Name: 정위 사출 기술을 적용하는 것은 동물의 행동에 유전 적 영향을 연구하기 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-05-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 54 s
Description: 학습하세요 정위 사출 기술을 이용하여 쥐의 특정 뇌 영역에서 유전자 발현을 조절하고 불안 및 우울 관련 행동을 정량적으로 평가하는 방법을. 이 기법은 신경과학 연구에서 유전자-행동 관계를 규명하는 데 활용됩니다.

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이 연구는 미국심장협회(American Heart Association) 과학자 개발 보조금과 Yingwei Mao에 대한 NARSAD Young Investigator Award의 일부 지원을 받았습니다.

참고 : 동물을 포함한 모든 프로토콜은 펜실베니아 주립 대학의 동물 관리 지침에 따라 추적 관찰, IACUC의 # 44057 1. 렌티 바이러스 생산 참고 : 형질 전날, LentiX-293 세포는 80 % 포화 상태에 있어야합니다. <ol><li> 단지 형질 전환 전에 DMEM으로 세포를 씻어 실온에서 5 분 동안 페니실린 (100 IU / ml) 및 스트렙토 마이신 (100 ㎕ / ml)이 DMEM / 10 % FBS의 10ml에 품어. </li><li> 1 분 동안 1 ㎖의 DMEM 소용돌이 : 3 비율 (PEI 3 μL의 1 μg의 DNA :) DNA와 폴리에틸렌 이민 (PEI) (1) (1 ㎎ / ㎖)을 희석. DNA의 체적은 DNA의 농도에 의존했다. 실온에서 10 분 동안 인큐베이션. <ol><li> 예를 들어, 접시 당 PEI의 60 μL 벡터 플라스미드의 10 μg의, psPax2 14 플라스미드의 5 μg의, 수 포성 구내염 바이러스 (VSV)의 5 μg의 구성 DNA 플라스미드의 20 μg의를 사용합니다. </li></ol></li><l난&gt; 1 분 동안 텍싱 다시 DNA와 PEI 솔루션을 섞는다. 실온에서 10 분 동안 인큐베이션. </li><li> DMEM (100mm 접시에 10 ml의 배지에 대한 예 1 ㎖) 총 배지의 1 / 10 볼륨. 접시에 드롭에 의해 DNA - 페이 혼합물 드롭 1 ㎖를 추가하고 문화 매체가 DNA와 잘 혼합 때까지 주위에 접시를 소용돌이 친다. </li><li> 실온에서 6 시간 동안 품어 뜨는을 제거합니다. 배지 5 mL를 추가합니다. </li><li> 형질 전환 후 48 시간은 50 ㎖ 튜브에 4 ℃에서 5 분 동안 627 XG에 바이러스 뜨는 스핀를 수집합니다. 초 원심 분리기 튜브에 0.45 ㎛의 주사기 필터를 통해 바이러스 상등액 30㎖의 필터. </li><li> 튜브를 밸런스, 파라 필름의 작은 조각 튜브를 충당하기 위해 멸균 물을 추가합니다. 스핀 튜브를 4 ℃에서 120 분 동안 11,249 XG에. 진공 팁을 사용하여 액체를 제거합니다. </li><li> 차가운 PBS 100 μL 튜브를 추가합니다. 조심스럽게 4 ° CO / N에서 튜브를 바위. </li><li> 바이러스, 피펫 (T)를 다시 일시 중단그는 PBS는 끝 펠렛을 만지지 않도록 조심하면서, 펠렛 10 배 이상 단계 1.8에서 추가. 이 작업이 완료 될 때까지 펠릿을 재현 탁하지 않는다. </li><li> -80 ° C에서 액체 질소 저장 튜브, 플래시 동결 당 10 ~ 20 μL에서 바이러스를 나누어지는. </li></ol> 2. 정위 주입 악기의 2.1) 준비 <ol><li> 이전에 수술 가위, 무딘 엔드 집게, 바늘 홀더, 메스, 면봉 한 쌍, 및 멸균 지표와 밀봉 팩에 천 및 오토 클레이브를 놓습니다. 또한, 10 %, 포비돈 요오드, 70 % 에틸 알코올, 흡수성 봉합사, 가열 패드, 인공 눈물을 구 유리 비드 살균기, 드릴, 드릴 비트,이 일회용 주사기, 주입 주사기, 전기 면도기, 진통 (케토 프로 펜), 마취제 (AVERTIN), 장갑, 및 주입 펌프 정위 장치. </li><li> 0.2 사용하여 멸균 후드에서 1.25 % AVERTIN 신선한 솔루션 그 날, 필터를 확인# 181; 멸균 주사기 필터를 M 및 멸균 혈청 유리 병에 넣습니다. 차 - 아밀 알코올 5 ㎖에 2,2,2- tribromoethyl 알코올의 2.5 g을 혼합 한 후 200 ml의 물에 용해. 5. 15 아래의 pH를 유지 </li></ol> 마우스 2.2) 준비 <ol><li> 마우스 (375 ㎎ / ㎏)의 중량을 기준 AVERTIN 관리]. 15 복강 내 (IP) 주입을 통해 AVERTIN와 마우스를 주사 한 후 완전 마취까지 다시 케이지로 놓는다. </li><li> IP 주입 (ketaprofen, 5 ㎎ / ㎏), 장소 건조를 방지하기 위해 마우스의 눈에 인공 눈물을 통해 진통을 제공합니다. </li><li> 마우스가 자신의 발을 곤란에 의해 완전히 잠 들어 있는지 확인합니다. 마우스가 발 핀치에 응답하는 경우, 다음 (50 μL의 용량에) 더 많은 마취제를 제공합니다. 전기 면도기를 이용하여 마우스의 면도 헤드. (주둥이의 상단에, 일반적으로 그냥 귀 뒤에서)에 조작 할 수있는 지역 및 주변 지역을 면도. </li><li> 마우스 나 배치정위 장치 NTO. 전방 클램프에 앞니를 래치, 클램프를 낮추고 턱이 완전히 안전 있도록 조입니다. </li><li> 완전히 머리를 안정 외이도에 귀 막대를 삽입합니다. 내이가 손상 될 수있는, 너무 멀리에 귀 막대를 삽입하지 않도록주의하십시오. 완성되면, 마우스 본체는 헤드의 위치를​​ 방해하지 않고 약간 이동 될 수 있어야한다. </li><li> 절차 내내 쥐의 체온을 조절하기 위해 마우스 하에서 가열 패드를 배치. </li><li> 철저하게 수술 영역을 청소합니다. 면봉을 사용하여 수술 부위의 중앙으로부터 시작하여 바깥쪽으로 이동하는 원 운동을 10 % 포비돈 요오드를 문질러. 그 후, 동일한 방식으로 수술 부위에 70 %의 에틸 알코올을 문질러 면봉을 사용한다. 두 번 반복합니다. </li></ol> 2.3) 첫 번째 절개 <ol><li> 마우스가 수험 공부를하게되면, 멸균 장비 가방을 엽니 다. 변경 장갑 touchi 전에악기를 ng를. 멸균 천을 꺼내 천으로 악기를 배치합니다. 어떤 악기 않은 멸균 표면에 닿으면, 그것을 소독 15 초 동안 유리 구슬 살균기를 사용합니다. </li><li> 비 지배적 인 손에 지배적 인 손과 무딘 엔드 집게에 메스를 가져 가라. 무딘 엔드 집게로 부드럽게 그립 마우스의 피부를 사용하고, 메스를 사용하여 절개를합니다. 약 1.5 cm (코 쪽) 귀 위의 절개를 시작하고 귀 아래 약 0.5 cm로 확장 할 수 있습니다. (그림 1) 브레 그마 노출 마우스의 머리의 중앙에 수직으로 절개를 확장 할 수 있습니다. </li><li> 브레 그마가 가시화되면, 부드럽게 두개골의 표면을 덮고있는 피를 제거하는 살균면 팁을. 