Name: 도구로 아데노 관련 바이러스를 사용하여 질병 망막 장벽을 연구하는 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-04-19T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 14 s
Description: 배우세요 망막 질환 동물 모델에서 아데노 관련 바이러스를 이용해 혈액-망막 장벽 투과성과 내부한정막 완전성을 평가하는 방법을. 이 기법은 망막 세포 표지와 치료 전략 개발에 활용됩니다.

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Institut de la Vision의 이미징 플랫폼에 감사드립니다. 우리는 O.V. 및 Allergan INC.의 박사 학위 펠로우십을 위해 AFM(French Muscular Dystrophy Association)에 감사드립니다. LABEX LIFESENSES[참조 ANR-10-LABX-65]의 틀에서 수행된 이 작업은 ANR이 관리하는 프랑스 국가 기금의 지원을 받았습니다. AAV 준비에 대한 기술 지원을 해주신 Peggy Barbe와 Mélissa Desrosiers에게 감사드립니다. 컨포칼 현미경 검사에 대한 탁월한 기술 지원과 결과 해석에 대한 전문가의 조언에 대해 Stéphane Fouquet에게 감사드립니다.

본 연구에 사용 된 모든 동물은 안과 및 비전 연구에서 동물의 사용을위한 ARVO 방침에 따라 마음에 든다고 및 처리되었다. HEK-293 세포를 17, 18의 일시 발현에 의해 재조합 AAV (rAAV) 1. 생산 참고 : 맥 클루 C, (2011) 19 조브를 참조하십시오. <ol><li> AAV 벡터 플라스미드의 대규모 플라스미드 제조 (적어도 1 ㎎ / ㎖)을 정제. 3 플라스미드를 사용합니다. AAV 역전 된 말단없이 복제 및 캡시드 유전자를 운반하는 AAV 헬퍼 플라스미드 LTR에, AAV ITR이 전사 플라스미드로 지칭 운반 유전자 발현 카세트, 및 아데노 바이러스 헬퍼 유전자 E2, E4 및 VA RNA 유전자를 공급하는 플라스미드를 지칭 됨 반복 pHELPER으로합니다. </li><li> 이 3 개의 플라스미드 폴리에틸렌 이민 (또는 다른 형질 전환 시약)을 사용하여 293 세포를 형질 감염. 형질 전환 효율이 80 % 이상인 양호한 VI에 필요RAL 수익률. </li><li> iodixanol 기울기에 293 세포 용 해물에서 재조합 AAV를 정화. 15 %, 25 %, 40 % 및 60 % iodixanol 그라데이션을 획득하기 위해 사용된다. , AAV 입자를 함유하는 40 % iodixanol 분획 수집 0.001 % 플루로 PBS에 대해 1 시간 및 완충액 교환 (인산 완충 생리 식염수)에 대해 500,000 XG에서 초 원심 분리 한 후 분획을 농축시킨다. </li><li> 바이러스 게놈 역가 (20)를 확인하려면, QPCR 다음에 DNase의 ProteinaseK 다이제스트를 수행합니다. 정방향 및 역방향 프라이머는 AAV2 ITR 위치한 62 BP 영역을 증폭. 표준 플라스미드, 프로브는 FAM으로 표지하고 (BHQ) 소광 블랙홀 갖는다. </li><li> ITR 프라이머, 100 nM의 순방향 ITR 프라이머, 100 nM의 AAV2 ITR 프로브, 0.4 mM의 dNTPs를, 2 mM의 MgCl2를, 1X 백금의 Taq 완충액, 1U 백금 역방향가 340nm를 사용하여 25 μL의 최종 부피의 qPCR (정량적 폴리머 라제 연쇄 반응)을 수행 DNA 형성 촉매 5 μL 템플릿 (표준, 샘플 및 템플릿없이 제어). </li><li> 용표준은, 연속 희석을 배 10 7 X에 형질위한 플라스미드를 사용하여 (5 μL 10월 10일에서 10월 4일까지 게놈 / ㎖의 최종 농도에서 얻어진 2 × 109 3 10 2 × 게놈 / ㎖ 각각). </li><li> 변성의 40주기 다음에 15 분 동안 95 ° C에서 초기 변성 단계에 의해 프로그램을 시작 1 분, 어닐링 / 신장 95 ℃에서 1 분, 60 ° C에서. 단기 기억이나 장기 저장 기간 동안 -20 ℃에서 4 ℃에서 보관. </li></ol> AAV 2. 유리체 강내 주입 <ol><li> 케타민 (50 ㎎ / ㎏)과 자일 라진 (10 ㎎ / ㎏)와 C57BL6J 마우스를 마취의 반사, 적절한 마취를 나타내는 철수 반사와 꼬리 핀치 응답을 바로 잡고의 손실을 확인합니다. neosynephrine 5 %의 각막 응용 프로그램에 의해 동공을 확장하고 안약 0.5 % mydriaticum. 마취 동안 건조를 방지하기 위해 눈에 수의사 연고를 사용합니다. </li><li> 초 미세 30 G의 disposab 전달제작 : 적도를 통해 바늘과 유리체에, 윤부 옆에 (애기 K, 주피터 (2007) 21 참조). 유리체의 중심에 바늘의 직접 관찰과 ShH10-GFP 또는 AAV5-GFP의 1 10 × 4 (11) 부사장을 포함하는 1 μL 재고 (그림 1)을 주입한다. ILM 실험에 대한 제어로 한쪽 눈을 사용하십시오. BRB 실험에 두 눈을 주입한다. 주입 눈에 항 염증 항균 국소 치료를 적용합니다. </li><li> neosynephrine와 동공을 확장하고 mydriaticum 눈 이미징 떨어진다. GFP (녹색 형광 단백질) 식 일주, 이주 1 월, 유리체 강내 주입되어 2 개월 후 (그림 1)을 따라 안저 카메라로 안저 검사를 수행합니다. CO 2 흡입 1-2개월 후 주사로 쥐를 희생. </li></ol> 3. 면역 조직 화학 <ol><li> 망막 저온부 (그림 1)의 경우, L을 제거하는 탈핵 눈을 해부1 시간 동안 4 % 파라 포름 알데히드에 ENS와 각막 및 침수 수정. <ol><li> 실온에서 1 시간, 실온에서 또 다른 시간 동안 20 % 수 크로즈 10 % 수크로오스에 미리 고정 눈 Cryoprotect. 밤새 4 ° C에서 30 % 자당 용액 Cryoprotect. 동결 등을 알아내는 매트릭스로 수지를 포함에 eyecups을 포함합니다. 10 μm의 저온부를 확인하고 특수 냉동 조직 절편 치료를 슬라이드에 마운트하고 그 염색시 조직의 준수를 향상시킬 수 있습니다. </li><li> 5 분 동안 PBS pH를 7.4에서 0.1 % 트리톤 X100와 섹션을 Permeabilize 하시려면. PBS에서 세척 배 및 블록 1 % BSA와 함께 PBS에서 실온에서 1 시간, 0.1 % 트윈 20 대. </li></ol></li><li> 망막 flatmounts (도 1)의 경우, 박리를 용이하게하기 위해 15 분 동안 4 % 파라 포름 알데히드에서 탈핵 쳐다. <ol><li> 15-30 분에서, 각막 및 렌즈를 제거하는 눈을 해부. ORA 세라 주위 절단함으로써 망막 색소 상피 (RPE) 및 공막으로부터 망막을 분리하고,시신경. 