Name: 차 종양과 폐 전이을 연구하기 위해 MEF 세포 격리 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-05-20T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 31 s
Description: 배우세요 생쥐 유방 종양에서 일차 세포를 분리하고 폐 전이를 시각화하는 방법을. MEF 세포 격리 기술을 활용하여 유방암 발생 메커니즘을 연구하고 다른 고형 종양 연구에도 적용할 수 있습니다.

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재정적 지원에 대해 NIH, LACaTS 및 Ochsner 클리닉 재단에 감사드립니다.

모든 마우스 실험은 의학의 LSU 학교의 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC)에 의해 승인 된 프로토콜에 따라 수행되었다. 모든 악기는 해부하기 전에 멸균해야합니다. 마우스 유방 종양에서 일차 전지 1. 준비 <ol><li> 유전자 이전 6 설명한 바와 같이 자발적 종양을 개발하는 마우스 유방 종양 바이러스 폴리오 중동 T-항원 (MMTV-PyMT 유전자 변형 마우스)로 설계 한 마우스 모델을 사용합니다. </li><li> 아이소 플루 란 (99.9 %)와 쥐를 희생하고 무균 환경 (그림 1A)을 보장하기 위해 75 %의 에탄올을 스프레이. </li><li> 가위로 목 요도 구멍의 영역으로부터 피부를 엽니 다. 기관 (도 1b)에 쉽게 접근 할 수 있도록 피부 아래에 핀. </li><li> 유방 유방 종양을 분리하고 차가운 멸균 인산 완충 식염수 (PBS) (PH 7.4) (그림 1C)로 씻는다. </li><li> 에 종양 이동멸균 10cm 조직 배양 판은 약 1mm 3 개에 멸균 면도날과 가위로 잘라합니다. 후속 단계는 무균 층류 후드에서 수행되어야한다. </li><li> 37 ° C에서 2 시간 동안 로커에서 1 ㎎ / ㎖의 최종 농도에서 무 혈청 DMEM 배지에 용해 된 콜라게나 다진 종양 조직을 인큐베이션. g X 200에서 3 분 동안 종양 조직 현탁액을 원심 분리기. 참고 : 콜라게나 배양은 조직의 효소 분해에 필수적이다. </li><li> 뜨는을 취소하고 200 x g에서 3 분 동안 원심 분리하여 PBS (PH 7.4)와 침전물을 3 회 반복한다. 최종 세척 후, 상층 액을 가만히 따르다. </li><li> 하면서 하향 경사 37 ° C에서 5 분 동안 트립신 EDTA 2 ㎖와 조직을 재현 탁. 200 XG에 3 분 동안 현탁액을 원심 분리기 및 세척을 반복합니다. </li><li> 10cm 접시에 정상적인 성장 배지 (DMEM, 10 % FBS, 배 펜 / 연쇄상 구균)에서 조직 펠렛을 재현 탁. 변화미디어 다음 3 일 동안 매일. 목적하는 세포 수까지 배양 세포가 얻어진다. 참고 : 약 1 × 7 세포는이 절차에서 격리됩니다. MMTV-PyMT 비교할 때 이러한 MMTV-노이 같은 다른 마우스 유방 종양 모델은, 세포의 낮은 수율을 제공한다. 낮은 수율을 생성 모델을 사용하면, 더 이상 큰 종양 세포 배양으로 시작하는 것이 유리하다. </li></ol> 2. 마우스 폐 추출 폐 전이를 시각화 <ol><li> 폐 추출에 앞서, 간 및 진동판을 제거한다. 폐를 방해하지 않고 갈비뼈을 제거. </li><li> 위의 미세 쌍, 경정맥에 가까운 기관의 상부를 연다. </li><li> 카테터를 사용하여, 폐 (도 2A)를 채우기 위해 기관을 통해 Z-수정 또는 인도 잉크 등의 1 ml의 에이전트를 주입. 포함 파라핀에 폐를 Z-해결. </li><li> Fekete의 솔루션에 인도 잉크를 주입 폐를 드 얼룩(100 mL의 70 % 알코올, 10 % 포르말린 10 ml의 빙초산을 5 ml), 5 분. 직경 ≥ 0.5 mm의 보조 사이트에서 종양 결절을 정의 전이로 결절을 결정합니다. 주 : 종양에 의한 기관지 및 세기관지 막힘, 종양 결절이 15 % 먹물을 흡수 할 수없고, 따라서 정상적인 폐 조직이 검게 될 것이고, 종양 결절이 백색 7 인해 것이다. 이것은 개인의 종양 결절 (그림 2B)의 시각화 수 있습니다. </li></ol> 마우스 배아에서 마우스 배아 섬유 아 세포 (MEFs에를) 준비 (3) <ol><li> 아이소 플루 란 (99.9 %)이 임신 한 쥐를 희생하고 무균 환경을 보장하기 위해 75 %의 에탄올을 스프레이. </li><li> 가위로 목 요도 구멍의 영역에서 피부를 열고 자궁에서 배아를 분리. </li><li> 피부를 열 때 배아를 방해하지 않도록주의하십시오. </li><li> 자궁 뿔을 제거하고 차가운 인트에서 그들을 씻어PBS (PH 7.4)를 화나게. </li><li> 얼음 차가운 PBS (PH 7.4)를 포함하는 10cm 접시에 매우 신중 태반과 장소 배아에서 배아를 분리합니다. </li><li> 배아로부터 헤드, 간, 창자를 제거하고 PBS (PH 7.4)를 함유하는 12 웰 조직 배양 플레이트의 나머지 부분을 배치했다. </li><li> 또 다른 12 웰 플레이트 포함 트립신 EDTA에 배아 체를 전송하고 멸균 면도날과 가위를 사용하여 작은 조각 (~ 1mm 3)로 절단. 37 ℃에서 5 분 동안 트립신 EDTA 5 ㎖와 다진 재료를 품어. </li><li> 다진 배아 1 ml의 우 태아 혈청 (FBS)을 첨가함으로써 트립신을 비활성화한다. 원심 분리기를 10 분 동안 200 XG 속도 현탁액을 조심스럽게 상층 액을 제거 따뜻한 DMEM 배지 1 ㎖로 펠렛을 재현 탁하고 10 DMEM의 ㎖ (20 %의 FBS와 2X 페니실린 / 스트렙토 마이신을 함유 10cm 접시에 모든 내용을 전송 ). </li><li> 이틀 동안 매체 매일을 변경합니다. 문화 원하는 셀 때까지 세포수는 달성된다. </li></ol>

