2015년 2월 20일
닭의 Eimeria 감염 진단은 여전히 까다롭습니다. 기생충 형태학 및 숙주 병리학 주도 접근법은 일반적으로 결론을 내리지 못하는 반면, PCR을 기반으로 하는 분자 접근법은 비용과 전문성 면에서 까다로운 것으로 입증되었습니다. 이 프로토콜의 목적은 루프 매개 등온 증폭(LAMP)을 eimerian 감염에 대한 간단한 분자 진단으로 확립하는 것입니다.
이 절차의 전반적인 목표는 닭 또는 닭 무리에서 I myea 종 기생충의 발생을 진단하는 것입니다. 이는 먼저 루프 매개 등온 증폭 또는 램프 반응을 위해 시약을 준비함으로써 수행됩니다. 다음으로, 전체 게놈 DNA는 사후 하나 이상의 장 부위에서 준비됩니다.
그런 다음 게놈 DNA를 램프 마스터 믹스에 첨가하고 배양합니다. 마지막으로 램프 테스트의 결과를 평가합니다. 궁극적으로 LAMP는 특정 I miria 종의 발생을 결정하여 재고 관리를 개선하고 질병 진단을 위한 도구로 사용됩니다.
따라서 형태학적 현미경 검사법 또는 PCR과 같은 기존 방법에 비해 이 기술의 주요 장점은 주관적이지 않고 값비싼 실험실 시설이 필요하지 않기 때문입니다. 이 접근 방식을 사용하면 아리안 감염 진단을 개선하여 닭의 건강과 복지를 개선할 수 있습니다. Erea 램프 ase에 대한 템플릿을 준비하려면 테스트할 장 부분을 선택합니다.
이 표를 샘플 사이트 선택과 가장 많이 존재할 가능성이 있는 에리아 종에 대한 지침으로 사용하십시오. 닭을 감염시키는 각 종은 멸균 가위나 메스를 사용하여 표적으로 하는 장 부위에 의해 정의되기 때문에 이것은 매우 중요합니다. eria를 검사하기 위해 선택한 장 단면의 5cm 이상의 길이를 절제합니다.
샘플을 세로로 자릅니다. 대부분의 장 내용물을 제거하고 멸균 유리 현미경의 가장자리를 사용하십시오. 가위 날을 밀거나 살균하여 점막층에서 세포를 긁어냅니다.
긁어낸 재료를 100%의 무게로 멸균 TE 100마이크로리터가 들어 있는 멸균 1.5ml 나사 상단 마이크로 원심분리기 튜브에 넣고 볼륨 셀 X 100 수지를 넣고 상단을 단단히 조입니다. 샘플을 1분 동안 세게 흔든 다음 끓는 물 중탕에서 10분 동안 배양합니다. 끓인 후 각 샘플을 주변 온도에서 1-2분 동안 식히십시오.
10의 분석실험을 위해 충분한I miria 램프 뇌관 주식을 준비하기 위하여 템플렛으로 이용될 램프 분석실험 당 상등액의 2개의 마이크로리터를 모으기 전에 1 분 동안 10, 000 시간 G에 표본을 원심분리기하십시오. 100마이크로몰 피펫 농도에 분자 등급 물을 60마이크로리터의 분자 등급 물을 추가하여 분석할 각 홍채 종에 대해 별도의 0.5ml 플립 탑 마이크로 원심분리기 튜브에 추가하여 각 동결건조된 I miria 램프 프라이머를 재구성합니다. 이 표에 표시된 볼륨을 사용합니다.
프라이머, F-I-P-B-I-P-F 3 B, 3 LF 및 LB 특정 대상 에리아 종을 물에 첨가합니다. 7종의 특이적 프라이머 믹스 시리즈를 만듭니다. 프라이머 용액을 간단히 반전시켜 혼합하고 펄스를 가하여 마이크로 퍼지를 실행하고 필요할 때까지 얼립니다.