망막 및 형질 망막 세포에 형광 단백질 (고정이 24 시간을 초과 할 수 없습니다) 해결하기 위해 또 다른 30 ​​분 동안 4 % 파라 포름 알데히드에 담가. 멸균 PBS, pH가 7.4에서 5 분을 씻으십시오. </li><li> (1 % BSA, 2 % 정상 염소 또는 당나귀 혈청 PBS, 0.5 % 트리톤 X-100) 버퍼를 차단하는 PBS를 변경하고 실온에서 4 시간 또는 4 박 ° C 중 하나에 대한 버퍼를 차단에 품어. </li></ol></li><li> 실온에서 또는 4 ° C에서 하룻밤 중 4 시간 동안 차단 버퍼에 차 항체와 조직을 품어. PBS로 세척 배. 참고 : 다음과 같이 사용 된 항체는 다음과 같습니다 항 라미닌 (/ 1,000 1) 라벨 ILM, 안티 로돕신 클론 4D2 (1/500) 표시 막대, 안티 - 글루타민 합성 효소 클론 GS-6 (1 / 1,500) 라벨 뮐러 세포 , PNA 렉틴 (1/40) 라벨 콘. </li><li> 방 템피에서 1 시간 (저온부) 또는 2 시간 (flatmounts)에 대한 버퍼를 차단에 알렉사 형석 복합 이차 항체의 500 희석 : 1 조직을 품어rature와 빛으로부터 보호. PBS로 세척 배. </li><li> 망막 완화 컷을 확인하고는 광 수용체 또는 망막 신경절 세포 (RGC) 어느 한쪽이 위쪽으로 향하게하여 유리 슬라이드에 flatmount. 4 ° C에서 coverslip에 저장을 적용, 수성 mountingmedium를 추가합니다. </li><li> 레이저 스캐닝 공 초점 현미경에 공 초점 현미경을 수행합니다. 여기 및 발광 크로스 토크를 줄이기 위해, 이미지 라인으로 순차적으로, 라인을 획득. 표본화 정리에 따라 스텝 크기를 정의합니다. 최종 이미지에 과포화 픽셀을 최소화 노출 설정을 사용합니다. Z-프로젝트 기능에서 최대 강도를 사용하여 마지막 8 비트 RGB 색상 모드로 변환 한면에 피지와 프로세스 12 비트 이미지, 프로젝트 Z 섹션. </li></ol> 마우스의 혈액 샘플 4. PCR 분석 <ol><li> 마취 C57BL6J 마우스의 음경 정맥 AAV-GFP의 1 내지 10 행 × 4 11 입자를 함유하는 100 μL 스톡 (5 % 이소 플루 란을 주입초 미세 6mm 바늘 인슐린 주사기를 사용하여 가까운 챔버 유도 및 수술 중에 코 콘을 통해 이소 플루 란의 2.5 %)에 대한. 이 동물은 AAV 입자 순환의 양성 대조군이 될 것입니다. </li><li> 주입하고 3 시간, 24 시간 2 일, 3 일 ShH10 유리체 강내 주입 후 또는 intrapenile 주입 (그림 1) 전후 마우스 꼬리에서 샘플 혈액. 약 10 ~ 20 μL 헤파린 튜브에 수집됩니다. 절차의 완료 후 CO 2 흡입 쥐를 희생. </li><li> 당신의 선택의 추출 키트를 사용하여 혈액 샘플에서 게놈 DNA를 추출합니다. </li><li> 게놈 DNA의 PCR 증폭을 수행합니다. 이 프로토콜은 다음 프라이머 쌍을 사용 GFP를, 5&#39;-CGACACAATCTGCCCTTTCG-3 &#39;, 안티센스 5&#39;-CATGGACGAGCTGTACAAGGGA-3&#39;을 감지. 다음 PCR 프로그램을 수행 하였다 : 95 ° C에서 2 분 (1 사이클); 95 ° C 45 초, 55 ℃ 1 분, 72 ℃에서 45 초 (30 회) 72 ° C 5 분 (1주기)4 ° C 유지. </li></ol> 5. 선택 에반스 블루 방법 주 : 에반스 블루 제 10 이용한 망막 혈관에서 알부민의 누설을 측정함으로써 혈관 투과성 정량화. <ol><li> 5 ㎛의 필터를 통해 5 분간 초음파 세정기에서, 여과 및 생리 식염수 (6 ㎎ / ㎖), 초음파 처리에 의해 용해 에반스 블루 염료를 준비한다. </li><li> (단계 4.1, 이소 플루 란 흡입) C57BL6J 마우스를 마취 반사, 철수 반사와 적절한 마취를 나타내는 꼬리 핀치 응답을 바로 잡고의 손실을 확인하고 음경 정맥 (그림 1)을 통해 에반스 블루 (45 ㎎ / ㎏)을 주입. 쥐의 발, 총구, 귀이, 에반스 블루 주입에 따라 염료의 흡수와 분포를 확인 명확 블루가 있는지 확인합니다. </li><li> 케타민 (50 ㎎ / kg)과 자일 라진 (10 ㎎ / kg)와 염료의 주사 후 C57BL6J 마우스에게 3 시간 및 마취 rightin의 손실을 검증g는 적절한 마취를 나타내는 리플렉스. 샘플 intracardially 500 헤파린 튜브에 혈액 μL 및 시트르산 완충액 좌심실을 통해 2 분 동안 마우스를 관류 (0.05 M, pH가 3.5, 시트르산 7.8 g, 증류수 1 L 시트르산 나트륨 3.8 g을 용해) 혈관 수축을 방지하기 위해 37 ° C로 미리 예열. 마우스는 관류를 통해 희생된다. </li><li> 신중하게 관류, 명백히하다 및 후 망막을 수집하는 운영 현미경으로 두 눈을 해부하다 (3.2 절 참조). 원심 증발기에서 건조 망막 하룻밤, 무게, 그리고 (100 XG)를 진탕 65 ° C에서 18 시간 동안 포름 아미드 100 ㎕와 망막을 배양하여 에반스 블루 염료를 추출합니다. 4 ° C에서 2 시간 동안 20,798.5 XG에 30K 오메가 필터 튜브 원심 분리기 망막 샘플 및 원심 분리기 혈액 샘플을 4 ℃에서 15 분 동안 20,798.5 XG에. </li><li> 흡광도를 측정하기 위해 두 상층 액을 사용합니다. 최대의 흡광도 FO를 감산하여 각 시료의 흡광도를 결정740 nm에서 흡광도 최소값이 620 nm에서 에반스 블루 R. 포름 아미드 에반스 블루의 표준 곡선에서 혈장과 망막 에반스 블루 농도를 계산한다. 시간당 건조 망막 (플라즈마 / g 망막 건조 중량 / 인사 μL)의 그램 당 에반스 블루의 마이크로 리터의 BRB 투과성을 표현한다. </li></ol> 6. 선택적 형광 안저 주 : 마우스에서 망막 혈관으로부터 누설 나트륨 플루오 레세 인의 복강 내 주사에 의해 시각화 될 수있다. <ol><li> C57BL6J 마우스 마취 (이소 플루 란 흡입을, 단계 4.1 참조)과 눈 (neosynephrine 및 mydriaticum)를 드랍 동공을 확장. 마취 동안 건조를 방지하기 위해 눈에 수의사 연고를 사용합니다. </li><li> 형광 안저 0.1 ml의 멸균 식염수에 10 %의 나트륨 형광의 복강 0.01-0.02 ml를 주입한다. </li><li> 안저 카메라를 사용하여 주사 후 양쪽 눈의 영상을 수집한다. 프로 후 공동으로 2 흡입 쥐를 희생시저. 참고 : 망막 혈관 조영술에 표시 될 20 초 필요하다. 형광 이미지는 주사 후 3-10 분 사이에 최대 포착되어야한다. 누설 명소 (있는 경우) 2.5 분 후에 관찰 할 수 있습니다. 나중 시점에서 화질 인해 나트륨 플루오 레세 곧 분석에 사용 된 후에 얻어지는 유리체, 따라서로 이미지 만이 확산 손실된다. </li></ol>

