Name: 생리 녹음 및 황열병 모기의 미각 부속 기관의 RNA 시퀀싱 Aedes aegypti (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-12-30T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 9 s
Description: 학습하세요 황열병 모기 Aedes aegypti의 미각 신경 반응을 전기생리학 기법으로 기록하고 RNA 시퀀싱으로 유전자 발현을 분석하는 방법을. 이 연구는 쓴맛 화합물에 대한 감각 수용 메커니즘을 규명하여 해충 방제 전략 개발에 기여합니다.

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저자는 통계 분석을 위해 USDA, Agricultural Research Service, Henry A. Wallace Beltsville Agricultural Research Center, Biometrical Consulting Service, Beltsville, MD의 Bryan T. Vinyard에게 감사를 표합니다. 이 작업은 국방부가 AFPMB(Armed Forces Pest Management Board)를 통해 자금을 지원하는 DWFP(Deployed War Fighter Protection) 연구 프로그램의 JCD에 대한 보조금으로 부분적으로 지원되었습니다.

1. 양육 애. aegypti 성인 <ol><li> 얕은 트레이에 약 ¾ 인치 물에 해치 계란. 과밀 수용은 성인의 크기를 줄일 수 있습니다. </li><li> 후면 유충 25 ° C (12 헥토 리터 : 12-HD)에 지상 물고기 음식으로 공급. 주 : 과잉 사료가 생존율을 감소시킬 수있다. </li><li> 매일 파스퇴르 피펫에 의해 개별적으로 번데기를 제거하고, 따라서 24 시간 연령 그룹을 설립, 미세 메쉬 뚜껑 플라스틱 접시에 작은 봉쇄 버킷 내부 (5.5 cm × 9cm)를 전송합니다. </li><li> 케이지 하우징의 화면 벽에 배치면 공에 의해 피드 성인 모기의 10 % 자당 용액 애벌레와 같은 광주에서 27 ° C 및 70 % 상대 습도 환경 챔버의 모기. </li><li> 전기 생리학의 경우 5 ~ 10 일 이전 동물을 사용합니다. 일반적으로, 더 큰 동물 나은 결과를 산출 할 것이다. RNA 분리의 경우, 5-10 일 이전 범위의 단일 24 시간 연령 그룹 내에있는 동물을 사용합니다. </li></ol><ol><li> 선택된 감각 뉴런에서 최소한의 활동을 이끌어 전해질 (예 : 1 ~ 10 mM의)의 적절한 농도를 결정합니다. 10 mM의 염화나트륨 또는를 1mM의 KCl 실험을 시작할 때 기본 활동을 테스트하기 위해 합리적인 전해질 수 있습니다. </li><li> 혼자 전해질에 비해 스파이크 활동에 거의 또는 전혀 영향을 미치지 각 실험 적당한 용매 화학 (그렇지 않으면 물 사용 에탄올 또는 DMSO)에 용해. 10 % 에탄올, 1 % DMSO의 최종 농도는 적당한 출발 농도이다. </li><li> 곤충의 먹이 방어벽이나 자극을 잘 설명되어 제어 화학 물질 (달콤한에 대한 쓴 또는 자당에 대한 예를 들어, 말라리아) 적절한를 선택합니다. </li></ol> 3. 전기 생리학 (8 팁 기록 1 그림) <ol><li> 기계적으로 유리 모세관을 당겨 양식 유리 전극. 열을 최적화하고 적절하게 모양 recordi를 형성하기 위해 유리를 끌어 설정을 당겨NG 전극. 