Name: 후생 동물 모델 생물을 사용하여 확산 및 독성 프리온 같은 단백질을 조사 C. 엘레 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-01-08T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 57 s
Description: 학습하세요 C. elegans를 이용한 프리온 유사 단백질 확산 및 독성 분석 방법입니다. 시간 경과 형광 현미경과 RNAi 스크리닝으로 세포 내외 운송을 모니터링하고 독성 조절 인자를 식별하여 신경퇴행성 질환 연구에 활용합니다.

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원고에 대한 유용한 토론과 비판적 논평을 해준 Cindy Voisine과 Yoko Shibata에게 감사드립니다. 노스웨스턴 대학교의 HTAL(High Throughput Analysis Laboratory)과 BIF(Biological Imaging Facility)의 도움에 감사드립니다. 이 연구는 미국 국립보건원(National Institutes of Health, NIGMS, NIA, NINDS), 엘리슨 의학 재단(Ellison Medical Foundation), 대니얼 F. 앤 에이다 L. 라이스 재단(Daniel F. and Ada L. Rice Foundation)의 보조금으로 지원되었습니다. C.I.N.-K. Deutsche Forschungsgemeinschaft(KR 3726/1-1)의 지원을 받았습니다.

1. 모니터링 세포 횡단는 생체 시간 경과 영상으로 프리온 같은 단백질의 확산 참고 : C. 성장 표준 방법에 조심스럽게 재배 온도 (47)를 제어에 따라 elegans의 야생형 (WT) (N2)와 유전자 변형 라인. <ol><li> C.의 유전자 변형 라인을 생성 엘레 단량체 적색 형광 단백질 (MRFP) 태그 프리온 같은 단백질을 표현. 미세 주입 (48)를 사용하는 방법을 보여줍니다 비디오를 시청. 이러한 염색체 외 라인을 통합하는 방법에 대한 자세한 내용과 방법에 대해서는 49을 참조하십시오. </li><li> 계란은 표준 방법 (50)에 따라 누워 또는 표백에 의해 동기화 인구를 준비합니다. <ol><li> 달걀 누워에 의해 동기화 <ol><li> 전송 10-20 임신하는 접시에 성인들이 1 알을 낳는하자 - 2 시간. 접시에서 어른을 제거하고 자손이 원하는 나이까지 성장 할 수 있습니다. </li></ol></li> &lt;표백에 의한 리&gt; 동기화 <ol><li> 임신하는 성인의 동기화 인구를 수집 및 알칼리 차아 염소산 용액 (250 mM의 NaOH를 1 : H 2 O 상업 표백제의 4 (v / v)로 희석)로 표백. 2 O 7H, 22 mMKH 2 PO 4, 86 mMNaCl, 1 mMMgSO 4 ·가 7H 2 O, 1 dH보다 2 O를 추가 M9 버퍼 (47) (21 mMNa 2 HPO 4 · 회 (218 XG 분 1) 계란을 세척 L). </li><li> 그들이 20 ° C에서 / 부드러운 교반 O와 M9 버퍼에 N을 부화 할 수 있습니다. 웜 개발 동기화 모집단을 떠나고, 음식 공급원의 부재하에 L1 단계에서 정지한다. OP50 E. 시드 신선한 선충 성장 미디어 (NGM) 접시에 L1s로 이동 대장균 박테리아와는 자손이 원하는 나이 47까지 발전 할 수 있습니다. </li></ol></li></ol></li><li> 50 바와 같이 현미경 슬라이드에 (H 2 O) 2 % 아가로 오스 패드를 준비한다. <ol><li> 두 마일 준비그들의 전체 길이에 걸쳐 배치 된 테이프와 라벨 croscope 슬라이드 스페이서로서 이용된다. 그들 사이의 제 3 현미경 슬라이드를 놓습니다. </li><li> 깨끗한 슬라이드에 H 2 O 2 % 아가로 오스와 피펫 한 방울을 녹여. </li><li> 한천 드롭의 상단에있는 세 개의 다른 슬라이드에 수직 네 번째 슬라이드를 놓습니다. 조심스럽게 라벨 테이프와 같은 두께로 패드를 평평를 누르십시오. </li><li> 스페이서를 제거하고 부드럽게 떨어져 슬라이드를 당겨 전에 1 분 동안 말리면. 한천 패드는 그 중 하나에 충실합니다. </li></ol></li><li> 피펫 ~ 10 μL 마취 패드 및 전송 (2 밀리미터의 levamisole M9 버퍼) ~ 백금 와이어 픽업을 사용하여 10 동물. 커버 슬립 (~ 22 X 22mm)로 덮고 1 시간 내에서 이미지를 가져 가라. </li><li> 대안 적으로, 더 긴 시간 동안 영화를 취득하거나, 또한 동물의 움직임의 가능성을 감소 및 마취제 고정화 비드 (51)의 조합을 사용한다. <ol><li> 10 % AGA 준비(M9 버퍼) (51)을 설명하고 3 μL 나노 구체의 크기 표준 솔루션 웜 (폴리스티렌 비즈, 100 ㎚) 플러스 3 μL 마취제 (M9 버퍼에 4 밀리미터의 levamisole)를 추가로 패드를했다. 커버 슬립으로 가볍게 커버. 탈수를 방지하기 위해, VALAP (바셀린, 라놀린, 파라핀 왁스 같은 양의 혼합물)와 커버 슬립을 봉인. </li></ol></li><li> 이미지는 공 초점 현미경을 사용하여 웜을 고정. 주 : 결과 EM-CCD 카메라와 MetaMorph로부터 같은 현미경 자동화 및 이미지 분석 소프트웨어를 구비 한 스피닝 디스크 AF 공 촛점 현미경을 사용하여 획득하고 아래 구체적인 개요이지만, 다른 유사한 공 초점 영상 시스템도 사용될 수있다. <ol><li> 63X 또는 100X / 1.4NA 오일 목표를 사용하여 현미경 슬라이드 홀더에 웜을 포함하는 현미경 슬라이드를 놓습니다. </li><li> 소프트웨어를 엽니 다. MRFP 이미징을위한 레이저 파워 및 필터를 조정합니다. 10 %의 전력 및 배출 필터&gt; 600 nm에서 561 nm의 레이저를 사용합니다. </li><lI&gt; 열기 &quot;다차원 취득&quot;. &quot;메인&quot;탭에서, &quot;어 Timelapse&quot;과 &quot;실행 저널&quot;(: 오프 하드웨어 자동 초점)의 확인란을 선택합니다. </li><li> &quot;저장&quot;탭에서 선택하거나 파일을 저장할 디렉토리 폴더를 만듭니다. 