February 11th, 2015
세포 침전 매니폴드/슬라이드 장치를 사용하여 시험관 내에서 비부착 면역 세포의 방사상 이동성을 모니터링하는 프로토콜을 설명합니다. 세포 이동은 종양 세포의 단층 또는 세포외 기질 단백질에서 추적됩니다. 광학 및 형광 현미경에 의한 검사를 통해 세포 이동성 및 세포 독성 기능을 관찰할 수 있습니다.
다음 실험의 전반적인 목표는 부착 종양 세포의 단층을 통한 비부착 효과기 T 림프구 이동을 보여주는 것입니다. 이는 먼저 폴리 D 라이신으로 코팅된 테프론 마스킹 슬라이드의 웰에 부착 종양 세포의 단층을 설정하여 두 번째 단계로 형광 표지된 효과기로 달성하고, T 림프구는 세포 침강 매니폴드를 사용하여 단층의 중앙으로 침전됩니다. 다음으로, 광 및 형광 현미경 검사를 사용하여 단층을 통한 비부착성 세포의 이동을 시각화합니다.
그 결과, 부착성 종양 세포 단층과 공동 배양에서 비부착성 T 림프구의 이동 및 효과기 기능이 림프구가 레트로바이러스 벡터로 형질도입된 후에도 유지됨을 보여줍니다. 기존 방법에 비해 이 기술의 주요 장점은 부착성 종양 세포가 있는 석탄 배양에서 비부착 효과기 T 림프구의 방사형 이동을 측정할 수 있다는 것입니다. 이는 원발성 또는 전이성 뇌종양 환자에게 광범위한 영향을 미치는데, 이는 시토신 탈아미나제(cytosine deaminase)와 같은 약물 촉진 유전자를 발현하도록 변형된 동종 세포독성 T 림프구가 뇌의 종양을 제거하기 위한 다중 모드 접근법으로 테스트되고 있기 때문입니다.
일반적으로 이 방법을 처음 사용하는 개인은 부착 특성에서 종양 세포 성장의 이질성으로 인해 부착 종양 세포 단층을 확립하는 데 어려움을 겪을 것입니다. 균일한 종양 단층을 생성하고 비부착성 L-O-C-T-L을 효과적으로 침강하기 위한 단계에는 두 세포 유형의 특성에 대한 숙련된 이해가 필요하기 때문에 이 방법을 시각적으로 시연하는 것이 중요합니다. 시작하려면 최대 4 명까지 살균 할 수 있습니다.
10웰 테프론은 150mm x 15mm 페트리 접시의 멸균 플레이트에 슬라이드를 코팅했습니다. 2-3밀리리터의 멸균수가 들어 있는 35mm x 10mm 페트리 접시를 슬라이드 옆에 놓아 습도를 제공합니다. 다음으로, 각 웰을 폴리 D 라이신 또는 폴리 L 라이신의 밀리리터당 100마이크로그램 용액으로 덮어 슬라이드를 프리코합니다.
슬라이드를 실온에서 1시간 동안 배양한 다음 용액을 흡인하고 준비된 샘플 웰과 함께 PBS로 웰 표면을 두 번 헹굽니다. 부착된 종양 세포의 합류 플라스크를 수확합니다. 광학 현미경 검사법으로 생존 가능한 세포의 수를 세고, 그 후에 밀리리터당 6개의 세포에 5 곱하기 10의 농도로 세포를 현탁시킵니다.
완충 성장 배지에서 종양 세포 유형에 따라 각 웰에 5-10 마이크로 리터의 세포 현탁액을 추가하고, 배지와 피펫으로 웰의 부피를 최대 40 마이크로 리터까지 천천히 위아래로 가져와 세포를 고르게 분포시킵니다. 웰에 씨를 뿌린 후 종양 세포가 실온에서 30분 동안 정착하도록 합니다. 그런 다음 페트리 접시에 뚜껑을 덮고 최소 24시간 동안 5% 이산화탄소가 있는 섭씨 37도의 가습 인큐베이터로 조심스럽게 옮깁니다.
단층에서 배지의 일부를 조심스럽게 제거하고 더 많은 양의 새로운 완전한 T 세포 배지로 교체하여 웰의 배양 배지를 매일 교체하십시오. 세포는 일반적으로 1-3일 이내에 융합되어 종양 세포 단층에 침전할 수 있도록 세포를 준비합니다. 비부착성 T 세포를 채취하고 분석 최소 1시간 전에 제조업체의 프로토콜에 따라 세포 증식 염료로 라벨링합니다.
다음으로, 종양 세포 슬라이드가 포함된 가습 챔버를 생물학적 안전 캐비닛에 놓습니다. 피펫팅으로 PBS로 웰을 세척한 다음 10% 혈청이 포함된 45마이크로리터의 완전한 배지를 웰에 추가합니다. 매니폴드 끝에 있는 고리가 슬라이드 바닥에 닿을 때까지 멸균된 세포 침강 매니폴드를 웰 위로 밉니다.
매체가 매니폴드 채널에서 보이는지 확인합니다. 그런 다음 비부착성 세포를 세고 10에서 5번째까지 1-2배로 현탁합니다. 배지의 마이크로리터당 세포.
세포 침전을 방해할 수 있는 세포 클러스터를 제거하기 위해 세포를 부드럽게 파괴합니다. 세포 현탁액의 1마이크로리터를 각각에 대한 매니폴드의 채널로 천천히 피펫팅합니다. 그런 다음 장치를 실온에서 20-30분 동안 배양하여 채널의 세포가 단층에 침전되도록 합니다.