<ol><li>Minn, A. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genes+that+mediate+breast+cancer+metastasis+to+lung%5BTitle%5D)+AND+%22Natur%22%5BJournal%5D)">Genes that mediate breast cancer metastasis to lung.</a> Natur. 436 (7050), 518-524 (2005).</li>
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</ol>

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이 프로토콜은 신선한 마우스의 종양에서 일차 전지를 분리입니다. 이 방법에서 준비 해물 단백질, DNA와 RNA를 분석하는 데 유용합니다. 기본 유방 종양에서 암 세포들은 뇌, 폐, 뼈 1로 전이. 포함 된 전이의 검출을위한 폐를 추출하는 기술이다. 도 2b에 도시 된 바와 같이 잉크 얼룩 폐 염색하여 종양 결절의 시각화를 허용한다. Z-수정 용액에 폐를 고정하는 것은 우리가 폐의 섹션을 확인하고 전이 메커니즘을 연구에 적합한 항체로 염색 할 수 있습니다. 또한 마우스 배아 섬유 아 세포의 분리를위한 프로토콜이 포함되어 있습니다. 이것은 동일한 종류의 동물의 배아 섬유 아세포와 일차 종양 세포의 유전자 발현을 비교하는 데 유용하다. 일차 전지와 MEFs에의 제조에서, 가장 중요한 단계는 재료의 닦지이다. 보라, 적절한 고장없이w 세포 수를 달성 할 것이다. 낮은 세포 카운트가 달성되는 경우, 프로토콜은 여전히​​ 따라야 할 수...