이 표에 나열된 부피와 텍스트 프로토콜의 지침을 사용하여 각 홍채 종에 대한 램프 반응 마스터 믹스를 준비하여 램프 분석 피펫 23마이크로리터의 IEA 종 특이적 B-S-G-D-N-A 중합효소 램프 마스터 믹스를 0.5ml 마이크로 원심분리기 튜브에 넣습니다. 이전에 준비된 DNA 템플릿 2마이크로리터를 추가하여 최종 반응 부피 25마이크로리터를 양성 대조군으로 만듭니다. 하나의 반응에 2마이크로리터의 eria 종 특이적 게놈 DNA를 추가합니다.
분자 등급의 물 2마이크로리터를 음성 대조군으로 반응에 첨가하여 섭씨 62도에서 30분 동안 수조 또는 열 블록을 배양합니다. 선택적으로 B-S-T-D-N-A 중합효소를 섭씨 80도까지 10분 동안 가열하여 비활성화합니다. 실내 조명 아래에서 배양이 끝날 때 반응을 즉시 읽지 못할 경우 눈으로 각 반응의 색상을 평가하십시오.
부정적인 결과는 분홍색에서 보라색으로 나타나고 긍정적인 결과가 나타납니다. 선택적으로 하늘색. 램프 분석 결과를 확인하려면 5마이크로리터의 램프 반응 생성물과 1마이크로리터의 DNA 겔 로딩 버퍼를 혼합하고 사전 염색된 2%ARO 겔에서 실행합니다.
1개의 킬러 염기 분자 크기의 DNA 사다리를 사용하여 3개의 단편 크기를 결정합니다. 감시 프로그램의 일환으로 미국 육계 농장에서 수집한 조류는 다음과 같이 3세트의 장 샘플을 산출했습니다. 종 특이적 램프 분석의 표적 적용 및 각 I miria에 대해 선호되는 장 부위의 우선 순위를 지정합니다.
이 종은 하이드록시 나탈 블루(hydroxy natal blue)를 지표로 사용하여 테스트한 모든 조류에서 홍채 감염을 시각적으로 식별할 수 있었습니다. 하이드록시를 사용할 때 음의 램프 반응으로 얻어진 색상은 보라색에서 분홍색까지 다양할 수 있지만 항상 긍정적인 결과로 얻은 파란색과 구별됩니다. aose gel 전기영동에 의한 확인은 여기에 나타난 것과 유사한 결과를 제공했습니다.
각 특정 장 부위에서 수집된 물질을 나타내는 조류 한 마리당 하나의 채취한 샘플에서 DNA를 준비하고 7개의 램프 분석으로 테스트한 결과 각 장 부위를 별도로 처리했을 때와 동일한 결과를 얻을 수 있었습니다. 이 기술을 마스터하면 이 절차에 따라 적절하게 수행하면 45분 이내에 수행할 수 있습니다. 전반적인 장 건강을 평가하기 위해 병변 점수와 같은 다른 기술도 수행할 수 있습니다.
본 프로토콜은 루프 매개 등온 증폭법(LAMP)을 이용한 닭의 Eimeria 감염 진단 방법을 설명합니다. 기존의 진단 방법은 결과가 불분명한 경우가 많으나, LAMP는 비용 효율적이고 간단한 대안을 제공합니다.
LAMP 분석법을 이용한 가금류 내 Eimeria의 신속하고 종 특이적인 검출은 동물 건강 R&D 분야에서 객관적이고 현장 적용 가능한 진단법에 대한 절실한 필요성을 충족합니다. 이 방법은 조기 개입과 항콕시듐 전략의 보다 정밀한 모니터링을 가능하게 하여, 상업적 가금류 사육 시설의 생산성과 질병 관리에 직접적인 영향을 미칩니다. 이러한 접근 방식은 주관적이거나 자원 집약적인 진단에 대한 의존도를 낮추어, 확장 가능한 감시 체계와 기초 연구에서 응용 수의학 실무로의 중개적 연속성을 지원합니다.
LAMP 분석 워크플로우는 초기 발견부터 전임상 검증까지 통합되어, 가금류 건강 R&D에서 가설 검증부터 현장 적용까지의 원활한 전환을 가능하게 합니다.