조심스럽게 그 대상을 sensillum 봉투 좁아서하지만 인접 구조물과의 접촉을 피하기 위해 충분히 작은 개구 전극 팁을 만들 해부 현미경 집게를 사용하여 유리 전극의 단부를 끊는. </li><li> 현미경 하에서 시각적 형태에 의해 식별 및 팁 기록 반복성을 보장하기 위해 목표 sensilla / sensillum 위치. 준비 동물 전극 항목의 각도에서 sensilla에 무료로 액세스를 허용합니다. </li><li> -20 ° C에서 냉동실에 콜드 마취 성인 곤충. 차가운 온도에 과다 노출에 의해 주변 신경 세포의 손상을 방지. 유리 슬라이드에 면도날 셀로판 테이프의 좁은 스트립을 잘라. 좁은 스트립을 사용하여 유리 슬라이드에 고정시킨다 전체 곤충. </li><li> 무관심 (접지) 전극 역할을하는 등의 흉부 또는 눈에 화학적으로 날카롭게 텅스텐 와이어를 삽입합니다. </li><li> 관심의 자극 솔루션 단계 3.1에서 만든 유리 전극을 입력합니다. 삽입 된 주사기를 사용하여 캡을 채우기뽑아 끝에서 illary는 끝을 무디게합니다. 헐 끝을 잡고, 모든 공기 방울을 쓸어 넘기. 기록 및 자극 전극 역할을하는 단계 3.1에서 만든 유리 전극에 실버 와이어 (chloriding 옵션)를 삽입합니다. </li><li> 곤충에 연락처 chemoreceptive의 sensilla에서 녹음 용으로 설계된 프리 앰프에 전극을 연결합니다. 이 프리 앰프 (300 HZ-3 kHz의 대역 통과 필터)는 가능한 한 도입 자극에 가까운 신경 세포의 활동을 캡처 안정 시간을 줄일 수 있습니다. 수집, 저장 및 스파이크 기록 소프트웨어를 구비 한 마이크로 컴퓨터를 이용하여 전기 신호를 분석한다. 주 : 대폭 신호 대 잡음비를 개선 할 수있다 적절히 녹화 설정을 접지. </li><li> 기능성을 보장하기 위해 제어 용액 (전해질 만)으로 sensilla을 자극한다. 모든 준비에 대한 자극 이슈 다음 200 밀리 초를 시작 스파이크를 계산합니다. </li><li> 용량 - 반응 연구를 제외하고, 모든 실험에 대해 테스트 약품의 순서를 랜덤 화,편견을 제거합니다. 용량 - 반응 연구를위한, 실험 화학 물질의 농도를 증가시키는 sensilla 노출. 적절한 복구를 보장하는 자극 사이의 3 분의 최소 허용. 참고 :이 요구 사항은 곤충과 sensilla에 따라 다를 수 있습니다. 임계치는 표준 오차가 시험 된 최소 농도의 표준 오차와 중복되지 않는 것을위한 농도로 정의된다. </li></ol> 4. RNA의 분리 및 시퀀싱 (그림 2) <ol><li> 단단히 스냅 캡 튜브에 맞게 조직 disruption.Prepare 동반 된 RNase없는 방앗 전에 드라이 아이스에 그들을 냉각하여 밀착 RNAse가없는 방앗를 준비합니다. 적극적으로 초과 응축을 방지하기 위해 해부하지 않는 폐쇄 수집 튜브를 유지합니다. </li><li> 필터링 흡입기를 사용하여, 30 ~ 40 냉간 마취 모기 (° C의 냉동고 -20에서 15 초) 감기 무대와 종류의 성별을 배치합니다. 장소 동물 맛 부속을 손상하지 않도록 날개를 잡고, 아래 쪽 지느러미.</li><li> 미세 두 쌍의 집게를 사용하여 해부 현미경 수컷 또는 암컷에서, 페어링 라벨라 또는 tarsi 해부 및 인접 조직의 포함을 제한한다. 참고 : 500 쌍 라벨라 총 mRNA의 약 800 ~ 1,000 나노 그램을 얻을 수 있습니다. (400) 개인 tarsi (5 세그먼트 각) 총 mRNA를 1,200-1,800 나노 그램을 얻을 수 있습니다. </li><li> 허걱 - 포셉 한 쌍, 가볍게 내부 stylets 노출 라벨라에 바로 인접 모기 코를 잡고. 컬렉션 포셉의 다른 쌍을 사용하여, 라벨라를 제거하고 차가운 수집 관의 측면에 조직을 추가합니다. </li><li> 포셉 한 쌍, 가볍게 경골 먼저 눈꺼풀 세그먼트의 교차점에 모기 다리를 잡고. 