파일에 이름을 지정합니다. </li><li> &quot;파장 길이&quot;탭에서 적절한 조명을 선택하고 노출과 이득을 조정합니다. 100 ~ 300 밀리 초 100과 300 사이의 카메라 이득 사이의 노출 &quot;YokoQuad 레드&quot;(또는 MRFP 이미징 동등한 조명 설정)을 사용하여, 각각의 샘플에 따라 (라이브 이미지를 사용하여 평가). </li><li> &quot;어 Timelapse&quot;탭에서 &quot;시점의 수&quot;= 301, &quot;시간&quot;= 5 분 &quot;시간 / 간격&quot;= 1 초를 선택합니다. </li><li> &quot;AFC SET의 Z의 HOLD&quot;와 &quot;Z의 HOLD에 AFC 반환&quot;유형 : &quot;저널&quot;탭을 선택 저널에서 &amp;# 8220; 특수 &quot;(2 회), 초기 점 :&quot;시작 시간의 점 &quot;과&quot;시점의 끝 &quot;. 이 옵션은 자동 초점 화상 장기간에 걸쳐 동일한 부분에 중요하다. </li><li> 설정을 완료 한 후 &quot;취득&quot;. 인터벌 동영상은 별도의 TIFF 파일로 세이프가 걸려있다. </li><li> ImageJ에 주어진 시계열의 모든 .TIFF 파일을 엽니 다. &quot;이미지&quot;→ &quot;스택&quot;→ &quot;스택에 이미지&quot;로 이동합니다. 선택적으로, → &quot;파일&quot;의 영화를 내보내기 등, 크기, 줄을 추가, 밝기 및 대비를 조정 → &quot;AVI ...&quot; &quot;다른 이름으로 저장&quot;(예를 들어, 비디오 1과 2는 그림 1에 해당하는 참조). </li></ol></li></ol> 2. 자율 및 비 세포 자치가 Proteostasis 및 독성에 미치는 영향 세포를 조사하기 위해 접는 센서 및 스트레스 기자 사용 <ol><li> 접이식 센서 또는 스트레스 reporte을 같이 발현 형질 전환 라인을 생성함께 프리온 같은 단백질과 R. 십자가를 설정하거나 유전자 변형 라인을 생성하는 방법에 대한 방법에 대해서는, 48,49,52를 참조하십시오. C.의 목록은 표 1을 참조하십시오 사용할 수있는 엘레 균주. </li><li> 형질 전환 동물의 동기 인구를 준비하고 (1.2 절) (50) 전술 한 바와 같이 원하는 세 때까지 성장합니다. </li><li> 실체 현미경을 사용하여 접는 센서 또는 스트레스 기자의 각​​각의 표현형을 확인합니다. <ol><li> 폴딩 센서, 동기 후의 각 날 응집체 은닉 동물의 수를 결정 (예컨대,도 2e 및 F 참조). </li><li> 스트레스 기자를 들어, 테스트 기자의 증가 형광 프리온 같은 단백질 결과의 동시 발현은 (예를 들어, 그림 3 참조)합니다. </li></ol></li></ol> C.에서 프리온에 의한 독성의 억제를위한 3 게놈 전체 화면 엘레<img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/52321/52321fig4highres.jpg" /> RNAi의 심사 프로토콜의 4 도식 표현 그림. 각 단계에 대한 자세한 설명 프로토콜 (3)을 참조하십시오. <ol><li> C.의 동기화 엘레 웜과의 RNAi 라이브러리의 중복 <ol><li> RNAi의 화면의 경우, Ahringer의 RNAi 라이브러리 (또는 비달의 RNAi 라이브러리) 53, 54을 사용합니다. 10 % 글리세롤 보충 100 μl의 LB-A 미디어와 플레이트 (LB 50 ㎍ / ml의 암피실린)를 작성하여 96 웰 플레이트에 원래 384 웰 형식에서의 RNAi 라이브러리를 Rearray 및 96 핀 복제기를 사용하여 접종. -80 ° C에서 교반 및 저장 37 ° CO / N에서 성장. </li><li> C. 유지 엘레 WT 20 ° C NGM에 플레이트에서 형질 전환 라인은 OP50 E. 시드 표준 방법 (47)에 따라 대장균 박테리아. </li><li>표백에 의해 프리온 도메인 형질 전환 및 WT (제어) 선충을 동기화 (1.2 절 참조). </li><li> 웜이 표백되는 당일에, 50 ㎍ / ㎖의 앰피 실린이 보충 된 LB 매체를 준비한다. 분배하도록 자동 지급기 시약을 사용하여 (또는 수동 피펫)을 96 웰 플레이트의 각 웰에 LB-A 매체 65 μL. </li><li> -80 ° C에서 96 웰 Ahringer의 RNAi 라이브러리 플레이트를 제거하고 종이 타월로 줄 지어 멸균 후드에 가져. 즉시 플레이트가 계속 동결하는 동안 판의 외부에 얼음에서 오염되지 않도록주의하면서, 거꾸로 접시를 들고하여 밀봉 테이프를 제거합니다. 판을 Reinvert하고 약 30 분 동안 해동 수 있습니다. </li><li> 하나의 신선한 LB-A 플레이트에 다음 하나의 RNAi 라이브러리 플레이트에 한 멸균 96 핀 복제기를 찍어합니다. 각각의 판에 대한 신선한 무균 복제를 사용합니다. 접착 호일 테이프 모든 판을 밀봉 및 -80 ° C에 라이브러리 번호판을 반환합니다. 벌레는 표백제에 담가 세척 할 수있다,다시 사용할 수 있도록 멸균. </li><li> 중복 된 RNAi의 플레이트가 37 ° C, 300 rpm으로 설정 인큐베이터에서 O / N을 성장하도록 허용합니다. HT115 E.을 사용하려면 대장균 컨트롤로 빈 벡터 (L4440)를 숨겨 박테리아, 문화 관에 별도로 성장하고 두 개의 96 웰 플레이트의 1/4에 멀티 채널 피펫 문화의 65 μl를 피펫. </li></ol></li><li> 박테리아 dsRNA를 생산 및 웜의 첨가 유도 <ol><li> DDH 2 O.에 5 mM의 농도로 이소 프로필-β-D-thiogalactopyranosid (IPTG)를 희석 분배하도록 멀티 헤드를 사용하여 자동화 된 워크 스테이션 (또는 수동 피펫)의 RNAi 박테리아와 제어 플레이트의 각 웰에 희석 IPTG 10 μL. 다시 봉인 및 인큐베이터에 접시를 배치합니다. 이를 37 ℃에서 3 시간 동안 흔들어 보자. </li><li> 박테리아가 떨고있다 동안, 벌레를 준비합니다. 