Name: 왕새우의 Swimmeret 시스템 : 신경 코드 및 모터 패턴의 세포 외 녹음의 해부를위한 실무 가이드 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-11-25T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 45 s
Description: 배우세요 왕새우 복부 신경줄 분리 및 세포외 기록 기법을 통해 가상 운동 패턴을 연구하는 방법을. 이 실험은 중추 패턴 생성기의 조절 메커니즘을 이해하는 데 활용됩니다.

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우리는 그림의 일부 돕는 호세 Burgert 감사합니다. 우리는 잉고 Selbach (및 그룹 &quot;Edelkrebsprojekt NRW&quot;) 실험 동물 연구실을 공급하기 위해 자신의 노력에 감사드립니다. 우리는 원고의 첫 번째 버전을 교정 안나 C. 슈나이더 감사합니다. 이 연구는 에미 뇌터 DFG 보조금 SM 206 / 3-1과 여성의 능력에 대한 쾰른 대학의 시작 기금에 의해 지원되었다.

이 절차는 해부 유럽 공동체위원회 (22)의 지령 ND 2010년 9월 (63분의 2,010 / EU)에 따른다. 1. 준비 <ol><li> 크기 ≥8 cm 남녀 가재, Pacifastacus의 leniusculus (다나)를 얻습니다. 동물은 매우 중요하고 복부와 복부 사지가 그대로 있는지 확인합니다. </li><li> 등딱지를 검사하는주의이 표피는 단단하고 견고한입니다. 사전 및 postmolt 동물 소프트 갑이 때문에 많은 매개 변수 변경 털갈이 과정에서 실험에 적합하지 않다 (예를 들면, 운동 활성의 감소). </li><li> , 해부하는 동안 사용되는 모든 도구 및 재료를 조립 달아 및 신경 코드의 desheathing 그림 2와 제공되는 보충 교재에 나와. </li></ol><img alt="생물학적 샘플 분석을 위한 수술 도구를 사용한 해부 현미경 설정; 광원을 포함합니다." src="/files/ftp_upload/52109/52109fig2highres.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="그림 2"> 그림 2 : (1) 얼음을 가득 큰 양동이; (2) 왕새우 식염수; (3) 염수 디스펜서; (4) 해부 현미경; (5) 해부 접시; (6) 강한 가위; (7) 집게 (8) 스프링 가위; 분명 실 가드 늘어서 (9) 페트리 접시; (10)의 고정 핀; (11) 감기 램프 소스. 2. 총 해부 <ol><li> 20 분 - 15 얼음에 동물을 마취. 이 방혈 단계와, 상기 표본이 절차 동안 가재 식염수로 세정 정기적해야 보낸 싱크대 랩 벤치 총 해부의 첫 번째 부분을 수행한다. </li><li> 동물의 복부 측면을 잡고 흉부 (그림 3-1)에 가까운 자신의 기지를 모두 발톱을 잘라 강력한 가위를 사용합니다. 왼쪽과 오른쪽 uropod (그림 3-2)를 제거합니다. </li><li> 검은 실 가드 늘어서 해부 접시에 동물의 복부 측면을 놓습니다. Eleva텔슨 (그림 4A)에서 복부를 아래에 얼음을 넣고 핀 테 두흉부. </li><li> 60 ml의 냉장 왕새우 식염수 ~와 식염수 디스펜서를 입력합니다. 발톱 개방 (그림 4B)를 통해 차가운 식염수로 가재를 관류. 과도한 염분은 uropods의 인하를 통해 오프 배출됩니다. 일어난 과다 출혈 동안 얼음으로 가재를 커버 </li><li> 단지 강한 가위 (도 5a)를 사용하여 동물의 눈 후부 절단 한 횡으로 동물을 참살. 그림 (b)에 나타낸 바와 같이 기본 관절 근처의 모든 걷고 다리를 제거합니다. </li><li> 두흉부의 나머지 부분에서 마지막 흉부 세그먼트와 복부를 분리합니다. 두 번째 도보 다리의 구멍에 가위의 끝을 삽입하고 반대편에 절단하여 두 번째 도보 다리의 레벨 (흉부 세그먼트 3)에서 첫 번째 컷을 확인합니다. (도 6A-1). </li><li> t을 통해 양측이 첫 번째 컷을 확장그는 (그림 6A-2) 두흉부. </li><li> 내부 장기의 일부 볼 수 있도록 열려있는 동물을 뒤집습니다. 시편의 앞쪽 부분에 눈에 띄는 소화선 (그림 6B-3)을 누르고 복강에서 생식 기관을 제거하기 위해 집게를 사용합니다. </li><li> 두흉부 (그림 6C)의 앞쪽 부분을 제거합니다. 나머지 흉부 (그림 6D-4)의 양면에, 아가미를 커버 등딱지의 측면 부분을 제거하는 측면 컷을 사용합니다. 아가미를 제거하고 차가운 식염수 표본을 씻어. </li><li> 그림 6E-5에 표시된대로 흉골 판의 전체 길이를 잘라 해부를 계속합니다. pleuron 및 swimmerets (그림 6E 빨간색 표시) 사이의 최대 수평 위치에서이 컷을 확인합니다. 같은 컷 반대편에 진행합니다. 차가운 식염수 표본을 씻어. </li><li> dissectio에서 나머지 해부을 수행N 현미경입니다. 검은 실 가드 늘어서하고 표본을 덮도록 왕새우 식염수로 채워진 해부 접시에 왕새우의 복부 복부 측면을 놓습니다. 참고 : 다음 단계 (2.12-4.8)는 오른 손잡이 실험자에 적용 방향 지시 사항이 포함되어 있습니다. 다음 단계 (2.12-6.8)에서는 차가운 생리 식염수, 등 간격으로 매 20-30 분 바닷가 식염수를 교체 건강한 신경 시스템을 유지하는 것이 중요하다. </li><li> 후방 텔슨에서와 전방 등딱지의 유적에서 곤충 핀 시편을 고정합니다. 왼쪽 텔슨 점과 테이블의 가장자리에 평행하도록 시험편을 놓는다. </li><li> 걷는 다리 구멍 (그림 7A)를 통해 잡아 표본을 엽니 다 (그림 7B 흰색 화살표)를 당겨 왼쪽 손에 거친 집게를 사용합니다. 그들의 복부 대형 2 배측 굴근 가닥 (도 7b-1, C-1)를 식별 및 컷도 7b에 도시 된 바와 같이 기초. </li><li> 지느러미 (심장)에서 내려 흉골 동맥 (그림 7C-2)를 식별하기 위해 복부, 4 번째 흉부 세그먼트에서. 이 복부 동맥을 형성, 신경 코드에서 프로젝트 전에이 동맥은 바로 신경 코드 (그림 7C-3) 위에 자리 잡고 있습니다. </li><li> 흉골 동맥을 가로로 쪼개다. 그림 7 (c)에서 알 수 있듯이, 가위 중 하나 블레이드를 사용하여, 먼저 동맥을 들어 올려 복부에 위치한 신경 코드가 표시되는 경우에만 잘라. </li><li> (오른쪽) 전방 지느러미 굴근을 수정합니다. 그들은 비전을 차단하지 않도록이 핀 최대 뻗어 위치에서 수행되어야하며, 시편 뻗어 상태를 유지합니다. 등쪽 근육 가닥 (그림 8-1을), 관련 신경과 최초의 복부 신경절, A1 및 A2를 고정 할 때 N1, N2, N3와 볼 (그림 8)입니다. </li><li> 사양을 잡고 왼쪽 손에 집게를 사용하여도보로 다리 중 하나 오프닝에서 imen. 다음 해부 전반에 걸쳐 단계 개방 시편을 유지하기 위해 부드럽게 잡아 당깁니다. </li><li> 신경 코드로부터 가장 먼 위치에 신경을 횡단면 N3. (그림 8-3). </li><li> 그림 8-4에서와 같이 복부 apodeme에 가까운 굴곡 근육을 잘라. 신경 코드 나 신경 N2 손상되지 않도록주의하십시오. </li><li> 단계 2.18 및 신경 N3 2.19와 A5에 남아있는 복부 신경절 A2의 굴근를 반복합니다. </li><li> 지난 복부 신경절에서, A6는 복부 apodeme에서 지느러미 굴근을 절감하고 시편은 그림 9와 같이 보일 것입니다. </li><li> A6 (그림 9-1)의 신경 흉골 플레이트 뒤쪽으로 절단하고 복부 부분 (그림 9-2)를 유지한다. 굴근 (그림 9-3)와 지느러미 부분을 폐기하십시오. 걷는 다리의 구멍을 통해 핀 전방 흉골 판을 수정,및 후방 A6에. </li></ol> 3. 미세 해부 <ol><li> 바로 입력 전방 부분과 테이블 '가장자리쪽으로 후방 부분 현미경으로 시료를 놓습니다. </li><li> cephalothoracic sterna의 가장 앞쪽 부분을 제거하기 위해 그림 10A와 같이 집게를 사용합니다. 