Name: 의 수직 이미지 초파리 계란 챔버 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-03-13T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 29 s
Description: 학습하세요 Drosophila melanogaster 계란 챔버의 수직 이미징 방법을 통해 전방 및 후방 극에서 세포 및 아세포 조직을 고해상도로 관찰하는 기술입니다. 이 방법은 난포 상피의 형태학적 변화를 연구하는 데 활용됩니다.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

시약에 대한 파리 커뮤니티 구성원, 특히 Denise Montell 박사, Lynn Cooley 박사 및 Pernille Rorth 박사의 도움에 감사드립니다. 플라이베이스(Flybase), 블루밍턴 초파리 스톡 센터(Bloomington Drosophila Stock Center), 발달 연구 하이브리도마 은행(Developmental Studies Hybridoma Bank)에 각각 플라이 스톡과 항체를 제공하고 정보를 제공해 주신 데 감사드립니다. LM은 교육부 보조금, GAANN(Graduate Assistance in the Areas of National Need) 교육 펠로우십(P200A120017) 및 NIGMS Initiative for Maximizing Student Development Grant(2 R25-GM55036)의 지원을 받습니다. 현미경 검사의 일부는 NSF MRI 보조금 DBI-0722569 및 Keith R. Porter Core Imaging Facility의 지원을 받았습니다. 이 연구는 MSG에 수여된 NSF CAREER Award(1054422)와 March of Dimes의 Basil O'Connor Starter Scholar Award의 일부 지원을 받았습니다.

