가 없는 DMEM/F12</td><td>SH3027101</td><td>Thermo Scientific</td><td></td></tr><tr><td>페니실린-스트렙토마이신</td><td>P0781</td> 소 혈청 A9576 시그마-알드리치 <td></td> 파라포름알데히드 16% 용액에서 추출한 시그마-알드리치 <td></td></tr><tr><td>알부민 용액</td><td></td><td></td> 15710 전자 현미경 과학 1x PBS 인산염 완충 식염수 10x에서 4%로 희석 <td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>BP665-1</td><td>Fisher Scientific</td><td></td></tr><tr><td>인산염 완충 식염수 1x</td><td></td><td></td><td>10x 재고</td></tr><tr><td>홀로-트랜스페린 소</td>에서 준비됨 <td>T1283</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>25&nbsp; 물에 있는 mg/ml 재고 해결책. 일회용 부분 표본을 -20&nbsp에서 동결; &deg;C. DMEM/F12 매체에 최종 농도 50&nbsp까지 첨가; &뮤; g/ml입니다.</td></tr><tr><td>L-아스코르브산 (비타민 C)</td><td>A4544</td><td>시그마-알드리치</td><td>25&nbsp; 물에 있는 mg/ml 재고 해결책. 일회용 부분 표본을 -20&nbsp에서 동결; &deg;C. DMEM/F12 매체에 최종 농도 50&nbsp까지 첨가; &뮤; g/ml입니다.</td></tr><tr><td>BioLite 100 mm 조직 배양 처리 접시</td><td>130182</td><td>Thermo Scientific</td><td>비조직 배양 처리 플레이트도 사용할 수 있습니다.</td></tr><tr><td>substage iluminator가 있는 실체 현미경</td><td>Stemi 2000</td><td>Carl Zeiss</td><td>투과광 베이스가 있는 모든 실체 해부 현미경을 사용할 수 있습니다.</td></tr><tr><td>실체 현미경용 Substage Illuminator Base</td><td>TLB 4000</td><td>Diagnostics Instruments, Inc.</td><td></td></tr><tr><td>팔콘 35&nbsp; mm 조직 배양 처리 접시</td><td></td><td>353001 Corning</td><td>Non-tissue Culture Treated Plates도 사용할 수 있습니다.</td></tr><tr><td>50mm 코팅되지 않은 유리 바닥 접시</td><td>P50G-1.5-14-F</td><td>MatTek Corporation</td><td></td></tr><tr><td>광시야 형광 현미경</td><td>Axio Observer Z1</td><td>Carl Zeiss</td><td>모든 형광 현미경(정립, 도립 또는 입체 해부 현미경)은 부착된 디지털 카메라로 저배율에서 GFP 발현을 모니터링하는 데 사용할 수 있습니다.</td></tr><tr><td>컨포칼 현미경</td><td>TCS SP5</td><td>Leica Microsystems</td><td>컨포칼 현미경은 상세한 세포 구조를 보기 위해 필요합니다. 모든 컨포칼 현미경을 사용할 수 있습니다.</td></tr><tr><td>스위스 마이크로-파인 펜치, #5 (11.2&nbsp; cm)</td><td>17-305X</td><td>Integra LifeSciences Corporation</td><td>상피에서 중간엽을 제거하려면 미세한 팁이 필요합니다. 텅스텐 바늘도 사용할 수 있습니다.</td></tr><tr><td>Dumont 표준 팁 펜치, #5 (11&nbsp; cm)</td><td>91150-20</td><td>Fine Science Tools (USA), Inc.</td> (영문)<td>배아에서 땀샘을 채취하는 데 이상적입니다.</td></tr><tr><td>재사용 가능한 플라스틱 수술 칼 손잡이, 스타일 번호 3.</td><td>4-30</td><td>Integra LifeSciences Corporation</td><td></td></tr><tr><td>스테인리스강 멸균 수술용 칼날, no. 10</td><td>4-310</td><td>Integra LifeSciences Corporation</td><td></td></tr><tr><td>RNAqueous-Micro Total RNA 분리 키트</td><td>AM1931</td><td>Life Technologies</td><td></td></tr><tr><td>Cultrex 3D 배양 매트릭스 라미닌 I</td><td>3446-005-01</td><td>Trevigen</td><td>6 mg/ml 재고 1:1 DMEM/F12</td></tr><tr><td>Timed-pregnant Crl:CD1(ICR)로 희석 생쥐</td><td></td><td>Charles River Labs</td><td>배아는 14일째에 수확됩니다(플러그 발견일이 0일로 지정됨).</td></tr><tr><td>Nucleopore 트랙 에칭 친수막, 0.1&nbsp; &뮤; M 모공 크기, 13&nbsp; mm</td><td>110405</td><td>Whatman</td><td></td></tr><tr><td>Timed-pregnant Pax6-Cre, GFP 마우스</td><td>Tg(Pax-Cre, GFP)1Pgr</td><td>The Jackson Laboratory</td><td>LG를 찾는 방법을 배우기 위한 선택적 마우스.</td></tr></tbody></table>