유리 현미경 슬라이드에 - (10 μL ~ 5) 작은 샘플을 잘 M9 / 웜 현탁액을 혼합하고, 피펫. 계산실체 현미경 벌레의 수와는 μL 당 벌레의 수를 계산한다. </li><li> 0.20 ㎎ / ㎖ IPTG, 8.0 ㎍ / ㎖의 콜레스테롤 50 ㎍ / ml의 암피실린, 9.6 ㎍ / ㎖의 테트라 사이클린 0.0835 ㎍ / ml의 Fungizone을하며 : 무균 기술을 사용하여, 다음의 최종 농도로 보충 M9 (M9 +)의 용액을 제조 50 μL 당 15 벌레. <ol><li> 프리온 도메인 형질 전환 및 WT 웜에 대한 별도의 솔루션을합니다. 최종 (아래 참조)의 RNAi 복사 플레이트의 수에 의존 할 필요 M9 + 웜 용액의 부피, 플러스 ~ 자동 디스펜서가 사용되는 경우, 저장소 내에 남아 불감 부피의 30 ㎖. </li></ol></li><li> 박테리아 dsRNA를 생산의 3 시간 유도 한 후, 인큐베이터에서 접시를 타고 그들이 동물을 강조 열을 피하기 위해 RT (~ 30 분)으로 냉각 할 수 있습니다. </li><li> 각각의 RNAi 판 웰과 빈 벡터 제어 플레이트의 일 50 μL + M9 프리온 유전자 도메인 웜 용액을 분주한다. 확인동물 저장조의 바닥으로 침강하는 경향이 각 공정 전에 웜 용액을 혼합하여주십시오. </li><li> 제 2 제어 플레이트에 WT 웜을 분배. 포기를 할 수 있도록 봉인 판을 둡니다. 5 접시를 함께 젖은 종이 타월 및 알루미늄 호일로 포장 - 증발에서 액체 문화를 유지하기 위해, 4 스택. 4 일 동안 20 ° C에서 200 rpm으로 품어. </li></ol></li><li> 점수 참고 : 인큐베이터 4 일 후, 웜은 성인의 두 번째 날에하고 화면 준비가됩니다. 동물이 방해받지 래싱을 보장하기 위해 심사 전에 30 분 동안 비 흔들어 조건을 조정할 수 있습니다. <ol><li> 제어 처리 프리온 도메인 형질 전환 동물에 비해 증가 탈곡 육안 모니터 화면 컴퓨터에 접속 된 콘 4M60 카메라를 사용. </li><li> wrMTrck를 사용하여 확인하는 예비 히트 곡의 목록을 컴파일 (다음 절 참조). </li></ol></li></ol> 예비 4. 확인화면 조회수 <ol><li> 고체 접시에 운동성 분석 <ol><li> 표준 방법 (47)에 따르면, 100 ㎍ / ㎖의 앰피 실린, 12.5 ㎍ / ㎖의 테트라 사이클린 및 1 mM의 IPTG로 보충 NGM와 접시를 준비합니다. 가능하다면, 모든 플레이트가 유선형 영상 획득 과정을 허용 할 미디어의 동일한 높이를 가질 보장 플레이트 주출 기계를 사용한다. </li><li> 37 ° C, 250 rpm에서 ~ 1 ML의 LB + 50 ㎍ / ㎖의 앰피 실린, O / N의 다른 RNAi의 클론 성장. </li><li> 다음날, 3 시간 동안 1 mM의 IPTG로하는 dsRNA의 발현을 유도한다. 얇은 층으로 확산 각각의 RNAi 세균성 클론의 150 μL와 접시를 시드. 어둠 속에서 실온에서 2 일간 건조 박테리아를 보자. RNAi의 클론 당 3 판을 준비합니다. </li><li> 표준 방법 (50) (1.2 절 참조)에 따라 표백하여 웜 인구를 동기화하고, 알이 부화의 O / N M9 미디어를 할 수 있습니다. </li><li> 웜 현탁액을 샘플 및 NEM의 양을 결정실체 현미경에서 μL 당 atodes. 30 L1 웜 -가 (25)가 포함되도록 그런 다음, 각 실험 플레이트에 M9 플러스 웜의 적절한 볼륨을 피펫. 벌레가 성년의 날 2에 도달 할 때까지 4 일 동안 20 ° C에서 선충 성장. </li></ol></li><li> ImageJ에 대한 wrMTrck 플러그인과 웜 운동의 정량 분석 참고 : 비디오는 하마 오카-R2 디지털 카메라 C10600-10B와 하마 마츠 간단한 PCI 이미징 소프트웨어의 10 배 배율로 실체 현미경을 사용하여 기록 하였다. <ol><li> 카메라와 간단한 PCI 이미징 소프트웨어를 켭니다. 이미징 조건의 조정을 허용하기 위해 &quot;라이브&quot;를 클릭합니다. </li><li> 다음 영상 조건을 설정 : 게인 = 0; 라이트 모드 = 높은; 속도 지수 = 1; 비닝 = 2. &quot;자동 노출&quot;다음 현미경 거울과 밝기 및 대비 다이얼을 이동, 조명 조건을 조정합니다. 참고 : 비디오는 overexp없이 높은 대비가 필요동물 밝은 배경으로 검은 모양을 나타나도록, osed. </li><li> &quot;시간 스캔&quot;을 클릭하고 폴더와 파일 이름을 선택합니다. 20 밀리 초에 &quot;필드 지연&quot;을 설정하고 30 초에 &quot;시간에 정지&quot;. (대부분의 웜이 어디에) 기록하는 판의 영역을 선택하기 위하여 눌러 &quot;라이브 리뷰&quot;. 보기 &quot;시작&quot;을 누릅니다 분야에서의 위치를​​ 확인 빨리 무대에있는 플레이트에 3 ~ 4 번을 누릅니다. </li><li> 동영상 촬영을 마친 후, 오른쪽 이미지를 클릭 .AVI에 .cxd 형식에서 동영상을 내보낼 &quot;수출 몽타주 시퀀스&quot;를 선택합니다. </li></ol></li><li> 운동성 비디오를 분석한다 <ol><li> , ImageJ에 소프트웨어를 열고 &quot;플러그인&quot;탭으로 이동 한 다음 &quot;wrmtrck을&quot;과 &quot;wrMTrck 배치&quot;를 선택합니다. 모든 파일이 들어있는 디렉토리를 선택 분석합니다. </li><li> Figur에 자세히 wrMTrck_Batch의 기본 입력 창에 입력 된 값을로드전자 5C. 각 매개 변수에 대한 설명은 플러그인을 동반 지침에서 찾아 볼 수있다. &quot;OK&quot;를 클릭하고 이동 분석을 실행 할 수 있습니다. </li><li> 결과를 보좌 신부와 감지 된 모든 트랙이 실제 C.에서하는 것을 확인하기 위해 엘레 및 아티팩트 제거, 각각의 동영상에 대해 생성 .txt 파일들 각각을 열고 데이터 분석 소프트웨어 파일에 정보를 복사한다. 만든 &quot;* _labels.zip&quot;파일을 열고 수동으로 확인하고 거짓 웜 트랙을 제거하는 결과 &quot;*의 _labels.tif&quot;를 실행합니다. </li></ol></li></ol>