Ovarioles 1. 해부 <ol><li> 추가 활성 건조 효모와 신선한 플라이 식품 유리 병에 약 15 ~ 4 일 된 여성 파리와 몇 명의 남성을 전송합니다. 바이알을위한 마개로 솜을 사용하여, 높은 습도를 유지하는면에 몇 방울의 물을 추가한다. </li><li> 14-16 시간 동안 25 ° C의 배양기에서 찾는 바이알 스테이지 8-10 달걀 챔버의 개수를 최대화한다. 참고 : 배양 시간은 온도와 원하는 단계에 따라 달라집니다. </li><li> 다음날에 필요한 해부 미디어를 준비, 0.1M KPO 4 NP40 솔루션 (자료 참조). </li><li> CO 2를 사용하여 파리를 마취하고, 해부 현미경으로 배치합니다. 피펫 유리 우울증 슬라이드의 각 공동으로 해부 미디어를 몇 방울. </li><li> 한 여성 비행 아래로 날개를 가진 테이블 상단과 동양에 약 30 ° 각도로 각 손에 집게를 잡습니다. 당신의 비 지배적 인 손으로, 그녀를 잡고, 집게를 사용하여 여성을 데리러흉부 근처 복부의 nterior 및 우울증 슬라이드 (그림 1A 인세 트)의 해부 미디어에 그녀의 잠수함. </li><li> 포셉의 다른 쌍으로, 복부의 복부 후방에서 외골격을 잡고 관통. 후방 끝에 난소를 잡고, 다음 복부에서 그들을 끌어와 우울증 슬라이드의 반대편에 신선한 미디어에 배치합니다. (그림 1A 인세 트). 장 떨어져 당겨하지 마십시오. 시체를 버리십시오. </li><li> 모든 난소를 해부 할 때까지 다른 여성 파리로 반복합니다. 남성을 폐기하십시오. </li><li> 포셉 한 쌍, (가장 큰 달걀 챔버 근처) 후방 끝에 난소를 잡고 다른 손으로 가장 앞쪽에 계란 챔버 (germarium) 중 하나를 꼬집어 집게 한 쌍을 사용합니다. (도 1a). </li><li> 천천히 그리고 꾸준히, 난소 칼집에서 ovariole 체인을 당깁니다. 원하는 모든 계란 챔버 R 때까지 개별적으로 ovarioles를 해부 계속emoved. </li><li> 반복하여 모든 해부 난소에 대한 1.7-1.8 단계를 반복합니다. </li><li> 완료되면, 플라스틱 전송 피펫을 사용하여 0.6ml 튜브에 ovarioles를 전송할 수 있습니다. </li><li> ovarioles는, 튜브의 바닥에 정착 한 후 고정 및 염색 단계로 진행하자. </li></ol> Ovarioles 2. 면역 형광 (IF) 염색 <ol><li> 조심스럽게 피펫 ovarioles에서 해부 용지를 제거합니다. 어떤 ovarioles 또는 달걀 챔버를 제거하지 마십시오. ovarioles 및 해부 미디어의 약 50 μl를 남겨주세요. </li><li> 튜브에 0.1 M KPO 4 버퍼의 150 μl의 16 % 파라 포름 알데히드의 50 μl를 추가하고이를 해결하기 위해 계란 챔버에 솔루션을 추가합니다. 10 분 동안 흔들 동안 품어. 주의 : 파라 포름 알데히드는 독성이있다. </li><li> 정착액을 제거하고 0.5 ml의 NP40 세척 버퍼로 두 번 씻어. </li><li> RT에서 15 분 각각 두 번 씻으십시오. </li><li> 다음 단계에 대한 표준 IF 프로토콜 15을 참조하십시오. <ol><li> 간단히, 고정 후, 추가적절한 희석에 차 항체와 4 ° C에서 O / N을 품어. (200 희석 1) 다음 이차 항체를 추가, NP40 여러 번에 씻으십시오. </li><li> NP40에서 여러 번 세척 한 후 DAPI (1 : 1,000)를 추가 10 분 동안, 다음 세척을 반복합니다. 프로토콜이 완료되면 일단, 계란 챔버에 PBS에 50 % 글리세롤 200 μl를 추가하고 2 시간 동안 실온에서 앉아 보자. </li><li> , 용액을 제거 PBS에 70 % 글리세롤로 교체하고, 호일 커버. 설치 준비가 될 때까지 4 ᵒC에서 샘플을 놓습니다. 한편, 3 단계를 계속합니다. </li></ol></li></ol> 글리세린 젤리 슬라이드 3. 사전 준비 <ol><li> 글리세린 젤리 주걱을 이용하여 적어도 4 mL로 측정하고 반쯤 마크에 유리 셀 배양 관을 채운다. 30 분 동안 55 ℃에서 수욕 글리세린 젤리 녹아. </li><li> 두 현미경 슬라이드 상 스톡 용액으로부터 글리세롤의 작은 방울, 약 300 μL를 붓는다. 조직을 사용하여 얇은 라 글리세롤 확산yer의 각 슬라이드에 걸쳐. 이 기반을 제공하고 단계 5.6에서 글리세린 젤리 쉽게 제거 할 수 있습니다. </li><li> 필터링 된 1,000 μL 피펫 팁 오프 끝을 잘라. 사용 컷 피펫 팁 천천히 각 현미경 슬라이드에 따뜻한 글리세린 젤리 1,000-1,500 μl를 전송합니다. 거품을 방지하기 위해 필요한주의를 기울입니다. </li><li> 글리세린 젤리 슬라이드 설정 실온에서 5 분 동안 앉아 보자. </li><li> 60mm × 15mm 페트리 접시에 각각의 글리세린 젤리 슬라이드를 삽입하고 플라스틱 포장으로 덮고. 4 ° CO / N에서 장소. 선택적으로, 상점은 4 ° C에서 최대 5 일 동안 젤리 슬라이드 글리세린. </li></ol> 4. 계란 챔버 장착 <ol><li> 단계 2.5, 하나의 글리세린 젤리 슬라이드에 걸쳐 70 % 글리세롤 계란 챔버의 피펫 여러 3 μL 상품에서 샘플을 사용. 모든 계란 챔버이 슬라이드 때까지 피펫 3 μL 상품을 계속합니다. 각각의 강하가 적어도 10 달걀 챔버가 포함되어 있는지 확인합니다. 한편, 55 ° C의 물을 욕조에 글리세린 젤리의 문화 튜브를 가열. </li><li> 해부 현미경으로 계란 챔버와 글리세린 젤리 슬라이드를 놓습니다. 계란 챔버의 한 방울의 시야 (도 1b)에 있도록 배율을 조정한다. </li><li> 원하는 단계 달걀 챔버를 데리러, 숟가락으로 30 게이지 바늘을 사용. 시 칼 등을 이용하여 바늘 ovariole 체인에서 필요한 별도 소망 달걀 챔버. </li><li> 영상을 방해 할 수있는 파편을 피하기 위해, 왼쪽 (그림 1E -1)에 직면 전방에, 두 번째 글리세린 젤리 슬라이드에 계란 챔버를 전송합니다. 적어도 7 계란 챔버 열 (그림 1C)에 줄 지어있을 때까지 반복합니다. </li><li> 원하는 모든 계란 챔버가 제 2 글리세린 젤리 슬라이드로 전송 될 때까지 일곱의 새 열을 형성합니다. </li><li> 조직과 트위스트의 작은 조각을 떼어냅니다. 가볍게 하나 하나를 만져 계란 챔버에서 초과 PBS-글리세롤을 흡수하는 데 사용합니다. 달걀 챔버를 제거하지 않도록주의하십시오. </li><li> 잘라필터링 된 200 μL 피펫 팁의 끝. 계란 챔버의 모든 열을 충당하기 위해 젤리 글리세린의 150 μl를 전송하는 데 사용합니다. 주 : 칼럼을 커버하기 위해 필요한 글리세린 젤리의 양을 알 챔버 단계 및 열 번호에 기초한다. 사용량이 적절히 조절 될 수있다. </li><li> 글리세린 젤리 상부층 완전히 (도 1D) 고화 될 때까지 장착 달걀 챔버 RT에서 5 분 방치. </li><li> 장소 60mm × 15mm 페트리 접시에 장착 된 계란 챔버 슬라이드 및 플라스틱 포장으로 덮고. 4 ° CO / N 스토어는 (photobleaching에 대한 우려가있는 경우 어두운 장소) 글리세린 젤리 층이 함께 응고 허용합니다. </li></ol> 이미징 계란 챔버 5. 준비 <ol><li> 해부 현미경 아래에 장착 계란 챔버의 슬라이드를 놓습니다. 계란 챔버 한 열만이 시야에 있도록 배율을 조정한다. </li><li> 45 ° 각도 소형 메스를 사용하여, straig를 잘라(계란 챔버의 후방에 가까운 측) 달걀 챔버의 첫 번째 열의 우측에 HT 라인. (그림 1D-E) </li><li> 다음에, 열의 마지막 달걀 챔버 맨 먼저 계란 챔버의 상하 절단. 이 시점에서 달걀 챔버 열 삼면 절단 예정. </li><li> 계란 챔버 (도 1E -3)의 전방 측에 최대한 가깝게 microknife 열의 왼쪽의 슬라이스를 이용. </li><li> 절단 된 열을 통해 감기 1X PBT 100 μl를 피펫. </li><li> 슬라이드에 나머지를 떠나, 계란 챔버 및 폐기의 절단 열 세 가지 측면 주위에 여분의 글리세린 젤리를 제거하기 위해 둥근 가장자리 주걱을 사용합니다. </li><li> 계란 챔버의 전방 측에 만든 컷 주걱을 삽입하고 기본 글리세린 젤리 블록에서 열을 구분합니다. </li><li> 샘플 중 하나를 반전 (5.8.1) 또는 수직 (5.8.2) 현미경을 준비합니다. <ol><li> 거꾸로 현미경의 경우 : 전송 t계란 챔버의 앞쪽면이 아래로 향하게하여 커버 슬립에 계란 챔버 그는 열입니다. 글리세린 젤리의 모든 열 제거 및 장착 될 때까지 반복 5.2-5.8 단계를 반복합니다. 마르지 않도록 달걀 챔버의 각 블록에 50 % PBS-글리세롤의 몇 방울을 추가합니다. 직접 커버 슬립에 이미지 계란 챔버. </li><li> 직립 현미경의 경우 : 전방면이 위로 향하게하여 현미경 슬라이드에 계란 챔버의 열을 전송합니다. 글리세린 젤리의 모든 열을 제거하고 현미경 슬라이드에 장착 될 때까지 반복 5.2-5.9 단계를 반복합니다. # 1 ½ coverslip에 계란 챔버 커버 블록의 각 블록에 50 % PBS-글리세롤의 몇 방울을 추가합니다. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Hudson, A. M., Cooley, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+studying+oogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Methods for studying oogenesis.</a> Methods. 68 (1), 207-217 (2014).</li>
<li>Bastock, R., St Johnston, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+oogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Biol%22%5BJournal%5D)">Drosophila oogenesis.</a> Curr Biol. 18 (23), R1082-R1087 (2008).</li>
<li>Wu, X., Tanwar, P. S., Raftery, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+follicle+cells%3A+morphogenesis+in+an+eggshell%5BTitle%5D)+AND+%22Semin+Cell+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Drosophila follicle cells: morphogenesis in an eggshell.</a> Semin Cell Dev Biol. 19 (3), 271-282 (2008).</li>
<li>Bilder, D., Haigo, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expanding+the+morphogenetic+repertoire%3A+perspectives+from+the+Drosophila+egg%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Cell%22%5BJournal%5D)">Expanding the morphogenetic repertoire: perspectives from the Drosophila egg.</a> Dev Cell. 22 (1), 12-23 (2012).</li>
<li>Montell, D. J., Yoon, W. H., Starz-Gaiano, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Group+choreography%3A+mechanisms+orchestrating+the+collective+movement+of+border+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Group choreography: mechanisms orchestrating the collective movement of border cells.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 13 (10), 631-645 (2012).</li>
<li>Spradling, A. C., Bate, M., Marinez-Arias, A. Developmental genetics of oogenesis. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSpradling%2C+AC+%22The+Development+of+Drosophila+melanogaster%22">The Development of Drosophila melanogaster</a>. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. Cold Spring Harbor, NY. 1-70 (1993).</li>