참고 : 흉부 신경과 관련된 신경이 부분적으로 다리 근육과 cephalothoracic sterna이 적용됩니다. cephalothoracic sterna 서로로부터 복부 신경 코드가있는 내측 캐비티로부터 보행 다리의 측 방향 위치 공동을 분리하는 골격을 형성한다. </li><li> 나머지 외골격도 10b에 표시된 구조 -1 B2 사이의 근육을 잘라. 잡아 복부 신경 코드 (그림 10C)의 앞쪽 끝을 들어 올려 집게를 사용합니다. 주 : 신경 선이 과정에서 손상 될 수 있으므로 NERV 발생을 방지전자 코드를 여러 번. </li><li> 신경 코드 (그림 10C-3)를 들어 올리고 옆으로 흉부 신경을 잘라. 피닝에 적합한 길이의이 신경을 유지합니다. 집게로웠다 신경의 체인의 압착 부분을 제거합니다 (그림 10C-4) T4 모든 조직 전방을 멀리 절단하여. </li><li> 왼쪽의 앞쪽 부분에 시편을 놓고 A1에 초점을 맞 춥니 다. 적당한 길이 (최대. 1cm)을 밖으로 달아위한에서 A1의 신경 N1과 N2를 잘라. </li><li> A2에 초점 신경 N1, N2,이 세그먼트의 N3 (그림 11)를 식별합니다. 복부 신경절 A2-A5의 신경 N1은 각 세그먼트 (그림 11A-1)에서 두 흉골 cuticular infoldings 사이에 거주하는 근육에 의해 보호됩니다. 후방 흉골 cuticular infolding 함께 한 컷을 확인합니다. 복부의 측면 가장자리에서 시작도 11a에 도시 된 바와 같이 중간 선을 향해 진행합니다. </li><li> 타겟 N1은 여전히​​ 코브이면조직과 빨간 근육 번들 가로 질러, 그림 11B (빨간색 화살표)에 표시하지만,이 때 앞쪽 흉골 cuticular infoldings 및 신경 N1 모두 (그림 11B-2). </li><li> 가능 (그림 11C-3)로 같은 말단 신경 N1을 잘라. 신경 N1 완전히 볼 수 있으며 전방 및 후방 분기 (그림 11C)에서 확인할 수 있습니다. </li><li> 반대측 신경 N1을 진행하고 먼저 신경절 (그림 11D)에 가까운 내측 시작, 후방 흉골 cuticular infolding을 따라 근육을 잘라. 신경이 여전히 조직이 적용되는 경우, 근육 번들 가로 질러, 이번에 전방 흉골 cuticular infoldings 및 신경 N1 모두가 비슷한 11B-2 그림. 같은 말단 가능한 신경 N1을 잘라. </li><li> 적당한 길이 (약. 0.5 cm) 핀 고정이 신경절의 신경 N2를 잘라. </li><li> 반복 A3-A5의 신경에 대한 3.7-3.11 단계를 반복합니다. </li><li> NER을 잘라같은 원심 가능 (그림 12A)와 같은 신경절 A6의 보이는 군. 이 신경절을 들어 올려 흉골 판에서 신경의 체인을 분리 시작 A6의 여러 신경 잡아 집게를 사용합니다. </li><li> 신경 코드를 해제하는 동안 그림 12B (흰색 화살표)에서 입증 된 바와 같이, 전방 방향으로 부드럽게 잡아 당깁니다. 개개의 신경이 해제됨에 따라, 신경 코드 (도 12C)의 측 복부에 부착 될 수 복부 동맥을 제거한다. 신경 코드가 완전히 격리 될 때까지이 (부드럽게) 컷 당겨 순서를 계속합니다. </li><li> 분명 실 가드 늘어서과 왕새우 식염수 (그림 12D) 가득 페트리 접시에 신경절의 절연 체인을 전송합니다. </li></ol> 4. 페트리 접시에 신경 코드 피닝 참고 : 신경 코드를 핀 (보충 참조) 스테인레스 스틸 와이어에서 잘라 작은 핀을 사용합니다. 집게로 끝나는에만 신경을 터치 squeez을하지 않습니다접속사 또는 신경 전자. <ol><li> 부드러운 스트레칭을 적용하는 동안, 직선 신경의 사슬을 핀입니다. </li><li> 위를 향 등의면 페트리 접시에 신경 코드 (그림 13, 검은 선)을 정렬합니다. 신경절의 복부 측면은 그 볼록 의해 식별 될 수있다; 몸 윗면은 평평하다. 측면에 흉부 신경을 핀입니다. 길이 방향 축을 따라 신경 코드를 스트레칭, A6의 신경을 계속합니다. </li><li> 신경 코드에 90 ° 각도로 A1의 신경을 핀입니다. </li><li> A2로 넘어 신경 코드 (도 1A)에 대하여 35~45 °의 각도로 신경 N2 핀. </li><li> . 그림 14에 설명 된대로 달아 전에 전방 및 후방 지점에 신경 N1을 분리 신경 N1의 후방 지점 집게 일쌍 전방으로 다른 손으로 집어 미세 집게 두 쌍을 사용합니다. 만 대부분의 선단부를 선택하는주의신경 가지들. 이제 조심스럽게 잡아 당겨서. </li><li> 신경 코드 (그림 1A)에 90 ° 각도로 신경 N1의 전방 지점을 핀입니다. 전방 N1 분기 및 신경 N2 사이에 신경 N1의 후방 지점을 핀입니다. </li><li> 신경 A3-A5의 신경의 단계 4.4-4.6를 반복합니다. 길이에 신경 코드 스트레치 그것뿐만 아니라 횡 방향 관념 동안. </li></ol> 5. 신경절을 Desheathing <ol><li> 실험자의 손은 항상 흔들림 방지하기 위해 안정적인 비행기에 쉬고하는 방식으로 준비를 놓습니다. desheath하기 위해서는 아래에서 신경절 신경 코드를 밝히는. </li><li> A5에 복부 신경절 A1에 초점을 맞 춥니 다. 신경절과 신경 N2 및 N3 (그림 15A 빨간색 화살표) 사이에 후부, 신경절 칼집을 통한 소정의 측면 컷을 만들기 위해 좋은 봄 가위를 사용합니다. </li><li> 매우 f를 사용하여 신경절 칼집을 선택도 15a-1에 나타낸 바와 같이 오프라인 집게와, 상기 시스 접속사 횡 방향으로 가로 질러 절단. 짜거나 가위로 신경 코드를 절단하지 않도록주의하십시오. </li><li> 아직도 잡고 집게가 신경절 (그림 15B-2, -3)의 측면 테두리를 따라 잘라 지속적으로 신경절 칼집을 해제합니다. 덮개를 제거합니다. 대안은 고정되어 있지만, 신경 코드가 압착되지 않는 그런 방법으로 접속사의 양측에 Pin. </li><li> 반복 A5 모든 복부 신경절 A1에 대한 5.2-5.4 단계를 반복합니다. </li><li> 흉부 신경절과 유사한 방식으로 신경절 A6를 Desheathe. 신경절에 A6 시작 전방을 desheathe 후방 방향으로 진행하기 위해. 신경절의 체인의 후단에 A6의 신경절 칼집을 핀입니다. </li></ol> 모터 뉴런 6. 세포 외 녹음 <ol><li> 내가 보여 세포 외 녹음에 사용되는 모든 도구 및 재료를 조립N 그림 16B와 보충 교재에 나와. 녹화 설정의 개요는도 16a에 도시된다. 앰프는 이전의 기록에 적어도 30 분 동안 워밍업 할 수 있도록,이 실험 (그림 16C)에 사용 된 모든 전자 기기를 시작합니다. 컴퓨터를 켜고 레코딩 소프트웨어를 시작합니다. </li><li> 현미경 테이블에 신경절의 체인을 놓고 아래에서 조명. 신경절 (도 17A 및 B) 상기 표적 신경과 가까운 위치에서 상기 기준 전극에 근접하지만, 실 가드 측에 기록 전극을 삽입한다. 기록 전극 (그림 17C) 주위 대상 신경을 구부리고. </li><li> 전극과 신경 사이의 접촉을 보장하고 측면 (F의 igure 17D)에 핀, 약간 신경을 스트레칭. 점토를 이용하여 현미경 테이블 전극 케이블을 고정하므로 원하는 위치에 유지. </li><li> 사용바셀린 (둥근 팁) 20 게이지 바늘로 채워진 주사기 (도 17E-3) 입욕 용액으로부터 표적 신경 차단. 우선, 기록 전극의 주위에 약간의 실 가드 바셀린을 한 덩어리. 결과는 기록 전극 (도 17E-4)의 근방을 덮는 실 가드 바셀린의 층이다. 바로이 계층에 공기 방울을 신경에 가볍게 두드 피하기 않도록주의하십시오. </li><li> 식염수 (도 17F)의 액면까지의 모든면에서 바세린 기록 전극 봉쇄. </li><li> 누구의 활동을 모니터링해야 모든 대상 신경에 대해이 절차를 반복합니다. </li><li> 녹음을 시작합니다. 연속적 또는 프리 갭 획득 모드 5 kHz의 샘플링 레이트를 사용한다. 다음 매개 변수에 세포 외 앰프를 설정하고, (신호 1,000 배를 증폭 수집 소프트웨어 설정이 증폭 매개 변수를 포함하는데주의를 기울여야) 1000 얻기2,000 Hz에서 (하이 컷) 300 헤르츠 (Hz 로우 컷)의 다 대역 통과 필터 범위. </li></ol>

