Name: 실험 경추 척수 손상의 신경 전구체 세포 및 자기 조립 펩티드의 시너지 사용 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-02-23T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 57 s
Description: 배우세요 경추 척수 손상 치료를 위한 자기 조립 펩티드와 신경 전구체 세포의 복합 요법을 쥐 모델에서. 이 방법은 조직 재생과 기능 회복을 촉진하여 척수 손상 연구에 중요한 플랫폼을 제공합니다.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

우리는 건강 연구 (CIHR)의 캐나다 연구소에서이 작품에 대한 자금 지원을 인정하고 싶습니다 공헌 Krembil 가족 재단, 신경 수리의 핼 버트 의자 및 재생, 필립과 페기 DeZwirek, 고든 야오도 2를 . 클라우스 Zweckberger는 &quot;도이치 Forschungsgesellschaft&quot;(DFG)의 연구비 지원을 받았다.

주 : 다음 실험 프로토콜 대학 건강 네트워크 (토론토, 캐나다)의 동물 관리위원회의 승인 관리 및 동물 보호의 캐나다 협의회에 의해 제조 된 실험 동물의 사용에 대한 가이드에 설립 정책에 따라하였습니다 . 1. 자궁 동맥류 클립 타박상 / 압축 모델 <ol><li> 수술기구 및 오토 클레이브는 70 % 알코올 욕에서 악기 바꾸어 surgcial 전체 과정 동안 멸균 조건을 유지하기 전에. </li><li> (1 : 1)의 조합으로 산소 (O 2), 아산화 질소 (N 2 O)과의 Wistar 래트 (250~270g)을 마취시키다, 및 1.8 ~ 2.2 % 이소 플루 란 가스로 마취 마스크 자발 호흡을 지원한다. 마취 유도를 들어 1 분 동안 5 % 아이소 플루 란으로 시작하여 이후 줄일 수 있습니다. 고통스러운 자극 (예. 발에)함으로써 수술, 마취의 제어 깊이를 시작하기 전에. 지방 연고를 적용눈 건조를 방지하고 이후의 감염을 방지 할 수 있습니다. </li><li> 가열 쿠션 (37 ° C)에 쥐를 넣고 정위 프레임으로 머리를 고정합니다. </li><li> 경추 주위에 수술 부위를 면도하고 포비돈 요오드와 70 % 알코올로 소독. </li><li> 흉부 척추 몸체 (2) (T2)의 눈에 띄는에이 과정에 도달하는 경추 (C2)에서 척추 위의 중간 선 절개를합니다. </li><li> 직접 중간 선에 척추 근육의 바깥 층을 잘라 cranio-꼬리 방향으로 (출혈을 피하기 위해) 및 추가하면이 과정이의 spinosus와 엽층에 도달 할 때까지 퉁명스럽게 깊은 근육층을 해부하다. 견인기를 삽입합니다. </li><li> 후궁 절제술에 대한 목표 수준을 관찰 할 수있는 척추 본체 (T2)의 눈에 띄는이 과정이의 spinosus의 방향을. 식별 및 선택의 박판의 마이크로 수술 준비를 한 후, 엽층과이 과정이의 spinosus을 풀어 ligamenti flavae을 통해 잘라. 마지막으로, C척수 뼈 깎기 측면과 엽층을 통해 UT와 척수 자체의 압축을 피하고, 부드럽게 사람들을 제거합니다. 참고 : 가장 일반적인 수준은 C5 / 6, C6 / 7, 또는 C7 / T1 있습니다. 수술 사망률은 부상의 수준 주동이 더 증가한다. 척추 주위 정맥동에서 출혈 일반적이며 스폰지에주의 압축에 의해 해결 될 수있다. </li><li> 코드를 들려줘하는 클립을 삽입하기 전에 (특히 레벨 C5 / 6시) 클리핑에서 그들을 절약하는 신경 뿌리를 신흥 식별합니다. </li><li> 부드러운 클립 유도를 보장하기 위해, 후크 추체 등의 측면에서 복부 경질를 풀고 클립 복도를 준비합니다. </li><li> 마지막으로, 오픈 클립을 삽입하고 타박상 부상을 달성하기 위해 종료 (급 폐쇄) 스냅인 수 있습니다. 클립 닫는 힘과 클립 폐쇄 기간은 외상의 강도와 압축의 정도를 결정합니다. 일반적으로 사용되는 15~35g과 clippi 사이의 클립 세력은예를 들어 1 분의 NG 기간. (그림 1). </li><li> 클립의 제거 후, ​​2 층에 근육을 적응하고 상처를 닫습니다. </li><li> 마취를 중지하고 흉골 드러 누움에 대한 충분한 의식을 차릴 때까지 지속적으로 관찰 아래에있는 동물 웨이크 업 할 수 있습니다. 마지막으로, 하나의 새장에 쥐를 넣어 수술 후 치료 지침을 따르십시오. </li><li> 동물이 부상 이러한 유형의 심각도 어려움을 겪고 있기 때문에, 수술 후 치료에 특별한주의를 지불해야합니다 : <ol><li> (3 일, 5 일 각각 임상 증상에 따라 대한 프레 놀핀과 멜 록시 캄) 진통제를 관리. </li><li> 3 일 동안 추가 식염수 피하 보내기 (2 회를 50-10 밀리리터). </li><li> 이일 전에 마시는 물에 항생제를 제공하고 7 일 후 수술까지 (예를 들어 Moxifloxacine) </li><li> 방광 기능의 회복이 일정 할 때까지 방광 2-3 회를 짜내만민 명백한. </li><li> 적어도 하루에 한 번 신경 학적 결손 및 운영 동물의 생리 학적 상태를 관찰한다. </li></ol></li></ol> 2. (십사일 부상 후) 구조 조정 정책과의 NPC를 주입 <ol><li> 1.1에 기재된 바와 같이 마취를 유도한다. 1.3, 정위 프레임에 쥐의 머리를 고정 바늘이나 상처 클립을 제거하고 상처 포비돈 요오드와 70 % 알코올로 수술 영역을 소독. </li><li> 조심스럽게, 견인기를 삽입, 척추 주위 근육을 해부 두라에서 현미경으로 흉터 조직을 제거하고 병변 사이트를 다시 노출. </li><li> 1 %의 농도로 준비되는 SAP (W / V) 외 매트릭스 겔을 수행한다. QL6의 구조 조정 정책은 생리 학적으로 적합한 pH는 주입 전에 버퍼링 할 필요가 없습니다. 척수의 구조 조정 정책의 시각화를 들어, QL6 (QL6-FITC)의 형광 유도체를 사용합니다. </li><li> 이 부분들 각각에 분산 된 병변의 중심에있는 SAP (5 마이크로 리터 (μL)을 주입정중선의 2.5 μL 양자. 