전이는 유방암 진행의 마지막 단계입니다 1. 이는 악성 세포가 원발성 종양에서 방출되어 다른 장기로 전파되는 일련의 단계를 포함한다 2. 세포는 혈관 내 침투할 수 있어야 하고, 순환 속에서 생존하며, 멀리 떨어진 장기로 유출할 수 있어야 하고, 새로운 장기 체계에서 생존할 수 있어야 한다 3. 종양 형성의 각 단계는 다양한 유전적 및 후성유전학적 변화를 통해 세포에 의해 엄격하게 제어됩니다 4. 유방암 종양형성의 기전을 연구하기 위해 짧은 수명, 작은 크기 및 빠른 번식 시간으로 인해 마우스 모델 시스템이 활용되었습니다. 암 연구에서 마우스 모델을 사용하는 것의 몇 가지 주요 이점은 인간과 공유하는 분자 및 생리학적 유사성입니다 5. 
확립된 마우스와 인간 세포주는 유방암 연구에 광범위하게 사용되어 왔습니다. 이러한 세포를 사용하여 전이 단계에 대한 일부 정보를 얻을 수 있지만, 종양 억제 인자/종양 유전자를 이용한 유전자 조작 동물 모델은 배아 단계부터 시작되는 종양 발달 및 전이에 대해 훨씬 더 많은 정보를 제공할 것입니다. 따라서 이러한 마우스 모델을 통해 종양 성장의 유전적 및 발달적 조절을 얻을 수 있습니다. 또한, 종양 미세환경은 종양 세포 유전자 발현에 중요한 역할을 하며, 확립된 세포주를 사용하는 연구에서 동일한 시나리오를 모방하기 어려울 수 있습니다. 원발성 인간 유방 종양은 마우스 유방 종양 형성을 연구하는 데에도 사용할 수 있습니다. 고립된 유방 종양을 사용하는 것의 가장 큰 단점은 새로 이식된 이 종양에는 마우스의 혈관 구조와 림프 조직이 없다는 것입니다. 유선종양형성(mammary tumorigenesis)을 연구하기 위한 유전자 마우스 모델 시스템을 통해 전이 단계를 모니터링하고, 종양 미세환경을 분석하고, 전신에 접근할 수 있다 5.
이 프로토콜의 전반적인 목표는 마우스의 유방 종양 형성을 연구하는 것입니다. 유방암은 일반적으로 뇌, 폐 및 뼈로 전이되는 것으로 알려져 있습니다. 이 프로토콜은 원발성 유방 종양 세포를 분리할 수 있을 뿐만 아니라 유방암이 폐로 전이되는 것을 연구할 수 있습니다. 또한, 마우스 배아로부터 마우스 배아 섬유아세포(MEF)를 분석하기 위한 또 다른 프로토콜이 포함되어 있습니다. 이러한 기술은 함께 쥐의 유방 종양 형성을 연구하는 데 유용합니다.

<table><tbody><tr><td>DMEM</td><td>HyClone</td><td>SH30243.01</td><td>4°C에 저장; C</td></tr><tr><td>0.05% Trypsin-EDTA</td><td>Life&nbsp; 기술</td><td>25300-062</td><td>Store at &ndash; 20 &deg; C</td></tr><tr><td>콜라겐 분해 효소 유형 IV</td><td>시그마 - 알드리치</td><td>C5138</td><td>저장 &ndash; 20 &deg; C</td></tr><tr><td>Hyaluronidase</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H3506</td><td>매장 &ndash; 20 &deg; C</td></tr><tr><td>Pen Strep</td><td>Life&nbsp; 기술</td><td>15140-122</td><td>4 &deg에 저장; C</td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum (FBS)</td> <td>Gemini Bio-Products</td><td>100-106</td><td>매장 &ndash; 80 &deg; C</td></tr><tr><td>Z-fix</td><td>ANATECH</td><td>#174</td><td>RT</td></tr><tr><td>India Ink</td><td>Yasutomo</td><td></td><td>RT</td></tr><tr><td>AERRANE (Isoflurane)</td><td>Baxter</td><td>NDC 10019-773-60</td><td>RT</td></tr><tr><td>Ethanol</td><td>EMD</td><td>AX0441-3</td><td>Store at RT 스토어</td></tr></tbody></table>