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<li>Mulloney, B., Tschuluun, N., Hall, W. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Architectonics+of+crayfish+ganglia%5BTitle%5D)+AND+%22Microsc+Res+Techniq%22%5BJournal%5D)">Architectonics of crayfish ganglia.</a> Microsc Res Techniq. 60 (3), 253-265 (2003).</li>
<li>Braun, G., Mulloney, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cholinergic+modulation+of+the+swimmeret+motor+system+in+crayfish%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophys%22%5BJournal%5D)">Cholinergic modulation of the swimmeret motor system in crayfish.</a> J Neurophys. 70 (6), 2391-2398 (1993).</li>
<li>Davis, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Motoneuron+Morphology+and+Synaptic+Contacts+-+Determination+by+Intracellular+Dye+Injection%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Motoneuron Morphology and Synaptic Contacts - Determination by Intracellular Dye Injection.</a> Science. 168 (3937), 1358-1360 (1970).</li>
<li>Altman, J. S., Tyrer, N. M. Filling Selected Neurons with Cobalt through Cut Axons. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aAltman%2C+JS+%22Neuroanatomical+Techniques%22">Neuroanatomical Techniques</a>. Strausfeld, N. J., Miller, T. A. , Springer. New York, NY. 373-402 (1980).</li>
</ol>