마이크로 유리 모세관 (100 마이크로 미터 (μm의) 외경 (OD))와 정위 프레임에 연결 해밀턴 주사기를 사용합니다. 날카로운 바늘의 끝으로 조심스럽게 경질을 열고 상처를 입은 척수에 유리 모세관 정위 2mm (mm)를 삽입합니다. </li><li> 부피의 1/3를 주입 한 후, 1.5 mm 깊이로 바늘을 제거한 후 상기 1/3 1mm. 전체 볼륨을 주입 한 후 주사기를 제거하기 전에, 겔 형성을 안정화 5 분을 기다립니다. </li><li> 의 NPC를 생성하려면, 성인을 DsRed 마우스 (또는, 녹색 YFP 긍정적 인 마우스)를 사용하고 격리하고 paraventrical 영역 4,18,21에서 그들을 육성. </li><li> 세포 현탁액에 90 % ~ 생균의 존재를 나타내는 트리 판 블루 염색으로의 NPC 생존력 평가. 성장 매체 (50 X 103 살아있는 세포 / μL)에 세포를 희석 한 후 세포 이식을 위해 그들을 사용합니다. </li><li> 네 2 μl를 확인 (8 μL 총 VOLUME, 2mm 주동이와 부상 사이트의 꼬리가에 좌우 4 × 10 5의 NPC) 척수 주사를 포함. 경질의 개봉 후, 해밀턴 마이크로 유리 모세관에게 척수의 등쪽 표면 아래에 1.5 mm를 삽입하고 세포 현탁액의 2 μl를 주입. 약 0.5 μL / 분 (분)에 주입 속도를 선택합니다. </li><li> 각각의 주입 및 코드 중 모세관의 제거 전에 끝에서, 새로운 세포 부피를 수용하기 위해 연신 적어도 1 분 허용 조직 기다린다. (그림 2) </li></ol> 경막 3. 주입은 성장 인자 응용 프로그램 용 펌프 <ol><li> 세포 생존을지지하는 성장 인자와 뇌척수액 (CSF)을 풍부하게하기 위해, 0.5 μL / hr의 희석율, 0.04의 카테터 직경, 7~14일 걸쳐 서브 durally 성장 인자 희석 마이크로 삼투 펌프를 사용하여 cm 외경, 100 μL의 저장 볼륨. </li><li> 바람직한 성장 인자를 선택(예를 들어, 뇌 유래 성장 인자 (BDGF), 표피 성장 인자 (EGF), 섬유 아세포 성장 인자 (FGF))는, 펌프 6-10 시간 전에 주입을 채우고 37 ℃에서 수욕 펌프 평형. </li><li> 즉시 NPC 주사 한 후, 펌프를 배치하는 피하 홈을 준비합니다. 바람직한 위치는 펌프 자체로 인한 큰 불편을 회피 로컬 thoraco- 복부 영역의 좌우 측면이다. </li><li> 성장 인자의 높은 농도를 얻기 위해, 카테터의 선단이 개방 병변 사이트 주변 끝내는데. 따라서, 인접 상위 또는 하위 레벨의 스킵 - 후궁 절제술을 수행합니다. SCI가 C7 / T1에있을 경우, 예를 들어, C5의 작은 후궁 절제술을 수행한다. </li><li> 피하 홈에 펌프를 넣어 필요한 길이로 카테터를 단축하고 운동 관련 전위를 방지 척추 주위 근육에 여러 봉합 (6.0)로 고정합니다. </li><li> 날카로운 끝 (C5에서, 예를 들어) 경질을 연 후바늘, 경막 하 공간에 카테터를 소개하고 어떤 저항없이 코드를 부상없이 꼬리 방향으로 활공 할 수 있습니다. 예 C6의 생략 된 얇은 판은 카테터의 고정 및 안정화 등의 추가 포인트를 제공합니다. </li><li> 카테터가 원활하게 실행 및 배되어 있지 않은지 확인하십시오. </li><li> 봉합 또는 클립 레이어 닫기에 의해 근육, 피부,. (그림 3) </li><li> 마취를 중지하고 흉골 드러 누움에 대한 충분한 의식을 차릴 때까지 지속적으로 관찰 아래에있는 동물 웨이크 업 할 수 있습니다. 마지막으로, 하나의 새장에 다시 넣을 및 수술 후 치료 지침을 따르십시오. </li><li> 비록, 동물이 시간 시점에서 부분적으로 회복 할 수있는 특수 수술 후 치료를 제공합니다 : <ol><li> (3 일, 5 일 각각 임상 증상에 따라 대한 Buprenorthine과 멜 록시 캄) 진통제를 관리. </li><li> 2 일전까지 물을 병에 항생제를 제공칠일 수술 후 (예를 들어 Moxifloxacine). </li><li> 필요한 아직도 경우, 방광을 압박 계속합니다. </li><li> 쥐가 탈수 나타날 경우 추가 피하로 준다. </li><li> 적어도 하루에 한 번 운영하는 동물의 신경 학적 기능과 생리 학적 상태를 관찰하십시오. </li><li> 2 일전 NPC 주사를 면역 억제 치료를 관리하고 7 일 후 transplanation (미노)과 희생까지 (sandimmune)까지 각각. </li></ol></li></ol> 4. 조직 평가 <ol><li> 관측 시간의 끝 (예. SCI 후 사주) 깊은 마취 (5 % 아이소 플루 란 2 ~ 3 분)에서에서 동물을 희생하고 4 찬 150 ml의 다음 50 ㎖ 감기 (4 ° C) 생리 식염수로 transcardially을 관류 0.1 M 인산 완충 식염수 (PBS)에서 % 파라 포름 알데히드. </li><li> 척수를 제거하고 24 시간 동안 0.1 M 인산 완충 식염수 (PBS)에서 4 % 파라 포름 알데히드에 넣어. </li><li&gt; 48 시간 동안 cryoprotection에 대해 25 % 자당 용액에 척수를 넣습니다. </li><li> &lt;30 ㎛의 두께와 길이 저온부를 제공합니다. </li><li> 배경 사용 DAPI (1,000 일)를 제공하는 모든 세포 핵의 면역 조직 화학 염색하십시오. DsRed의 긍정적 인 NPC의 빨간색 표시, QL-6 FITC는 녹색 표시, 둘 다, 따라서 특별히 염색 할 필요가 없습니다. (그림 4). </li><li> 주사 전자 현미경 (SEM)을 위해 샘플을 2 시간 동안 12 ° C에서 글루 타르 알데히드에 담근 5 분 동안 에탄올 10 % 증분 단계에서 천천히 탈수하고, 1 시간 동안 가압 액체 CO 2 사이펀에 배치하자. 스퍼터 코터를 이용하여 금을 코트 지지체. 히타치 S-3400N 주사 전자 현미경으로 이미지를 가져 가라. (그림 5) </li></ol>