차 종양과 폐 전이을 연구하기 위해 mef 세포 격리

Primary Tumor and MEF Cell Isolation to Study Lung Metastasis

유방 종양 형성에서 질병의 전이 단계는 영향을 받는 개인에게 가장 큰 위협이 됩니다. 유전자형이 변형된 정상 유방 세포는 이제 다른 조직에 침입하여 생존할 수 있는 능력을 가지고 있습니다. 이 프로토콜에서는 마우스 유방 종양을 제거하고 종양에서 일차 세포를 준비합니다. 이 절차에서 분리된 세포는 유전자 프로파일링 실험에 사용할 수 있습니다. 성공적인 전이를 위해서는 이러한 세포가 혈관 내 침투할 수 있어야 하고, 순환 중에 생존할 수 있어야 하며, 멀리 떨어진 장기로 유출할 수 있어야 하며, 새로운 장기 시스템에서 생존할 수 있어야 합니다. 폐는 유방암 전이의 전형적인 표적입니다. 폐로의 전이의 선택성을 매개하는 일련의 유전자가 발견되었습니다. 여기에서는 유전자 조작 마우스 모델에서 폐 전이를 연구하는 방법을 설명합니다. 또한, 마우스 배아로부터 마우스 배아 섬유아세포(MEF)를 분석하기 위한 또 다른 프로토콜이 포함되어 있습니다. 동일한 동물 유형의 MEF 세포는 비암 세포 유전자 발현의 단서를 제공합니다. 이러한 기술은 함께 마우스 유방 종양 형성, 관련 신호 전달 메커니즘 및 배아 내 이상 경로를 연구하는 데 유용합니다.

동물을 희생에서 종양의 진행 단계는 특정 연구 및 IACUC 지침에 따라 달라집니다. 그림 1A, 마우스 유방 종양 바이러스 폴리오 중동 T-항원 (MMTV-PyMT)와 100 일된 C57BL / 6 마우스의 세 개월에 희생되었다. 피부 위 목 요도 오리피스의 영역으로부터 개방하고 피부는도 1b에 나타낸 바와 같이 기관에 쉽게 액세스 할 수 있도록 아래로 고정 하였다. 이는도 1C에서 얻어진 종양에 쉽게 접근 할 수 있었다. 종양에서 얻은 일차 전지는 그림 1D으로 시각화된다. 많은 유전자가 폐 한 유방암의 전이를 매개하기 때문에, 우리는 전이 과정을 연구하기 위해 폐 (도 2A)을 추출 하였다. 폐는 Z-수정과 팽창 종양 결절을 시각화하는 인도 잉크 (그림 2B)로 염색 하였다. 그림 3은 마우스...

이 프로토콜의 목표는 유방 종양 형성을 연구하는 것입니다. 이 기술을 사용하면 마우스 유방 종양을 제거하고 종양에서 일차 세포를 준비할 수 있습니다. 폐 전이를 연구하기 위해 폐 추출 프로토콜이 포함되어 있습니다. 또한, 마우스 배아로부터 마우스 배아 섬유아세포를 분석하기 위한 또 다른 프로토콜이 포함되어 있습니다.

차 종양과 폐 전이을 연구하기 위해 MEF 세포 격리

In breast tumorigenesis, the metastatic stage of the disease poses the greatest threat to the affected individual. Normal breast cells with altered ...

