2014년 12월 12일
케모카인 신호전달은 세포 형태의 현저한 변화와 세포 내 단백질의 몇 가지 중요한 재분포를 이끌어냅니다. 여기에서는 이러한 이벤트를 연구하기 위한 빠르고 상세한 프로토콜이 제공됩니다.
다음 절차의 목표는 특정 자극에 대한 반응으로 많은 수의 세포에서 관심 있는 특정 단백질의 세포 형태 및 세포 내 국소화의 변화를 빠르고 자동으로 정량화하는 것입니다. 이것은 먼저 관심 화학요법 종류로 T 세포를 자극함으로써 달성됩니다. 두 번째 단계에서는 세포를 형광 표지한 다음 이미징 유세포 분석으로 분석합니다.
마지막 단계에서는 형태학적으로 편광된 림프구의 수와 형광 마커의 편석량을 선택한 마스크에 따라 각 염색에 대한 픽셀의 위치와 강도를 기반으로 평가할 수 있습니다. 궁극적으로, 이 이미징 유세포 분석 기술은 케모카인 자극 후 림프구의 형태학적 변화뿐만 아니라 편광된 세포 내 관심 단백질의 위치를 빠르고 강력하게 정량화하는 데 사용할 수 있습니다. 현미경 검사와 같은 기존 방법에 비해 이 기술의 가장 큰 장점은 많은 수의 세포를 반복적으로 처리하고 자동으로 분석할 수 있어 형태학적 변화와 단백질 분포에 대한 통계적으로 강력한 분석을 확보할 수 있다는 것입니다.
케모카인 자극 T 림프구에서, T 세포의 보슈 종류 자극은 10 밀리몰 HEP 원심 분리기가 보충 된 따뜻한 HBSS에서 실험 조건 당 5 개의 세포를 5 회 중앙 G.At 세척하는 것으로 시작하여 supinate를 제거하고 튜브 당 0.3 밀리리터의 따뜻한 HBSS he 조각에 펠릿을 다시 현탁시킵니다. 그런 다음 세포 현탁액을 개별 1.5ml 마이크로 원심분리기 튜브로 옮깁니다. 각 튜브에 케모카인 밀리리터당 10-500나노그램을 첨가한 다음 튜브를 여러 번 뒤집어 섞습니다.
섭씨 37도의 수조에서 세포를 배양합니다. 8-10분 후 0.3ml의 따뜻한 2%파라알데히드에 10밀리몰을 보충하여 편광을 멈춥니다. 그는 완두콩을 먹는다.
그런 다음 튜브를 더 많이 뒤집어 혼합하고 섭씨 37도에서 5분 더 배양하여 면역 형광 분석을 위해 세포를 염색합니다. 다음으로, 자극된 T 세포를 해당 유세포 분석 튜브로 전달합니다. 튜브에 염색 완충액을 완전히 채웁니다.
그런 다음 세포를 스핀다운하고 PBS에 있는 5% 태아 송아지 혈청 100마이크로리터에 펠릿을 재현탁합니다. 이제 각 튜브에 5마이크로리터의 ZI N-T-H-L-A-A-B-C를 추가합니다. 그것들을 소용돌이치고 배양이 끝날 때 어둠 속에서 실온의 30분 동안 세포를 배양합니다.
세포를 두 번 세척한 다음 500마이크로리터의 1%파라 포름알데히드에서 배양합니다. 10분 후, 더 많은 염색 완충액으로 세포를 세척한 다음 투과 완충액으로 튜브를 완전히 채웁니다. 투과 완충액에서 세포를 두 번 세척한 후 튜브를 남겨 supinate를 제거한 다음 와류를 일으켜 세포 펠릿을 해리했습니다.
이제 샘플을 밀리리터당 25마이크로그램의 영점으로 염색하고, 등심은 trixi로 염색하고, 와류로 염색하고, 어둠 속에서 실온에서 30분 동안 배양합니다. 그런 다음 배양 기간이 끝나면 투과 완충액에서 세포를 세척합니다. 다시 말하지만, 소생.
펠릿을 200마이크로리터의 PBS에 현탁시킨 다음 세포를 개별 마이크로 원심분리 튜브로 옮겨 케모카인 자극 후 편광된 T 세포의 비율을 측정합니다. 먼저 이미징 유세포 분석기를 켜고 제조업체의 지침에 따라 자체적으로 보정하도록 합니다. RMS 그래디언트에서 선택된 인포커스 모집단에서 RMS 그래디언트 값을 정량화하는 히스토그램을 그립니다.
히스토그램은 일단 마이크로 분리기 관이 기계에 삽입되면, 지역의 히스토그램에 단 하나 세포 인구를 묘사하고, 개인적인 세포에 레이저 힘 보행을 조정하고 5의 000의 T 림프구를 취득한다. 아이디어 분석 소프트웨어에서. 획득한 파일을 연 다음 각 개별 세포에 대해 얻은 명시야 이미지에 대한 기울기 RMS 값을 보여주는 히스토그램을 만들고 세포에 게이트를 그려 RMS 기울기 값이 57 이상인 것을 나타냅니다.