<ol><li>Sekhon, L. H., Fehlings, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epidemiology%2C+demographics%2C+and+pathophysiology+of+acute+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Spine+%28Phila+Pa+1976%29%22%5BJournal%5D)">Epidemiology, demographics, and pathophysiology of acute spinal cord injury.</a> Spine (Phila Pa 1976). 26, S2-S12 (2001).</li>
<li>Fehlings, M. G., Tator, C. H., Linden, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+relationships+among+the+severity+of+spinal+cord+injury%2C+motor+and+somatosensory+evoked+potentials+and+spinal+cord+blood+flow%29%5BTitle%5D)+AND+%22Electroencephalogr+Clin+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">The relationships among the severity of spinal cord injury, motor and somatosensory evoked potentials and spinal cord blood flow).</a> Electroencephalogr Clin Neurophysiol. 74, 241-259 (1989).</li>
<li>Thuret, S., Moon, L. D., Gage, F. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Therapeutic+interventions+after+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Therapeutic interventions after spinal cord injury.</a> Nat Rev Neurosci. 7, 628-643 (2006).</li>
<li>Iwasaki, M., Wilcox, J. T., Nishimura, Y., Zweckberger, K., Suzuki, H., Wang, J., Liu, Y., Karadimas, S. K., Fehlings, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synergistic+effects+of+self-assembling+peptide+and+neural+stem%2Fprogenitor+cells+to+promote+tissue+repair+and+forelimb+functional+recovery+in+cervical+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Synergistic effects of self-assembling peptide and neural stem/progenitor cells to promote tissue repair and forelimb functional recovery in cervical spinal cord injury.</a> Biomaterials. 35, 2617-2629 (2014).</li>
<li>Holmes, T. C., de Lacalle, S., Su, X., Liu, G., Rich, A., Zhang, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extensive+neurite+outgrowth+and+active+synapse+formation+on+self-assembling+peptide+scaffolds%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Extensive neurite outgrowth and active synapse formation on self-assembling peptide scaffolds.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 97, 6728-6733 (2000).</li>
<li>Dong, H., Paramonov, S. E., Aulisa, L., Bakota, E. L., Hartgerink, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Self-assembly+of+multidomain+peptides%3A+balancing+molecular+frustration+controls+conformation+and+nanostructure%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Chem+Soc%22%5BJournal%5D)">Self-assembly of multidomain peptides: balancing molecular frustration controls conformation and nanostructure.</a> J Am Chem Soc. 129, 12468-12472 (2007).</li>
<li>Rivlin, A. S., Tator, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+duration+of+acute+spinal+cord+compression+in+a+new+acute+cord+injury+model+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Surg+Neurol%22%5BJournal%5D)">Effect of duration of acute spinal cord compression in a new acute cord injury model in the rat.</a> Surg Neurol. 10, 38-43 (1978).</li>
<li>Poon, P. C., Gupta, D., Shoichet, M. S., Tator, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clip+compression+model+is+useful+for+thoracic+spinal+cord+injuries%3A+histologic+and+functional+correlates%5BTitle%5D)+AND+%22Spine+%28Phila+Pa+1976%29%22%5BJournal%5D)">Clip compression model is useful for thoracic spinal cord injuries: histologic and functional correlates.</a> Spine (Phila Pa 1976). 32, 2853-2859 (2007).</li>
<li>Fehlings, M. G., Tator, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+relationships+among+the+severity+of+spinal+cord+injury%2C+residual+neurological+function%2C+axon+counts%2C+and+counts+of+retrogradely+labeled+neurons+after+experimental+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Neurol%22%5BJournal%5D)">The relationships among the severity of spinal cord injury, residual neurological function, axon counts, and counts of retrogradely labeled neurons after experimental spinal cord injury.</a> Exp Neurol. 132, 220-228 (1995).</li>
<li>Joshi, M., Fehlings, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+characterization+of+a+novel%2C+graded+model+of+clip+compressive+spinal+cord+injury+in+the+mouse%3A+Part+2.+Quantitative+neuroanatomical+assessment+and+analysis+of+the+relationships+between+axonal+tracts%2C+residual+tissue%2C+and+locomotor+recovery%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Development and characterization of a novel, graded model of clip compressive spinal cord injury in the mouse: Part 2. Quantitative neuroanatomical assessment and analysis of the relationships between axonal tracts, residual tissue, and locomotor recovery.</a> J Neurotrauma. 19, 191-203 (2002).</li>
<li>Joshi, M., Fehlings, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+characterization+of+a+novel%2C+graded+model+of+clip+compressive+spinal+cord+injury+in+the+mouse%3A+Part+1.+Clip+design%2C+behavioral+outcomes%2C+and+histopathology%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Development and characterization of a novel, graded model of clip compressive spinal cord injury in the mouse: Part 1. Clip design, behavioral outcomes, and histopathology.</a> J Neurotrauma. 19, 175-190 (2002).</li>
<li>Cigognini, D., Satta, A., Colleoni, B., Silva, D., Donegà, M., Antonini, S., Gelain, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+early+and+late+effects+into+the+acute+spinal+cord+injury+of+an+injectable+functionalized+self-assembling+scaffolds%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Evaluation of early and late effects into the acute spinal cord injury of an injectable functionalized self-assembling scaffolds.</a> PLoS One. 6 (5), e19782(2011).</li>
<li>Hou, T., Wu, T., Wang, L., Liu, Y., Li, M., Long, Z., Chen, H., Li, Y., Wang, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+prostheses+fabricated+with+motor+neurons+seeded+in+self-assembling+peptides+promotes+partial+functional+recovery+afters+spinal+cord+injury+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+eng+Part+A%22%5BJournal%5D)">Cellular prostheses fabricated with motor neurons seeded in self-assembling peptides promotes partial functional recovery afters spinal cord injury in rats.</a> Tissue eng Part A. 18 (9-10), (2012).</li>
<li>Gelain, F., Cigognini, D., Caprini, A., Silva, D., Colleoni, B., Donegà, M., Antonini, S., Cohen, B. E., Vescovi, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+bioactive+motifs+and+their+use+in+functionalized+self-assembling+peptides+for+NPC+differentiation+and+neural+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Nanoscale%22%5BJournal%5D)">New bioactive motifs and their use in functionalized self-assembling peptides for NPC differentiation and neural tissue engineering.</a> Nanoscale. 4 (9), 2946-2957 (2012).</li>
<li>Liu, Y., Ye, H., Satkunendrarajah, K., Yao, G. S., Bayon, Y., Fehlings, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+self-assembling+peptide+reduces+glial+scarring%2C+attenuates+post-traumatic+inflammation+and+promotes+neurological+recovery+following+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomater%22%5BJournal%5D)">A self-assembling peptide reduces glial scarring, attenuates post-traumatic inflammation and promotes neurological recovery following spinal cord injury.</a> Acta Biomater. 9, 8075-8088 (2013).</li>
<li>Rosner, J., Avalos, P., Axosta, F., Liu, J., Drazin, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+potential+for+cell+therapy+combined+with+growth+factors+in+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Int%22%5BJournal%5D)">The potential for cell therapy combined with growth factors in spinal cord injury.</a> Stem Cell Int. , 826754(2012).</li>
<li>Lu, P., Wang, Y., Graham, L., McHale, K., Gao, M., Wu, D., Brock, J., Blesch, A., Rosenzweig, E. S., Havton, L. A., Zheng, B., Conner, J. M., Marsala, M., Tuszynsky, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long+distance+growth+and+connectivity+of+neural+stem+cells+after+severe+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Long distance growth and connectivity of neural stem cells after severe spinal cord injury.</a> Cell. 150, 1265-1273 (2012).</li>
<li>Karimi-Abdolrezaee, S., Schut, D., Wang, J., Fehlings, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chondrioitinase+and+grwoth+factors+enhance+activation+and+oligodendrocyte+differentiation+of+endogenous+neural+precursor+cells+after+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Chondrioitinase and grwoth factors enhance activation and oligodendrocyte differentiation of endogenous neural precursor cells after spinal cord injury.</a> PLoS One. 7 (5), e37589(2012).</li>
<li>Awad, B. I., Carmody, M. A., Steinmetz, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Potential+role+of+growth+factors+in+the+management+of+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22World+Neurosurg%22%5BJournal%5D)">Potential role of growth factors in the management of spinal cord injury.</a> World Neurosurg. (13), 1875-8750 (2013).</li>
<li>Kojima, A., Tator, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intrathecal+administration+of+epidermal+growth+factor+and+fibroblast+growth+factor+2+promotes+ependymal+proliferation+and+functional+recovery+after+spinal+cord+injury+in+adult+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Intrathecal administration of epidermal growth factor and fibroblast growth factor 2 promotes ependymal proliferation and functional recovery after spinal cord injury in adult rats.</a> J Neurotrauma. 19 (2), 223-238 (2002).</li>
<li>Karimi-Abdolrezaee, S., Eftekharpour, E., Wang, J., Cindi, M. M., Fehlings, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Delayed+trasplantation+of+adult+neural+presursor+cells+promotes+remyelination+and+functional+neurological+recovery+after+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Delayed trasplantation of adult neural presursor cells promotes remyelination and functional neurological recovery after spinal cord injury.</a> J Neurosci. 26 (13), 3377-3389 (2006).</li>
<li>Burdick, J. A., Ward, M., Liang, E., Young, M. J., Langer, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stimulation+of+neurite+outgrowth+by+neurotrophins+delivered+from+degradable+hydrogels%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Stimulation of neurite outgrowth by neurotrophins delivered from degradable hydrogels.</a> Biomaterials. 27, 452-459 (2006).</li>
</ol>