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BRB는 혈액과 망막 사이 분자의 교환을 제어한다. 그 내역은 당뇨병 성 망막증 또는 연령 - 관련 황반 변성 (AMD)과 같은 다양한 질병과 연관된다. 우리는 최근에 투과 BRB를 표시하는 디스트로핀 넉 아웃 (knock-out) 마우스에, 망막은 아데노 관련 바이러스 성 벡터 (AAV)에 의해 매개 유전자 전달에 더 관대하게 보여 주었다. 그러나, BRB 투자율 AAV 입자에도 불구하고 안구 내이 모델의 안구 구획에 국한 유지 주사 한. 우리의 결과는 전신 부작용의 추가 위험을 나타내지 않는 투과 BRB를 표시 질환에 대한 그 유전자 치료를 나타냅니다. 또한, 그들은 같은 ILM 같은 다른 장벽 바이러스 입자에 더 접근을 허용 망막 질환 중에 손상 될 사실을 지원한다. 우리의 연구 결과는 AAV 인코딩 리포터 유전자가 망막 질환의 동물 모델에서 BRB의 투과성과 ILM의 무결성을 연구하는 훌륭한 도구라고 생각하는 우리를 이끌. 이 특별히내는데은 특별히 뮐러 글리 라벨 AAV 변이체 ShH10는 망막 아교 레이블과 질병에 응...