저자는 경쟁하는 금전적 이해관계가 없음을 선언합니다.

<html> 가재의 해부학 및 복부 신경절 이전에 5, 18, ​​19, 20을 설명되었지만 그것은 중요한 신경의 절단을 방지하기 위해 절개 전에 급 숙지 권장된다. 그것은 고립 된 신경 코드의 저하를 방지하기 위해 23 ° C 이하의 온도에서 준비를 유지하는 것이 중요합니다. 이 용액을 차가운 입욕 가재 염수 매 20-30 분 여분으로 쉽게 달성 될 수있다. 이러한 상황에서 신경절 체인은 최대 12 시간 동안 전기 생리 학적 실험을 위해 사용될 수있다. 때때로 swimmeret 운동 신경이 비활성화되어 더 자연 파열 활동을 보여주지. 콜린성 작용제 카바 콜은 이들 제제의 붕괴 활성을 유도하는 데 사용된다. 차가운 왕새우 식염수에 용해, 1-3 μM의 카바 콜의 목욕 응용 프로그램은 swimmeret 리듬 (21)을 활성화하기에 충분하다. &quot;ove_content&gt; 허...

왕새우 swimmerets는 자세 제어의 기능을 수행하고, 동물이 앞으로 수영 리듬 때 이길 자신의 굴 또는 암컷이 알 5, 6 탄산 가스를 환기 시키십시오. 신호 가재, Pacifastacus의 leniusculus의 swimmerets을, 다섯 번째 두 번째에서 쌍으로 발생 복부 (7)의 각 측면에 하나의 다리와 복부 세그먼트. 중추 신경계 손상은 동물뿐만 아니라 절연 신경 코드 준비 swimmeret 운동 자체를 구동 모터 두둑 리듬에 생성한다. 더 감각 피드백 또는 내림차순 입력되는 현재 존재하지 않는 경우 생성 된 리듬 모터 패턴은 허구 식 이동 (1, 2)라고한다. swimmeret 시스템에서는이 모터 패턴이 그대로 동물에서 측정 swimmerets의 활성에서 어떤 파라미터에서 다르지 않다. 각 swimmeret의 움직임의 위치는 하나의 C로 제한되는 미세 회로에 의해 구동hemiganglion 1 orresponding -. 3 각 저항기에서 다섯 식별 비 요동 치고의 interneurons를 포함하는 패턴 생성 커널이있다. 그들은 기능적 것을 특징으로 할 수 있습니다 동력 행정의 억제제 (IPS) 또는 Return 키 스트로크의 억제제 (IRS) 8. 자신의 교류 활동이 상호 억제 (9)에 의해 구동 오히려 이러한 IPS와 국세청의 interneurons는 내생 발진기 없습니다. 이들의 interneurons 직접 swimmeret 운동 뉴런을 억제하기 때문에, 상기 교류 PS-RS 운동은 열을 발생한다. 운동력은 그러나, 또한 다른 독립 미소의 코디 활성의 생성을 필요로하지 않지만. swimmeret 시스템에서 이러한 조정은 사지가 정확한 시간에 활성화되어 있도록 보장하는 조정 저항기에 의해 설정됩니다. 이 마이크로는 각 세그먼트 11 ~ 15 세 확인 된 신경 세포에 의해 만들어집니다. 이 프로토콜은 일 제공E는 처음 단계별 해부 가이드 신경절 (A6 T4에,도 1)의 체인을 분리. 우리는 고립 된 복부 신경 코드를 고정하고 각 신경절을 desheathe하는 방법을 보여줍니다. 이 격리 신경계 대비, swimmeret 운동을 담당하는 신경 세포 전기 생리 및 형태 학적 실험에 사용하기위한 준비가되어 있습니다. 이 프로토콜의 두번째 부분은 모터 swimmeret 패턴의 주요 특징을 설명한다. 이 세포 외로 레코드에 대한 단계별 가이드를 swimmeret 운동 뉴런의 활동을 포함한다. RS의 운동 신경의 축색 돌기 (axon)은 PS 모터 신경의 축색 돌기 (axon)가 같은 신경의 후방 지점을 통해 (그림 1) 프로젝트 동안, 신경 N1의 전방 지점을 통해 프로젝트 4. 따라서 그들의 활동은 차동 핀 전극이 지점에서 녹음 할 수 있습니다. <img alt="신경 가지를 강조하는 해부학 연구를 위한 신경 구조 다이어그램 및 레이블이 지정된 그림." fo:content-width="2in" src="/files/ftp_upload/52109/52109fig1highres.jpg" width="200" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="그림 1"> 그림 1 : 복부 신경절 6 (A6)과 T4의 개략도에 흉부 신경절 4 (T4)에서 고립 신경계 :. 흉부 신경절 4; T5 : 흉부 신경절 5; A1, A2 ... A6 복부 신경절 1, 복부 신경절이 ... 복부 신경절 (6); N1 : 신경 N1; N2 : 신경 N2; N3 : 신경 N3; PS : 파워 스트로크; RS : 리턴 스트로크. 방향 약어 : A = 전방; P = 후방. 이 해부 절차 및 시연 전기 생리학 기술 학부 학생들을위한 편리하고 생리 학생 실용적인 교육 과정을 보완 할 수있다. 신경절 절연 체인 신경계 기능, 조정, 또는 swimmeret 미세 회로 (6)의 변조뿐 아니라 운동 (16) (17) 적응 행동의 신경 조절을 연구하기 위해 다수의 실험에 사용되었다. 가재 swimmeret 시스템은 이와 같이 방대한드립니다 흥미로운 교육 또는 t의모든 가재와 허구 모터 패턴의 세포 외 기록의 복부 신경 코드의 절개로 시작하는 기회를 비가.