포셉의 다른 쌍을 사용하여, tarsi를 제거하고 차가운 수집 관의 측면에 조직을 추가합니다. 참고 : 원 원치 않는 조직의 인터페이스에서 계정에 세포 유형을 가져 가라. 조직은 이웃의 포함을 제한하는 것이 중요하지만, 그것은 조직의 원하는 부분을 생략하지 않는 것도 중요하다. Fi를최종 샘플은 정확하게 관심의 전체 기관을 대표해야합니다. 수집 집게 정확하게 벗기거나 만 원하는 조직을 잡아 해방 할 수 있도록 쥐고 집게로 정확한 경계를 만듭니다. </li><li> 주기적으로 튜브의 맨 아래에있는 조직을 유지하기 위해 9,000 XG에서 간단히 0 ° C 원심 분리기 컬렉션 튜브를 스핀 다운. 수분이 해부하는 동안 수집 튜브에 축적되면, 수집 된 조직을 충당하기 위해 추운 트리 졸 시약 50 ㎕를 추가합니다. </li><li> 오염 방지 실험실 마커를 사용하여 명확하게 하나의 RNase가없는 1.5 ml의 수집을위한 각 조직 유형에 대한 캡 튜브 스냅 레이블을 붙입니다. (트리 졸의 경우 미세 조각) 1.5 ML 튜브 랙 및 액체 질소를 사용하여 한 미세 분말로 조직을 분쇄 동결. 한 번 반복합니다. 1 ml의 트리 졸의 전체 볼륨을 가져와 와동에 의해 지상 조직을 재현 탁. </li><li> 클로로포름 200 ㎕ 씩 첨가하고 잘 혼합한다. 실온에서 5 분 후, 12 ° C에서 15 분 동안 11,000 XG에서 원심 분리기에서 스핀 다운. 주의하여게놈 DNA 필터 컬럼에 직접 수성 층을 추가합니다. 5 분 동안 11,000 X g에서 스핀 다운. 통해 흐름과 피펫으로 섞어의 RNase없는 70 % 에탄올의 동일한 볼륨을 추가합니다. RNA 수집 컬럼에 액체를 전송하고 제공된 지침에 따라 RNA 추출을 계속합니다. </li><li> 정량화 및 정밀 분광 광도계에 총 RNA의 순도를 평가하고 표준 RNA 시퀀싱 방법으로 진행합니다. </li></ol> 5. 정량적 RT-PCR RNA 시퀀싱의 검증 (그림 3) <ol><li> 예측 된 시퀀스 추정 화학 감각 풍부하고 유전자 기능 모두에서의 동적 범위에 걸쳐 상대적인 유전자 발현 수준을 비교하기 위해 가능한 한 많은 유전자를 선택한다. </li><li> 각각의 표적 유전자에 대한 디자인 프라이머 쌍은 특정 100-180 염기쌍 PCR 생성물을 증폭한다. 세트 당 적어도 하나의 프라이머를 확인하여 비특이적 gDNA를 증폭을 제외하면 인트론 경계에 걸쳐있다. 대안 적으로, 게놈 오염을 줄이기 위해 DNase의 처리를 사용한다. </li><li> 수집이전 섹션에 설명 된대로 곤충 조직. 모든 QRT-PCR 반응을 완료하는 데 충분한 RNA를 제공 할 필요가 얼마나 많은 조직 계산한다. 참고 : 생물 세중 및 기술 세중의 반응은 결과에서 최대의 확신을 제공 할 것입니다. </li><li> 생물학적 기술을 모두 각 각 대상 유전자와 평균에 대한 (CT [대상] -ct [참조]) 복제 - X 대상으로 상대 유전자 정량을 계산합니다. 생물학적 복제물 사이 코네티컷 값을 정상화 하우스 키핑 유전자 (들)을 사용하여 상대 표현의 비교에서 Y 축 스케일을 뿌리. </li><li> RNA-SEQ와 회귀 - 기반, 부트 스트랩 절차 등가 구 반복적 각 조직으로부터 데이터에 적용을 사용 QRT-PCR 데이터 세트의 유사도를 평가한다. 주 :이 절차는 관측 된 RNA-SEQ와 QRT-PCR 데이터들로 생성 될 수있는 최소 &quot;유사성의 영역&quot;을 식별하고, qRT- 의해 측정 된 상대적 유전자 발현을 허용PCR-RNA는 서열 번호 상대적 유전자 발현의 측정에 통계적으로 동일하게 간주한다. </li></ol>