<li>Montell, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Border-cell+migration%3A+the+race+is+on%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Border-cell migration: the race is on.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 4 (1), 13-24 (2003).</li>
<li>Silver, D., Geisbrecht, E., Montell, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Requirement+for+JAK%2FSTAT+signaling+throughout+border+cell+migration+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Requirement for JAK/STAT signaling throughout border cell migration in Drosophila.</a> Development. 132 (15), 3483-3492 (2005).</li>
<li>Ghiglione, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Drosophila+cytokine+receptor+Domeless+controls+border+cell+migration+and+epithelial+polarization+during+oogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">The Drosophila cytokine receptor Domeless controls border cell migration and epithelial polarization during oogenesis.</a> Development. 129 (23), 5437-5447 (2002).</li>
<li>Denef, N., Schüpbach, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patterning%3A+JAK-STAT+signalling+in+the+Drosophila+follicular+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Biol%22%5BJournal%5D)">Patterning: JAK-STAT signalling in the Drosophila follicular epithelium.</a> Curr Biol. 13 (10), R388-R390 (2003).</li>
<li>Beccari, S., Teixeira, L., Rørth, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+JAK%2FSTAT+pathway+is+required+for+border+cell+migration+during+Drosophila+oogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Mech+Dev%22%5BJournal%5D)">The JAK/STAT pathway is required for border cell migration during Drosophila oogenesis.</a> Mech Dev. 111 (1-2), 115-123 (2002).</li>
<li>Montell, D., Rorth, P., Spradling, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((slow+border+cells%2C+a+locus+required+for+a+developmentally+regulated+cell+migration+during+oogenesis%2C+encodes+Drosophila+C%2FEBP%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">slow border cells, a locus required for a developmentally regulated cell migration during oogenesis, encodes Drosophila C/EBP.</a> Cell. 71 (1), 51-62 (1992).</li>
<li>Xi, R., McGregor, J., Harrison, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+gradient+of+JAK+pathway+activity+patterns+the+anterior-posterior+axis+of+the+follicular+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Cell%22%5BJournal%5D)">A gradient of JAK pathway activity patterns the anterior-posterior axis of the follicular epithelium.</a> Dev Cell. 4 (2), 167-177 (2003).</li>
<li>Toomre, D., Bewersdorf, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+wave+of+cellular+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Cell+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">A new wave of cellular imaging.</a> Annu Rev Cell Dev Biol. 26, 285-314 (2010).</li>
<li>McDonald, J., Pinheiro, E., Kadlec, L., Schupbach, T., Montell, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiple+EGFR+ligands+participate+in+guiding+migrating+border+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Multiple EGFR ligands participate in guiding migrating border cells.</a> Dev Biol. 296 (1), 94-103 (2006).</li>
<li>Van de Bor, V., Zimniak, G., Cérézo, D., Schaub, S., Noselli, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Asymmetric+localisation+of+cytokine+mRNA+is+essential+for+JAK%2FSTAT+activation+during+cell+invasiveness%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Asymmetric localisation of cytokine mRNA is essential for JAK/STAT activation during cell invasiveness.</a> Development. 138 (7), 1383-1393 (2011).</li>
<li>Hayashi, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glypicans+regulate+JAK%2FSTAT+signaling+and+distribution+of+the+Unpaired+morphogen%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Glypicans regulate JAK/STAT signaling and distribution of the Unpaired morphogen.</a> Development. 139 (22), 4162-4171 (2012).</li>
<li>Airoldi, S. J., McLean, P. F., Shimada, Y., Cooley, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intercellular+protein+movement+in+syncytial+Drosophila+follicle+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Intercellular protein movement in syncytial Drosophila follicle cells.</a> J Cell Sci. 124 (Pt 23), 4077-4086 (2011).</li>
<li>Rørth, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systematic+gain-of-function+genetics+in+Drosophila%29%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Systematic gain-of-function genetics in Drosophila).</a> Development. 125 (6), 1049-1057 (1998).</li>
<li>Lee, T., Lee, A., Luo, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+the+Drosophila+mushroom+bodies%3A+sequential+generation+of+three+distinct+types+of+neurons+from+a+neuroblast%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Development of the Drosophila mushroom bodies: sequential generation of three distinct types of neurons from a neuroblast.</a> Development. 126 (18), 4065-4076 (1999).</li>
<li>Shimada, Y., Burn, K. M., Niwa, R., Cooley, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reversible+response+of+protein+localization+and+microtubule+organization+to+nutrient+stress+during+Drosophila+early+oogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Reversible response of protein localization and microtubule organization to nutrient stress during Drosophila early oogenesis.</a> Dev Biol. 355 (2), 250-262 (2011).</li>
<li>Quiñones-Coello, A. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exploring+strategies+for+protein+trapping+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Exploring strategies for protein trapping in Drosophila.</a> Genetics. 175 (3), 1089-1104 (2007).</li>
<li>Buszczak, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+carnegie+protein+trap+library%3A+a+versatile+tool+for+Drosophila+developmental+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">The carnegie protein trap library: a versatile tool for Drosophila developmental studies.</a> Genetics. 175 (3), 1505-1531 (2007).</li>
<li>Belu, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Upright+imaging+of+Drosophila+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Upright imaging of Drosophila embryos.</a> J Vis Exp. (43), (2010).</li>
<li>Witzberger, M. M., Fitzpatrick, J. A., Crowley, J. C., Minden, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((End-on+imaging%3A+a+new+perspective+on+dorsoventral+development+in+Drosophila+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Dyn%22%5BJournal%5D)">End-on imaging: a new perspective on dorsoventral development in Drosophila embryos.</a> Dev Dyn. 237 (11), 3252-3259 (2008).</li>
</ol>