<table><tbody><tr><td>4채널 세포 외 증폭기: MA 102&nbsp;</td><td>증폭기</td><td>Elektroniklabor, Zoologie, Universit&auml; t zu K&ouml; ln, 독일</td><td></td></tr><tr><td>air-table</td><td></td><td>Technical Manufacturing Corporation (TMC) AMETEK Ultra Precision Technologies의 단위, Peabody, MA, USA</td><td>63-534</td></tr><tr><td>Axon Digidata 1440A</td><td>디지타이저</td><td>Axon Instruments, Molecular Devices Design, Union City, CA</td><td>DD1440A</td></tr><tr><td>큰 양동이&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>클램프펙스 & Clampfit</td><td>pClamp 10, 기록 및 분석 소프트웨어</td><td>Molecular Devices Design, Union City, CA</td><td>pClamps 10</td></tr><tr>유연한 광 가이드가 있는 표준<td>콜드 램프 소스</td><td>(광섬유 번들)&nbsp;</td><td>Euromex 현미경 네덜란드, 아른헴, BD</td><td>LE.5211 & LE.5235</td></tr><tr><td>컴퓨터 및 모니터</td>에는 액체 폐기물용 <td>기록 소프트웨어</td><td></td><td></td></tr><tr><td>용기와 피펫이 장착되어 있습니다&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>가재 식염수&nbsp;</td><td>포함 (mM) : 5.4 KCl, 2.6 MgCl2, 13.5 CaCl2 및 195 NaCl, 10mM Tris 염기 및 4.7mM 말레 산으로 완충;3 시간 동안 폭기. pH 7.4에서 조정하십시오.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>dextran, Texas Red (3000MW, lysine fixable)</td><td>형광 염료, lysine fixable</td><td>Life Technologies GmbH, 다름슈타트, 독일</td><td>D3328</td></tr><tr><td>해부 접시&nbsp;</td><td>(l x w x h) 15x7x5 cm; 검은색 실리콘</td><td></td><td></td></tr><tr><td>패러데이 케이지</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>고정 핀</td><td></td><td></td><td></td></tr>으로 린넨 집<tr><td>게 (생물학, Dumont #5)</td><td>집게: 생물학, 팁 0.05 x 0.02mm, 길이 11cm, INOX</td><td>Fine Science Tools (FST), 독일</td><td>11252-20</td></tr><tr><td>집게 (생물학, Dumont #55)</td><td>집게: 생물학, 팁 0.05 x 0.02mm, 길이 11cm, INOX</td><td>Fine Science Tools (FST), 독일</td><td>11255-20</td></tr><tr><td>겸자 (전자, Dumont # 5)</td> <td>겸자 : 표준, 팁 0.1 x 0.06 mm, 길이 11cm, INOX</td><td>Fine Science Tools (FST), 독일</td><td>11251-20</td></tr><tr><td>세포 내 전극</td><td>붕규산 유리 모세관 (외부 / 내경 : 1mm / 0.5mm), 필라멘트 포함</td><td>Sutter Instruments, Novato, CA</td><td>BF100-50-10</td></tr><tr><td>Leica S8 Apo StereoZoom</td><td>해부 현미경&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; 줌 1x - 8x</td><td>라이카, 독일</td><td>10446298</td></tr><tr><td>현미경 테이블</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>미러</td><td>로 아래에서</td><td></td><td></td>준비 과정을 비춥</tr>니다. 모델링 <tr><td>클레</td><td></td><td></td><td></td></tr>이 <tr><td>Olympus SZ61</td><td>해부 현미경&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; 확대/축소 0.67x - 4.5x</td><td>올림푸스, 독일</td><td></td></tr><tr><td>페트리 접시&nbsp;</td><td>94 x 16mm; 투명 실리콘 안감</td><td>Greiner bio-one, 독일</td><td>633180</td></tr><tr><td>링 가위</td><td>ThoughCut, 절삭 날 : 날카 로움 / 무딘 / 직선 : 13cm</td><td>Fine Science Tools (FST), 독일</td><td>14054-13</td></tr><tr><td>스프링 가위 또는 대안 : Vannas 스프링 가위</td><td>절삭 날 : 8mm, 팁 직경 : 0.2mm, 직선 : 10cm 또는 절삭 날 2.5mm, 팁 직경 0.075mm, 스트레이트 : 8cm</td><td>Fine Science Tools (FST), 독일</td><td>15024-10 또는&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; 15000-08</td></tr><tr><td>학생 Vannas&nbsp; 스프링 가위 또는 대안:&nbsp; Moria Spring Scissors</td><td>절단 가장자리: 5mm, 팁 직경: 0.35mm, 직선: 9cm 또는 절단 가장자리: 5mm, 팁 직경 0.1 mm, 직선: 8 cm</td><td>Fine Science Tools (FST), Germany</td><td>91500-09 또는&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; 15396-00</td></tr><tr><td>sylgard</td><td>184 실리콘 엘라스토머 베이스 및 경화제; 블랙 실가드의 경우 활성탄을 추가하십시오</td><td>Dow Corning, Midland, MI, USA</td><td></td></tr><tr><td>바셀린으로 채워지고 둥근 팁</td><td></td><td></td><td></td>이있는 20 가우쉬 바늘이 장착 된 주사기</tr></tbody></table>

왕새우의 swimmeret 시스템 : 신경 코드 및 모터 패턴의 세포 외 녹음의 해부를위한 실무 가이드

The Swimmeret System of Crayfish: A Practical Guide for the Dissection of the Nerve Cord and Extracellular Recordings of the Motor Pattern