뮐러 세포는 망막의 폐해 주요 성분이다. 형태 학적으로, 이들은, 유리체와 접촉하는 반경 방향 및 망막 endfeet을 스팬 ILM 후자의 비밀 컴포넌트를 직면한다. ILM는 약 10 가지 세포 외 기질 단백질 (라미닌, 아 그린, perlecan, nidogen 콜라겐 여러 헤파린 설페이트 프로테오글리칸)로 이루어지는 기저막이다. 개발하는 동안, 그 존재는 신경절 세포 1-3의 망막 histogenesis, 시신경 축삭의 탐색 및 생존을위한 필수적이다. 그러나, ILM 성인 망막 본질적인이고 수술 사 망막 손상시키지 않고 특정 병리에서 제거 될 수있다. 유전자 치료에있어서, 상기 멤브레인 주입술 5 AAVs를 이용한 망막의 효율적인 전달을위한 물리적 장벽이된다. 그들의 프로세스의 광범위한 arborization을 통해 뮐러 세포 영양 및 규제 suppo을 제공RT 망막 신경 세포와 혈관 세포 모두에. 뮐러 세포도 BRB (6)의 형성과 유지에, 망막 항상성의 조절에 관여한다. 꽉 접합 망막 모세 혈관 내피 세포 사이에, 뮐러 세포, 성상 세포와 혈관 주위 세포는 BRB를 형성한다. BRB는 당뇨 망막 병증, 망막 정맥 폐쇄 및 호흡기 질환 등 retina.In 많은 질병에 들어가는 특정 물질을 방지, 망막의 저산소증은 BRB 7-9을 통해 누출이 발생합니다. 이 파열은 vasogenic 부종, 망막 박리와 망막 손상으로 이어지는 혈관 투과성의 증가와 연관되어있다. 뮐러 세포와 밀접 모두 BRB ILM 무결성에 중요한 역할을하고, 혈관 기저막과 연관된다. 따라서, 뮐러 아교 세포의 레이블을 다음 망막 장벽의 물리적 상태의 연구에 특히 관련이있다. 고전적인아군, BRB 투과성 혈장 알부민 비공유 결합 에반스 청색 염료의 전신 주입 이루어진 에반스 블루 분석법을 이용하여 측정된다. 상기 분석은 망막 혈관 (10) (프로토콜 섹션 5 참조)에서 알부민 누설 (중간 크기의 단백질, ~ 66 kDa의)을 측정한다. 또한, 혈관 누출 형광의 누설 증명 형광 망막 혈관 조영술에 의해 가시화 될 수있다 (작은 분자 ~ 359 다; 프로토콜 제 6 장 참조) 11. 그럼에도 불구하고, 두 방법은 작은 분자와 단백질에 BRB 투과성의 평가를 할 수 있지만 ILM의 무결성에 대한 정보를 제공하지 않습니다. 따라서, BRB 투과성 공부, 우리는 큰 분자 (예를 들어, AAV 입자, 25 nm의 직경)에 BRB 투과성에 대한 정보를 제공 AAV 기반 방법을 사용 하였다. 사실, 우리의 방법은 그 제안하는 혈액에 AAV 전이 유전자의 존재를 감지 할 수 있습니다 ~ 25 nm의 직경 입자 것혈류로 침투 할 수 있습니다. 이 방법은 또한, 병리 적 상태의 ILM 및 세포 외 기질 단백질의 구조에 대한 정보를 제공한다. 두 AAV 변종은 연구에 유용 : AAV5 및 ShH10. Subretinally 주입, AAV5은 광 수용체와 망막 색소 상피 (12)에 대한 자연적인 굴곡 운동이 있지만 그대로 ILM 5,13 야생 형 망막의 유리체에 투여시는 외부 망막에 걸쳐 얻을 수 없습니다. ShH10 특별히 신경 세포 (14, 15)을 통해 아교 세포를 대상으로 설계되었습니다 AAV의 변종이다. ShH10 선택적으로 손상된 장벽 (16)와 망막의 효율성 향상과 건강하고 병에 걸린 망막 모두에서 뮐러 세포 레이블. immuhistochemistry 및 혈액 DNA 분석과 결합 된 이러한 바이러스 도구 망막 장벽의 상태 및 질환에서의 관여 (도 1)에 대한 정보를 제공한다.