Covidien은 이 연구를 위해 QL6 SAP를 공급했습니다.

이 프로토콜은 래트에서 경추 손상 모델을 수행 할 수 있도록 독자 자궁 SCI 후 잘 회복을 촉진하고있는 SAP의 NPC와 결합 된 처리 방법을 사용하기 위해 개발되었다. 특히 (헤미) -transection 모델 또는 체중 감소 및 진동 모델, 클립 타박상 / 압축 모델이 주요 병태 생리 학적 외상 메커니즘을 모두 나타내는 다른 자궁 경부 외상 모델에 비해 - 타박상 및 압축률 때문에 모방 최고의 임상 조건을. 이 아니라 래트 및 마우스 흉추 7-11에서 사용하기 위해 설정되지만, 이는 최근 경추에 사용되도록되어왔다. 자궁 경부 척수 손상이 가장 자주 병원에서 볼 수있는 자궁 해부학 흉추에서 크게 변화하기 때문에 이것은 중요한 단계였다. 또한, tetraparesis을 앓고있는 자궁 SCI 환자는 적어도 부분적인 모터 F를 다시 촉각을 곤두 세우고있다자신의 상지의 기름 부음. 실험 자궁 SCI의 도전 양...

척수 손상의 50 % 이상은 경추와 관련이 있습니다. 임상에서 두 가지 병태 생리 학적 메커니즘이 설명되어 있습니다 설정 : 이후 초기 척수의 타박상 및 골절, 출혈이나 부종에 의한 지속적인 압축을. 동맥류 클립 타박상 / 압축 모델을 모방 모두 병태 생리 학적 메커니즘 : 클립을 스냅하는 것은 타박상을 생산하고 클리핑의 기간은 골절, 출혈 또는 조직에 의한 임상 설정에서 압축이 마지막으로 중요한 이상 팽창 것을 양보, 압축 구성 요소를 나타냅니다. 사용 된 동맥류 클립은 정확하고 재현성 클리핑 힘을 보장 링 스프링에 의해 수정됩니다. 특히 헤미 절개 또는 타박상 모델이 동맥류 클립 모델을 모방 최고의 임상 비교. 흉부 손상을 입은 환자는 자궁 경부 INJ와 하반신 마비, 대부분의 환자에서 고통 동안uries는 tetraplegic 완전히 달라집니다. 자궁 코드의 해부학 적 구조는, 그러나, 흉추 또는 요추에 비해 상당한 차이를 나타내고, 따라서,이 프로토콜에서 특히 언급된다. 골수 공동 및 흉터 조직 발달 복구 및 재생을위한 장애물이다. 이러한 장벽을 골격 물질의 사용을 극복하기 유망한 접근법이다. 자기 조립 펩티드는 병변의 진원지에 직접 주입 할 수있다. 그곳에서 그들은 공동 가교 나노 섬유 지지체에 조립하고 염증과 조직 겁을 줄여 억제 환경을 개선. 경질 재료를 주입하는 동안 척수 손상의 상당한 원인이 있지만, 유체 펩티드 안전하게 심한 손상없이 추가로 주입 할 수있다. 줄기 세포 이식 전에 자기 조립 펩티드 저해 환경 개선, 따라서, 셀을 지원 Integration 경추 척수 손상 후 최종적 분화, 기능 회복.

<table><tbody><tr><td>동맥류 클립</td><td>SharpTech</td><td></td><td></td></tr><tr><td>수술용 현미경</td><td>Leica</td><td></td><td></td></tr><tr><td>미세 주입 시스템</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>소동물 정위 고정 장치</td><td>David Kopf 기기</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hamilton 시린지</td><td>Hamilton 사</td><td></td><td></td></tr><tr><td>경막하 펌프</td><td><a href="http://www.alzet.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Alzet 삼투압 마이크로 펌프 1007D</a></td><td></td><td></td></tr><tr><td>수술 기구</td><td>정밀 과학 도구</td><td></td><td></td></tr><tr><td>이소플루란 USP</td><td>Pharmaceutical Partners of Canada Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>0.9% 염화나트륨 주사액 USP</td><td>박스터</td><td></td><td></td></tr><tr><td>7.5% 포비돈 요오드</td><td>Purdue Pharma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>70% 이소프로필 알코올 USP</td><td>GreenField Ethanol Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>QL6 SAP</td><td>Covidien</td><td></td><td></td></tr><tr><td>0.4% 트립판 블루(Trypan blue)</td><td>Gibco</td><td></td><td></td></tr><tr><td>혈소판 유래 성장 인자 (PDGF)</td><td>시그마</td><td></td><td></td></tr><tr><td>상피세포 성장인자 (EGF)</td><td>시그마</td><td></td><td></td></tr><tr><td>섬유아세포 성장 인자 (FGF)</td><td>시그마</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

실험 경추 척수 손상의 신경 전구체 세포 및 자기 조립 펩티드의 시너지 사용

Synergetic Use of Neural Precursor Cells and Self-assembling Peptides in Experimental Cervical Spinal Cord Injury

척수 손상 (SCI)는 환자와 그 가족에 대한 심각한 신경 학적 손상과 심리적, 경제적, 사회적 결과를 야기한다. 임상 적으로, SCI의 50 % 이상은 경추 한 영향을 미친다. 차 부상의 결과로, 염증, 세포 사멸 및 탈수 초화를 포함한 보조기구의 폭포는 마지막으로 골수 충치 2,3의 조직 흉터 및 개발을 선도 발생합니다. 모두 세포 이식, 통합 및 재생에 물리적, 화학적 장벽을 나타냅니다. 따라서 억제 환경을 형성 및 세포 이식 및 재생을위한 지원 환경을 만들 충치를 브리징 유망한 치료 대상 4입니다. 여기서, 동맥류 클립을 사용하여 자궁 SCI의 좌상 / 압축 모델을 설명한다. 완전 절개 또는 코드의 파열이 드문 때문에이 모델은 더 임상 적으로 관련된 다른 실험 모델보다. 또한 compariso에서특히 손상 배부 컬럼, 척수 둘레 압축 유리할 나타나는 중량 드롭 모델에 N. 클립 폐력과 지속 시간은 상이한 중증도를 얻도록 조절 될 수있다. 링 스프링 정확한 교정 및 클립 힘의 불변성을 용이하게한다. 생리 학적 조건에서 합성 자기 조립 펩티드 (SAP) 나노 섬유로 자기 조립 (self-assembly) 따라서, SCI 5 응용 프로그램에 대한 호소한다. 이들은 코드의 손상을 최소화하는 병변에 직접 주입 할 수있다. 구조 조정 정책은 골수 충치를 해소함으로써, 재생 트리트먼트 손상된 코드를 갖출 수 있도록 발판을 세우는 생체 구조입니다. K2는 (QL)는 (QL6가) 다른 펩타이드에 비해 동 등 리터. (6)에 의해 도입 된 신규 SAP이며, QL6는 6 .14 일 SCI 후 중성 pH에서 β-시트로 6K2를 자기 조립 급성기, 구조 조정 프로그램 후 병변과 신경 전구 세포 (NPC)의 중심에 주입 인제는인접 등의 컬럼에 cted. 세포 생존을 지원하기 위해, 이식 7 일 동안 삼투 마이크로 펌프에 의한 성장 인자의 연속적 경막 투여와 조합된다.