이 실험 절차의 전반적인 목표는 마우스의 유방암 종양 발생을 연구하는 것입니다. 먼저, 마우스 유방 종양으로부터 일차 세포를 준비하는 과정이 시연됩니다. 이어서, 폐 전이를 시각화하기 위해 마우스 폐를 적출하는 방법이 제시됩니다.마지막으로, 마우스 유선종양바이러스 폴리오마 middle T 항원(mouse mammary tumor virus polyoma middle T antigen) 형질전환 마우스가 유방암 종양 발생 연구에 사용될 수 있음을 보여주기 위해, 마우스 배아로부터 마우스 배아 섬유아세포를 준비하는 과정이 제시됩니다. 이 방법은 유방암에 대한 통찰을 제공할 뿐만 아니라 다른 고형암 연구에도 적용될 수 있습니다. 종양 제거 단계에서 다른 조직 없이 종양만을 분리하는 것이 중요하므로, 이 방법에 대한 시각적 시연이 매우 중요합니다. 우선 가위를 사용하여 마우스 유선종양바이러스 폴리오마 middle T 항원 형질전환 마우스의 요도구부터 목까지 피부를 절개하는 것으로 시작하십시오.그 다음 피부를 고정하고 유선 유방 종양을 분리합니다. 종양을 제자리에서 차가운 PBS로 세척하고, 멸균된 10 centimeter 조직 배양 플레이트에 넣습니다. 이어서 플레이트를 멸균된 층류 후드로 옮기고, 멸균된 면도날과 가위를 사용하여 종양을 1 cubic millimeter 크기의 조각으로 다집니다.콜라게나제와 함께 조각들을 로커(rocker) 위에서 37 °C로 배양합니다. 2시간 후, 생성된 종양 조직 현탁액을 원심 분리합니다. 펠렛을 PBS Resus로 3회 더 세척한 뒤, 마지막 세척 후 펠렛을 2 mL의 tripsin EDTA에 현탁하여 37 °C에서 5분 동안 교반하며 반응시킵니다.그 다음 세포를 세 번 더 세척하고 일반 성장 배지에 다시 현탁합니다. 마지막으로, 원하는 세포 수가 확보될 때까지 향후 3일 동안 매일 배지를 교체하며 10 centimeter 조직 배양 접시에서 세포를 배양합니다. 폐를 적출하기 전에 간과 횡격막을 제거하고 갈비뼈를 분리합니다.그다음 경정맥과 가까운 기관의 상부를 절개하고, 카테터를 사용하여 기관을 통해 적절한 약제를 주입하여 폐를 채운 뒤 폐를 적출한다. Z fix를 사용하는 경우 조직을 파라핀에 매립한다. 인도 잉크(India ink)를 사용하는 경우에는 조직을 inec 용액에 5분 동안 담근다. 이때 정상 폐 조직은 검은색으로 나타나는 반면 종양 결절은 흰색으로 나타난다. 이차 부위에서 관찰되는 직경 0.5 mm 이상의 모든 종양 결절을 전이로 분류하여 마우스 배아 섬유아세포를 생성한다.먼저, 시연된 것과 같이 배아에 영향을 주지 않도록 주의하며 임신한 마우스의 요도구부터 목까지 피부를 절개합니다. 다음으로, 자궁각을 제거하고 멸균된 PBS로 헹굽니다. 그런 다음 배아를 태반으로부터 하나씩 조심스럽게 분리합니다.각 배아를 얼음처럼 차가운 PBS가 담긴 10 centimeter 배양 접시에 넣습니다. 머리, 간, 장을 제거한 후, PBS가 담긴 12 well 조직 배양 플레이트의 한 웰에서 배아의 나머지 부분을 헹구고 몸체를 1 cubic millimeter 크기의 조각으로 자릅니다. 이를 5 milliliters의 tripsin EDTA가 담긴 다른 웰로 옮기고 조직을 37 degrees Celsius에서 배양합니다.5분 후, 소화를 중단시키기 위해 FBS 1 mL를 첨가합니다. 그다음 결과물인 세포 현탁액을 원심 분리하고 펠릿을 재현탁합니다. 따뜻한 DMEM 1 mL에 현탁한 후, 최종적으로 항생제가 보충된 DMEM 10 mL가 담긴 10 cm 배양 접시에 세포를 옮기고 원하는 세포 수가 확보될 때까지 배양합니다.동물을 희생시키는 종양 진행 단계는 특정 연구 및 I-A-C-U-C 가이드라인에 따라 달라집니다. 예를 들어, 마우스 유선 종양 바이러스 폴리오마 middle T 항원을 가진 100일 된 FVB 마우스의 경우, 방금 시연한 것과 같이 마우스 유방에서 종양을 분리한 후 3개월 후에 희생시켰습니다. 이를 통해 일차 종양 세포를 얻었습니다.많은 유전자가 폐로의 유방암 전이를 매개하므로, 전이 과정을 연구하기 위해 방금 시연한 것과 동일하게 폐 또한 적출하였습니다. 그 후 Z fix로 폐를 팽창시키고 인디아 잉크로 염색하여 종양 결절을 시각화하였습니다. 여기에는 FVB 계통의 생쥐 배아에서 분리한 생쥐 배아 섬유아세포가 나타나 있습니다.이 영상을 시청한 후, 일차 마우스 종양 세포와 마우스 배아 섬유아세포를 분리하고 마우스 폐를 적출하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다. ISO fluorine을 사용하는 것은 매우 위험할 수 있으므로, 이 절차를 수행하는 동안에는 항상 화학 흄 후드 내에서 작업하는 것과 같은 예방 조치를 취해야 함을 잊지 마십시오.

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의학

이 문서는 인간의 암 세포 라인의 전이성 잠재력을 결정하는 데 사용되는 실험적인 전이 분석의 절차를 설명합니다.