머리 피부 측으로 밀어 두면 끝을 사용한다. </li></ol> 2.4) 장비 설치 <ol><li> 모든 혈액 두개골 표면으로부터 제거되고 브레 그마가 분명히 가시화되면 (콘을 주사기를 준비10 8 TU 1 μL의 / ㎖, 볼륨)의 자기 중심. 흄 후드에서 바이러스와 주사기 주입되는 입력합니다. 기포 내부 없는지 확인합니다. 완전히 고정되어 있는지 확인하고, 정위 장치에 주사기를 놓습니다. </li><li> 멸균 주사기 바늘의 끝은 브레 그마의 교점과 라인 간가 설정되도록 그것이 바로 두개골 표면 위에까지 천천히 주사기를 낮출. 0으로이 점을 설정하고,이 시점에서 좌표를 결정합니다. </li><li> 관심의 뇌 영역에 따라, 정위 좌표를 변화한다. 뇌지도 책 (4)를 이용하여 이러한 좌표를 결정합니다. 좌표가 결정되면, 그 좌표에 일치하도록 주사기의 바늘을 움직인다. 좌표를 사용하여 치아 이랑을 대상 = +/- 1mm, A / P = -1.82 mm M / L. 구멍을 뚫어야 할 필요가있는 시각화하기 위해 두개골 위 오른쪽에있는 바늘을 낮 춥니 다. </li><li> 약간 주사기를 올려 드릴을 가지고 드릴 BI를 배치두개골에 약 45 ° 각도에서 대상 드릴 사이트 위의 T 오른쪽. 시추를 시작하고, 두개골 방법을 제공 할 때까지 시추를 유지한다. 두개골 방법을 제공하는 경우, 저항의 저하를 검출 할 수있다. 대뇌 피질의 손상을 방지하기 위해, 뇌에 드릴하지 않도록주의하십시오. </li><li> 멸균면 팁을 가지고 구멍에서 모든 피를 닦아. </li><li> 끝이 오른쪽 뇌 (안 두개골)의 표면에 앉아 있도록 주사기를 낮 춥니 다. D / V를가 뇌 아틀라스 좌표에 기초하여, 원하는 깊이까지 더 낮은 0 주사기 (깊이) 좌표를 설정한다. -1.79 mm로 치아 이랑, 설정 D / V에 도달합니다. </li><li> 0.2 μL / 분의 속도로 주사를 시작한다. 주사기가 원하는 깊이보다 낮은 슬립하지 않도록 손목 시계. 이 경우, 부드럽게 다시 원하는 깊이에 주사기를 올립니다. </li><li> 주입이 완료된 후, 잔여 바이러스가 흡수되었는지 확인 약 2 분을 기다린다. 천천히 주사기를 제기하고 리를 제거하기 위해면 팁을 사용주사 부위에서 파운드. </li><li> 다른 반구에 대해 반복합니다. </li></ol> 2.5) 봉합 <ol><li> 포장 및 그립에서 바늘 홀더를 사용하여 바늘을 멸균 봉합사와 바늘을 제거합니다. 떨어진 바늘 홀더 바늘의 날카로운 에지에 직면한다. 비 지배적 인 손에 무딘 엔드 집게를 잡고 마우스 그립 피부에 그것을 사용할 수 있습니다. 지배적 인 손으로 시작합니다. </li><li> 부드럽게 피부 봉합을 통하여 밀어 절개의 반대편에 피부를 잡아 무딘 단부 집게를 사용한다. 약 0.75 인치가 남을 때까지 통해 봉합사를 당깁니다. </li><li> 바늘의 이동을하자, 바늘 홀더 한 번 주위의​​ 봉합을 포장 무딘 엔드 집게를 사용하여, 다음, 바늘 홀더와 0.75 인치 나머지 봉합을 잡은 통해 봉합사를 당겨 바늘과 바늘 홀더 있도록 그들은 원래의되었던 것과 헤드의 대향 측에서 끝낸다. 이 매듭을 형성​​한다. </li><li> 이 단계를 반복합니다세 번 이상, 머리의 측면 번갈아 바늘 홀더는 각각의 시간에 끝난다. </li><li> 봉합사를 잘라 단계를 반복 2.5.1-2.5.3 절개를 닫을 때까지. </li></ol> 2.6) 수술 후 케어 <ol><li> 부드럽게 마우스의 귀 막대를 제거하고 전방 클램프에서의 턱을 제거합니다. </li><li> 이 깨어나서 자신의 주위에 이동 될 때까지 가열 패드에 마우스를 유지합니다. 매일 마우스를 모니터링하고 유지하며, 손질 먹거나 마시는하지 고통의 흔적에 대한 눈을 밖으로. 필요하다고 판단되는 경우 추가 진통제를주십시오. </li></ol> 3. 필드 테스트 3.1) 설정 <ol><li> 50cm 높은 벽, 크기 50cm X 50cm와 빈 사각형, 플라스틱 분야를 얻습니다 (하지만 약간 더 클 수 있습니다.) 실험을 시작하기 전에 70 %의 에틸 알코올과 아레나 청소. 에틸 알코올이 완전히 경기장에 마우스를 배치하기 전에 건조 가지고 있는지 확인하십시오. </li><li> 에 경기장을 배치바닥 및 조명은 그림자와 눈부심을 최소화하기 위해 설정되어 있는지 확인하려고합니다. </li><li> 추적 소프트웨어를 사용하는 경우, (마우스의 밝은 전망을 가지고 충분히 멀리 떨어져 전체 포함하는 전체 경기장,하지만 충분히 가까이), 오픈 필드의 직접 오버 헤드 열기 필드 위의 약 1.5 피트 카메라를 배치합니다. </li><li> 상자 (30cm X 30cm 약 지역)의 중심 영역을 설정합니다. (16), 시간대를 설정 측면 패널의 영역 (1) 탭을 클릭합니다. <ol><li> 상단 패널에서 모양의 윤곽을 선택하고 중앙 영역의 경계를 설명합니다. 영역을 추가 선택하고 중앙 영역의 내부를 클릭합니다. 프로그램 지시 사항을 사용하여 (이이 절차를 &quot;중심&quot;이라한다) 영역의 이름. 행동 테스트 손으로 득점 할 경우, 필드의 바닥이 테이프를 사용하여 표시, 10cm X 10cm 사각형으로 분할되어 있는지 확인합니다. </li></ol></li><li> 소프트웨어를 설정 때문에 설정이 올바른지, 마우스가 쉽게 VISI입니다화면 BLE. 시험 분야 (조명) 및 마우스 컬러와 호환되도록 시스템에서 검출 설정을 조정하여이 작업을 수행. 참고 : 설정이 올 때, 시스템은 어떤 그림자 또는 소변 / 대변 만 마우스를 추적하고,해서는 안된다. 구체적인 소프트웨어 설정은 경기장 조명 및 마우스의 컬러에 의존한다. </li></ol> 3.2) 적응도 및 테스트 <ol><li> 주변 환경에 적응을하기 위해 시험 전에 행동 방 1 시간에 실험 쥐를 이동합니다. 순응에 대한 자신의 새장에 마우스를 둡니다. </li><li> 테이프에 카메라의 행동 작업을 켜고 마우스가 벽을 향하도록 경기장의 중앙 앞쪽으로 마우스를 놓습니다. </li><li> 5 분 타이머를 설정하고 멀리 경기장에서 단계. 가능하면 실수 마우스에 영향을주지 않도록하기 위해, 공간을 남겨. </li><li> 5 분가되면, 마우스를 제거하고 자신의 새장에 배치합니다. </li><li> 철저하게 다음 마우스로 진행하기 전에 현장을 청소하기 위해 70 %의 에틸 알코올을 사용합니다. 에틸 알코올이 완전히 건조 가지고 있는지 확인하십시오. </li></ol> 3.3) 점수 <ol><li> 네 발은 중간 30cm X 30cm의 내부에있을 때, 필드의 중심에있는 것으로 마우스를 고려한다. </li><li> 마우스 중심에서 소비하는 시간을 정량화. 또한,이 시간 (예 : Noldus의 ethovison 등) 추적 소프트웨어를 사용하여 결정합니다. <ol><li> 이렇게하려면 분석 탭으로 이동 및 분석 프로필에서 &quot;운동&quot;을​​ 클릭합니다. 현재 설정되어있는 카테고리를 삭제 한 다음 위치 탭에서 &quot;영역&quot;을 선택합니다. 중앙 영역을 선택합니다. 다음, 결과를 볼 수있는 (결과 탭에서) &quot;분석 출력&quot;을 선택합니다. 각각의 재판이 나타납니다 시간을 나열하는 표는 움직이지 보냈다. </li></ol></li><li> 그렇지 않으면, 손으로 OFT 점수. 