전술 한 절차를 수행하면. SAP 지지체 캐비티를 브리징하고 억제 환경의 개선, 적은 조직 무섭게 및 NPC 생존의 증가를 제공 얻을도 4 윌 얻어지는 랫트 척수의 종단면을 도시 부상 사이트 SCI 후 6 주에서 QL6의 SAP 주입 및 NPC 이식 후 사주. QL6 펩티드가 성공적으로 진원지에서 집계, 코드에 주입 반그림자에 rostro - 꼬리 쪽을 확산되었다. 전자 현미경도 5에, 상기 프로그램을 이미징, 1 %의 조립체 (W / V) PBS에 희석 용액을 2 시간 내에 나노 파이버 지지체에 QL6 펩타이드. 이 행렬은 증가 세포 생존 및 세포 분화, 적은 조직 흉터에 기여 억제 환경의 향상을 제공하고 마지막으로 기능 회복을위한 더 나은 기회로 연결됩니다. 우레 1 "SRC ="/ 파일 / ftp_upload / 52105 / 52105fig1highres.jp...

자가조립 펩타이드(SAP)와 신경전구세포(NPC)를 성장 인자와 함께 사용하여 경추 척수 손상을 치료하는 것은 재생과 회복을 촉진하는 유망한 접근 방식입니다. 경추 SCI의 타박상/압박 동맥류 클립 랫 모델과 수액 주입 및 NPC 이식을 포함하는 복합 치료가 확립되었습니다.

Spinal cord injuries (SCI) cause serious neurological impairment and psychological, economic, and social consequences for patients and their families. ...