저자는 경쟁하는 재정적 이해관계가 없습니다.

여기서 우리는 말에 관점에서 계란 챔버를 개발, 탑재하는 방법을 설명하고 이미지 작은. 영상 계란 챔버의 일반적인 기술은 측면 플레이에 최적화 된 형광 항체 염색을 할​​ 때 주로 메디 오 - 측면 모낭 세포의 정확한 시각화를 허용하고 있습니다. 여러 초점면을 볼 수있는 Z-스택 또는 3 차원 재구성 보조기구의 사용,하지만 여전히 타원형의 달걀 실 (그림 2D)의 극의 서브 세포 해상도 부족하다. 이에 따라서, 초 - 해상도 이미징 최신 기술 현미경으로 부분적 극복 될 수 있지만, 이러한 방법은 고가이고 항상 사용할 수 없습니다. 초파리는 24, 25은 훨씬 더 작은 달걀 챔버에 사용되는 배아에 대해 우리는 똑바로 이미징 프로토콜을 적용했다. 배아 비교 달걀 챔버 훨씬 작은 크기를 고려하는 방법에있어서 몇 가지 중요한 변경이있다. 설명 된 기술의 핵심 구성 요소는 물리적 인 separ배아의 필요하지 않은 개인 실의 ATION. 또 다른 변화는 (4.4)를 장착하는 동안 제 글리...

초파리의 연구 현상의 넓은 범위의 유전자 조절에 큰 통찰력을 제공하고 있습니다. oogenesis 티슈 패터닝 셀 극성의 변화, 세포주기 스위칭, 및 병진 규제 1,2,3,4- 등 다양한 발달 과정을 조사하기 취급 용이 한 방법을 제공하기 때문에 특히, 계란 개발에 대한 광범위한 연구가있어왔다. oogenesis 때 중요한 형태 발생 이벤트 (5 검토) 테두리 세포라는 세포의 집합의 명세서, 운동성의 취득 및 마이그레이션이다. 세포 이동하기 때문에 동물 형태 발생의 중요한 특징이며,이 프로세스의 유전자 조절이 잘 보존되어 있기 때문에, 파리 결정 메커니즘은 다른 상황에서 중요 할 것으로 보인다. 따라서, 우리는 경계 세포 이동의 분자 제어를 조사하고있다. 우리의 연구를 위해, 우리는 계란을 개발하는 전방 극을 관찰 할 수있는 새로운 방법을 개발했다,경계 셀이 발생하는 경우, 그들이 어떻게 발달 상세히 검토한다. 난소 내에서 다양한 발달 단계에서 계란 챔버는 얇은 외피 (그림 1A)에 싸여있다 ovarioles라는 체인을 따라 존재한다. 각 달걀 챔버는 한 계란을 형성에 갈 것입니다. oogenesis 동안 여러 종류의 세포 조화롭게 개발해야한다. D. 달걀 melanogaster의 챔버는 단일 모낭 상피 층 (6)에 의해 둘러싸인 하나의 난자를 포함한 16 생식계 세포로 구성된다. 극성 세포라는 특수한하는 소수의 세포는 상피의 전후방 극에서 발생한다. 6-8 테두리 세포 극성 세포에 의해 유도 된 5,7- 달걀 챔버의 전방 상피에서 발생. 중간 oogenesis (단계 9)에서, 경계 셀들이 이웃으로부터 분리하고 계란 5,7- 챔버의 후방에 도달하는 난자 세포 간호사 사이에 이동한다. 이 운동은 달성해야테두리 세포 집단이 세포 이동의 유형 만드는 두 운동성 극성 주변 세포 클러스터에 남아있다. 경계 셀 클러스터의 성공적인 마이그레이션 수정에 필요한 달걀 껍질의 micropyle의 적절한 개발을 보장합니다. 전방 극성 세포 신호 전달 캐스케이드를 활성화하여 경계 셀 운명 지시. 폴라 난자 세포의 발달 8,9 스테이지 (8) 중에 모낭 인접 셀에, 경막 수용체 Domeless (DOME)에 결합하는 사이토킨으로 독립 (UPD)를 분비한다. UPD의 결합은 야누스 티로신 키나제 (JAK)의 전사 (STAT) 8,10,11의 신호 변환기 및 활성제를 인산화됩니다. STAT는 전사를 활성화하기 위해 핵으로 이동합니다. 느린 테두리 세포 (SLBO)는 STAT의 직접 전사 대상이며, 또한 테두리 세포 이동 (12)에 요구되는 전사 인자이다. 계란 챔버의 측면보기는 t을 나타냅니다모자 STAT 활동은 전방 상피 8,11,13에 걸쳐 그라데이션으로 조절된다. 극성 세포에 가장 가까운 여포 세포 따라서 그들이 경계 셀과 인접되어 생식계 조직 침입, STAT 활성화의 가장 높은 수준을 갖는다. 국경 세포 내에서 지정 및 상피 세포에서 분리하는 방법을 이해하기 위해, 우리는 조직이 어떻게 구성되어 있는지 관찰해야합니다. 우리가 전방-에 관점에서 계란 챔버를 보면, 우리는 극성 세포를 둘러싸고있는 여포 세포에서 STAT 활동의 반경 대칭을 기대. 최종에서보기는 더 정확하게 이전에 다른 초점면에 세포를 비교하는 것보다 분리하는 동안 막 단백질과 세포 - 세포 인터페이스의 차이를 보여 것입니다. 달걀 챔버 직사각형과 줄기 세포에 의해 서로 연결되어 있기 때문에 어려운 전방 구조를 관찰하기 위해, 측 방향 슬라이드 상에 정착. 따라서, 달걀 챔버의 극의 세포에 대한 많은 정보가 있습니다측면 뷰에서 유추 된. 일부 정보는 photobleaching에 광학 부, 광 산란의 알고리즘 3-D 재구성 및 Z 축에서의 해상도 불량한 한계를 통해 얻어 질 수 있지만, 초 - 해상도 현미경 (14)과 같은 고가의 기술이없는 경우에이 정보는 이하 상세하고 신뢰성을 . 섹션 기반 이미징의 다른 종류 (예를 들어, 전자 현미경 또는 마이크로톰 절편)는 아티팩트 가능성을 증가, 탈수 포함한 조직의 광범위한 조작을 필요로한다. 따라서, 우리는 이미지 D.에 새로운 방법을 개발 똑바로 동안 melanogaster의 달걀 챔버. 이 방법은 이미 (검토중인 대표 결과와 매닝 등을 참조) 운동성이있는 세포가 운명하는 방법을 아는데 도움이 검증 된, 그리고 더 넓게 가치 oogenesis의 다른 측면의 연구 될 가능성이있다.