오픈 필드는 OPE의 하단에 설명 (25) 10cm X 10cm 사각형이 있어야합니다N 필드 (AS 단계 3.1.3에 설명). 마우스는 경기장의 중심으로 항목 수에 더하여, 센터에서 소비하는 시간을 정량화. 16 참고 : 중앙 30cm X 30cm 지역은 열기 필드의 중심으로 간주됩니다. 마우스는 네 개의 발은 30 X 30cm 영역 내에있는 경우 중심 지역에 거주하는 것으로 간주된다. </li></ol> 4. 강제 수영 테스트 주 : 행동 작업 사이의 오일의 최소 허용합니다. 4.1) 설정 <ol><li> 2 L 명확한 버킷을 확보, 22 ° C의 물을 채우기. 테이블에 양동이를 놓고 조명은 그림자와 눈부심을 최소화하기 위해 설정되어 있는지 확인하려고합니다. </li><li> 추적 소프트웨어를 사용하는 경우, 직접 오버 헤드 버킷의 카메라를 배치합니다. </li><li> 소프트웨어를 설정 마우스가 화면에 쉽게 볼 수 있도록. </li></ol> 4.2) 적응도 및 테스트 <ol><li> 행동 소유주에 실험 쥐를 이동검사 전 OM 1 시간은 주변 환경을 적응한다. 순응에 대한 자신의 새장에 마우스를 둡니다. </li><li> 테이프에 카메라 행동 작업을 켭니다. 조심스럽게 물 물통의 중간에 마우스를 배치했다. 마우스를 떨어 뜨리지 않도록해야합니다. 천천히 마우스를 내려 전면 발을 먼저 물에 접촉하도록. 잠수에서 자신의 머리를 방지하기 위해주의해야합니다. </li><li> 6 분 동안 타이머를 설정하고 행동 영역에서 멀리 단계. </li><li> 6 분가되면, 버킷에서 마우스를 제거하고 자신의 새장에 다시 마우스를 배치하기 전에 물기를 닦아 낸다. </li></ol> 4.3) 점수 <ol><li> 수영 대 떠있는 시간을 정량화, (기본 설정해야합니다) Noldus에 의해 제안 추적 소프트웨어를 사용하는 경우, 11 % %의 부동을 설정합니다. </li><li> 추적 시스템을 사용하여 정량화하기 위해, 분석 탭으로 이동 및 분석 프로필에서 이동을 클릭합니다. 에, 현재 설정되어있는 카테고리를 삭제하고 이동 상태를 선택(개인 행동 아래) 왼쪽 패널. 11 %로 부동을 설정합니다. </li><li> 결과 탭에서, 트랙 시각화를 선택합니다. 결과를 볼 수있는 (결과 탭에서) 분석 출력을 선택합니다. 각각의 재판이 나타납니다 시간을 나열하는 표는 움직이지 보냈다. </li><li> 손 채점 경우, 마우스가 마우스가 움직이지 소비 시간의 수영이나 등산, 그리고 양을 소비 한 시간을 측정한다. 또한, 처음에 움직 레이턴시를 측정한다. 결과 섹션에서 그림 2를 참조하십시오. </li></ol>

<ol><li>Schwenk, F., Baron, U., Rajewsky, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Cre-transgenic+mouse+strain+for+ubiquitous+deletion+of+loxP-flanked+gene+segments+including+deletion+in+germ+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Research%22%5BJournal%5D)">A Cre-transgenic mouse strain for ubiquitous deletion of loxP-flanked gene segments including deletion in germ cells.</a> Nucleic Acids Research. 23 (24), 5080-5081 (1995).</li>
<li>Hirrlinger, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Split-cre+complementation+indicates+coincident+activity+of+different+genes+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Split-cre complementation indicates coincident activity of different genes in vivo.</a> PLoS One. 4 (1), 1-10 (2009).</li>
<li>Fenno, L. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeting+cells+with+single+vectors+using+multiple-feature+Boolean+logic%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Targeting cells with single vectors using multiple-feature Boolean logic.</a> Nature Protocols. 11 (7), 763-772 (2014).</li>
<li>Paxinos, G., Franklin, K. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPaxinos%2C+G+%22The+mouse+brain+in+sterotaxic+coordinates%22">The mouse brain in sterotaxic coordinates</a>. , Academic Press. San Diego, CA. (2001).</li>
<li>Gould, T. D., Dao, D. T., Kovacsics, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mood+and+anxiety+related+phenotypes+in+mice%3A+the+open+field+test%5BTitle%5D)+AND+%22Humana+Press%22%5BJournal%5D)">Mood and anxiety related phenotypes in mice: the open field test.</a> Humana Press. 42, 1-20 (2009).</li>
<li>Denenberg, V. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Open-field+behavior+in+the+rat%3A+W.0hat+does+it+mean%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+the+New+York+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Open-field behavior in the rat: W.0hat does it mean.</a> Annals of the New York Academy of Sciences. 159, 852-859 (1969).</li>