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미각 sensilla에서 녹음 활동 전위의 가장 어려운 측면이있는 응답을 결정하는 것입니다 &quot;정상적인.&quot;주어진 곤충 종, 총 수 및 미각 수용체 뉴런의 감도 (GRNs)에 대한 첫 번째 시간을 기록하는 하나의 미각 sensillum 팁을 사용하면됩니다 가능성이 알 수 없습니다. 많은 예비 녹음을 먼저 범위 및 테스트하는 화학 물질의 농도를 결정해야합니다. 이 경우에, 우리는 단일 GRN DEET (도 1)의 낮은 농도에 반응하여 관찰되었다. 다음으로, 우리는 쓴맛 또는 다른 곤충 혐오 것으로 알려진 화학 물질의 농도의 범위 내에서 동일한 sensillum 응답을 검사하고 유사한 스파이크 형상 및 진폭 (도 1)를 관찰했다. 이러한 관찰은 하나의 GRN 하위 유형이 혐오 화합물에 반응하는 것이 좋습니다. 비교를 위해, 우리는 mosqu에서 먹이를 자극하는 것으로 알려져 설탕 화합물을 테스트비슷한 스파이크가 발생하면 itoes 확인합니다. 우리는이 경우...

DEET, 피카, 시트로 넬랄 및 IR3535 등의 화합물을 효과적으로 1,2 aegypti 중요한 질병 벡터 Aedes을 포함하여 모기를 격퇴하는 것으로 나타났다. 우리는 모기 반발과 관련된 세포를 결정하기 위해 특정 미각 sensilla과 관련된 감각 뉴런에서 활동 전위를 기록한다. 이러한 조직에서 발현 유전자의 하류 서열과 결합, 우리는 개선 발수 기능에 대한 새로운 화합물을 스크리닝하기 위해 가장 가능성이 세포의 반응을 매개하는 유전자를 식별 할 수있다. RNA-SEQ 신속 유전자 발현에 시간적, 공간적 변화를 추적하기위한 표준이되고, 강력한 도구입니다. RNA-서열은 곤충 화학 감각 부속 분석과 기관은 크게 유전자 (6)에 의해 기존의 PCR 기반 검색 유전자에 개선, 여러 종의 곤충 3-5 분자 수용체를 발견하는 데 사용되었다. 곤충은 가장 다양한 동물 클래스를 나타냅니다, 사전많은 기회를 공무 원은 유전자와 독특한 표현형 사이의 연결을 공부한다. RNA-서열 기술은 살아있는 곤충 조직에 이용 될 수있다. 마찬가지로, 미각 uniporous sensilla 감각 세포 내에서 전기 생리 학적 기록은 다양한 곤충 종으로 달성 될 수있다. 이 두 기술의 페어링은 연구자가 관찰 화학 감각 표현형에 포함 된 세트 유전자를 좁힐 수 있습니다. 다른 종은 특정 과제를 제시하지만, 화학 감각 수용체 유전자와 화학 감각 적응 사이의 연결을 알릴 수있다. 크기와 화학 감각 sensilla의 형태는 가변적이며 노이즈를 줄이고 반복 신호를 식별하는 활동 전위를 기록 할 때 광범위한 문제 해결이 필요할 수 있습니다. 화학 감각 기관의 해부는 사소한 또는 섬세하고 시간이 곤충의 형태와 크기에 따라 소비 할 수있다. 고품질 RNA의 이러한 복구 중에 특정의 안료를 피로서뿐만 아니라, 약간의 문제가 필요할 수조직 수집. 행동 시험을 통해 발수 화합물의 효과를 입증하는 직접적이고 유익한 반면,이 방법은 시간의 동작 메커니즘에 대해서 집중적 넓다. RNA-서열과 결합 전기 생리학은 곤충 회피 행동을 원동력의보다 구체적인 분석이 가능합니다. 화학 차별 &quot;툴킷&quot;곤충 종 식별되면,보다 구체적인 시도는 알려진 방충제이 가능에 향상시킬 수 있습니다. 이러한 행동에 대한 책임을 감각 세포의 수용체와 관련된 단백질은 직접 화학적 스크리닝을 위해 이종 표현 될 수있다. 또한, 분자 모델링 화학 물질이 수용체 7에서 강한 반응을 이끌어내는 것이다 예측할 수있다. 화학 감각 조직의 좁은 세트의 모든 활성 유전자의 스냅 샷은 다른 종에서 비슷한 유전자를 식별하는 데 유용 할 수있다. 서열 상 동성 및 표현시 사용milarities, 연구자들은 대부분 곤충에 광범위하게 효과가 기피제에 대한 응답을 매개 분자 수용체의 세트를 형성 할 수있다. 우리는 곤충 화학 감각 경로를 해체 연구자를 돕기 위해 비 모델과 경제적으로 중요한 곤충의 neuroethology으로 탐구하는 것이 더 설득하기 위해 다음과 같은 프로토콜을 제시한다.