<table><tbody><tr><td>0.1 M 인산칼륨 완충액 (KPO4 완충액)</td><td></td><td></td> <td>NaH2PO4&bull 3.1 g을 추가합니다. H2O 및 10.9g의 Na2HPO4(무수)를 증류된 H2O로 증류하여 1L의 부피를 만듭니다. 최종 용액의 pH는 7.4입니다. 이 버퍼는 4°C에서 최대 1개월 동안 저장할 수 있습니다.</td></tr><tr><td>16% 파라포름알데히드 수용액, EM 등급</td><td>전자 현미경 과학</td><td>15710</td><td>메탄올-프리로 GFP 형광을 보존합니다</td></tr><tr><td>30G x 1/2 인치 바늘&nbsp;</td><td>VWR</td><td>BD305106</td><td>Regular bevel</td></tr><tr><td>Active Dry</td><td>Yeast Genesee Scientific</td><td>62-103</td><td>암컷 파리를 살찌우기 위해</td></tr><tr><td>소 혈청 알부민</td><td>PAA-cell culture company</td><td>A15-701</td><td>NP40 세척 버퍼</td></tr><tr><td>Dumont # 5 집게</td><td>Fine Science Tools</td><td>11295-10</td><td>Dumostar 합금, 생물학 팁; 날카로운 팁은 난소 박리</td></tr><tr><td>에 필수적입니다.DAPI (4 &prime; , 6-Diamidino-2-phenylindole dihydrochloride)</td> <td>Sigma Aldrich</td><td>D9542</td><td>5 mg / ml 원액&nbsp; &nbsp;</td></tr><tr><td>태아 소 세럼 (FBS)</td><td>Life Technologies</td><td>16140-071</td><td>보충 해부 매체에 추가 (10%)&nbsp;</td></tr><tr><td>유리 문화 튜브</td><td>VWR</td><td>47729-576</td><td>14 ml</td></tr><tr><td>유리 함몰 슬라이드</td><td>VWR</td><td>470019-020</td><td>1.2 mm 두께, 이중 구멍</td></tr><tr><td>글리세린 젤리&nbsp;</td><td>Electron Microsocpy Sciences</td><td>17998-10</td><td>마운팅 미디어</td></tr><tr><td>글리세롤</td><td>IBI Scientific</td><td>IB15760</td><td>70% in PBS</td></tr><tr><td>IGEPAL CA-630</td><td>Sigma Aldrich</td><td>I3021-500ML</td><td>(Nonidet P-40과 교체 가능)&nbsp; NP40 세척 버퍼에 사용&nbsp;</td></tr><tr><td>라이카 형광 입체경&nbsp;</td><td>Leica Microsystems</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Leica SP5 컨포칼 현미경</td><td>Leica Microsystems</td><td></td><td>40x/0.55NA 건조 대물렌즈&nbsp;</td></tr><tr><td>마이크로 스패튤라&nbsp;</td><td>VWR</td><td>82027-518</td><td>스테인레스 스틸</td></tr><tr><td>현미경 슬라이드</td><td>VWR</td><td>16004-368</td><td>75x25x1 mm</td></tr><tr><td>NP40 세척 버퍼</td><td></td><td></td><td>50 mM TRIS-HCl, 150 mM NaCl, 0.5% Ipegal, 1 mg/ml BSA 및 0.02% 아지드화</td></tr><tr><td>나트륨 페니실린-스트렙토마이신-글루타민</td><td>Life Technologies</td><td>10378-016</td><td>해부 매체 (0.6X)</td></tr><tr><td>Petridish-Polysterine, 멸균</td><td>을 보충하기 위해 추가VWR</td><td>82050-548</td><td>60 W x 15 H mm</td></tr><tr><td>인산 버퍼 식염수</td><td>시그마 알드리치</td><td>P3813-10PAK</td><td>분말</td></tr><tr><td>칼륨 인산 이염기성</td><td>시그마 알드리치</td><td>P3786-500G</td><td>0.1 M KPO4 버퍼에 사용됨&nbsp;</td></tr><tr><td>인산 칼륨 단일염기</td><td>성 시그마 Aldrich</td><td>P9791-500G</td><td>는 0.1 M KPO4 버퍼에 사용됩니다.</td></tr><tr><td colspan="4">[헤더]</td></tr><tr><td>슈나이더' s 곤충 Medium</td><td>Life Technologies</td><td> 11720018</td><td>L-글루타민 및 중탄산나트륨</td></tr> 아<tr><td>지드화</td><td>나트륨 시그마 알드리치</td><td>S2002-25G</td><td>형광 항체 염색에 사용</td></tr><tr><td>염화나트륨</td><td>시그마 알드리치</td><td>S3014-500G</td><td>NP40 세척 버퍼에 사용</td></tr><tr><td>TRIS-HCl</td><td>IBI Scientific</td><td>IB70144</td><td>1m TRIS-HCl, pH 7.4</td></tr><tr><td>Volocity 3D 이미지 분석 소프트웨어</td><td>PerkinElmer</td><td></td><td>공초점 Z 스택 처리용</td></tr></tbody></table>