<li>Bogdanova, O. V., Kanekar, S., D’Anci, K. E., Renshaw, P. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Factors+influencing+behavior+in+the+forced+swim+test%5BTitle%5D)+AND+%22Physiology+%26+Behavior%22%5BJournal%5D)">Factors influencing behavior in the forced swim test.</a> Physiology & Behavior. 118, 227-239 (2013).</li>
<li>Porsolt, R. D., Anton, G., Blavet, N., Jalfre, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavioral+despair+in+rats%3A+A+new+model+sensitive+to+antidepressant+treatments%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Pharmacology%22%5BJournal%5D)">Behavioral despair in rats: A new model sensitive to antidepressant treatments.</a> European Journal of Pharmacology. 47 (4), 379-391 (1978).</li>
<li>Hunsberger, J., Dunman, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+for+depression-like+and+anxiety-like+behavior%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocol+Exchange%22%5BJournal%5D)">Animal models for depression-like and anxiety-like behavior.</a> Nature Protocol Exchange. , (2007).</li>
<li>Hommel, J. D., Sears, R. M., Georgescu, D., Simmons, D. L., DiLeone, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Local+gene+knockdown+in+the+brain+using+viral-mediated+RNA+interference%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Medicine%22%5BJournal%5D)">Local gene knockdown in the brain using viral-mediated RNA interference.</a> Nature Medicine. 9 (12), 1539-1544 (2003).</li>
<li>Mao, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disrupted+in+schizophrenia+1+regulates+neuronal+progenitor+proliferation+via+modulation+of+GSK3beta%2Fbeta-catenin+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Disrupted in schizophrenia 1 regulates neuronal progenitor proliferation via modulation of GSK3beta/beta-catenin signaling.</a> Cell. 136 (6), 1017-1031 (2009).</li>
<li>Clark, M. S., Sexton, T. J., McClain, M., Root, D., Kohen, R., Neumai, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Overexpression+of+5-HT1B+receptor+in+dorsal+raphe+nucleus+using+herpes+simplex+virus+gene+transfer%2C+increases+anxiety+behavior+after+inescapable+stress%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Overexpression of 5-HT1B receptor in dorsal raphe nucleus using herpes simplex virus gene transfer, increases anxiety behavior after inescapable stress.</a> Journal of Neuroscience. 2 (11), 4550-4562 (2002).</li>
<li>Tasan, R. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+central+and+basolateral+amygdala+are+critical+sites+of+neuropeptide+Y%2FY2+receptor-mediated+regulation+of+anxiety+and+depression%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">The central and basolateral amygdala are critical sites of neuropeptide Y/Y2 receptor-mediated regulation of anxiety and depression.</a> Journal of Neuroscience. 30 (18), 6282-6290 (2010).</li>
<li>Salmon, P., Trono, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Production+and+titration+of+lentiviral+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Protoc+Hum+Gen%22%5BJournal%5D)">Production and titration of lentiviral vectors.</a> Current Protoc Hum Gen. 12 (12.10), (2007).</li>
<li>Carter, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anesthetizing+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Anesthetizing mice.</a> Methods Mol Biol. 18, 135-136 (1993).</li>
<li>Alachkar, A., Jiang, D., Harrison, M., Zhou, Y., Chen, G., Mao, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+EJC+factor+RBM8a+regulates+anxiety+behaviors%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Molecular+Medicine%22%5BJournal%5D)">An EJC factor RBM8a regulates anxiety behaviors.</a> Current Molecular Medicine. 13 (6), 887-899 (2013).</li>