저자는 경쟁하는 재정적 이해관계가 없음을 선언합니다.

여기에 설명 된 방법은 확산 예시 도와 같은 프리온 단백질의 조립 전지 자율 및 비 독성 세포 자율. 우리는 최근에 집계가 발생하기 쉬운 세포질 프리온 도메인이 자식 작용과 관련된 과정에 막 결합 소포로 흡수되는 것을 발견했다. 이러한 소체의 특정 서브 세트 내에서 세포 및 조직과 40 사이 프리온 도메인을 수송한다. 살아있는 동물에서의 움직임을 모니터링하는 키는 단백질 만 MRFP - 태그 단백질이 아마도 산성 소포에서 볼 수 있었기 때문에, MRFP 태그되어야한다는 것입니다. 동일한 방법을 사용하여, 우리는 현재와 같은 (ALS에 연결) 슈퍼 옥사이드 디스 뮤 타제 1 (SOD1), (PD에 연결) 알파 - 시누 클레인 또는 TAR의 DNA 결합 단백질과 같은 특정 질병 관련 단백질의 잠재적 인 프리온 같은 행동을 조사하고 있습니다 (ALS에 링크) (43) (TDP-43). 소포체 내의 세포 간 수송이 여러 다른 단백질에 의해 사용되는 것처럼 보이지만,이있을확산 허용 뉴 부가 경로. <p cla...

알츠하이머 병 (AD), 파킨슨 병 (PD), 근 위축성 측삭 경화증 (ALS) 및 전염성 해면상 뇌증 (TSEs)를 포함한 많은 신경 변성 질환, 응집하기 쉬운 단백질과 연관되어 있고, 따라서 집합 적 단백질 미스 폴딩 장애 (즉 PMD라고도 ). 그들은 모두 인간과 동물 (1)에 감염 될 수 있다는 점에서 TSEs 또는 프리온 질병은 PMD를 독특한 클래스를 구성한다. 분자 수준에서, 프리온은 모집 및 병리학 적 β-시트 풍부한 PRP 사우스 캐롤라이나 형태 2,3에 단량체 α 나선이 풍부한 호스트 인코딩 세포 PRP (PRP C)를 변환하여 복제합니다. 자체 전파 단백질 응집체는 포유 동물의 프리온 4,5으로 중요한 특성을 공유 곰팡이에서 확인되었다. 또한 프리온은 포유류 세포 간에서 이동할 수 있으며 6,7 나이브 세포를 감염. 즉 PMD의 OTH 동안어 TSEs는 전염성이없는 것보다, 그들은 프리온 질환 8,9와 공통 병원성 원칙을 공유 할 수 있습니다. PMD를 각각에 연결된 단백질 구조 또는 기능에 관련되지는 않지만, 그들은 결정화와 같은 과정을 통해 모든 형태의 집계는 핵이라고 또는 중합 시드; 또한 단백질 씨는 수용성 이소 2,10,11 모집에 의해 성장한다. 자기 전파 효율이 함께 같은 분자 샤페론 같은 추가적인 요인 궁극적으로 세포 집합체 핵 시딩 단편화 및 12-15의 확산 속도를 결정하는 단백질의 고유 특성에 따라, 생체 내에서 변화한다. 따라서, 단백질 응집을 효율적으로 전파 할 수 있습니다 이러한 요인들 사이에서 좋은 균형이 존재해야한다. 일부 아밀로이드 응집체가 프리온의 특성을 항구, 따라서 모든 PMD가이 전염성이있는 이유도 설명 할 수 있습니다. 프리온은 &#39;최고의 공연&#39;O를 대표하는 것그들에게 PMD가 8, 13을 연구 할 수있는 강력한 도구를 만드는 자기 복제 단백질 집합체의 FA 다양한 스펙트럼. 흥미롭게도, 질병 관련 집계와 관련된 독성은 종종 비 셀 자율적 인 구성 요소 (16, 17)이있다. 이것은 그들이 단지 세포 유전자 전시에게 특정 표현형을 발현하는 것을 의미 엄격 셀 자율적 효과와는 달리, 해당 유전자를 발현하지 않는 인접 셀에 영향을 미치는 것을 의미한다. 이것은 강력하게 조직 - 특이 적 발현에 의해 증명 또는 신경 퇴행성 질환 18 ~ 26의 다양한 모델의 각 단백질의 노크했다. 다양한 메커니즘 점감 영양 공급, 신경 신호 불균형, 글루타메이트 흥분 독성 (excitotoxicity), 및 신경 염증 16,27,28 포함 PMD가이 비 - 자율적 인 세포 독성의 기초로 제안되어왔다. 또한, 질환 세포 간의 결합 된 응집체의 프리온 같은 운동 might이면 (29, 30)에 기여한다. 증가 증거는 프리온이 아닌 다른 단백질 흠이 특성은 여러 가지 PMD 30-36에서 관찰되는 병리의 확산을 설명 할 수있는 세포 간에서 송신 할 수 있음을 시사한다. 그러나, 아직 질환 단백질의 세포 내 이동 및 이웃 셀에 대한 독성 효과 사이의 명확한 인과 관계가 있는지를 판정해야한다. 따라서, 셀 간 전송 및 비 자율 세포 독성의 기초 세포질 통로의 더 나은 이해는 신규 치료법의 개발이 필요하고 필수적이다. 그러나, 후생 동물에 잘못 접힌 단백질의 세포 간 전송에 영향을 미칠 확산 및 세포 인자 프리온 등의 여러 측면이 아니라 생명체의 수준에서, 특히 이해되지 않습니다. 예쁜 꼬마 선충 선충은 잠재력을 제공하는 몇 가지 장점이 있습니다 프리온 같은 spreadi의 새로운면을 발견후생 동물 17 ng를. 이는 생체가 생체에서의 형광 태그로 단백질을 추적 가능 투명하다. 또한, 질병에 의해 영향을받는 많은 세포 및 생리 학적 과정은 인간에 웜으로부터, 그리고 C.된다 엘레 또한 유전자 조작 및 분자 생화학 적 분석 37 ~ 39의 다양한 의무입니다. 정확히 959 체세포는 여전히 근육, 신경 및 대장 등 여러 가지 별개의 조직 유형을 가지고 간단한 몸 계획을 가지고있는 성인 자웅 동체를 구성합니다. C. 새로운 프리온 모델을 설정하려면 엘레, 우리는 벌레 4,40에는 알려진 내생 프리온 단백질이 없기 때문에 외생 적, 잘 특징 글루타민 / 아스파라긴 (Q / N) 세포질 효모 프리온 단백질 Sup35의이 풍부한 프리온 도메인 NM을 표현하기로 결정했습니다. 효모 프리온은 프리온 복제 41 ~ 44의 기본 메커니즘을 밝히는데 귀중한왔다. 또한, NM은 전나무이다포유 동물 세포 배양 물 45, 46에서 프리온의 전체 라이프 사이클 요점을 되풀이하는 것으로 나타났다 세포질 성 단백질 프리온 등. 마찬가지로, C로 표시 할 때 엘레, 미토콘드리아 무결성 및 외관의 중단을 포함하여 40. NM 집계가 깊은 독성 표현형와 관련이 효모 세포 프리온 생물학의 전시 주요 기능에 비해 후생 동물 세포에서의 전파에 대한 다양한 요구 사항에 매우 잘 채택 Sup35 프리온 도메인 세포 수준과 관련된 다양한 자식 작용 소체뿐만 아니라 배아와 유충 마비, 발달 지연과 유기체 레벨에 단백질 접힘 환경 교란 광범위. 놀랍게도, 프리온 도메인 유전자가 발현되지 않은 인접 조직에 영향을 미치는 세포 자율 및 비 자율 세포 독성을 나타낸다. 또한, 내부 및 셀간 프리온 도메인 소낭 수송 실시간 모니터링된다 &lt;EM&gt; 생체 (40). 여기에서 우리는 C.에서 프리온 등의 보급을 검사하는 방법에 대해 설명합니다 엘레. 우리는 시간 경과 형광 현미경을 이용하여 프리온 도메인을 함유 소포 인트라 및 세포 간 수송을 모니터링하는 방법을 설명 할 것이다. 우리는 조직 - 특이 폴딩 센서의 사용을 강조 편재 셀룰러 니스에 셀 자율 및 비 자율 셀에 미치는 효과를 평가하기 위하여, 응력 기자를 표현한다. 마지막으로, 우리는 프리온 - 유도 독성의 새로운 개질제를 식별하기 위해 최근에 수행 넓은 게놈 RNA 간섭 (RNAi의) 화면의 순서를 설명한다. 조합, 이러한 방법은 단백질의 세포 간 이동 및 그 이외의 세포 자율 독성에 관여하는 유전 적 경로를 떨어져 애타게하는 데 도움이 될 수 있습니다.