여기에서 우리는 왕새우 복부 신경 코드의 해부를 보여줍니다. 제제는 지난 흉부 신경절 (T4, T5) 및 복부 신경절 쇄 (A1 내지 A6)을 포함한다. swimmeret 시스템 : 신경절이 체인 pleopods (swimmerets)의 운동을 구동 코디 중추 신경계 (CNS)의 일부를 포함한다. 그것은 가재의 각 swimmeret이 리듬 교류 활동 1-3를 생성 독자적 패턴 생성 커널에 의해 구동되는 다섯 년 이상으로 알려져있다. 운동 뉴런 swimmeret 각 근육의 해부학 적 및 기능적으로 구별되는 4 개의 집단에 분포를 포함한다. 하나는 swimmeret의 후퇴 (전원 뇌졸중, PS)에 대한 책임이 있습니다. 다른 하나는 swimmeret의 길게 끌기 (귀국일 스트로크, RS)를 구동한다. swimmeret 시스템의 운동 뉴런은 생체 내에서 자연적으로 기록 된 패턴과 동일하다 허구 모터 패턴을 생성 할 수있다 </EM&gt; 1. 이 보고서의 목적은 리듬을 생성하는 네트워크와 학생들의 실제적인 실험 과정에 대한 독립적 인 초소형의 조정을 공부 재미 있고 편리한 모델 시스템을 소개하는 것입니다. 제공하는 프로토콜은 신경의 절연 체인의 달아 신경을 desheathing와 격리 신경 시스템에서 세포 외로 swimmerets 허구 모터 패턴을 기록, 왕새우의 복부 신경 코드의 해부에 대한 단계별 지침이 포함되어 있습니다. 또한, 우리는 수상 돌기에서 세포 내 기록 swimmeret 신경 세포의 활동을 모니터 할 수 있습니다. 여기에서 우리는 간단히 이러한 기술을 설명하고 몇 가지 예를 제공합니다. 또한, swimmeret 뉴런의 형태는 다양한 염색 기술을 사용하여 평가할 수있다. 여기에서 우리는 염료 가득 뉴런과 swimmeret 운동 신경의 풀 backfills (이온 토 포레 시스에 의해) 세포의 예를 제공합니다. 우리가 실험실에서우리는 세포 수준에서 미세 회로 사이의 허구 운동, 중추 신경계의 활동에 대한 감각 피드백의 효과 및 조정의 기본 기능을 연구하기 위해이 준비를 사용합니다.

RS 및 PS 번 신경절의 운동 신경 세포에서 동시 녹화,이 운동 신경 풀 교류 활성은, 허구 식 이동 패턴을 나타내는 (도 18)를 모니터링 할 수있다. <img alt="신경 임펄스 분석, 레이블이 지정된 신호 RS, PS가 있는 다이어그램; 실험 설정 및 파형." src="/files/ftp_upload/52109/52109fig18highres.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="그림 18"> 그림 18 : 하나의 신경절 및 차등 핀 전극의 배치의 개략도 세포 외 RS 모터 뉴런의 기록 (상단 트레이스) 및 PS 모터 뉴런 (낮은 추적).. PS 5 운동 신경 동측 PS 2의 세포 외 PS 활동은 swimmeret 시스템 (그림 19A)의 마...

여기에서는 가재의 복부 신경삭 해부에 대해 설명합니다. 우리는 또한 수영 운동 뉴런의 가상 운동을 기록하는 전기 생리학 기술을 보여줍니다.

왕새우의 Swimmeret 시스템 : 신경 코드 및 모터 패턴의 세포 외 녹음의 해부를위한 실무 가이드

Here we demonstrate the dissection of the crayfish abdominal nerve cord. The preparation comprises the last two thoracic ganglia (T4, T5) and the chain of ...