쥐의 눈물샘을 조작

Manipulating the Murine Lacrimal Gland

누선 (LG)는 각막의 구조 및 기능, 시력에 필수적인 투명한 조직을 유지시키기 위하여 필요한 수성 눈물 분비. 5 관 - 인간의 단일 LG는 3를 통해 안구 표면에 눈물을 전달하는 각각의 눈의 좌우 끝 위의 궤도에 있습니다. 마우스가 주요 안구 땀샘이 세 켤레를 가지고,이 대부분의 연구는 귀에 exorbital 눈물샘 (LG)에 위치한 전방 및 복부입니다. 다른 선의 기관과 마찬가지로, LG는 압축 된 중간 엽 내의 단일 상피 싹이 분비 샘 꽈리와 덕트의 복잡한 상호 연결된 네트워크를 형성 꽃 봉 오리와 덕트 형성의 여러 라운드를 거쳐하는 상피 분기 형태 형성의 과정을 통해 개발하고 있습니다. 이 정교한 과정이 아니라 췌장과 침샘 다른 많은 상피 기관에 설명하고있다. 그러나 LG는 훨씬 더 탐구하고있다 및 형태 형성을 제어하는​​ 메커니즘은 제대로 아래에 있습니다서 있었다. 우리는 모델 시스템으로이 과소 표현이 찾는 해부와 LG 배양과 관련된 어려움의 결과라고 생각한다. 따라서, 우리가 해부 수확 배아 및 산후 LG에 대한 기술과 조직의 체외 배양 방법을 설명합니다.

LG는 상피 분기 형태 형성의 과정을 통해 개발하고 있습니다. E14, E15, E16, E17, 및 P2에서 해부 배아 LGS의 시야 이미지는이 이벤트를 보여줍니다. <img alt="그림 1" fo:content-width="6in" src="/files/ftp_upload/51970/51970fig1highres.jpg" width="600"> 그림 1. LG는 형태 형성 분기 상피의 과정을 통해 개발하고 있습니다. 갓 E14, E15, E16, E17 및 P2에서 해부 배아 LGS의 명 시야 이미지. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51970/51970fig1highres.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <p class="jove_content...

눈물샘 (LG)는 비전과 눈 건강을 유지하기 위해 필요한 눈물의 수성 부품을 생산하는 분기 기관이다. 여기에서 우리는 LG 개발에 참여 경로 신호 해독 쥐 LG 절제술 및 체외 배양 기술에 대해 설명합니다.

The lacrimal gland (LG) secretes aqueous tears necessary for maintaining the structure and function of the cornea, a transparent tissue essential for ...