<table><tbody><tr><td>시약</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>나노스피어 크기 표준 100 nm</td><td>ThermoScientific</td><td>3100A</td><td></td></tr><tr><td>Levamisole</td><td>Sigma</td><td>L-9756</td><td></td></tr><tr><td>IPTG</td><td>Sigma</td><td>15502-10G</td><td></td></tr><tr><td>Ahringer RNAi 라이브러리</td><td>출처 BioScience LifeSciences&nbsp;</td><td></td><td>http://www.lifesciences.sourcebioscience .com/clone-products/non-mammalian/c-elegans/c-elegans-rnai-library/</td></tr><tr><td>장비</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sorvall Legend XTR 냉장 원심분리기, 120VAC</td><td>ThermoScientific</td><td>75004521</td><td>http://www.coleparmer.com/Product/Thermo_Scientific_Sorvall_Legend_ XTR_Refrigerated_Centrifuge_120 VAC/EW-17707-60</td></tr><tr><td>96 핀 리플리케이터&nbsp;</td><td>사이오노믹스&nbsp; &nbsp;</td><td></td><td>http://www.scinomix.com/all-products/96-pin-replicator/</td></tr> <tr><td>HiGro 고용량, 인큐베이팅 쉐이커&nbsp;</td><td>Digilab</td><td></td><td>http://www.digilabglobal.com/higro</td></tr><tr><td>멀티드롭 콤비 시약 디스펜서&nbsp;</td><td>Titertrek</td><td></td><td>http://groups.molbiosci.northwestern.edu/hta/titertek.htm</td></tr><tr><td>Biomek FX AP96 자동화 워크스테이션&nbsp;</td><td>Beckman Coulter</td><td></td><td>http://groups.molbiosci.northwestern.edu/hta/biomek_multi.htm</td></tr><tr><td>Innova44 shaker</td><td>뉴 브런 즈윅</td><td></td><td>http://www.eppendorf.com/int///index.php?sitemap=2.3&pb=d78efbc05310ec 04& action=제품& contentid=1& catalognode=83389</td></tr><tr><td>M205 FA&nbsp;</td><td>Leica</td><td></td><td>http://www.leica-microsystems.com/de/produkte/stereomikroskope-makroskope/fluoreszenz/details/product/leica-m205-fa/</td></tr> <tr><td>ORCA-R2 C10600-10B디지털 CCD 카메라</td><td>Hamamatsu</td><td></td><td>http://www.hamamatsu.com/jp/en/community/life_science_camera/product/search/C10600-10B/index.html</td></tr><tr><td>회전 디스크 AF 컨포칼 현미경&nbsp;</td><td>라이카</td><td></td><td>http://www.leica-microsystems.com/products/light-microscopes/life-science-research/fluorescence-microscopes/details/product/leica-sd-af/</td></tr> <tr><td>Falcon 4M60 카메라&nbsp;</td><td>텔레다인 달사&nbsp;</td><td></td><td>http://www.teledynedalsa.com/imaging/products/cameras/area-scan/falcon/PT-41-04M60/</td></tr> <tr><td>소프트웨어</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>MetaMorph 현미경 자동화 & 이미지 분석 소프트웨어</td><td>분자 장치</td><td></td><td></td></tr><tr><td>http://www.moleculardevices.com/products/software/meta-imaging-series/metamorph.html Hamamatsu SimplePCI 이미지 분석 소프트웨어</td><td>Meyer Instruments</td><td></td><td></td></tr><tr><td>http://meyerinst.com/imaging-software/hamamatsu/index.htm ImageJ</td><td>NIH</td><td></td><td>http://rsbweb.nih.gov/ij/download.html</td></tr><tr><td>ImageJ</td><td>용 wrMTrck 플러그인</td><td></td><td></td></tr><tr><td>http://www.phage.dk/plugins/wrmtrck.htmlC. elegans 균주</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>N2 (WT)</td><td>Caenorhabditis Genetics Center (CGC)</td><td></td><td>http://www.cgc.cbs.umn.edu/strain.php?id=10570</td></tr><tr><td>AM815&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; rmIs323[myo-3p::sup35(r2e2)::rfp]</td><td>우리 실험실에서 구할 수 있는</td> <td>모리모토 실험실</td><td></td>&nbsp;</tr><tr><td>폴딩 센서 및 응력 리포터 변형</td><td></td><td></td><td></td>률에 대한 소스는 표 1을 참조하십시오.</tr></tbody></table>