이 절차의 전반적인 목표는 쥐에서 경추 SCI의 타박상 압박 클립 모델과 SAP 주사 및 NPC 이식을 포함하는 복합 치료를 위한 프로토콜을 도입하는 것입니다. 먼저 척수 주위에 동맥류 클립을 삽입하고 1분 동안 제자리에 고정합니다. 이로 인해 양측 타박상 압박 부상이 발생합니다.다음으로, 부상 진원지에 SAP를 주입하고, NPC는 SAP 주입 직후에 주입합니다. 성장 인자의 지속적인 전달을 위해 경막하 카테터가 있는 삼투압 펌프가 삽입됩니다. 이 절차는 손상된 척수에 NPC를 전달하는 결과를 낳습니다.NPC의 생존과 생착은 SAP와 성장 인자를 이용한 조합 처리에 의해 뒷받침됩니다. 이 기술의 의미는 척수 재생을 촉진하는 세포 기반 COMBINATOR 요법을 연구하는 데 사용할 수 있는 임상적으로 관련된 모델을 제공하기 때문에 외상성 척수 손상 치료법으로 확장됩니다. 다음 실험 프로토콜은 캐나다 토론토에 있는 University Health Network의 동물 관리 위원회에 의해 승인되었으며, 캐나다 동물 관리 위원회(Canadian Council of Animal Care)에서 준비한 실험 동물의 관리 및 사용 가이드(Guide to the care and use of experimental animals)에 설정된 정책을 따릅니다.모든 수술은 멸균 장비 및 용액을 사용하여 멸균 상태에서 수행되어야 하며, 기관 및 정부 지침에 따라 이 절차는 절차를 시작하기 전에 250-270g의 쥐를 사용합니다. 시술 당일 이틀 동안 식수에 항생제를 넣어 동물에게 투여합니다. 쥐를 마취실에 넣고 1 분 동안 1 대 1 산소와 아산화질소에 5 % ISO 불소를 마취를 유도 한 후 ISO 불소를 1.8에서 2.2 %로 낮추고 양연고를 눈에 바르고 발 꼬집기를 수행하여 외과적 마취를 확인합니다.그런 다음 쥐를 가열된 쿠션에 놓고 노즈 콘이 있는 입체 프레임에 머리를 고정합니다. 경추 주위의 털을 면도한 후 포비돈 요오드를 면봉으로 닦아 피부를 소독한 후 C 2 경추 부위에서 T 2 흉추체의 두드러진 돌기까지 정중선을 절개한 후 에탄올 70%를 투여합니다. 수술용 가위를 사용하여 두개골 코들 방향으로 정중선에 있는 척추 근육의 바깥층을 직접 절단하고, 수술용 가위를 사용하여 processis, osis 및 laminate에 도달할 때까지 더 깊은 근육층을 무디게 절개합니다.각도기를 삽입하고 유지합니다. 근육층을 연 다음 T 두 척추체의 두드러진 processis posis의 방향을 지정하고 후판 절제술의 목표 수준을 식별합니다. 그런 다음 숫자 15 메스를 사용하여 인대를 잘라 이마를 풀고 이마를 풀어줍니다.다음으로, 뼈깎기를 사용하여 척수 측면의 층막을 절단하고 척수를 압박하지 않고 층근을 부드럽게 제거합니다. 이제 잠시 시간을 내어 새로 떠오르는 신경근을 식별하여 잘리는 것을 방지합니다. 그런 다음 고리를 사용하여 척추체의 등쪽 쪽에서 복부 경막을 풀고 클립을 위한 복도를 준비합니다.클립의 링 스프링이 원하는 힘을 전달하도록 설정되어 있는지 확인하십시오. 클립 힘은 외상과 압박의 정도를 결정합니다. 열린 클립을 척수 주위에 삽입하고 딸깍 소리를 내며 닫아 타박상 부상을 유발합니다.15-35g의 클립력은 척수 손상이 수행된 후 1분의 예치질 지속 시간으로 자주 사용됩니다. 클립을 제거하고 근육을 두 겹으로 닫은 다음 피부를 닫습니다. 상처가 제대로 봉합되면 마취를 멈추고 쥐가 깨어나는 동안 관찰하십시오.동물이 흉골을 위한 충분한 의식을 회복한 후 누운 후 쥐를 깨끗한 우리에 넣습니다. 이러한 유형의 부상은 심각하기 때문에 다음과 같은 수술 후 치료를 따르는 것이 필수적입니다. 먼저 증상에 따라 3일에서 5일 동안 부프레노르핀, 멜록시캄 등의 진통제를 투여해야 합니다.또한 피하로 탈수를 예방하십시오. 3일 동안 하루에 두 번 5-10ml의 식염수를 주입하고 5일 동안 식수에 항생제를 계속 제공합니다. 수술 후. 동물이 회복된 것처럼 보인 후에도 방광 기능의 지속적인 회복이 명백해질 때까지 하루에 2-3회 방광을 짜십시오.수술한 동물의 신경학적 결손 및 생리적 상태에 대해 반드시 관찰하십시오. 주사는 척수 손상 후 14일 후에 시행합니다. 수술을 시작하기 전에 멸균수에 부피당 1중량의 농도로 SAP를 준비하고 Hamilton 주사기에 부착된 100마이크로미터 유리 모세관을 채웁니다.용액을 사용하여 Hamilton 주사기를 입위 액자에 부착합니다. 마취 후 쥐는 정위 안경테에 머리를 고정하고 포비돈 요오드와 70% 알코올로 수술 부위를 소독합니다. 