<li>Bernal, J., Baldwin, M., Gleason, T., Kuhlman, S., Moore, G., Talcott, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Guidelines+for+rodent+survival+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Investigative+Surgery%22%5BJournal%5D)">Guidelines for rodent survival surgery.</a> Journal of Investigative Surgery. 22, 445-451 (2009).</li>
<li>Wahlsten, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Getting+ready+for+testing.+Mouse+Behavioral+Testing%3A+How+to+use+mice+in+behavioral+neuroscience%5BTitle%5D)+AND+%22Academic+Press%22%5BJournal%5D)">Getting ready for testing. Mouse Behavioral Testing: How to use mice in behavioral neuroscience.</a> Academic Press. , 133-141 (2011).</li>
<li>Kheirbek, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+control+of+learning+and+anxiety+along+the+dorso-ventral+axis+of+the+dentate+gyrus%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Differential control of learning and anxiety along the dorso-ventral axis of the dentate gyrus.</a> Neuron. 6 (77), 955-968 (2013).</li>
<li>Snyder, J. S., Soumier, A., Brewer, M., Pickel, J., Cameron, H. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adult+hippocampal+neurogenesis+buffers+stress+responses+and+depressive+behaviors%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Adult hippocampal neurogenesis buffers stress responses and depressive behaviors.</a> Nature. 476 (7361), 458-461 (2011).</li>
<li>Sik-Lee, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+neuronal+vascular+endothelial+growth+factor+expression+by+cAMP+in+the+dentate+gyrus+of+the+hippocampus+is+required+for+antidepressant-like+behaviors%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Induction of neuronal vascular endothelial growth factor expression by cAMP in the dentate gyrus of the hippocampus is required for antidepressant-like behaviors.</a> Journal of Neuroscience. 29 (26), 8493-8505 (2009).</li>
<li>Miller, D. G., Adam, M. A., Miller, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+transfer+by+retrovirus+vectors+occurs+only+in+cells+that+are+actively+replicating+at+the+time+of+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+and+Cellular+Biology%22%5BJournal%5D)">Gene transfer by retrovirus vectors occurs only in cells that are actively replicating at the time of infection.</a> Molecular and Cellular Biology. 10 (8), 4239-4242 (1990).</li>
<li>Rubinson, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+lentivirus-based+system+to+functionally+silence+genes+in+primary+mammalian+cells%2C+stem+cells+and+transgenic+mice+by+RNA+interference%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Genetics%22%5BJournal%5D)">A lentivirus-based system to functionally silence genes in primary mammalian cells, stem cells and transgenic mice by RNA interference.</a> Nature Genetics. 33, 401-406 (2003).</li>
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성공적인 정위 주사는 세 가지 요소에 의존 : 바늘 (팁, 살아 마우스를 유지 (브레 그마의 교회법 및 간가 줄에 바늘의 끝을) 좌표에 대한 올바른 원점 설정, 영점에 대한 권리 깊이를 설정 다만) 뇌 조직의 외관을 터치. 마우스의 생존 능력은 중요하다. 수술 생존율은 마우스가 제대로 마취 적절한 진통제를 수신되어 있는지 확인하여 도움을받을 수 있습니다. 통증 수술 후 회복 나쁨의 주요 원인으로 알려져있다. 마우스는 완전히 수술 내내 마취 보장 (이것은 다리 핀치에 반응하지 않아야) 및 진통제의 정확한 투여 량을 제공 생존 도와야한다 (마우스의 중량 기준). (17)는 또한 마우스에서 유지되어야 수술 과정에 걸쳐 가열 패드 그것은 마취에서 깨어 났을 때까지. 그들이 마취 때 마우스는 체온을 조절 할 수 없다. 몸의 성질ature은 수술 과정에서 크게 떨어질 것이다. 정위 수술의 길이가 상대적으로 짧은 비록, 저체온증 심각 마우스의 생존을 손상시킬 수 있습니다. 적절한 봉합 기술은 성공적인 수술을 수행하는 수...