후생 동물 모델 생물을 사용하여 확산 및 독성 프리온 같은 단백질을 조사<em&gt; c. 엘레</em

Investigating the Spreading and Toxicity of Prion-like Proteins Using the Metazoan Model Organism C. elegans

프리온은 코딩 핵산이 없는 비전통적인 자가 증식 단백질 입자입니다. 이 proteinaceous seeds는 양성 세포 동형의 변환 및 복제를 위한 주형 역할을 합니다. 축적된 증거는 많은 단백질 응집체가 자체 증식 주형으로 작용하여 동족 단백질의 접힘을 손상시킬 수 있음을 시사합니다. 응집체는 특정 상황에서 기능할 수 있지만, 이 과정은 종종 세포 단백질 항상성(프로테오스타시스)의 파괴로 이어져 결국 알츠하이머병(AD), 파킨슨병(PD), 근위축성 측삭 경화증(ALS) 또는 전염성 해면상뇌증(TSE)과 같은 치명적인 질병으로 이어집니다. 단백질 응집체의 프리온 전파 및 세포 간 확산의 정확한 메커니즘은 여전히 집중적인 연구 대상입니다. 이 지식을 더욱 발전시키기 위해, 최근에는 세포질 효모 프리온 단백질 Sup35의 프리온 도메인 발현을 위한 Caenorhabditis elegans의 새로운 후생동물 모델이 확립되었습니다. 이 프리온 모델은 살아있는 동물에서 형광 태그가 지정된 프리온 도메인을 직접 모니터링하고 유전적 접근을 용이하게 하기 때문에 몇 가지 이점을 제공합니다. 다음은 단백질 응집체의 프리온 유사 거동을 연구하고 예쁜꼬마선충을 사용하여 프리온 유도 독성의 변형자를 식별하는 방법에 대해 설명합니다.

생체 시간 경과 영상에 의해 프리온 같은 단백질의 확산 세포 간 모니터링 형질 전환 C. 프리온 도메인을 발현 간스 라인 형상의 프리온 단백질, 예를 들면 세포 간 전송 및 비 자율 세포 독성의 특정 양상의 분석에 특히 적합하다. 수의 형광 추적 동물의 투명성은 삶의 모든 단계에서 생체 내에서 단백질을 태그. 이것의 활용, 세포 형광 현미경을 사용하여 조직에서 프리온 같은 단백질의 움직임이 가시화된다. 63X 또는 100X / 1.4NA 기름 목적은 기공 구조를 해결하는 것이 필요하다. 중요한 것은, 프리온 도메인이 아마도 산성 소포 (40) 내에서 형광 계속 표시하기 위해, MRFP 태그되어야한다. 종종 태그로 사용되는 노란색 형광 단백질 (YFP), 난그것은 낮은 pH 환경 40,55 급냉되기 때문에 적합 아니다. 혼자 RFP 태그 <str...

단백질 응집체의 프리온과 같은 증식은 최근 많은 신경 퇴행성 질환과 관련이 있는 것으로 부상했습니다. 이 프로토콜의 목표는 선충 C. elegans를 모델 시스템으로 사용하여 단백질 확산을 모니터링하고 프리온과 유사한 현상을 조사하는 방법을 설명하는 것입니다.

후생 동물 모델 생물을 사용하여 확산 및 독성 프리온 같은 단백질을 조사<em&gt; C. 엘레</em

Prions are unconventional self-propagating proteinaceous particles, devoid of any coding nucleic acid. These proteinaceous seeds serve as templates for ...