의 수직 이미지<em&gt; 초파리</em&gt; 계란 챔버

Upright Imaging of Drosophila Egg Chambers

Drosophila melanogaster oogenesis는 난소가 구조적으로 비교적 단순하고 특성화가 잘 되어 있으며 유전자 분석이 가능하기 때문에 다양한 발달 과정을 연구하는 데 이상적인 맥락을 제공합니다. 각 난실은 체세포 여포 세포의 단일 상피층으로 둘러싸인 생식계 세포로 구성됩니다. 여포 세포의 부분 집합은 특정 단계에서 분화를 거쳐 여러 가지 다른 세포 유형이 됩니다. 표준 기술은 주로 난실에 대한 측면 보기를 허용하므로 여포 세포 조직 및 정체성에 대한 제한된 관점을 허용합니다. 정립 이미징 프로토콜은 표준 컨포칼 현미경으로 난실을 수직으로 볼 수 있는 장착 기술을 설명합니다. 샘플은 먼저 유리 현미경 슬라이드의 측면(수평) 위치에 있는 두 층의 글리세린 젤리 사이에 장착됩니다. 그런 다음 계란 챔버가 들어있는 젤리를 블록으로 자르고 커버 슬립으로 옮기고 뒤집어 계란 챔버를 똑바로 세웁니다. 장착된 난실 챔버는 정립 또는 도립 컨포칼 현미경으로 이미지화할 수 있습니다. 이 기술을 사용하면 여포 세포 사양, 조직, 분자 마커 및 난자 발달을 새로운 세부 사항과 새로운 관점에서 연구할 수 있습니다.

똑바로 이미징 방법은 우리가 단 8시에 전방 모낭 상피 세포의 직접 조직을 볼 수 여포 세포 운명의 일반적인 마커, 눈에 결석 (EYA) 단백질뿐만 아니라 핵 DNA 마커 DAPI, 심지어 표현을 보여 주었다 세포의이 들판을 가로 질러, 모든 세포가 비슷한 염색 강도 (그림 2B &quot;)로 볼 수 있다는 것을 보여 주었다. 사이토킨 UPD에 응답하여 조절 단백질 그러나, 가변 패턴 및 발현 수준을 보였다. 극 세포는 계란 개발 16, 17의이 단계에 치근단 이전에 UPD를 해제, 그래서 우리는 STAT 때때로 사건이었다 극성 세포에 대해 반경 방향으로 활성화 될 것으로 예상. 종종하지만, 우리는 SLBO 포함 STAT의 다운 스트림 대상, 관찰 더 복잡한 발현 패턴을 가지고 있었다. 예를 들어, SLBO 발현 GFP 기자 전부는 아니지만, 대부분의 극성 세포를 둘러싸 세포 (그림 2B 등장하고, 맨 참조ING 등 검토 중 등).</em...

이 프로토콜에 설명된 직립 이미징 방법을 사용하면 발달 중인 Drosophila melanogaster 난자의 극을 자세히 시각화할 수 있습니다. 이 최종 보기는 여포 상피에서 여러 세포 유형의 배열과 형태에 대한 새로운 관점을 제공합니다.

Drosophila melanogaster oogenesis provides an ideal context for studying varied developmental processes since the ovary is relatively simple in ...