<table><tbody><tr><td>C57BL6J 마우스 균주</td><td>JANVIER LABS</td><td></td><td>마우스</td></tr><tr><td>케타민 500</td><td>Virbac 프랑스</td><td></td><td>마취제</td></tr><tr><td>Xylazine Rompun 2%</td><td>바이엘 헬스케어</td><td></td><td>마취제</td></tr><tr><td>네오시네프린 5% Faure</td><td>Europhta</td><td></td><td>팽창제</td></tr><tr><td>Mydriaticum 0.5%</td><td>Thea</td><td></td><td>팽창제</td></tr><tr><td>Sterdex</td><td>Novartis</td><td></td><td>항염증성</td></tr><tr><td>크라이오매트릭스 임베딩 수지</td><td>Thermo Scientific</td><td>6769006</td><td></td></tr><tr><td>Superfrost Plus 접착 슬라이드</td><td>Thermo Scientific</td><td>10143352</td><td>슬라이드</td></tr><tr><td>안티 라미닌</td><td>Sigma</td><td>L9393</td><td>항체</td></tr><tr><td>항로돕신 클론 4D2</td><td>Millipore</td><td>MABN15</td><td>항체</td></tr><tr><td>항글루타민 합성효소 클론 GS-6</td><td>Millipore</td><td>MAB302</td><td>항체</td></tr>, <tr><td>Anti-Glial Fibrillary Acidic Protein,</td><td>Dako</td><td>334</td><td>항체</td></tr>, <tr><td>PNA Lectin,</td><td>Invitrogen</td><td>L32459</td><td>프로브</td></tr>, <tr><td>Alexa fluor conjugated secondary 항체</td>, <td>Invitrogen</td><td></td><td>항체</td></tr><tr><td>, Fluorsave 시약,</td><td>Calbiochem</td><td>345789</td><td>마운팅 배지</td></tr>, <tr><td>QIAmp DNA Micro Kit</td><td>QIAGEN</td><td>56304</td><td></td></tr><tr><td>GoTaq DNA 중합효소</td><td>Promega</td><td>M3001</td><td></td></tr><tr><td>Evans Blue 염료</td><td>Sigma</td><td>E2129</td><td>염료</td></tr><tr><td>5 &micro; m 필터</td><td>Millipore</td><td></td><td></td></tr><tr><td>구연산나트륨</td><td>시그마</td><td>S1804</td><td></td></tr><tr><td>구연산</td><td>시그마</td><td>C1909-2.5KG</td><td></td></tr><tr><td>포름아미드 분광 광도계</td><td>시그마</td><td>295876-2L</td><td></td></tr><tr><td>플루오레세인</td><td>시그마</td><td>F2456</td><td>염료</td></tr><tr><td>미크론 III</td><td>피닉스 연구소</td><td></td><td>3-CCD 컬러 카메라, 프레임 그래버 및 기성 소프트웨어를 기반으로 하는 현미경 시스템을 통해 연구원들은 마우스 망막을 이미지화할 수 있습니다.</td></tr><tr><td>인슐린 주사기</td><td>Terumo</td><td>SS30M3109</td><td></td></tr><tr><td>Syringe 10 &micro; l Hamilton</td><td>Dutscher</td><td>74487</td><td>Seringue 1701</td></tr><tr><td>Needle RN G33, 25 mm, PST 2</td><td>Fisher Scientific</td><td>11530332</td><td>유리체 내 주입</td></tr><tr><td>UltraMicroPump UMP3</td><td>World Precision Instruments</td><td>UMP3</td><td>다목적 인젝터는 마이크로 주사기를 사용하여 피콜리터 부피를 전달합니다</td></tr><tr><td>UltraMicroPump(UMP3) (1개) SYS-Micro4 컨트롤러</td><td>포함 UMP3-1</td><td>디지털 컨트롤러</td><td></td></tr><tr><td>양안 돋보기 SZ76</td><td>ADVILAB</td><td>ADV-76B2</td><td>줌 0.66 x 5 x LED 스탠드 에피 및 직경 / 망막 해부</td></tr><tr><td>스프링 가위 스트레이트 - 8.5 cm</td><td>Bionic France S.a.r.l</td><td>15003-08</td><td>망막 해부</td></tr><tr><td>곡선 Vanna 가위</td><td>15004-08</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pince Dumont 5</td><td>11254-20</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Veriti 96-Well Thermal Cycler</td><td>Life Technologies</td><td>4375786</td><td>Thermocycler</td></tr><tr><td>초음파 세척기</td><td>실험실 용품</td><td>G1125P1T</td><td></td></tr><tr><td>Nanosep 30k 오메가 튜브</td><td>VWR</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Speedvac Fisher</td><td>Scientific</td><td>SC 110 A</td><td></td></tr><tr><td>분광 형광계</td><td>TECAN</td><td>무한 M1000</td><td></td></tr></tbody></table>