다음 실험의 전반적인 목표는 Metazoan 모델 유기체 C elegance를 사용하여 단백질과 같은 PreOn의 확산 및 복잡한 독성을 조사하는 것입니다. 이는 타임 랩스 형광 현미경을 사용하여 PreOn과 같은 단백질을 포함하는 소포의 세포 내 및 세포 내 수송을 모니터링함으로써 달성됩니다. Next 조직 특정 접힘 센서 및 유비쿼터스 표현 스트레스.리포터는 세포 적합성에 대한 세포 자율 및 비세포 자율 효과를 평가하는 데 사용됩니다. 그런 다음 PreOn 유도 독성의 새로운 변형자를 식별하기 위해 게놈 전체 RNAi 스크리닝을 수행합니다. 스크리닝은 독성에 대한 판독값으로 스래싱을 사용하여 액체 배양에서 수행됩니다.마지막으로, 웜 트래커, 이미지 J에 대한 A 플러그인은 C 우아함의 움직임을 조합하여 정량화하는 데 사용됩니다. 이러한 방법을 사용하면 단백질과 같은 PreOn의 세포 간 이동과 관련된 유전 경로와 비세포 자율 독성을 분리할 수 있습니다. 동기화된 바다 우아함 제어 및 PreOn 도메인 형질전환 라인 및 10% 아그로스 패드를 준비한 후, 함께 제공되는 텍스트 프로토콜에 따라 100나노그램의 폴리스티렌 비드 3마이크로리터와 4밀리몰 리마솔 3마이크로리터를 아그로스 패드에 피펫팅합니다.백금 와이어를 사용하여 원하는 나이의 웜을 플레이트에서 용액으로 옮기고 커버 슬립을 사용하여 웜을 덮고 세포 내 수준에서 웜을 이미지화합니다. 컨포칼 현미경의 현미경 슬라이드 홀더에 슬라이드를 놓고 63 x 또는 100 x 1.4 NA 오일 대물렌즈를 사용합니다. 그런 다음 METAMORPH를 열고 다차원 획득을 선택합니다.그리고 메인 탭에서 시간 경과 및 실행 저널 확인란을 선택합니다. 저장 탭에서 파일을 저장할 디렉토리 폴더를 선택하거나 생성하고 파일에 이름을 할당합니다.파장 탭에서 Yoko quad red 또는 MRFP 이미징의 동등한 조명을 사용하고 노출을 100에서 300밀리초 사이로, 카메라 게인을 100에서 300 사이로 조정합니다. 그런 다음 타임랩스 탭에서 시간 간격을 1초로, 지속 시간을 5분으로, 시간 포인트 수를 301로 설정합니다.저널 탭 아래. 저널의 경우 A FC 세트, Z 홀드 및 A FC 리턴 투 Z 홀드 유형 선택 스페셜 두 번 및 초기 포인트의 경우 시점 시작과 종료 시점을 선택합니다. 설정이 완료되면 acquire를 누릅니다.이 절차에 따라 입자 추적 응용 프로그램과 같은 다른 방법을 사용하여 디스커스의 동적 속성을 측정할 수 있습니다.프리온 도메인 형질전환 및 유형 선충을 동기화하고 텍스트 프로토콜에 따라 inger RNAI 라이브러리 플레이트를 복사한 후, 복제된 RNAi 플레이트를 섭씨 37도 및 300RPM에서 배양하여 빈 벡터 L 4 4 4 0을 보유한 HT 1 15 E 대장균 박테리아를 대조군으로 사용합니다. 배양 튜브에서 별도로 성장시킨 다음 멀티 채널 피펫을 사용하여 65 마이크로 리터의 배양물을 2 96 웰의 1/4로 옮깁니다. 다중 채널 헤드가 디스펜싱된 자동화된 워크스테이션이 있는 웰 플레이트.10 마이크로리터의 5, 희석된 IPTG의 밀리몰을 RNAi 박테리아와 대조 플레이트의 각 웰에 넣습니다. 박테리아가 배양하는 동안 3시간 동안 배양하기 전에 다시 밀봉하십시오. 동기화된 야생형 대조군과 형질전환 L 유충 1종과 M 9 버퍼 웰을 혼합하고 5-10 마이크로리터를 유리 현미경에 피펫팅합니다.슬라이드로 웜을 세고 마이크로리터당 웜 수를 계산합니다. 3시간 동안 박테리아를 배양한 후 인큐베이터에서 플레이트를 제거하고 기생충에게 열 스트레스를 주지 않도록 실온에 두십시오. 다음으로, 텍스트 프로토콜에 따라 M nine 버퍼에 IPTG 콜레스테롤과 항생제를 보충합니다.그리고 고르게 분포하기 위해 마이크로리터 혼합물당 15개의 웜의 최종 농도에 적절한 양의 PreOn 도메인 형질전환 웜 용액을 추가합니다. 그런 다음 RNAi 플레이트의 각 웰과 빈 벡터 대조 플레이트 중 하나의 웰에 50마이크로리터를 분배합니다. 야생형 웜 용액을 두 번째 제어판에 분배합니다.그런 다음 모든 플레이트를 밀봉하지 않은 상태로 두어 통기를 허용하고 4-5개의 플레이트를 함께 쌓고 젖은 종이 타월로 감싼 다음 알루미늄 호일로 포장하여 액체 배양액이 증발하지 않도록 합니다. 플레이트를 섭씨 20도 및 200RPM에서 4일 동안 배양합니다. 플레이트에는 모니터가 있는 컴퓨터에 연결된 Falcon four M 60 카메라를 사용하여 대조군 처리된 PreOn 도메인 형질전환 동물과 비교하여 증가된 스래싱을 시각적으로 스크리닝합니다.자동 액체 취급 워크스테이션을 사용하여 웜을 R RNAi 플레이트에 분배하는 주요 이점은 변동성과 웰당 웜 수를 크게 줄일 수 있다는 것입니다. 고체 플레이트에서 운동성 분석을 수행하고 후보 RNAi 클론을 검증하기 위해 텍스트 프로토콜에 따라 하룻밤 사이에 RNAi 박테리아를 성장시킵니다. 그런 다음 1밀리몰 IPTG를 사용하여 3시간 동안 DS RNA의 발현을 유도합니다.각 RNAi 박테리아 클론 150마이크로리터를 사용하여 이전에 준비된 NGM 플레이트를 얇은 층으로 퍼뜨리는 시딩합니다. 실체 현미경으로 어두운 곳에서 실온에서 박테리아를 이틀 동안 건조시킵니다. 앞서 설명한 대로 동기화된 웜과 현탁액의 양을 결정하고 각 실험 플레이트에 25-30L의 유충 하나를 추가합니다.선충이 도달할 때까지 섭씨 20도에서 4일 동안 부화시킵니다. 성인이 된 지 2일째가 되면 웜 운동성을 정량화하고 카메라와 간단한 PCI 이미징 소프트웨어를 켭니다. 카메라 아이콘을 클릭하면 이미징 조건을 조정할 수 있습니다.다음으로, 이미징 조건을 다음과 같이 설정합니다. 게인을 제로 조명 모드로 설정하고 고속 인덱스를 1로, 비닝을 2로 설정합니다. 그런 다음 라이브 및 자동 노출을 클릭하고 현미경 미러와 밝기 및 대비 다이얼을 움직여 조명 조건을 조정합니다.시간을 클릭하고 스캔하여 폴더와 파일 이름을 입력하고 필드 지연을 20밀리초로 설정하고 시간 중지를 30초로 설정합니다. 라이브 리뷰를 눌러 녹음할 플레이트 영역을 선택합니다. 그런 다음 스테이지에서 접시를 서너 번 두드립니다.시야각에서 해당 위치를 빠르게 확인하고 동영상 녹화가 완료된 후 시작을 누르고 이미지를 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭한 다음 Export Montage Sequence를 선택하여 동영상을 CXD 형식에서 A VI 파일로 내보냅니다. 이동성 비디오를 분석하려면 이미지 J를 열고 플러그인 탭을 선택한 다음 웜 트래커를 선택하고 웜 트래커 배치를 선택한 다음 웜 트래커의 기본 입력 창에서 분석할 모든 파일이 포함된 디렉토리를 선택하고 여기에 설명된 대로 입력 값을 일괄 로드합니다. 각 매개변수에 대한 설명은 플러그인과 함께 제공되는 지침에서 찾을 수 있습니다.확인을 클릭하고 이동 분석을 실행하도록 허용합니다. 마지막으로, 결과를 선별하기 위해 감지된 모든 트랙이 실제 바다의 우아함에서 온 것인지 확인하고 아티팩트를 제거합니다. 각 영화에 대해 생성된 TXT 파일을 열고 정보를 데이터 분석 소프트웨어 파일에 복사합니다.생성된 라벨 zip 파일을 열고 결과 라벨 TIFF를 실행하여 잘못된 웜 트랙을 수동으로 확인하고 제거합니다. 연구실의 전 박사후 연구원인 Yesper Peterson은 독성에 대한 판독인 CL Elegance motil의 수동 평가를 대체하기 위해 웜 추적기에 대한 아이디어를 처음 떠올렸습니다. 웜 추적기를 사용하면 사용자 편향 없이 자동화된 방식으로 이러한 실험을 수행하는 동시에 타임랩스 이미징을 사용하여 더 짧은 시간에 더 많은 조건을 평가할 수 있습니다.RFP는 세뇨관 소포에 축적되는 R two E 2 태그를 붙였으며, 접힘 센서 또는 스트레스 리포터를 발현하는 coex에 의해 세포 내부 및 세포 간에 운반되는 것을 보았습니다. 단백질 세포와 같은 PreOn과 함께 자율 및 비세포 자율 효과를 평가할 수 있습니다. 근육 세포에서 R two E two의 발현은 장에서 Q 44 응집의 조기 발병으로 이어지며, R two E 2 의 proteostasis에 대한 비세포 자율 효과가 있음을 밝히고, R 2 E 2의 공동 발현은 SOD 3 PGFP 전사 산화 스트레스 리포터로 다른 조직에서 리포터의 상향 조절로 이어집니다. PreOn 도메인이 전체 게놈 스크리닝을 자율적으로 따라 비세포에서 산화 스트레스 반응을 유도한다는 것을 보여줍니다.이 영화는 컴퓨터 화면의 고해상도 이미징 및 시각화를 통해 플레이트의 1/4을 동시에 스크리닝할 수 있음을 보여줍니다.일단 마스터하면 이러한 스크리닝 프로토콜은 세션당 25개의 플레이트로 구성된 12라운드로 수행할 수 있습니다. 일주일에 두 번의 세션을 수행하는 경우 전체 RNAi 라이브러리를 6주 이내에 스크리닝할 수 있습니다. 웜 트래커는 여기에서 볼 수 있듯이 C 엘레강스 운동성을 정량화하는 데 사용되었습니다.웜 트래커는 원본 비디오를 바이너리 형식으로 변환하고 각 웜에 트랙을 할당합니다. 처리된 비디오는 아티팩트를 수동으로 제거하기 위해 겹쳐진 트랙으로 볼 수 있습니다. 초당 몸체 길이 매개변수는 잠재적인 크기 차이를 정규화합니다. 선충류.이 방법은 대조군 처리된 웜에 비해 운동성 표현형을 최소 133%에서 최대 256%까지 증가시킨 PreOn 유도 독성의 35가지 억제 인자를 식별했습니다. 웜 추적기를 임대하는 동안 웜 추적 획득을 수동으로 확인하는 것을 기억하는 것이 중요합니다. 이 소프트웨어는 벌레를 식별하는 데 큰 역할을 하지만 때로는 배경이 여전히 동물로 잘못 식별될 수 있습니다.따라서 웜 추적기를 실행한 후 비디오를 확인하는 것을 잊지 마십시오. 이러한 방법은 특정 질병 연결 단백질이 세포에서 세포로 퍼질 수 있는지, 유사한 prence인지 또는 세포 간 전달과 이러한 단백질의 복잡한 독성 사이에 연결이 있는지 여부와 같은 신경 퇴행성 질환 분야의 주요 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 아이.