그 유전자 조작이 용이하기 때문에 마우스 신경 생물학에서 널리 사용되어왔다. 유전자 녹아웃 기술은 각각의 유전 인자는 마우스 동작을 모양 방법을 연구 조사 할 수 있습니다. 또한, CRE-에 loxP 시스템은 조직 -을위한 유용한 도구를 제공하고, 다른 조직에서 유전자 기능을 연구하는 연구자 수 있습니다 생쥐의 유형 - 특정 유전자 녹아웃을, 세포. (1) 그러나, 실제로, CRE 프로모터의 발현 패턴을 제어하기 어려운 , 지금까지 많은 설립 CRE 드라이버는 특정 지역과 관련된 표현을 달성하지 않았습니다. 2,3 대안 적으로, 정위 주사 성인 쥐의 뇌의 특정 영역을 목표로하는 방법이다. 된 cDNA 또는 shRNA를 발현 유전자 조작 바이러스를 주입하여, 유전자 발현의 특정 지역과 관련된 변조를 달성 할 수있다. 각 마우스의 뇌의 크기가 다르지만, 뇌의 특정 영역의 위치는 정위 번호 좌표를 사용하여 결정될 수있다궁둥이 마우스 뇌의 두개골에 랜드 마크에서 설정합니다. 가장 일반적으로 사용되는 랜드 마크 브레 그마, 람다, 및 라인 간가있다. 뇌 아틀라스로부터 얻어지는 좌표를 사용하여, 각 뇌 영역의 4 정확한 위치는 안테 - 후방 (A / P), 내측 - 외측 (M / L)에 의해 식별 될 수 있고, 지느러미 - 복부는 (D는 / V)에서 축 브레 그마는 / 간가 라인 교차. 주사는 형광 현미경으로 확인 할 수 있도록 일반적으로 쥐의 뇌에 주입 바이러스는 하나 빨강, 또는 녹색 형광 단백질 (RFP 또는 GFP) 태그된다. 쥐의 행동 평가는 정신 질환의 기초 연구에 특히 필요하다. 환자의 정신 장애의 증상은 일반적으로 비정상적인 행동을 포함한다. 이러한 인간의 행동 중 일부는 진화 적으로 보존하고 직접 모방 및 마우스에서 관찰 할 수있다. 예를 들어, 우울증 행동 절망을 측정함으로써 마우스에서 모델링 될 수있다. 자주 우울증이있는 사람그들도 도움이 될 것입니다 아무것도 할 것처럼 EN은 결국 자살로 이어질 수있는 증상을 느낀다. 설치류, 이것은 물 풀에 떠 대 수영 마우스 (포기로 간주) 시간의 양을 측정 강제 수영 시험 (FST)를 사용하여 모델링 될 수있다. 이 패러다임은 항우울제와 표현형을 구출에 의해 검증된다. 처리되지 않은 대조군에 비해 훨씬 적은 시간 움직이지를 보낼 것입니다 항우울제를받은 7, 8, 9 마우스를. 다른 행동 테스트, 오픈 필드 테스트 (OFT) 마우스에서 운동을 평가하도록 설계되고, 별도로 마우스에서 불안 표현형을 분석하는데 사용될 수있다. 5,6이 시험은 그들이 가까이있을 때 마우스는 안전한 느낌 전제 소설 열기 필드에서 벽에. 그들은 호기심 동물로 야생 형 마우스는 결국, 새로운 환경을 모색 할 것입니다. 그러나, 필드의 중심에서 적은 시간을 소비하는 것은 마우스 initia를 극복 할 수 없게되므로, 마우스에 불안을 나타낸다L의 공포는 새로운 환경에 가져왔다. 열린 필드의 중심에서 필요한 시간의 양에 의해 정량화 마우스 불안은 많은 정신 질환에 존재하는 인간 임상 불안, 비교 될 수있다. 행동 패러다임 정위 주사의 조합은 타겟 뇌 영역에서 특정 유전자의 발현을 변경하는 신규 한 방법이다. 마우스 동작에 변조 된 유전자 발현의 효과는 결정될 수있다. 전뇌 녹아웃 대조적으로,이 방법은 특정 뇌 영역을 대상으로 특히 유용하다. 또한, 정위 주사는 일반적으로 성인 야생형 마우스에서 수행되며, 따라서, 내인성 유전자 발현이 발달 단계에 걸쳐 유지되었다. 유전자는 배아 발달 또는 출생 후의 단계에서 생존에 필요한 경우이 방법은 효과가 혼동을 방지한다. 하나의 주요 제한은 실험 쥐를 통해 서 갈 필요가 있다는 것입니다H 쥐의 두개골이 가지고있는 침습 수술은 열 수 있습니다. 또한, 유전자 조절의 정도는 바이러스의 역가 및 효율성에 의해 결정된다. 바이러스는 특별한기구를 필요로 정위 좌표를 이용하여 정확한 영역에 주입되어야한다. 정확한 주사 부위의 확인은 사후을 완료 할 수 있습니다. 이 방법은 이전에 각종 신경 질환에서 특정 유전자의 참여를 테스트하는 데 사용되어왔다. 예를 들어, 바이러스 성 매개의 RNAi가 (도파민 합성 할 수있다) 토륨 유전자를 타겟팅하는 흑색질의 compacta에 주입하고, 전위의 거동 분석을 수행 하였다. (10) 또 다른 연구가 관련 마우스의 행동을 평가 렌티 소음 DISC1의 정위 주사를 사용 정신 분열증에. DISC1의 최저은 새로움에 대한 응답으로 증가 운동을 주도 (평행 정신 분열증의 양성 증상), 그리고 더 큰 부동FST. (11)는 마찬가지로, 추가 연구는 5-HT (1B)의 과발현이, OFT 증가 탐색 행동이 방법을 사용하여 항 불안 표현형과 일치 주도 것으로 나타났습니다. (12) 정위 주사 CRE-에 loxP 생쥐에서 재결합을 유도하는 CRE 바이러스를 제공 할 수 있습니다 . 이 방법은 선택적으로 편도선에서 Y2 수용체 맥리의 terminalis의 침대 핵을 제거하기 위해 사용되었다. 행동 분석하면,이 마우스는 유전자가 중앙 편도체에서 삭제 된 항 우울 표현형을 찾았지만, 한 유전자가 기저 편도 또는 맥리의 terminalis의 침대 핵에 삭제없이 표현형. (13) 따라서,이 기술을 동물의 행동에 유전 적 효과를 연구 할 수있는 독특한 도구를 제공합니다.