<table><tbody><tr><td>유리 모세관</td><td>A-M 시스템</td><td>628000</td><td>표준, 1.5mm X 0.86mm, 4"</td></tr><tr><td>은 와이어</td><td>AM 시스템</td><td>7875.015</td><td>" 베어</td></tr><tr><td>텅스텐 와이어</td><td>Alfa Products</td><td>369</td><td>0.127mm 직경</td></tr><tr><td>미세 집게</td><td>Fine Science Tools</td><td>11252</td><td>#5SF Inox</td></tr><tr><td>냉장 스테이지</td><td>BioQuip Products</td><td>1429</td><td>Chill 표</td></tr><tr><td>전치 증폭기</td><td>Syntech</td><td>미각 프로브</td><td></td></tr><tr><td>전기 생리학</td> 용 프리 앰프 소프트웨어 전기 <td>생리학</td><td>용 Syntech</td><td>Autospike</td> 소프트웨어</tr><tr><td>TetraMin 생선 식품</td><td>테트라</td><td>열대어 식품 과립</td><td>생선 식품 분쇄 미세 분말</td></tr><tr><td>TRIzol</td><td>Life Technologies</td><td>15596-026</td><td>RNA 분리 시약</td></tr><tr><td>RNeasy Plus 미니 키트</td>: <td>Qiagen</td><td>74136</td><td>에는 gDNA 제거기 및 RNeasy 스핀 컬럼</td></tr>, <tr><td>Nanodrop 분광 광도계</td>, <td>Nano Drop Products</td>, <td>ND-1000</td><td>탁상용 분광계</td></tr><tr><td>, R 통계</td><td>프리웨어(Robert Gentleman 및 Ross Ihaka 작성)</td>가 포함되어 있습니다 <td>www.r-project.org</td><td>R 컴퓨팅 환경에서 stats 패키지의 lm 함수와 equiv.boot 함수, equivalence 패키지를 사용합니다.</td></tr><tr><td>1.5ml 튜브 랙</td><td>에버그린</td><td>240-6388-030</td><td>액체 질소를 몇 개의 빈 우물에 부어 조직을 얼리고 갈아줍니다.</td></tr><tr>유봉 <td>Grainger</td><td>6HAX6</td><td>RNase</td>가 없는 원심분리기가 <td>포함된 1.5ml 수집</td></tr><tr><td></td> 튜브 <td>Thermo Scientific</td><td>11178160</td><td>1.5ml 튜브의 바닥에 보관하기 위해 냉동 조직을 회전시킵니다.</td></tr><tr><td>Primer-BLAST Primer Designing tool</td><td>NCBI</td><td>해당 사항 없음</td><td></td></tr></tbody></table>