분석 메뉴에서 2개의 픽셀로 침식된 명시야 이미지 M zero one의 형태학 마스크에서 erode M1 two라는 새 마스크를 만듭니다. 그런 다음 분석 기능 메뉴에서 이전 게이트에서 생성된 셀의 침식 M1 두 마스크에서 계산된 영역의 새 기능을 만듭니다. 세포의 면적을 보여주는 히스토그램을 엽니다.이 새로 생성된 마스크를 사용하여 작은 영역의 보정 비드와 파편과 넓은 영역의 이중선을 제외한 개별 T 세포에 게이트를 그립니다.
그런 다음 분석 마스크 메뉴에서 Phin 염색의 원시 최대 픽셀의 함수로 H-L-A-A-A-B-C 염색에 대한 원시 최대로 구성된 봇을 2 개의 픽셀로 침식 된 H-L-A-A-B-C 염색 세포의 형태학 마스크에서 2 개의 침식 M이라는 새로운 마스크로 만듭니다. 그런 다음 분석 피쳐 메뉴에서 침식 M two two에서 계산된 원형도 매개변수로 구성된 새 피쳐를 생성합니다.
그런 다음 다른 히스토그램을 만들어 이전에 제어된 셀의 원형도 기능 값을 보고합니다. 그런 다음 자극되지 않은 세포에 대한 히스토그램의 모양을 살펴보면, 편광된 세포에 대한 RO 마노는 가장 낮은 원형도 값에서 시작하여 대부분의 자극되지 않은 세포가 세포 내 액틴 염색의 분극을 평가하기 위해 플롯되는 원형도 한계 값까지 원형도 한계 값까지 볼 수 있습니다. 또한 밝은 세부 유사성을 위한 히스토그램, H-L-A-A-B-C와 염색 시 FOID를 비교하기 위한 R 3 값.
그런 다음 방금 시연한 것과 동일한 게이팅 전략을 사용하고, non co localized segregated staining을 위해 자극되지 않은 세포에 GA를 추가합니다. 통계 패널은 여기에서 편광 액틴 염색이 있는 T 세포의 백분율을 보여줍니다. 비편광 또는 편광 세포의 게이트에 속하는 CCL 19 자극 T 림프구의 예가 표시됩니다.
두 하위 집단 간의 형태 차이를 명확하게 관찰할 수 있습니다. 방금 시연된 게이팅 전략은 CCL 19가 존재하지 않는 경우 편광 게이트에 속하는 세포의 비율을 표시하는 데에도 사용할 수 있습니다. 예상대로, 케모카인 자극이 편광된 T 세포의 비율을 증가시킨다는 것은 분명합니다.
두 조건 모두에서 얻은 전체 세포 집단의 평균 원형도 지수도 표시할 수 있습니다. 실제로, CCL 19 자극은 이 지수의 하락을 이끌어냅니다. 그러나 세포의 절반만 편광되어 있기 때문에 CCL 19 자극에서 관찰된 평균 순환성 지수의 변화는 작습니다.
이 실험에서, T 세포는 극성 복합체 par 6의 우성 음성 돌연변이에 대한 플라스미드 인코딩과 함께 GFP로 간이 절제되었습니다. PKC 제타. nont 형질주입된 세포에 대한 히스토그램은 전체 세포 집단의 작은 부분에서 작은 부분이 형질주입되었음을 나타내는 관련 GFP 양성 T 세포에 대한 특정 게이팅을 허용했습니다.
그런 다음 이러한 형질주입된 세포의 형태학적 분극 정도를 GFP 양성 세포의 순환도 지수와 T 세포에 대한 추가 보행만 측정하여 정량화했습니다. 낮은 순환성 값을 나타내는 것은 취해진 각 조건에서 편광된 세포의 백분율을 추정하기 위해 만들어졌습니다. 이러한 데이터는 신호 경로에 대한 par six PK CZ의 기능 중단이 CCL 19 및 c Xcl 12 케모카인에 의해 유도되는 T 세포 분극을 억제한다는 것을 보여줍니다.
이전 연구 결과와 일치합니다. 이 절차를 시도하는 동안 림프구의 강력하고 신뢰할 수 있는 형태학적 분극을 보장하기 위해 insolution kin stimulation 단계와 다음 고정 전반에 걸쳐 항상 섭씨 37도에서 작업하는 것이 매우 중요합니다.
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이 프로토콜은 케모카인 자극 후 T 세포의 세포 형태 변화와 단백질 국소화를 정량화하는 방법을 설명합니다. 대규모 세포 집단의 신속한 분석을 위해 이미징 흐름 세포계를 활용합니다.
This method enables high-throughput quantification of chemokine-induced cellular polarization and protein redistribution, addressing a key bottleneck in target validation for immunomodulatory drug discovery. By automating morphological and co-localization analysis across thousands of cells, it enhances predictive confidence in early-stage mechanistic de-risking of chemokine receptor pathways. The approach supports scalable, reproducible assessment of compound effects on cell polarity, directly informing go/no-go decisions in preclinical portfolio triage.
The method fits within the discovery continuum from target validation through lead identification, offering a quantitative bridge between biochemical receptor engagement and functional cellular phenotype. It enables early assessment of whether a compound modulates not just receptor binding but also downstream effector mechanisms critical for immune cell function.