<table><tbody><tr><td>정위 장치 항목 51725</td><td>Stoelting co.</td><td>51725</td><td></td></tr><tr><td>Quintessential 스테레오택시 펌프&nbsp;</td><td>Stoelting 공동.</td><td>53311</td><td></td></tr><tr><td>주입 스타일린지, 65 RN</td><td>Hamilton</td><td>7633-01</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>시그마-알드리치</td><td>D5796</td><td></td></tr><tr><td>PEI&nbsp;</td><td>폴리사이언스 Inc.</td><td>23966</td><td></td></tr><tr><td>가위</td><td>세밀한 수술 도구</td><td>14084-08</td><td></td></tr><tr><td>무딘 끝 펜치</td><td>세밀한 수술 도구</td><td>11002-12</td><td></td></tr><tr><td>바늘 홀더&nbsp;</td><td>세밀한 수술 도구</td><td>12001-13</td><td></td></tr><tr><td>드릴</td><td>램 제품 Inc</td><td>Microtorque 제어 상자, 페달이 있는 Tech2000 핸드피스</td><td></td></tr><tr><td>유리 구슬 살균기</td><td>Inotech&nbsp;</td><td>IS-400</td><td></td></tr><tr><td>흡수성 봉합사&nbsp;</td><td>Unify</td><td>M-K518r19</td><td>흡수 가능한 역절단</td></tr><tr><td>면봉</td><td>VWR</td><td>89031-270</td><td></td></tr><tr><td>가열 패드</td><td>Gaymar</td><td>T-pump TP-500 PN11184-000</td><td></td></tr><tr><td>인공 눈물</td><td>럭비</td><td>NDC 0536-6550-91</td><td></td></tr><tr><td>일회용 주사기</td><td>BD 주사기</td><td>309623</td><td></td></tr><tr><td>천</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>장갑& 주의;</td><td>Ansell</td><td>Senseitouch #7823</td><td></td></tr><tr><td>Avertin 또는 기타 마취제</td>는 <td>레시피 인용</td><td></td><td></td></tr><tr><td>참조 Ketoprofen 또는 기타 진통제</td><td>수의사를 참조하십시오.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>추적 소프트웨어</td><td>Noldus</td><td>Ethovision XT</td><td></td></tr><tr><td>추적 카메라</td><td>Noldus</td><td>미디어 레코더</td><td></td></tr></tbody></table>

정위 사출 기술을 적용하는 것은 동물의 행동에 유전 적 영향을 연구하기

Applying Stereotactic Injection Technique to Study Genetic Effects on Animal Behaviors

정위 주사는 쥐에서 대상 뇌 영역에 높은 역가의 렌티 바이러스를 전달하는 유용한 기술이다. 렌티 바이러스가 과발현 또는 뇌 조직에 큰 손상없이 비교적 집중된 지역에서 최저 유전자 발현 할 수 있습니다. 복구 후, 주입 된 마우스는 오픈 필드 테스트 (OFT)과 강제 수영 시험 (FST) 등의 다양한 행동 작업에 테스트 할 수 있습니다. OFT는 마우스 신규 오픈 필드의 중앙에 보내는 시간의 양을 측정함으로써 마우스에서 운동 및 불안 표현형을 평가하기 위해 디자인된다. 더 불안 마우스 대조군과 비교하여 신규 필드의 중심에서 상당히 적은 시간을 소요한다. FST 물 버킷에 넣고, 마우스가 움직이지 않는 경우에 소요되는 시간을 정량화하여 항 우울증 표현형을 평가한다. 항 우울 표현형을 가진 마우스는 동물을 대조군에 비해 훨씬 적은 시간 움직이지를 보낼 것입니다. 이 프로토콜의 목적은 아이돌을 사용하는 것행동 검사와 함께 렌티 바이러스의 eotactic 주입은 동물의 행동을 조절하는 방법을 유전 적 요인 평가합니다.

<html> 정확한 정위 주입 올바른 좌표를 설정하는 방법에 크게 의존. 바이러스를 주입하기 위해 사용되는 바늘의 팁은 브레 그마의 교차점 간가 라인 (도 1)에 직접적으로 설정되어야한다. 이것은 바늘이 올바르게 배치되어 있는지의 여부를 확인하기 위해 실체 현미경을 사용하는 것이 도움이된다. 현미경으로 보면 바이러스가 주입 된 경우, 그것이 브레 그마의 교차점 간가 라인에 바로 도착 해 지도록, 바늘이 배치되어야한다. 즉, 주사기 바늘의 구멍에 직접 교차 위에 배치되어야한다. 본 연구에서는 RBM8a, 엑손 접합부 복잡 핵심 인자에 대하여의 shRNA를 발현하는 렌티 바이러스는, 치아 이랑에 주입 하였다. 렌티 바이러스는 감염된 신경에 레이블 RFP를 표현한다. (2)는 적색 신호 (도 3)으로 표시된 바와 같이 바이러스 정확한 영역에 주입 된 것을 보여준다. 행동 작업의 중요성을 달성하기 _conte...

렌티 바이러스는 cDNA를 표현 또는 shRNA를 생쥐의 특정 뇌 영역에서 유전자 발현을 조절할 수의 정위 주입. 여기, 우리는 오픈 필드 테스트 (OFT)과 강제 수영 시험 (FST)와 같은 행동 작업으로 정위 주사를 결합하는 프로토콜을 제시한다.

Stereotactic injection is a useful technique to deliver high titer lentiviruses to targeted brain areas in mice. Lentiviruses can either overexpress or ...