도구로 아데노 관련 바이러스를 사용하여 질병 망막 장벽을 연구하는

Using Adeno-associated Virus as a Tool to Study Retinal Barriers in Disease

뮐러 세포는 망막의 주요 신경교 세​​포이다. 최종 - 피트는 외측 및 내측 제한 멤브레인 (ILM)에서 망막의 한계를 형성하고, 성상 세포, 외막 세포 및 내피 세포와 함께 이들은 혈액 망막 장벽 (BRB)을 확립한다. ILM은 망막과 유리체 사이에 조직 학적 경계를 정의하는 기저막 역할을하면서 BRB는 혈류와 망막 사이의 물질 이동을 제한합니다. 뮐러 세포 레이블링이 세포는 BRB와 ILM의 중요한 부분으로, 망막 장벽의 물리적 상태를 연구하는 것이 특히 관련이있다. BRB와 ILM 모두 자주 망막 질환에서 변경 및 질병 증상에 대한 책임이 있습니다. 이러한 에반스 블루 분석 또는 형광 안저 촬영 등의 BRB의 무결성을 연구하는 몇 가지 잘 확립 된 방법이있다. 그러나 이러한 방법들은 BRB 투과도 (T)의 범위에 대한 정보를 제공하지 않는다나노 미터 범위의 더 큰 분자, O. 또한, 그들은 같은 ILM 다른 망막 장벽의 상태에 대한 정보는 제공하지 않는다. 망막 ILM과 함께 BRB 투과성을 연구하기 위해, 우리는 질병 상태의 ILM과 세포 외 기질 단백질의 상태를 나타내는 동안 큰 분자 BRB의 투과성에 대한 정보를 제공 AAV 기반의 방법을 사용했다. 두 AAV 변종은 연구에 유용 : AAV5 및 ShH10. AAV5은 광 수용체에 대한 자연적인 굴곡 운동이 있지만 ILM이 손상되지 않은 경우 (야생 형 망막에 즉,) 유리체에 투여시는 외부 망막에 걸쳐 얻을 수 없습니다. ShH10는 신경 교세포 대한 강한 향성을 가지고 있으며, 선택적으로 건강하고 병에 걸린 망막 모두에서 뮐러 아교 세포 레이블을 것입니다. ShH10는 ILM이 손상되어 망막에보다 효율적인 유전자 전달을 제공합니다. 면역 조직 화학 및 혈액 DNA 분석과 함께 이러한 바이러스 도구는 질병 망막 장벽의 상태에 빛을 흘렸다.