이전과 마찬가지로 다시 한 번 피부를 연 후 한 쌍의 척추 근육을 조심스럽게 절개하고 견인기를 삽입합니다.숫자 15 메스를 사용하여 경막에서 흉터 조직을 제거하고 병변 부위를 다시 노출시킵니다. 그런 다음 날카로운 바늘 끝을 사용하여 경막을 조심스럽게 엽니다. 마지막으로, 입위 전술적으로 유리 모세혈관을 외상된 척수에 2mm 깊이로 삽입하고 SAP를 주입합니다.SAP를 주입한 후 모세혈관을 제거하기 전에 1분 동안 주사 부위에 남아 있도록 하여 조직이 주입된 용액을 수용할 수 있도록 합니다. 그런 다음 다음 부위에서 주입을 반복합니다. 여기서 NPC는 성인 DS 붉은 쥐의 주심실 영역에서 분리되어 이전에 발표된 절차에 따라 배양되었습니다.마이크로 주입 직전에 세포 이식을 위해 성장 배지의 NPC를 50배의 농도로 10배로 10씩 마이크로리터당 세 번째 살아있는 세포로 희석하고 Hamilton 주사기의 유리 모세관에 로드합니다. NPC는 SAP 주입 직후에 주입됩니다. 이렇게 하려면 해밀턴 주사기의 유리 모세혈관을 부상 부위에서 0.2mm 지점, 척수 등쪽 표면에서 1.5mm 아래에 삽입합니다.2마이크로리터의 세포 현탁액을 분당 약 0.5마이크로리터의 속도로 주입합니다. 첫 번째 주입이 완료된 후 이전과 같이 모세혈관을 척수에 1분 동안 그대로 두었다가 모세혈관을 집어넣고 인접한 부위로 이동한 다음 주입 절차를 반복합니다. 1분 정도 기다린 후 이전과 같이 모세혈관을 집어넣고 부상 부위로 2mm 움직입니다.이 위치에서 2개의 마이크로리터 주입을 두 번 수행합니다. 이 이미지는 척수 손상과 관련된 모든 주사 부위를 보여줍니다. 성장 인자 지원을 위한 경막하 미니 삼투압 펌프의 이식은 NPC 주입 직후에 수행됩니다.먼저 이식 부위를 선택합니다. 선호되는 부위는 펌프 자체로 인한 불편함을 피하기 위해 흉복부 부위의 측면 측면입니다. 이전과 같이 해당 부위를 소독한 후 펌프를 위한 피하 홈을 준비합니다.다음으로, 척수 손상에 인접한 상부 또는 하부 척추의 스킵 후판 절제술을 수행합니다. 여기서, 척수 손상은 C 7 T 1에서 시행되었으므로, 후판 절제술은 C 5에서 시행됩니다. 이제 펌프를 피하 오목한 곳에 삽입한 다음 카테터를 필요한 길이로 자르고 마지막으로 6.0 봉합사를 사용하여 한 쌍의 척추 근육에 고정합니다.탈구와 관련된 움직임을 피합니다. 날카로운 바늘 끝을 사용하여 후판 절제술 아래의 경막을 엽니다. 그런 다음 카테터를 경막하 공간에 삽입하고 저항하지 않고 탯줄을 손상시키지 않고 코들 방향으로 미끄러지도록 합니다.이제 카테터가 원활하게 작동하고 여기에 표시된 것처럼 꼬임이나 접힘이 없는지 확인하십시오. 그런 다음 봉합사나 클립을 사용하여 근육을 층별로 닫은 다음 피부를 닫습니다. 상처가 제대로 봉합되면 마취를 멈추고 동물이 깨어나는 동안 관찰합니다.동물이 흉골 누워있을 수 있을 만큼 충분한 의식을 회복한 후 쥐를 깨끗한 우리에 넣습니다. 동물 모니터링 및 수술 후 진통제를 포함한 모든 수술 후 치료 절차를 따르십시오. NPC 주사 2일 전과 이식 후 7일까지, 그리고 희생할 때까지 각각 면역억제 치료를 시행합니다.이 형광 현미경 이미지는 쥐의 외상을 입은 척수의 세로 부분을 보여줍니다. 염색은 QL six로 표지된 DPI 형광 SAP입니다. Fite는 녹색으로 나타나고 병변의 진원지에 응집되어 있습니다.주입된 DS 적색 양성 NPC는 적색 형광으로 표시된 주부와 코들 방향으로 확산되었습니다. 눈금 막대는 5mm를 나타냅니다. 여기서 주사 전자 현미경 이미지는 조립된 SAP의 나노 섬유 스캐폴드 형성을 보여줍니다.눈금 막대는 1마이크로미터를 나타냅니다. 이 비디오를 시청한 후에는 클립 압박, SCI와 관련된 수술 절차와 이 모델에서 SAP 및 NPC를 결합한 치료의 유망한 접근 방식을 연구할 수 있는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다.

synergetic-use-neural-precursor-cells-self-assembling-peptides

Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

척수 충격 부상은 두뇌와 통신을 방해. 잃어버린 연결을 복원하려면 우리는 장거리 성장을 촉진 억제 분자를 제거하는 neurotrophic 요인과 매트릭스 - modulating 효소와 함께 재생 섬유의 하층을 제공하는 주변 신경 이식을 활용한다.