이 절차의 전반적인 목표는 전기 생리학 연구에 사용하기 위해 가재에서 복부 신경삭을 절개하는 것입니다. 이것은 먼저 가재를 마취함으로써 수행됩니다. 다음으로, 가재의 복부 판을 분리하기 위해 전체 해부가 수행됩니다.그런 다음 중추 신경계를 raic ganglia에서 abdominal ganglia로 완전히 분리하기 위해 미세 절개를 수행합니다. 6. 마지막으로, 전기생리학적 실험을 용이하게 하기 위해 모든 신경절에서 신경절 덮개를 제거합니다.궁극적으로, 복부 신경절의 사슬은 추가 또는 세포 내 기록에 사용됩니다. 중심 패턴 생성기의 조정을 연구하거나 식별된 뉴런의 형태와 시냅스 맥락을 조사합니다. 이 방법은 고립된 신경계에서 fic FLA 소동을 기록하거나 복부 신경절 또는 특정 뉴런의 형태를 특성화할 수 있도록 신경계 기능에 대한 실습 경험을 제공하는 것과 같은 신경 과학 분야의 주요 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다.이 방법은 가재의 수영 속도 시스템에 대한 통찰력을 제공할 수 있습니다. 또한 가재의 꼬리 뒤집기 동작을 구동하는 신경 네트워크와 같은 다른 시스템에도 적용 할 수 있습니다 : 가재로 작업, 태평양 스테이시아, Linea Guus. 텍스트 프로토콜에 따라 동물을 마취한 후 복부 쪽을 위로 잡고 강한 가위를 사용하여 흉부 근처의 기저부에서 양쪽 발톱을 자릅니다.그런 다음 왼쪽 및 오른쪽 유로 포드를 제거합니다. 검은 사드를 깐 해부 접시에 동물의 복부 쪽을 위로 향하게 한 다음 차가운 식염수를 사용하여 발톱 구멍을 통해 관류시킵니다. 다음으로, 강한 가위를 사용하여 가재의 눈 바로 뒤쪽에 가로 절단을 하나 만들어 목을 베십시오.그런 다음 기저 관절 근처의 모든 걷는 다리를 제거하여 마지막 흉부 분절과 함께 복부를 나머지 흉부에서 분리합니다. 가위 끝을 두 번째 보행 다리의 구멍에 삽입하고 반대쪽으로 자릅니다. 흉부를 통해 절단부를 양쪽으로 확장하고 텍스트 프로토콜에 설명된 대로 내부 장기의 일부를 노출시킨 후 흉부의 앞쪽 부분을 제거합니다.이제 내부 장기를 제거하고 차가운 식염수로 동물을 헹굽니다. 흉골 플레이트의 전체 길이를 통해 lumon과 swimmer rats 사이의 최대 측면 위치에서 절단으로 해부를 계속합니다. 반대쪽도 같은 컷을 만듭니다.가재의 복부 쪽이 위로 향하게 하여 해부 접시에 놓습니다. 곤충 핀을 사용하여 표본을 텔슨에서 후방으로, 카라베이스의 잔해에서 앞쪽으로 고정합니다. 표본을 덮도록 접시에 가재 식염수를 채웁니다.왼손에 거친 집게를 사용하여 걷는 다리 구멍을 잡고 표본을 당겨 엽니다. 두 개의 큰 등쪽 굴곡근 가닥을 식별합니다. 그것들을 고치고 복부 기저부와 흉골 동맥을 자릅니다.첫 번째 복부 신경절 A 1 및 관련 신경 N 1 N 2를 노출시킵니다. 이제 두 번째 복부 분절로 이동합니다. 복부 기저에 가까운 근육 가닥의 기초를 제거합니다.복부 신경절 A 2는 이제 관련 신경 N 1, N 2 및 N 3과 함께 볼 수 있습니다. 신경삭에서 가장 먼 위치에 신경 N 3을 절제합니다. 복부핵이 있는 다음 세 개의 복부 분절에 대해 이 단계를 반복합니다.3에서 5. 복부 신경절에 도달하면 6. 흉골 플레이트를 6의 신경 뒤쪽으로 자릅니다.복부 부분을 유지하고 고정하십시오. 현미경으로 식염수로 채워진 접시의 등쪽 면이 위로 향하게 합니다. 집게를 사용하여 두부 흉부 선미의 가장 앞쪽 부분을 제거합니다.그런 다음 남아 있는 외골격 구조 사이의 근육을 자릅니다. 복부 신경삭의 앞쪽 끝을 조심스럽게 들어 올린 후 흉부 신경을 측면으로 절단합니다. 1에 초점을 맞추고 1의 신경 N, 1, N, 2를 최대 1cm 길이로 잘라 고정합니다.다음으로, A 2로 이동하여 이 세그먼트의 N 1, N 2 및 N 3 신경을 식별합니다. 신경은 복부 신경절의 하나, 2에서 5입니다. 각 분절에서 펼쳐지는 두 개의 흉골 표피 사이에 위치하며 근육 조직으로 덮여 있습니다.그런 다음 복부의 측면 가장자리에서 시작하여 후방 흉골 표피 접힘을 따라 한 번 자르고 텍스트 프로토콜에 따라 N을 발견한 후 정중선을 향해 진행합니다. 필요한 경우 가능한 한 원위부로 신경을 절단하십시오. 반대쪽 쪽으로 진행하여 신경절 근처의 정중선에서 신경 N을 분리하기 시작하고, 후방 흉골 표피 포위물을 따라 절단하여 외측 가장자리를 향해 진행합니다.이제 이 신경절의 신경 N 2를 고정하기에 적합한 길이로 자릅니다. 그런 다음 복부 신경절에 대해 표시된 단계를 반복합니다. 2는 3에서 5는 가능한 한 멀리 떨어져 있습니다.신경절의 신경을 6 잘라냅니다. 집게를 사용하여 6의 여러 신경을 잡고 신경절을 들어 올리고 흉골판에서 신경절 사슬을 분리하기 시작합니다. 신경삭을 완전히 분리한 후, 투명한 문턱 보호대가 덧대어진 페트리 접시에 신경절 사슬을 옮기고 스테인리스 스틸 와이어로 자른 작은 핀을 사용하여 식염수를 채우고 부드럽게 스트레칭 터치를 가합니다.신경절의 사슬을 등쪽이 위로 향하게 배열된 신경삭과 일직선으로 고정합니다. 마지막 두 개의 흉신경절만 유지하고 흉신경은 옆으로 고정합니다. 신경삭에 대해 90도 각도로 사람의 신경을 고정합니다.그런 다음 2로 진행하여 신경 N 2를 신경삭에 대해 35-45도 각도로 고정합니다. 신경 N 1이 분리되어 텍스트 프로토콜에 따라 고정되면 신경 N 신경의 전방 가지를 신경삭에 90도 각도로 고정합니다. 그런 다음 신경 N의 뒤쪽 가지를 앞쪽 N 하나의 가지와 신경 N 둘 사이에 고정합니다.모든 복부신경절은 덮개를 씌워야 하기 때문에, 가느다란 용수철 가위를 사용하여 신경절 뒤쪽의 신경절초를 통과하여 신경 N 2와 N 3 사이의 작은 측면 절단을 만듭니다. 연결 장치 위의 칼집을 가로질러 가로로 자릅니다. 그런 다음 칼집을 제거하기 전에 신경절의 측면 경계를 따라 계속 자릅니다.필요한 경우 가는 집게를 사용하여 덮개를 들어 올려 세포 외 기록을 수행합니다. 텍스트 프로토콜에 나열된 도구 및 시약의 설정에 따라 신경절 체인을 현미경 테이블에 놓고 아래에서 조명을 비춥니다. 기록 전극을 표적 신경에 가까운 실 가드에 삽입하고 기준 전극을 신경절에 가깝지만 측면 위치에 삽입합니다.그런 다음 녹음 주위의 대상 신경을 구부립니다. 신경을 스트레칭하고 고정한 후 바셀린을 채운 주사기와 끝이 둥근 20게이지 바늘을 사용하여 입욕액에서 표적 신경을 분리합니다. 활동을 기록해야 하는 모든 신경에 대해 이 작업을 반복합니다.마지막으로, 여기에 표시된 것처럼 기록을 시작하십시오.동측 PS 2에서 PS 5 운동 뉴런의 세포 외 PS 활성은 5의 PS 버스트로 시작하고 여기파가 전방 방향으로 전파됩니다. 또한, 각 세그먼트에서 한 버스트의 시작부터 다음 버스트의 시작까지 측정된 시간은 일정하게 유지되며, 리듬 주기 및 버스트의 주기로 정의된다. 지속 시간은 다른 준비마다 다를 수 있지만 세그먼트 간의 위상 지연은 리듬의 주파수와 무관한주기의 약 1/4에서 일정하게 유지됩니다.이러한 배위 패턴은 여기에서 볼 수 있는 위상 히스토그램에서 가장 잘 볼 수 있습니다. 여기에서 날카로운 마이크로 전극을 사용하여 Ps.Motor 뉴런의 수상돌기에서 얻은 세포 내 기록은 동일한 반신경절의 모든 PS 운동 뉴런의 세포외 활동으로 기록된 개별 뉴런의 위상 진동을 보여줍니다. 세포 내에서 기록된 뉴런을 식별하기 위해 날카로운 마이크로 전극과 이온 영동을 사용하여 세포를 분할할 수 있습니다.이 그림에서 두 개의 di로 채워진 PS 운동 뉴런의 복부 소다는 신경 N 1의 기저부 뒤쪽에 위치합니다. 일차 신경돌기는 앞쪽으로 돌출되어 외측 신경 알약 내에서 분기됩니다. 축삭은 신경 N의 뒤쪽 가지를 통해 근육 조직으로 돌출됩니다.이 기술을 숙달하면 제대로 수행하면 45분에서 1시간 안에 완료할 수 있습니다. 이 절차를 시도하는 동안 신경 조직을 건강하게 유지하기 위해 정기적으로 식염수를 교체해야 한다는 것을 기억하는 것이 중요합니다. 이 절차에 따라 세포 내 조정 메커니즘 분석, 이온 전류 측정 또는 특정 세포의 리듬 활동에 대한 신경 조절제의 영향을 연구하는 것과 같은 추가 질문에 답하기 위해 운동 뉴런 또는 인터 뉴런의 세포 내 기록과 같은 다른 방법을 수행할 수 있습니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