동물 모델은 ILM (- B도 2a)의 구조를 도시 섭동 있다면 우리는를 사용 ShH10 뮐러 글 리아 세포의 형질 도입을 증가 망막 예상된다. 예를 들어, 우리가 Dp71의 부재에 그를 보여, ShH10 목표를 구체적으로하지만, 더 효율적으로 뮐러 야생형 마우스 (16) (그림 2C - F)에 비해이 마우스 라인에서 ILM의 투과성 증가를 나타내는 유리체 강내 주입하여 신경 교세포. AAV5 또한 ILM 투과도의 지표로서 사용될 수있다. 야생형 생쥐에서 유리체 강내 주사 효과 AAV5는 이러한 Dp71 널 (null) 마우스 (16) 나 다른 망막 변성 (22) (- H 그림 2G)에서 손상된 망막 장벽이 마우스에서 광 수용체에 유전자 전달에 강력하게 적용됩니다. 이것은 또한 ILM의 해체 및 잠...

망막 질환의 동물 모델에서 혈액-망막 장벽 투과성과 내부 제한 막 무결성을 조사하기 위해 여러 아데노 관련 바이러스(AAV) 변종을 망막 뉴런과 신경교세포를 라벨링하는 도구로 사용했습니다. 그런 다음 바이러스 매개 리포터 유전자 발현을 망막 장벽 투과성의 지표로 사용합니다.

M&#252;ller cells are the principal glial cells of the retina. Their end-feet form the limits of the retina at the outer and inner limiting membranes ...

본 절차의 전체적인 목적은 망막 질환 동물 모델에서 혈액-망막 장벽의 투과성과 내경계막의 무결성을 조사하는 것입니다. 이는 먼저 GFP 트랜스진을 포함하는 AAV 입자를 유리체 또는 혈류에 주입함으로써 수행됩니다. 두 번째 단계는 주입 후 서로 다른 시점에서 혈액 샘플을 채취하는 것입니다.혈액 샘플링은 매주 수행하는 생체 내 안저 영상 촬영으로 보완됩니다. 마지막 단계로 망막 평면 표본 및 망막 냉동 절편에 대해 면역조직화학 염색을 수행합니다. 최종적으로, 공초점 현미경 관찰과 PCR을 통해 ILM 무결성을 나타내는 형질전환 패턴을 보여주고 혈류 내 AAV 입자를 검출하여 혈액-망막 장벽의 투과성을 입증합니다.기존 방법인 본 기술의 주요 장점은 AAV 페이스트법(paste method)이 다른 세포들이 제공하지 않는 혈액-망막 장벽 투과성에 관한 정보를 제공한다는 점입니다. 이 기술의 함의는 AAV 매개 유전자 치료로 확장되는데, 이는 AAV 입자에 대한 혈액-망막 장벽의 투과성을 확인하여 바람직하지 않은 부작용을 방지하는 데 도움을 주기 때문입니다. 또한, 이 방법은 당뇨병 쥐와 같은 다른 망막 질환 동물 모델에서 내경계막의 무결성에 대한 통찰을 제공할 수 있습니다.혈액-망막 장벽(blood retina barrier)의 붕괴를 보이는 DP 71 결핍 마우스 모델의 망막이 야생형 망막보다 더 효율적으로 형질전환되는 것을 확인했을 때, 이 방법에 대한 첫 아이디어를 얻었습니다.C-57 black-six J 마우스를 마취하는 것으로 시작하십시오. 정위 반사, 회피 반사 및 꼬리 꼬집기 반응의 세 가지 반사가 소실되었는지 확인하십시오.이러한 반사 반응의 소실은 마취가 완료되었음을 확인시켜 줍니다. 다음으로 드롭퍼를 사용하여 각막에 5% neosynephrine과 0.5% mydriaticum을 도포하여 동공을 확장시킵니다. 그런 다음 안구가 너무 건조해지지 않도록 수의학용 연고를 사용하여 눈을 윤활합니다. 이제 1~4 × 10¹¹ particles의 AAV-GFP가 포함된 스톡 솔루션을 30 gauge 초미세 일회용 바늘에 충전합니다.일반적으로 이 방법에 익숙하지 않은 사람들은 수정체나 망막을 건드리지 않고 가장 안전하게 유리체 내 주사를 시행해야 하므로 어려움을 겪을 수 있습니다. 그 다음, 30 gauge 일회용 초미세 바늘을 적도부와 각막연 근처를 통해 유리체강 내로 삽입합니다. 바늘을 안구에 삽입한 후, 바

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Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

이 비디오에서 우리는 floxed Rac1 allele를 갖고 기본 마우스 배아 섬유아 세포를 감염시킬 Cre 호텔 recombinase 유전자를 갖고 아데노 바이러스를 사용합니다.