실험 전이 분석

이 보고서에서는 종양에 침투 leukocytes의 고도 정화 인구를 분리를위한 프로토콜을 설명합니다. 이 프로토콜은 복잡한 종양 조직에서 세포를 분리에 대한 수율과 순도를 향상시키기 위해 Miltenyi 생명 공학 프로토콜에서 적응하고 있습니다.

일차 종양에서 면역 세포의 분리

호중구는 침입하는 미생물에 대한 숙주 방어뿐만 아니라 종양 세포의 면역 감시에도 중요한 역할을 합니다. 여기에서는 항종양 특성을 가진 호중구의 분리와 관련된 기술과 in vitro 및 in vivo에서 항종양 호중구 기능을 모니터링하는 방법에 대해 설명합니다.

항 종양 특성을 가진 분리 및 호중구의 특성

이 원고 종양 전이의 동물 모델에서 폐에 종양 세포 축적을 계량 하는 방법을 설명 합니다.

폐 종양 세포 모집 분석 결과

우리는 쥐에 형광 기자를 활용, 폐 전이에서 종양 세포 기질 상호 작용의 생체 라이브 영상에 대한 비교적 간단한 방법을 설명합니다. 스피닝 디스크 공 촛점 현미경을 사용하여,이 기술은 최소 4 시간 동안 생균의 시각화를 가능하게하고 다른 염증성 폐 상태를 학습하도록 구성 될 수있다.

예는 폐 전이 및 그들의 미세 환경의 라이브 영상을 생체 내

여기에서는 암 전이에서 폐포 대식세포의 기능을 연구하기 위한 모델과 접근 방식을 설명합니다. 전이에서 이러한 세포의 역할을 입증하기 위해 클로드로네이트 리포좀을 사용한 폐포 대식세포의 고갈과 함께 유방암의 syngeneic(4T1) 모델을 사용했습니다.

유방암 전이에 폐포 대 식세포의 역할을 공부

이 기사의 목적은 폐 전이 분석 결과 (푸 마)에 대 한 프로토콜에 대 한 자세한 설명을 제공 하는 것입니다. 이 모델 widefield 형광 또는 confocal 레이저 스캐닝 현미경을 사용 하 여 폐 조직에서 전이성 osteosarcoma (OS) 세포 성장 연구에 연구를 허용 합니다.

폐 전이 분석 결과 사용 하 여 다리에 전이성 폐 식민지 공부에서 실용적인 고려 사항

순환 종양 세포 (CTCs) 암 전이 동안 폐 식민을 촉진 역할을 해독 하는 동물 모델 필요 합니다. 여기, 우리가 설립 하 고 성공적으로 수행는 vivo에서 시험의 구체적으로 테스트를 폐 식민 CTCs에 고분자 fibronectin (polyFN) 어셈블리의 요구.

순환 종양 세포 시각화 폐 조직에 대 한 폐 식민 분석 결과의 설립

여기, 선물이 비보 전 폐 암 모델을 모방한 종양 진행의 단계 및 기본 종양을 격리 하는 데 도움이 프로토콜 순환 종양 세포, 및 전이성 병 변.

Acellular과 세포 폐 종양 전이 연구 모델

이 논문은 삼중 음성 유방암의 합성 뮤린 모델과 종양 미세 환경을 대상으로 설계된 새로운 나노 입자의 전임상 연구를위한 응용 프로그램에서 1 차 암 관련 섬유 아세포의 격리 및 배양에 대한 프로토콜을 제공하는 것을 목표로합니다.

표적 나노 입자의 연구를 위한 유방암의 합성 Murine 모형에서 1 차적인 암 관련섬유세포의 격리

폐 전이의 선택적 광전환을 위한 수술 프로토콜과 함께 폐 전이에서 종양 세포 재확산을 연구한 후 3차 장기에서 재분해된 종양 세포를 식별하는 방법을 제시합니다.

광변환을 사용한 폐 전이에서 종양 세포 전파 추적

배우세요 생쥐 유방 종양에서 일차 세포를 분리하고 폐 전이를 시각화하는 방법을. MEF 세포 격리 기술을 활용하여 유방암 발생 메커니즘을 연구하고 다른 고형 종양 연구에도 적용할 수 있습니다.

차 종양과 폐 전이을 연구하기 위해 MEF 세포 격리

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