다음 실험의 전반적인 목표는 눈물샘 발달 중 신호 이벤트의 조작 및 분석을 위해 생체 외 접근 방식을 사용하여 눈물샘 발달을 분석하는 것입니다. 이것은 먼저 16일째 배아의 눈물샘을 해부함으로써 달성됩니다. 두 번째 단계로, 눈물샘 발달을 변화시키는 소분자 억제제 또는 성장 인자를 포함하는 배지, 배양액에 떠 있는 필터에 땀샘을 배치합니다.24시간 후, 분비샘이 고정되고 관심 발달 단백질에 대한 면역 염색이 이루어집니다. 궁극적으로, 생체 외 눈물샘 발달 중 단백질 발현의 변화는 면역형광 현미경으로 분석할 수 있습니다. 이 방법은 눈물샘 발달 분야의 주요 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다.예를 들어, 눈물샘을 정의하는 신호 메커니즘은 무엇입니까? 형태 형성(Morphogenesis) 이 방법의 시각적 시연은 눈물샘(lacrimal gland)이 초기 배아 발달 단계에서 시각적 안내와 위치 파악 연습 없이는 인식하기 어렵기 때문에 시각적 시연이 중요합니다. 배아 마우스에서 눈물샘을 채취하려면 70% 에탄올을 사용하여 배아 날, 14-16세 임신 마우스의 복부 쪽을 살균합니다.그런 다음 피부를 꼬집고 동물의 정중선을 따라 피부를 잘라 복막을 드러내고, 복막을 잘라 복강과 근막을 노출시키고 근막의 양쪽 뿔을 제거하고 차가운 PBS에 넣습니다. 다음으로, 5번 집게를 사용하여 양막에서 배아를 눈이나 머리 부위에 닿지 않도록 주의하면서 차가운 PBS가 들어 있는 두 번째 멸균 페트리 접시로 옮깁니다. 하악골 바로 아래에 있는 몸통에서 머리를 절단한 후 하악골이 해부판에 오도록 머리를 회전시킵니다.그런 다음 집게를 사용하여 머리를 안정시키고 메스를 사용하여 뇌의 등쪽 약 4분의 1을 제거하고, 메스가 눈 사이의 코를 뚫을 수 있도록 머리의 방향을 잡은 다음, 머리의 중앙을 잘라서 눈이 이제 별도의 반쪽이 되도록 합니다. 다음으로, 위와 아래 조명을 사용하여 눈의 뒤쪽 아래쪽 모서리에서 피부를 잡고 집게로 피부를 조심스럽게 당겨 열어 더 어두운 응축 간엽 내의 관에 새싹으로 나타나야 하는 눈물샘을 노출시킵니다. 눈물샘 및 관련 중간엽을 주변 조직에서 멀리 떨어뜨려 조심스럽게 절개하고 눈물샘 또는 관련 관을 잡지 않도록 주의하십시오.그런 다음 눈물샘이 주변 조직에서 벗어나면 눈물샘 기저부에서 눈을 둘러싼 상피를 부드럽게 잡고 전체 눈물샘을 제거합니다. 상피가 침범하는 응축된 조직으로 관찰될 수 있는 상피를 둘러싼 Meen chi를 보존하도록 주의하십시오. 그런 다음 배양 배지와 소분자 억제제 또는 관심 성장 인자를 포함하는 페트리 접시에서 필터당 4-5개의 눈물샘을 24시간 동안 배양하여 출생 후 또는 성인 마우스에서 눈물샘을 채취하고 먼저 눈 부위에 70%에탄올을 분사합니다.그런 다음 위에서 조명을 비추는 해부 현미경 아래에 동물의 측면이 위로 향하게 놓습니다. 다음으로, 작은 해부 가위를 사용하여 눈물샘이 있어야 하는 위치에서 측면으로 표피를 절개합니다. 그런 다음 표피를 귀쪽으로 당겨 열어 경동맥, 철퇴근 및 진피로 둘러싸인 출생 후 및 성인 마우스에서 눈물샘을 노출시키고 집게로 주변 조직에서 눈물샘을 부드럽게 느슨하게 한 다음 눈물샘이 주변 조직 그립에서 해제되면 관과 눈을 둘러싼 상피가 연결되어 분비샘을 조심스럽게 제거하는 곳입니다.마지막으로, 면역 염색 전에 20분 동안 4% 파라 포름알데히드로 눈물샘을 고정합니다. 관심 있는 발달 단백질의 경우, 눈물샘은 상피 분지 형태 형성 과정을 통해 발달합니다. 배아 14일, 15일, 16일, 17일과 출생 후 둘째 날에 해부된 배아 눈물샘의 이 명시야 이미지는 이 과정을 보여줍니다.상피의 크기가 커짐에 따라 중간엽의 양은 이 이미지에 표시된 것처럼 감소합니다. 눈물샘은 생체 내 배양 조건에서도 in vivo 배양 내에서와 유사한 방식으로 발달하며, 새로 절부된 눈물샘은 면역형광 분석을 위해 고정할 수 있습니다. 예를 들어, 이 이미지에서는 상피 신경과 혈관의 염색이 있습니다.배아에서 야생형 CD 1 배아의 16 눈물샘은 출생 후 또는 성인 PAC 6 CRE 마우스에 의해 눈물샘에서 GFP의 발현을 관찰할 수 있으며, 이러한 형질전환 동물에서 눈물샘의 신속한 식별 및 해부를 용이하게 합니다. 이 방법은 눈물샘 발달에 대한 통찰력을 제공할 수 있지만 자가면역 질환이나 방사선 치료로 인한 눈물샘 기능 장애와 같은 다른 시스템에도 적용할 수 있습니다. 이 비디오를 시청한 후에는 생체 외 배양 분석을 위해 쥐 눈물샘을 찾고 분리하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다.