교양 차 마우스 배아 섬유아 세포의 신호 분자의 아데노 바이러스 - 매개 유전자 제거

출처: Vacca, O., et al. 질환 상태의 망막 장벽 연구 도구로서 아데노 부속 바이러스의 활용. J. Vis. Exp. (2015)이 영상은 손상된 망막 장벽을 통한 아데노 부속 바이러스(adeno-associated virus)의 투과성을 시각화하기 위한 마우스 망막 동결 절편 제작의 단계별 절차를 보여줍니다.

아데노 부속 바이러스(Adeno-Associated Virus)에 대한 망막 투과성 평가를 위한 마우스 망막 동결 절편 제작

손상된 망막막 무결성 시각화를 위한 AAV 매개 유전자 전달

이 비디오는 일차 쥐 중뇌 뉴런을 형광 칼슘 지시약을 가진 아데노 관련 바이러스로 감염시키는 것을 보여줍니다. 지표의 형광은 성공적인 감염을 확인하고 신경 감염을 실시간으로 모니터링할 수 있습니다.

1차 마우스 중뇌 뉴런을 조작된 아데노 관련 바이러스로 감염

망막하 주사는 쥐의 눈에 있는 망막 색소 상피에 효과적인 유전자 전달을 위한 수술 기술입니다.  여기에서는 실험용 마우스에서 망막 색소 상피에 바이러스 벡터를 망막하 주입하는 쉽고 복제 가능한 방법을 설명합니다.

마우스 망막 색소 상피의 유전자 치료에 대한 바이러스 벡터의 윤부 접근 - 망막 주입

쥐에서 대규모 중앙 신경 유전자 배달 방법 적용 됩니다. 이 예제에서는 목적은 전체 척수에 영향을 미치는 질병을 모방 이다. 광범위 한 변환, 주변 관리에서 CNS에 치료 단백질을 전달 하기 위해 사용할 수 있습니다.

메서드 및 Adeno 관련 바이러스를 쥐의 정 맥 관리 및 중앙 신경 전달의 평가 대 한 팁

여기에서, 우리는 시간 경과 공초점 현미경에 의해 산후 마우스 망막 외식편에서 신경돌기 형태 형성을 조사하는 방법을 제시한다. 우리는 Cre 의존성 방식으로 막 표적화된 형광 단백질을 발현하는 재조합 아데노-관련 바이러스 벡터를 사용하는 망막 세포 유형의 희소 표지 및 획득 및 이들의 미세 공정에 대한 접근법을 기술한다.

유전자 표적화된 망막 세포 집단의 희소 아데노-연관 바이러스 표지를 이용한 뉴런 수목화의 타임랩스 이미징

이 원고에서 결막 하 주사는 주입 / 회수 주사기 펌프와 미세 주입 바늘과 결합 된 기밀 제거 가능한 주사기로 구성된 주사 시스템을 사용하여 마우스의 안구 조직에 대한 유효한 벡터 전달 방법으로 입증됩니다. 이 주사 시스템은 다른 안내 내 투여 경로에도 적용 가능합니다.

작은 동물 모델에서 아데노 관련 바이러스 벡터의 결막하 투여

아데노 관련 바이러스는 현탁 세포 배양에서 생성되며 이중 요오드화놀 밀도 구배 원심분리로 정제됩니다. 총 바이러스 수율을 높이고, 바이러스 침전의 위험을 줄이고, 최종 바이러스 산물을 더욱 농축하기 위한 단계가 포함되어 있습니다. 예상되는 최종 역가는10,12 바이러스 입자/mL에 도달하며 전임상 in vivo 사용에 적합합니다.

In Vivo 응용 분야를 위한 Iodixanol Density Gradient Centrifugation에 의한 아데노 관련 바이러스의 현탁 배양 생산 및 정제

이 원고는 최적화된 헤파린 기반 친화성 크로마토그래피 방법을 사용하여 아데노 관련 바이러스 벡터의 생성 및 정제를 위한 자세한 프로토콜을 설명합니다. 간단하고 확장 가능하며 비용 효율적인 접근 방식을 제시하여 초원심분리가 필요하지 않습니다. 생성된 벡터는 높은 순도와 생물학적 활성을 나타내며 전임상 연구에서 그 가치를 입증합니다.

단일 단계 및 반자동 Heparin Affinity Chromatography Protocol을 통한 Adeno-associated viral vectors 분리

배우세요 망막 질환 동물 모델에서 아데노 관련 바이러스를 이용해 혈액-망막 장벽 투과성과 내부한정막 완전성을 평가하는 방법을. 이 기법은 망막 세포 표지와 치료 전략 개발에 활용됩니다.

도구로 아데노 관련 바이러스를 사용하여 질병 망막 장벽을 연구하는

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