생리 녹음 및 황열병 모기의 미각 부속 기관의 rna 시퀀싱 aedes aegypti

Physiological Recordings and RNA Sequencing of the Gustatory Appendages of the Yellow-fever Mosquito Aedes aegypti

모기의 감각 뉴런에서 활동 전위의 전기 생리학적 기록은 연구자에게 이러한 질병 벡터의 화학적 인식을 엿볼 수 있는 기회를 제공합니다. 우리는 최근 암컷 이집트숲모기(Aedes aegypti)의 표지에서 직접적인 전기생리학적 연구를 통해 쓴맛 퀴닌뿐만 아니라 DEET 및 기타 기피제에 반응하는 쓴맛 감지 뉴런을 확인했습니다. 이러한 미각 수용체 뉴런 반응은 이러한 접촉 화학수용 조직에서 발현되는 추정 화학수용 유전자를 밝히기 위해 남성과 여성의 라벨라 및 타르시 샘플에서 총 mRNA의 염기서열분석을 촉발했습니다. tarsi의 샘플은 남녀 모두에 대해 pro-type, meso- 및 metathoracic subtype으로 나뉘어졌습니다. 그런 다음 동일한 조직 샘플에 대해 qRT-PCR을 수행하여 데이터 세트를 검증하고 통계적 방법을 사용하여 두 방법 간의 결과를 비교했습니다. 분자 기능을 다루는 연구는 이제 모기의 퇴치제 인식에 관여하는 유전자를 결정하기 위해 특정 유전자를 표적으로 삼을 수 있습니다. 이러한 수용체 경로는 해로운 바이러스의 확산을 억제하기 위해 숙주 탐색 행동을 방해하는 새로운 기피제를 스크리닝하는 데 사용할 수 있습니다.

애에서 활동 전위의 추적 기록. aegypti 미각 sensilla (도 1) 화학 약품의 범위와 직접 자극의 효과를 입증한다. 이 기술은 합리적인 시간 범위 (일반적으로 적은 500 ms보다)를 통해 주어진 진폭과 지속 시간의 스파이크를 계산하여 어떤 자극하는 화학 물질에 대한 응답을 정량화하는 데 사용할 수 있습니다. 추적 기록은 실험 조건 주어진 조건에서 쉽게 재현 할 수 있어야합니다. 그렇지 않으면, 관찰 생리적 반응은 시험 종의 개인간 드문 표현형을 나타낼 수있다. 원시 RNA-SEQ 데이터 둥근 RPKM으로 제시되기 전에 여과 및 정확한 매핑을 필요 (매핑의 수 백만 분 사체 킬로 길이 당 판독 맵핑 읽기) 또는 FPKM (백만 분 사체 킬로 길이 당 판독 단편의 개수는 매핑 읽기) 숫자 값 (그림 2). 의 차이두 RNA-SEQ 정규화 방법은 두 정액 10,11<...

전기 생리 학적 시험에 의해 측정 Aedes aegypti의 주요 부속 미각 유전자 발현을 추정하기 위해 두 가지 방법을 사용하여, 우리는, 추정되는 쓴맛 반발 화합물 신경 반응을 기본 유전자 세트를 확인했다.

생리 녹음 및 황열병 모기의 미각 부속 기관의 RNA 시퀀싱 Aedes aegypti

Electrophysiological recording of action potentials from sensory neurons of mosquitoes provides investigators a glimpse into the chemical perception of ...