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

유전자 변형을 사용하여 시금 β - 아밀로이드 독성 C. 엘레간스 모델

이 비디오는 적색 형광 단백질로 표지된 프리온 유사 단백질을 발현하는 예쁜꼬마선충의 생체 내 이미징 절차를 보여줍니다. 이 프로토콜은 타임 랩스 컨포칼 현미경 검사를 위해 아가로스 패드에 선충을 고정시켜 세포 내부 및 세포 간 단백질 응집 및 이동을 밝히는 것입니다. 이 기술은 neurodegenerative 질병과 관련있는 단백질 응집을 공부하기를 위해 결정적입니다.

형질전환 선충에서 프리온 유사 단백질의 세포 간 확산을 모니터링하기 위한 타임 랩스 이미징

우리는 벌레에 amylopathies의 양상을 연구하는 방법을...

<em&gt; Caenorhabditis의 엘레</emAmylopathy 연구에 대한&gt; 모델 시스템

여기, 선물이 미생물 상호 작용을 공부 하는 다양 한 호스트 모델로 선 충 류 꼬마 선 충 .

선 충 꼬마 선 충-모델을 다양 한 비보에 호스트-미생물 상호작용 연구

여기에서, 우리는 형질전환 성 외피염 예쁜꼬마선에서 녹색 형광 단백질을 발현하는 살아있는 뉴런 세포의 특정 그룹의 단순 분리를 위한 프로토콜을 제시한다. 이 방법은 특정 뉴런에 초점을 맞춘 다양한 생체 내 연구를 가능하게하고 추가 단기 배양세포를 분리 할 수있는 능력을 갖는다.

둥근 벌레 예쁜꼬마선충에서 특정 신경 인구의 격리

여기에서, 우리는 노화와 관련된 신경 퇴행성 질환의 세포 및 분자 기초를 모니터링하고 해부하기 위해 과활성화 이온 채널 유도 괴사 및 단백질 골재 유도 신경 독성을 포함하여 일부 다목적 선충 모델을 활용하여 널리 접근 할 수있는 방법론을 소개하고 설명합니다.

카노르하비티스 예르간에서 노화와 관련된 신경 퇴행성 질환 모델링

여기에서, 우리는 폴리글루타민 응집, 뉴런 사멸 및 화학 회피 거동뿐만 아니라 다중 표현형의 예시적인 통합을 포함하는 예쁜꼬마선충에서 시험 화합물의 신경 보호 활성을 평가하기 위한 프로토콜을 제시한다.

Caenorhabditis elegans는 Polyglutamine-mediated Neurotoxicity에 대한 생리 활성 화합물을 발견하기위한 모델 시스템으로서의

여기에서, 선충류 예쁜꼬마선충에서의 단백질 응집 동역학의 분석을 위한 방법이 제시 된다. 연령 동기화 된 집단의 동물은 서로 다른 시점에서 이미지화되고 CellProfiler에서 반자동 포함 계수가 수행되고 AmyloFit의 수학적 모델에 적합합니다.

Caenorhabditis elegans에서 자동 포함 계수를 사용하여 생체 내에서 단백질 응집 동역학 모니터링

이 동영상은 유전자 변형 동물을 만들 C. 엘레간스의 생식선에 microinjection의 기법을 보여줍니다.

Microinjection을 사용하여 안정적인 트렌스​​ 제닉 C. 엘레간스의 생성

접근 시냅스에 전기 생리학의 응용 프로그램 시냅스 돌연변이를 분석에 유용 시냅스 활동의 같지는 조치를 제공합니다. 이 문서 신경근육학 분기점 (NMJ)의 노출하는 데 사용되는 절개 방법을...

해부 및 C. 엘레간스 신경근육학 융티온에서 레코딩

학습하세요 C. elegans를 이용한 프리온 유사 단백질 확산 및 독성 분석 방법입니다. 시간 경과 형광 현미경과 RNAi 스크리닝으로 세포 내외 운송을 모니터링하고 독성 조절 인자를 식별하여 신경퇴행성 질환 연구에 활용합니다.

후생 동물 모델 생물을 사용하여 확산 및 독성 프리온 같은 단백질을 조사

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