부상당한 쥐 척수를 복구하는 주변 신경 이식과 매트릭스 변조를 결합

신경 전구체 이식은 보호 및 / 또는 척수 상해 (SCI)과 모터 신경 장애, amyotrophic 패스 경화증 (ALS)에 분실 / 역기능 자궁 phrenic 모터 뉴런을 교체 유망 전략이다. 우리는 ALS와 SCI의 쥐 모델에서 자궁 경부 척수 복부 혼까지 셀 전송을위한 프로토콜을 제공합니다.

루게릭병과 외상 척수 상해에서 자궁암 복부 호른를 타겟팅하는 Intraspinal 세포 이식

여기서 우리는 자기 조립 3 차원 비계 문화에 인간 신경 전구 세포의 사용을 설명합니다. 우리는 유동세포계측법에 의해 연속적 예 분석하는 공사장 공중 발판에서 세포를 릴리스하는 프로토콜을 제시한다. 이 프로토콜은 상세한 mechanistically 연구를 수행하는 다른 세포 유형에 맞게 수 있습니다.

3 차원 자기 조립 펩티드 히드로겔에서 인간 신경 전구 세포의 배양

출처: Zweckberger, K., et al. 실험적 경추 척수 손상에서 신경 전구 세포와 자가 조립 펩타이드의 시너지 사용.  J. Vis. 경험. (2015).이 프로토콜은 쥐 모델에서 척수 손상 복구를 위한 표적 주사 접근법을 보여줍니다. 여기에는 자가 조립 펩타이드(SAP)를 병변 코어에 전달하여 지지 스캐폴드를 만든 다음 병변 주위에 신경 전구 세포(NPC)를 주입하여 조직을 리모델링하는 작업이 포함됩니다.

쥐 모델에서 척수 복구를 위한 자가 조립 펩타이드 및 신경 전구체 세포 주입

성장 인자를 함유하는 피브린 매트릭스는 완전한 척수 절개 부위로 그라프 신경 줄기 세포를 유지하기 위해 사용되었다. 이식 세포가 완전히 병변 캐비티를 채우고 장거리 호스트 척수로 축삭을 확장 신경 세포를 포함한 여러 신경 세포 유형으로 분화.

중증 척수 손상 후 섬유소 및 성장 인자 칵테일 신경 줄기 세포의 생존 및 분화 촉진

척수 손상은 심각한 이환율과 사망률이 높은 원인 외상 조건이다. 본 연구에서 우리는 구체적으로 신경 줄기 세포를 이식 하였다 마우스 척수 손상의 타박상 모델을 설명한다.

척수 손상의 실험 Contusive 모델에서 신경 줄기 세포 이식

심각한 척수 손상은 종종 조직 결함을 초래합니다. 급성 손상 후 및 완전한 척수 절개 후 5주 후에 기계적 마이크로 커넥터 시스템의 이식을 통해 쥐의 조직 적응, 재생 반응 및 기능 개선을 촉진하기 위해 이러한 격차를 성공적으로 메우기 위한 두 가지 가능성이 설명됩니다.

실험 전략은 급성 및 만성 병변 후 부상 척수에서 큰 조직의 차이를 극복하기

이 원고는 마이크로 조직 공학 신경 네트워크의 제작에 대해 자세히 설명합니다. 3 차원 크기의 마이크론 크기의 구조물은 관 모양의 하이드로 겔에 둘러싸인 집적 된 신경 세포군에 걸친 길쭉한 정렬 축색관으로 구성됩니다. 이러한 살아있는 비계는 신경 회로를 재구성하거나 조절하기위한 기능적 중계 역할을하거나 회색 - 흰색 물질 신경 조직학을 모방 한 생물 여과 테스트 베드 (bifidelic test-bed) 역할을 할 수 있습니다.

신경 시스템 재구성, 변조 및 모델링을 위해 해부학 적으로 영감을받은 3 차원 미세 조직 공학 신경 회로망

이 문서는 완전 한 transection 후 척수 젊고 아름 다운 여자와 채우기 Schwann 세포 (SCs)와 다리 하 고 격차에 걸쳐 축 삭 재생을 촉진 주사 지하실 멤브레인 매트릭스 사이 빈 도관을 삽입 하는 기법을 설명 합니다.

PVDF TrFE 도관 격차에 걸쳐 축 삭 재생을 촉진 하 Transected 쥐 척수 젊고 아름 다운 여자를 다리 안에 이식 Schwann 세포

이 논문에서는 세포 대체 요법을 테스트하기 위한 생체 외 모델로 신경 줄기 세포로 이식된 장기 척수 기관형 절편을 생성하고 유지하기 위한 재현 가능한 방법을 제공합니다.

Long-Term Mouse Spinal Cord Organotypic Slice Culture as a Platform for validating Cell transplantation in Spinal Cord (척수 손상에서 세포 이식을 검증하기 위한 플랫폼으로서의 장기 마우스 척수 유기형 절편 배양)

이 연구에서는 척수 손상 복구를 위해 지방 유래 줄기 세포의 재생 촉진 거동을 조사하고 활용하는 데 사용할 수 있는 신경 모방 복합 하이드로겔을 개발하고 특성화했습니다.

Stem Cell Delivery를 이용한 척수 손상 조합치료제 개발

배우세요 경추 척수 손상 치료를 위한 자기 조립 펩티드와 신경 전구체 세포의 복합 요법을 쥐 모델에서. 이 방법은 조직 재생과 기능 회복을 촉진하여 척수 손상 연구에 중요한 플랫폼을 제공합니다.

실험 경추 척수 손상의 신경 전구체 세포 및 자기 조립 펩티드의 시너지 사용

더 많은 동영상 탐색