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연구

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Biology

생물학

이 비디오는 토끼에서 안구건조증 모델을 만들기 위해 눈샘의 안와와 안와, 두 부분을 제거하는 수술 절차를 설명합니다. 이 토끼 모델은 안구 표면 항상성, 병태 생리학 및 안구 치료학 연구에 적합합니다.

Superior Lacrimal Gland Removal: 토끼 모델에서 Superior Lacrimal Gland의 palpebral 및 orbital 부분을 제거하는 수술 기법

이 비디오에서는 토끼 모델에서 큰 하눈물샘을 제거하는 수술 절차를 설명하여 동물의 눈물 생성에 미치는 영향을 연구합니다.

토끼 모델에서 하부 눈물샘 제거: 토끼 눈 안와에서 더 큰 하눈물샘을 제거하는 수술 절차

이 비디오는 상눈물샘의 안와엽에 Concanavalin A를 주입하여 토끼 모델에서 안구건조증을 유발하는 절차를 설명합니다. 개발된 모델은 안구건조증 치료를 위한 다양한 약물의 효과를 연구하는 데 유용합니다.

Performing Injection into Orbital Lobe of Superior Lacrimal Gland: A Technique for Inducing Eye Dry Skin in Rabbit Model(우수 눈물샘의 안와엽에 주사 수행: 토끼 모델에서 안구건조증을 유발하는 기술)

눈물 샘 (LG)에는 α-평활 근 액 틴를 발현 하는 두 가지 세포 유형 (α Sma)이 있습니다. MECs는 많은 선 조직에서 발견 되는 외 배 엽 기원 이며, 심 낭은 내 배 엽 기원의 혈관 평활 근 세포입니다. 이 프로토콜 뮤 린 LGs에서 MECs 및 심 낭을 분리 합니다.

성인 뮤 린 눈물과 턱 밑 동맥에서 Myoepithelial 세포의 고립

이 기사에서는 궤도 해구 시스템의 모든 부분에 concanavalin A를 주입하여 토끼에서 급성 또는 만성 안구 건조 증을 유도하는 방법의 개발을 설명합니다. 이미 보고된 방법보다 우수한 이 방법은 약리학 적 제제의 연구에 적합한 안구 건조증의 재현 가능하고 안정적인 모델을 생성합니다.

코카나발린A에 의해 유도된 수성 결핍 안구 건조증의 토끼 모델: 약물 효능 연구에 적용

토끼에 있는 만성 안구 건조병을 외과로 모든 궤도 해구땀샘을 제거하여 유도하기 위하여 새로운 접근이 제시됩니다. 이전에 보고된 것과 는 구별되는 이 방법은 눈물 생리학 및 병리생리학 및 안구 치료제를 연구하는 데 적합한 수성 결핍 안구 건조증의 안정적이고 재현 가능한 모델을 생성합니다.

토끼의 완전한 다크레오아데네절제술을 이용한 중증 안구건조증 모델 구축

성체 눈물샘(LG) 줄기세포를 위한 삼차원, 무혈청 배양 방법은 LG 오가노이드 형성의 유도 및 아시나 또는 덕트 유사 세포로의 분화를 위해 잘 확립되어 있다.

눈물샘 줄기세포를 위한 삼차원, 무혈청 배양 시스템

이 프로토콜은 일차 마우스 및 인간 조직에서 유래한 눈물샘 오가노이드를 확립, 유지, 유전적으로 변형, 분화, 기능적으로 특성화 및 이식하는 방법을 설명합니다.

마우스 및 인간 눈물샘 오가노이드의 확립, 유지, 분화, 유전자 조작 및 이식

여기에서는 눈물샘 기능 장애의 쥐 모델을 확립하여 수성 결핍성 안구건조증 연구의 기초를 제공합니다.

스코폴라민에 의해 유도된 눈물샘 기능 장애가 있는 쥐 안구건조증 모델

여기에서는 안와외 및 안와하부눈물샘을 절제하여 수성 결핍성 안구건조증의 마우스 모델을 확립하고 수성 결핍성 안구건조증에서 안구 표면의 변화를 평가하는 방법을 제시합니다.

수성 결핍성 안구건조증 Mouse Model 구축

배우세요 쥐 눈물샘 발달을 ex vivo 배양과 면역형광 현미경으로 분석하는 방법을. 신호전달 경로 조작을 통해 단백질 발현 변화를 연구하여 안구 건강 연구에 기여합니다.

쥐의 눈물샘을 조작

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