세포가 안정된 후 슬라이드를 건드리지 않고 매니폴드를 똑바로 부드럽게 들어 올립니다. 세포 펠릿이 매니폴드 채널의 둘레 내에 안착되었는지 확인하십시오. 현미경을 사용하여 장착된 셀은 슬라이드를 부드럽게 움직여도 펠릿이 분산되지 않도록 단층에 약간 부착되어야 합니다.
세포가 침전된 것을 확인한 후 슬라이드를 이산화탄소와 습도 챔버가 장착된 도립 현미경으로 옮깁니다. Four x objective를 사용하여 세포의 brightfield 및 multichannel 형광 이미징을 수행할 수 있습니다. 명시야 및 형광 채널에서 주어진 영역의 이미지를 획득한 다음 이미지 캡처 소프트웨어를 사용하여 미크론 막대를 추가합니다.
모든 시점을 획득하면 시점 사이에 가습된 인큐베이터에 슬라이드를 보관하십시오. 이미지 파일을 이미지 편집 프로그램으로 끌어다 놓고 레이어 추가 옵션을 선택하여 여러 레이어가 있는 이미지 파일을 만듭니다. 빛과 형광 이미지를 하나의 레이어로 병합합니다.
획득 소프트웨어를 사용하여 8mm x 8mm 영역의 사진을 촬영합니다. 소프트웨어는 전체 웰에서 가장 잘 표현되는 채널을 사용하여 캡처된 이미지를 자동으로 함께 스티칭하도록 설정해야 합니다. 형광 채널만 이미징되는 경우 이 채널은 부착 세포를 이미징하기 위한 채널이어야 합니다.
또는 이미지 편집 소프트웨어를 사용하여 이미지를 스티칭할 수 있습니다. 이는 한 이미지에서 다른 이미지로 보존된 이미지 영역을 정렬하고 완전한 그림이 생성될 때까지 이미지를 서로 위에 오버레이하여 수행됩니다. 이미지 소프트웨어를 사용하여 이미지를 함께 연결합니다.
결합된 이미지를 사용하여 Image J 소프트웨어로 표면 강도 형광 맵을 만들고 형광 T 세포 응집 또는 시간 경과에 따른 확산을 시각화할 수 있습니다. 에메랄드 녹색 형광 단백질 발현 유전자를 암호화하는 복제 유능한 레트로바이러스 벡터를 사용하여 형질도입된 Allo CTL로 알려진 인간 allo react 세포독성 T 림프구는 신경교종 세포의 단층의 중심에 위치했습니다. 4시간 후, 모든 OCTL은 24시간까지 가시적인 응집체를 형성했습니다.
부착 세포 단층에 빈 패치가 나타나 종양 세포의 용해를 나타내고 일부 allo CTL이 선행 가장자리를 넘어 이동했음을 나타냅니다. 형광 표지된 쥐 Allo CTL은 1시간 동안 형광 표지된 신경교종 세포의 단일층 중앙에 앉았고, Allo CTL은 48시간까지 신경교종 세포와 밀접하게 연관되어 있었고, Allo CTL은 단층층 표면 강도의 중심에서 멀리 이동했습니다. 이미지 J 소프트웨어를 사용하여 이러한 이미지에서 형광 맵을 생성했으며 48시간 후에 중심에서 상당한 이동을 보여줍니다.
건강한 배양 조건을 유지하기 위해 종양 세포 단층의 배양 배지를 매일 변경하는 것이 중요합니다. 또한, 일단 마스터하면 비 부착 성 세포의 침강은이 절차에 따라 약 20 분이 소요되어야합니다. 세포 경로 추적과 같은 다른 방법을 사용하여 allo CTL이 단층을 가로질러 이동하는 속도 또는 세포독성 기능을 수행하는 종양 세포와 접촉하는 시간에 대한 질문에 답할 수 있습니다.
이 프로토콜은 면역 유전자 치료 분야의 연구자들이 종양 세포와의 공동 배양에서 유전자 변형 T 림프구의 이동을 탐구하는 데 도움이 될 것입니다. 이 동영상을 시청한 후에는 공동 배양당 비부착 및 부착 세포를 준비하는 방법과 세포 침전 매니폴드를 사용하여 종양 세포 단층에 대한 비부착 세포의 수평 방사상 이동을 연구하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다.
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이 기사는 세포 침전 매니폴드를 사용하여 시험관 내에서 부착하지 않는 면역 세포의 반경 방향 이동성을 모니터링하기 위한 프로토콜을 설명합니다. 효과 T 림프구의 종양 세포 단일층을 넘어가는 이동은 광학 및 형광 현미경을 사용하여 추적됩니다.
This method enables direct visualization of non-adherent immune cell motility and cytotoxic function in co-culture with adherent tumor cells, providing critical preclinical evidence for immuno-oncology candidates. By maintaining effector function post-retroviral transduction, it supports mechanistic de-risking of genetically modified T-cell therapies prior to in vivo evaluation. The assay bridges discovery-stage target validation with translational assessment of cell-based therapeutics, particularly relevant for brain tumor immunotherapies requiring proof of tumor lysis and migratory capacity.
The assay fits within the discovery-to-preclinical continuum, enabling early assessment of migratory and cytotoxic properties of engineered lymphocytes before lead optimization and toxicology studies.