본 실험 절차의 전반적인 목표는 초파리 난포의 극단을 고해상도로 이미징하는 것입니다. 이는 먼저 난소물을 적출하고 형광 항체로 염색함으로써 수행됩니다. 두 번째 단계는 관심 있는 난포를 식별하고 분리하는 것입니다.다음으로 선택된 시료의 방향을 잡고 정렬한 뒤, 글리세린 젤리 블록에 매립합니다. 마지막 단계로 블록을 절단하고 회전시켜 난포의 장축이 수직이 되도록 고정합니다. 최종적으로, 공초점 현미경을 사용하여 난포 양 끝단의 세포 및 세포 내 구조를 관찰합니다.경계 세포 배열과 같은 상피 조직의 경우, 광학 섹셔닝과 알고리즘 기반 3D 재구성을 통해 이미징 평면에 수직인 표본을 관찰하는 기존 방법들은 광퇴색과 빛 산란을 유발하고 해상도를 떨어뜨려 이미지의 정확도를 낮출 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 표본을 새로운 각도로 마운트하여 직접 관찰할 수 있다는 점입니다. 본 연구에서는 이 기술을 사용하여 발달 중인 난포의 양 끝단을 이미징하였으며, 이를 통해 여포 세포의 구성에 대한 통찰을 얻었습니다.염색 표본의 미세 조작과 기존 관점에서의 시료 재배치가 필요하여 준비 및 마운팅 단계를 익히기가 어렵기 때문에, 이 방법의 시각적 시연이 매우 중요합니다. 절차 시연은 본 연구실의 대학원생인 Lathea manning이 담당할 것입니다. 실험을 시작하려면, 유리 오목 슬라이드를 준비하고 각 오목한 부분에 해부 배지를 여러 방울 피펫으로 넣으십시오.초파리를 이산화탄소로 마취시킨 후 해부 현미경 아래에 놓습니다. 다음으로, 암컷 초파리 한 마리의 날개가 아래로 향하고 머리가 왼쪽을 향하도록 배치합니다. 비우세손을 사용하여 양손에 쥔 핀셋을 테이블 상판과 30도 각도가 되도록 유지합니다.포셉을 사용하여 초파리를 집어 올립니다. 흉부 근처의 복부 앞부분을 잡고 해부 용액에 담급니다. 다른 포셉을 사용하여 오목 슬라이드 글라스 위에 놓습니다.복부의 복측 후단에서 외골격을 잡고 뚫습니다. 후단에 위치한 난소를 잡아 복부 밖으로 끌어낸 다음, 오목 슬라이드의 반대편에 있는 신선한 배지로 옮깁니다. 그런 다음, 가장 큰 난실 근처의 난소 후단을 잡고, 다른 손으로 가장 앞쪽에 있는 난실 또는 잼머(jamer) 중 하나를 천천히 그리고 일정하게 집습니다.난소 초에서 난관 사슬을 끌어내고, 원하는 모든 난포가 제거될 때까지 각각의 난관을 계속해서 분리합니다. 분리가 완료되면 플라스틱 전송 피펫을 사용하여 난관을 0.6 milliliter 튜브로 옮기고 난관이 튜브 바닥에 가라앉을 때까지 기다립니다. 피펫을 사용하여 난관에서 분리 배지를 가능한 한 많이 조심스럽게 제거합니다.새 튜브로 옮길 때 난포나 난실이 제거되지 않도록 주의하십시오. 0.1 M 인산칼륨 완충액 150 µL에 16% 파라포름알데히드 50 µL를 혼합하여 난실에 첨가합니다. 이를 10분 동안 흔들어주며 배양하십시오. 배양이 끝나면 고정액을 제거합니다.NP 40 버퍼로 2회 헹군 다음, 실온에서 NP 40 버퍼 0.5 milliliters를 사용하여 15분씩 2회 세척합니다. 고정과 세척 후, 1차 항체를 첨가하고 4 °C에서 하룻밤 동안 또는 실온에서 3시간 동안 배양합니다. 배양 후, 실온에서 NP 40 버퍼 0.5 milliliters로 샘플을 20분씩 4회 세척합니다.그런 다음 2차 항체를 1:200으로 희석하여 첨가하고, 오비알(ovial)을 4°C에서 3시간 또는 밤새 배양합니다. 다음으로 DPI를 1:1000으로 희석하여 첨가하고 오비알을 10분 동안 배양합니다. 이후 실온에서 회당 20분씩 0.5 mL의 NP 40 세척 완충액으로 샘플을 4회 세척합니다.면역형광(IF) 프로토콜이 완료되면, 난소 챔버(egg chambers)에 PBS에 희석한 50% glycerol 200 µL를 첨가하고 빛이 차단된 상온에서 2시간 동안 방치합니다. 용액을 제거한 후 PBS에 희석한 70% glycerol로 교체하고 튜브를 호일로 감쌉니다. 샘플을 마운팅 전까지 4 °C에서 보관합니다.글리세린 젤리 슬라이드를 준비하려면, 스패튤라를 사용하여 15 mL Pyrex 유리 배양관의 약 절반 정도를 글리세린 젤리로 채웁니다. 55 °C 워터배스에서 30분 동안 글리세린 젤리를 녹입니다. 그동안, 스톡 용액에서 글리세롤 300 µL 한 방울을 두 개의 현미경 슬라이드 위에 떨어뜨립니다. 티슈를 사용하여 각 슬라이드 전체에 글리세롤을 얇게 펴 바릅니다.글리세린 젤리를 쉽게 제거할 수 있도록 베이스를 제공합니다. 글리세린 젤리가 완전히 녹았는지 확인하십시오. 다음으로, 필터가 장착된 1000 µL 피펫 팁의 끝부분을 잘라내고, 기포가 생성되지 않도록 주의하며 각 현미경 슬라이드에 따뜻한 글리세린 젤리 1000~1,500 µL를 천천히 옮깁니다.글리세린 젤리 슬라이드를 실온에서 5분 동안 방치하여 각 글리세린 젤리를 굳힙니다. 슬라이드를 60 mm x 15 mm 페트리 접시에 넣습니다. 접시를 플라스틱 랩으로 덮고 슬라이드를 4 °C에서 하룻밤 동안 보관합니다.이전에 준비한 70% glycerol 샘플에서 난실(egg chambers)을 3 µL씩 여러 방울 취해 글리세린 젤리 슬라이드 전체에 분주합니다. 모든 난실이 슬라이드 위에 올라갈 때까지 3 µL씩 계속 분주하며, 각 방울에 최소 10개의 난실이 포함되도록 합니다. 다음으로, 글리세린 젤리가 담긴 배양 튜브를 55 °C 항온수조에서 가열하고, 난실이 놓인 글리세린 젤리 슬라이드를 해부현미경 아래에 배치한 후 시야에 난실 한 방울만 들어오도록 배율을 조정합니다.필요한 경우, 30 gauge 바늘을 스푼처럼 사용하여 원하는 단계의 난포(egg chamber)를 집어 올립니다. 이미징을 방해할 수 있는 잔해물을 방지하기 위해 바늘을 칼처럼 사용하여 난포 사슬에서 원하는 난포를 분리합니다. 분리한 난포를 두 번째 글리세린 젤 슬라이드로 옮깁니다.전면이 왼쪽을 향하도록 난실(egg chamber)이 한 열에 최소 7개씩 정렬될 때까지 이 단계를 반복합니다. 바늘을 사용하여 이물질이나 불필요한 난실을 긁어내어 7개씩 구성된 새로운 열을 만들고, 원하는 모든 난실을 두 번째 글리세린 젤 슬라이드로 옮깁니다. 킴와이프(Kim wipe) 조각을 작게 꼬아 각 난실을 가볍게 터치하여 과도한 PBS 글리세롤을 흡수시킵니다. 이때 난실이 제거되지 않도록 주의하십시오.200 µL 필터 피펫 팁의 끝부분을 잘라내고, 글리세린 젤리 150 µL를 옮겨 난실(egg chamber)의 모든 열을 덮습니다. 현미경으로 모든 난실 열이 덮였는지 확인하십시오. 마운팅된 난실을 상온에서 5분 동안 그대로 두어 글리세린 젤리의 상층부가 완전히 응고되도록 합니다.그 다음, 마운팅된 난소 챔버 슬라이드를 60 millimeter x 15 millimeter 페트리 접시에 넣고 플라스틱 랩으로 덮습니다. 글리세린 젤리 층이 어두운 곳에서 함께 응고될 수 있도록 접시를 4 °C에서 하룻밤 동안 보관하십시오. 광퇴색이 발생할 가능성이 있는 경우, 마운팅된 난소 챔버 슬라이드를 해부 현미경 아래에 둡니다.난포실의 한 열만 시야에 들어오도록 배율을 조정합니다. 45도 각도의 미세 메스를 사용하여, 난포실의 후단 쪽에 가깝게 첫 번째 난포실 열의 오른쪽을 따라 직선으로 절개합니다.다음으로, 상단의 첫 번째 난포 위쪽과 열의 마지막 난포 아래쪽을 절단하여 난포의 세 면이 절단된 상태가 되도록 합니다. 마이크로 나이프를 사용하여 난포의 전단에 최대한 가깝게 열의 왼쪽 면을 따라 절개합니다. 그런 다음 피펫을 사용하여 차가운 1X PBS 100 µL를 라운드 및 스패튤라와 함께 절단된 열 위에 분주합니다.난포 챔버의 절단된 기둥 삼면 주변에 있는 과잉 글리세린 젤리를 제거하여 버립니다. 난포 챔버의 전단부에 만들어진 절개 부위에 스패출러를 삽입하여 기둥을 기본 글리세린 젤리 블록에서 분리한 후, 슬라이드에 마운트하여 이미징을 진행합니다. 수직 이미징 방법을 통해 8단계의 전방 난포 상피 세포 조직을 직접 시각화할 수 있습니다.난포 황산염의 일반적인 마커인 eyes absent 또는 IA 단백질과 핵 DNA 마커인 DPI는 이 세포 영역 전체에서 균일하게 발현되며, 모든 세포가 유사한 염색 강도로 관찰될 수 있음을 보여줍니다. 난실(egg chamber)의 일반적인 시야는 난실의 3차원 재구성으로 만들어진 시야와 대조를 이룹니다. 삽입도는 회전된 축을 보여줍니다.x축은 아래쪽입니다. Z축은 이제 왼쪽을 향하며, Y축은 관찰자 쪽을 향합니다. Z축의 낮은 해상도로 인해 개별 세포들이 흐릿하게 보입니다.따라서 이 새로운 접근 방식은 영상 촬영 기술의 상당한 개선을 의미합니다. 수직 영상법은 9단계 난포의 전방 상피를 효과적으로 시각화합니다. 이 발달 단계에서 경계 세포들은 극세포 주위로 함께 융합됩니다.이러한 응축된 클러스터들은 endon 이미징을 통해 관찰됩니다. 이 영상을 시청하고 나면, 새로운 관찰 관점을 확보하기 위해 샘플을 어떻게 마운트하는지 충분히 이해하게 될 것입니다. 본 연구에서는 이 기술을 사용하여 선택된 단계에서 발달 중인 난포의 극 부분을 이미징하였습니다.이 일반적인 기술은 초파리의 다른 단계, 난자 형성 과정 또는 다른 유형의 작은 조직에 사용될 수 있습니다.