이 절차의 전반적인 목표는 곤충에서 미각 뉴런의 반응을 관찰하고 미각 조직에서 유전자 발현을 측정하는 것입니다. 이것은 먼저 서로 다른 농도의 여러 맛에 대한 특정 미각 모발의 반응을 기록함으로써 수행됩니다. 두 번째 단계는 미각 조직을 조심스럽게 해부하는 것입니다.그런 다음 샘플을 성별과 부속물별로 분리합니다. 다음으로, 각 조직 샘플에서 총 RNA를 분리하고 차세대 염기서열분석 및 QPCR을 위한 CD NA 제제를 만듭니다. 마지막 단계는 유전자 발현 데이터를 분석하고 발현된 화학 요법 감각 유전자가 곤충의 취향에 대한 생리적 반응을 어떻게 중재하는지 등의 가설을 형성하는 것입니다.궁극적으로, 전기생리학적 기록은 곤충 미각 시스템의 수용 범위를 보여주는 데 사용되며 미각 조직의 RNA 염기서열 분석은 미각 수용의 가장 중요한 유전적 구성 요소를 강조하는 데 사용됩니다. 일반적으로 이러한 방법을 처음 접하는 개인은 곤충 화학요법의 크기가 작기 때문에 어려움을 겪을 것입니다. 감각 부속물.작은 곤충 장기를 해부하거나 기록하는 것은 환자의 연습이 이러한 기술을 마스터하는 열쇠입니다. 이 절차를 시작하려면 해부 현미경 아래에 유리 모세관이 있는 피펫 풀러에서 얇은 팁 기록 전극을 당깁니다. 전극 끝을 조심스럽게 부러뜨려 개구부가 대상 센텀을 둘러쌀 수 있을 만큼 충분히 넓지만 주변 구조물과 접촉하지 않을 만큼 충분히 작도록 합니다.다음으로, 영하 20도의 냉동실에서 2-4마리의 성충 곤충을 20초 동안 마취합니다. 그 후, 작은 셀로판 테이프 스트립이 있는 커버 슬립을 사용하여 곤충 중 하나를 고정시킵니다. 현미경 아래로.형태와 위치로 표적 감지를 식별하고 전극 진입 각도에서 동물에 자유롭게 접근할 수 있도록 동물의 방향을 지정합니다. 그런 다음 텅스텐 와이어를 등쪽 흉부에 삽입합니다. 접지 전극으로 사용하려면, 팁의 유리 전극을 관심 있는 자극 용액으로 채웁니다.팁을 누른 상태에서 기포를 튕겨냅니다. 은선을 전극에 삽입하여 기록 및 자극 전극 역할을 합니다. 그런 다음 전극을 프리 앰프에 연결하면 뉴런 활동을 포착하기 위한 침전 시간을 줄일 수 있습니다.프리 앰프는 스파이크 레코딩 소프트웨어가 장착된 컴퓨터에 연결되어 전기 신호를 수집, 저장 및 분석합니다. 이제 제어 솔루션으로 centum을 자극하여 기능을 보장하십시오. 자극 아티팩트 이후 200밀리초부터 시작하는 스파이크를 계산합니다.용량 반응 결과를 얻습니다. 센텀을 증가하는 실험 화학 물질의 농도에 노출시키고 적절한 회복을 보장하기 위해 자극 사이에 최소 3분 간격을 두십시오. 이 절차에서는 드라이 아이스로 얕은 쿨러를 준비합니다.조직 채취 튜브의 경우 다양한 유형의 조직 채취를 위해 1.5 millil RNA free snap cap tube에 라벨을 붙입니다. 과도한 결로 현상을 방지하기 위해 튜브를 닫아 두십시오. 다음으로 영하 20도의 냉동고에서 15-30초 동안 30-40마리의 모기를 마취합니다.그런 다음 마취된 모기를 차가운 단계로 옮기고 성별로 분류합니다. 곤충의 날개를 잡고 맛 부속지가 손상되지 않도록 주의하여 곤충의 등쪽을 아래로 향하게 합니다. 해부 현미경으로 표지 바로 근처에 있는 mosquito pro Bois를 부드럽게 잡아 수컷 또는 암컷에서 쌍을 이루는 Bella 또는 tarsi를 해부합니다.