자유롭게 동물 행동의 신경 활동 패턴의 비침습 측정은 고속 videography와 neurophysiological 레코딩을 결합하여 얻을 수 있습니다.

자유롭게 동물 행동의 신경 회로 활성화의 기록

무척추 동물은 척추 동물에 대해 설명한 것과 유사 자율 교감과 같은 응답을 보여줍니다. 심장 - 혈관과 ventilatory 시스템의 조정은 유기체 내부 상태를 평가할 수있는 생물 학적 인덱스의 측정을 위해 수 있습니다.

자유롭게 크레이 피쉬 이동에 마음을 Ventilatory 요금 대책

크레이 피쉬 다리의 따개 근육은 근육 표현형, 신경 생리학 및 소성의 역사 중요성과 실험 다목적을 위해 제공됩니다.

크레이 피쉬 오프너 근육의 NMJ에서 역사보기 및 생리학 시범

이 문서에서는 왕새우 걸을 수있는 다리의 신근 근육에 신경 반응의 electrophysiological 녹음을 실시 방법과 신경 단말기가 높은 및 낮은 출력 신경 단말기 총 형태학의 차이를 보여 시각 아르하는 방법을 보여줍니다.

크레이 레그 신근 근육에 높은 및 낮은 출력 NMJs의 생리 레코딩

실험 근육 구조, 시냅스 반응, 이온 그라디언트 및 막 잠재력에 대한 투자율의 효과를 조사 경험을 얻기 위해 학생들을위한 쉬운 접근 방법을 보여줍니다. 또한, 감각 - CNS - 모터 근육 회로의 연결 회로에서 화합물의 효과를 테스트하는 방법을 보여 제공됩니다.

멤브레인 후보, 시냅틱 응답,의 연결 회로, Neuromodulation과 크레이를 사용하여 근육 조직학 : 학생 실험실 연습

이 실험의 주된 목적은 일차 감각 뉴런은 동물에 대한 고유 정보를 공동 움직임과 위치 정보를 전달 방법을 이해하는 것입니다. 이 보고서의 추가 목적은 해부 현미경으로 해부와 뉴런의보고에 의해 준비의 해부 존재합니다.

크레이 피쉬 복부 근육 수용체 기관 : Proprioception에서 학생 실험실 연습

이것은 생물 세포막은 전기 모델을 사용하여 구분할 수있는 방법에 대한 데모입니다. 우리는 또한 학생 중심의 연구소에 대한 왕새우의 복부 신경 코드에서 작업 잠재력을 기록 절차를 보여줍니다.

회로 기판과 생물 세포막을 모델링하고 Axons에 전기 신호를 측정 : 학생 실험실 연습을

이 문서는 거머리를 사용하여 세 가지 신경계 준비 사항 : 세포 내 기록을 복부 신경절에있는 신경 세포에서, 복부 신경절에서 뉴런을 배양하고, 감각 필드를 매핑하는 신경 지배 피부의 패치에서 기록.

세포 내 기록, 감각이 필드를 매핑하고, 거머리의 배양 확인 된 뉴런, Hirudo의 medicinalis</i

생리와 해부학 적 기술은 갑각류 도보 사지 관절 proprioceptors과 근육의 긴장 수용체에 대한 기능과 구조를 해결하기 위해 증명된다.

게 사지에서 고유 감각과 긴장 수용체 : 학생 실험실 연습

이 기사 연속 기록과 대 심장 및 운동 활동의 분석에 대 한 비 침범 성 biomonitoring 시스템을 제공합니다. 근 적외선 광학 센서, 비디오 추적 모듈, 및 그것의 생리 적인 상태를 반영 하 고 심장 박동 변동 동안 대 동작 특징 대 하트 비트를 평가 하기 위한 소프트웨어가이 시스템에 의하여 이루어져 있다.

왕새우 심장 및 동작 활동의 지속적인 비 침범 성 측정

우리는 모델 척추 동물 머리 세포 시스템에서 모터 명령 중 발포성 뉴런 활동의 변화를 모니터링하는 프로토콜을 설명합니다.

얼룩말피에서 수영하는 동안 후방 측면 라인 발신 신경의 활동

배우세요 왕새우 복부 신경줄 분리 및 세포외 기록 기법을 통해 가상 운동 패턴을 연구하는 방법을. 이 실험은 중추 패턴 생성기의 조절 메커니즘을 이해하는 데 활용됩니다.

왕새우의 Swimmeret 시스템 : 신경 코드 및 모터 패턴의 세포 외 녹음의 해부를위한 실무 가이드

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