upright-imaging-of-drosophila-egg-chambers

Research

연구

JoVE Journal

Developmental Biology

발생생물학

Mesoscopic 형광 tomography는 조직 sectioning 형광 현미경의 침투 제한없는 운영하고 있습니다. 이 기술은 다중 투영 조명 및 광자 수송 설명을 기반으로합니다. 우리의 morphogenesis의 인 - 생체내 전체 - 몸 3D 시각화 GFP - 표현에 날개 imaginal 디스크를...

에 대한 Mesoscopic 형광 Tomography 인 - 생체내</em개발> 이미징 Drosophila</em

Drosophila의 hemocytes은 개발 배아의 전체를 통해 분산. 이 프로토콜은 찬란 표시된 hemocytes와 배아를 사용하여 이러한 마이 그 레이션을 마운트 및 이미지하는 방법을 보여줍니다.

라이브 영상 Drosophila melanogaster 배아 Hemocyte 마이 그 레이션

여기 스테인드에 대한 마운트 프로토콜을...

의 입식 이미징 Drosophila 태아

Drosophila Pupal의 복부 Immunohistochemistry

개별 준비 Drosophila</em라이브 이미징을위한> 계란 회의소

면역염색은 조직 내의 특정 세포 유형과 단백질을 시각화하는 효과적인 기술입니다. 초음파 처리를 활용함으로써, 여기에 설명된 프로토콜은 면역 염색 전에 후기 단계의 배아와 유충에서 Drosophila melanogaster 조직을 해부해야 할 필요성을 완화합니다. 우리는 포름알데히드가 고정된 전체 산 유충의 면역 염색을 위한 효율적인 방법론을 제공합니다.

늦게 단계 배아와 애벌레의 초음파 - 촉진 면역 형광 염색<em&gt; 초파리</em&gt; 조직<em&gt; 제자리에서</em

이 프로토콜은 살아있는 초파리 번데기 눈 신경 상피를 이미징하는 효율적인 방법을 제시합니다. 이 방법은 조직의 움직임과 불균일한 토폴로지를 보상하고, 여러 GFP 태그가 지정된 접합 단백질을 사용하여 세포 경계의 시각화를 향상시키며, 쉽게 조립할 수 있는 이미징 장비를 사용합니다.

의 라이브 영상 초파리 번데기 눈

이 문서에서는 초파리 계란 활성화 중에 2 + 칼슘을 시각화에 대한 적응력 생체 프로토콜을 설명합니다.

에서 이미징 칼슘<em&gt; 초파리</em&gt; 계란 활성화에

이 프로토콜은 과일 파리가 변형을 겪으면서 Drosophila 복부 상피에서 세포 배향 및 조직 성장의 역학을 이미징 및 분석하기 위해 설계되었습니다. 여기에서 기술된 방법론은 Drosophila 또는 그밖 모형 유기체에 있는 다른 발달 단계, 조직 및 subcellular 구조물의 연구 결과에 적용될 수 있습니다.

푸팔 단계 동안 개발 초파리 에피텔리아에서 조직 방향 과 성장 역학의 이미징 및 분석

여기에서는 초파리 난소 틈새 시장에서 생식세포 줄기세포(GSC)의 비대칭 분열에 대한 실시간 이미징을 수행하기 위한 자세한 프로토콜을 제공합니다. 우리는 분광 단백질 Par-1의 녹색 형광 단백질(GFP) 융합을 유비쿼터스하게 발현하는 형질전환 라인을 사용합니다.

여성 Drosophila melanogaster 생식세포 줄기세포 틈새의 확장된 라이브 이미징

학습하세요 Drosophila melanogaster 계란 챔버의 수직 이미징 방법을 통해 전방 및 후방 극에서 세포 및 아세포 조직을 고해상도로 관찰하는 기술입니다. 이 방법은 난포 상피의 형태학적 변화를 연구하는 데 활용됩니다.

의 수직 이미지

더 많은 동영상 탐색