한 쌍의 집게를 사용하여 내부 스타일러스를 노출시키고 다른 한 쌍의 집게로 레이블을 제거하는 Bella. 그런 다음 조직을 족근 조직용 냉장 수집 튜브에 넣습니다. 경골과 첫 번째 족근 분절의 접합부에서 모기 다리를 부드럽게 잡고 족근을 제거합니다.그런 다음 조직을 차가운 라벨이 붙은 튜브에 넣습니다. 9, 000배 중력에 섭씨 0도 분리기에 있는 1 분 동안 관의 바닥에 조직을 지키기 위하여 수집 관을 돌린다. 해부 중 수집 튜브에 수분이 축적되면 수집된 조직을 덮고 보호하기 위해 50마이크로리터의 저온 트리올 시약을 추가합니다.액체 질소가 들어 있는 1.5ml 튜브 랙에 튜브를 얼립니다. 그 후, 조직이 파괴되기 전에 드라이 아이스에서 냉각하여 단단히 맞는 RNA free 유봉을 준비합니다. 그런 다음 조직을 고운 가루로 갈아서 한 번 더 반복합니다.트리올의 총 부피를 1ml로 가져오고 다시 만듭니다. 와류로 지면 조직을 매달아 놓습니다. 그런 다음 지상 조직에 200마이크로리터의 클로로포름을 넣고 철저히 섞습니다.실온에서 5분 후 섭씨 4도의 원심분리기에서 11, 000배 중력에서 15분 동안 회전시킵니다. 수성층을 게놈 DNA 필터 컬럼에 직접 조심스럽게 추가합니다. 그런 다음 5분 동안 11, 000배 중력으로 스핀다운합니다.동일한 부피의 RNAs free 70% 에탄올을 플로우 스루에 추가하고 피펫팅으로 혼합합니다. 액체를 RNA 수집 컬럼으로 옮기고 RNA 추출을 계속합니다. 그 후, 정밀 분광 광도계에서 전체 RNA의 순도를 정량화 및 평가하고 표준 RNA 염기서열분석 방법을 진행합니다.보좌관의 E GTI gustatory illa의 활동 전위의 추적 기록은 다양한 화학 물질에 대한 직접 자극의 효과를 보여줍니다. 이 기술은 500밀리초 미만의 합리적인 시간 범위에 걸쳐 주어진 진폭과 지속 시간의 스파이크를 계산하여 자극 화학 물질에 대한 반응을 정량화하는 데 사용할 수 있습니다. 이 세 가지 스파이크는 민감도가 다른 세 가지 감각 뉴런 하위 유형에 해당합니다.RNA-Seq 데이터 세트에 대한 생물학적 복제는 조직 수집의 비용 또는 난이도에 따라 제한될 수 있습니다. Q-R-T-P-C-R은 더 적은 비용으로 전체 유전자 발현의 작은 부분 집합을 검증할 수 있는 기능을 제공하며 더 적은 소스를 필요로 합니다. 왼쪽 패널에 나란히 표시된 RNA는 RN Aeq에 의해 결정된 상대 발현과 Q-R-T-P-C-R에 의해 결정된 상대 발현을 비교한 것입니다.이 두 가지 방법은 유전자 풍부도 추정을 위해 서로 다른 화학 물질에 의존합니다. 오른쪽 패널에 그래픽으로 표시된 통계적 동등성 함수는 각 사례의 확실성 한계를 보여줍니다. 이 비디오를 시청한 후에는 RNA 분리를 위해 곤충 조직을 해부하고 살아있는 곤충의 미각 털에서 신경 신호를 기록하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

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생리 녹음 및 황열병 모기의 미각 부속 기관의 RNA 시퀀싱 Aedes aegypti

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