이 절차의 전반적인 목표는 표적 영역에서 유전자의 발현을 조절하는 것이 동물의 행동에 어떤 영향을 미치는지 평가하는 것입니다. 이는 먼저 표적 유전자의 발현을 조절하기 위한 렌티바이러스를 제작함으로써 수행됩니다. 두 번째 단계는 정위 고정 주입법을 사용하여 ER 설치류의 특정 뇌 영역에 렌티바이러스를 주입하는 것입니다.불안 및 우울과 같은 후속 행동은 기성 행동 패러다임을 사용하여 정량적으로 측정할 수 있습니다. 마지막 단계는 조직학적 분석을 수행하여 주입 부위가 정확한지 확인하는 것입니다. 궁극적으로, 행동 평가와 결합된 정위 주입법을 통해 표적 영역의 특정 유전자가 마우스의 행동에 어떤 영향을 미치는지 보여줄 수 있습니다.기존 방법과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은 과학자가 좁은 표적 영역 내에서 단일 유전자의 발현을 변경한 후, 생쥐의 행동 변화를 평가할 수 있다는 점입니다. 이 절차를 시작하려면, 마취된 생쥐를 정위 고정 장치에 배치하고 앞니를 전방 클램프에 고정한 뒤 턱을 고정합니다. 그 다음, 머리를 완전히 안정시키기 위해 귀 바를 외이도에 삽입합니다.다음으로 마우스의 체온을 조절하기 위해 마우스 아래에 가열 패드를 놓습니다. 실험 과정 전반에 걸쳐 설치류의 눈이 건조해지는 것을 방지하기 위해 인공눈물을 점적합니다. 그 후, 면봉을 사용하여 10% povidone iodine를 원형으로 문질러 수술 부위를 철저히 소독합니다.그 다음 동일한 방식으로 수술 부위에 70% ethyl alcohol을 바릅니다. 이 세척 과정을 두 번 더 반복합니다. 마우스 준비가 완료되면 멸균 장비 백을 엽니다.기구를 만지기 전에 장갑을 교체하십시오. 그런 다음 멸균포를 꺼내 그 위에 기구들을 놓으십시오. 이제 혈액 채취용 포셉으로 마우스의 피부를 부드럽게 잡고 메스로 절개하십시오.귀 위쪽으로 약 1.5 centimeters 지점에서 절개를 시작하여 귀 아래쪽으로 약 0.5 centimeters까지 확장하여 bgma를 노출시킵니다. bgma가 보이면 멸균 면봉을 사용하여 두개골 표면을 덮고 있는 혈액을 부드럽게 제거합니다. 그런 다음 두 개의 면봉을 사용하여 피부를 머리 양옆으로 밀어냅니다.다음으로, 흄 후드 내에서 주입할 바이러스를 시린지에 채웁니다. 내부에 기포가 갇혀 있지 않은지 확인하십시오. 그 후, 시린지를 정위 고정 장치에 장착하고 완전히 고정되었는지 확인합니다.그 후, 주사기를 두개골 표면 바로 위까지 천천히 내립니다. 그런 다음 멸균 주사기 바늘의 팁을 B bgma와 inter rural line의 교차점으로 이동시킵니다. 이 지점을 0점으로 설정합니다.그 후 관심 영역의 좌표를 설정합니다. 주사기 바늘을 천공할 표적 부위로 이동시킵니다. 그런 다음 드릴 비트를 표적 부위 바로 위에 두 공간의 두개골과 45도 각도가 되도록 배치하고 천공을 시작합니다.피질 손상을 방지하기 위해 뇌 속으로 드릴이 들어가지 않도록 주의하십시오. 그 후, 멸균 면봉을 사용하여 구멍에 묻은 혈액을 닦아냅니다. 주사기 팁이 뇌 표면에 바로 닿도록 주사기를 내립니다.DV 좌표를 0으로 설정한 다음, 주사기를 원하는 깊이까지 내립니다. 이제 분당 0.2 µL의 속도로 주입을 시작하십시오. 주입이 완료되면, 잔류 바이러스가 모두 흡수될 수 있도록 약 2분간 기다립니다.그런 다음 주사기를 천천히 들어 올립니다. 면봉을 사용하여 주사 부위의 잔류 액체를 닦아냅니다. 그 후 피부를 봉합하고 정위 고정 장치에서 동물을 제거합니다.마우스가 깰 때까지 가열 패드 위에 두고, 필요 시 추가 진통제를 투여하십시오. 본 실험 과정에서는 정사각형 플라스틱 아레나를 준비합니다. 실험 전 70% ethyl alcohol로 아레나를 세척하십시오.그런 다음 아레나를 바닥에 놓고, 그림자와 눈부심이 최소화되도록 조명을 설정하십시오. 다음으로 마우스가 화면에 잘 보이도록 검출 설정을 조정하십시오. 그 후, 행동 과제를 기록하기 위해 카메라를 켜고, 마우스가 벽을 향하도록 아레나의 전면 중앙 쪽에 배치하십시오.타이머를 5분으로 설정하고 아레나에서 물러나거나 방을 나갑니다. 5분 후, 마우스를 다시 케이지로 옮깁니다. 다음 동물로 넘어가기 전에 70% ethyl alcohol을 사용하여 필드를 철저히 세척하십시오.이제 2L 용량의 투명 버킷에 22°C의 물을 채웁니다. 버킷을 바닥에 놓고 조명을 조절하여 그림자와 눈부심을 최소화하십시오. 트래킹 소프트웨어를 사용하는 경우, 카메라를 버킷 바로 위에 배치하십시오.마우스가 화면에 잘 보이도록 소프트웨어 설정을 조정합니다. 그런 다음 카메라를 켜서 행동 과제를 기록합니다. 마우스의 앞발이 닿도록 물통 중앙에 조심스럽게 놓습니다.먼저 물을 접촉시키고 머리가 잠기지 않도록 합니다. 그 후, 행동 분석 구역에서 벗어나기 전에 타이머를 6분으로 설정합니다. 6분 후에 버킷에서 마우스를 꺼내어 과도한 물기를 닦아낸 뒤 다시 케이지에 넣습니다.치상회(dentate gyrus)에 바이러스가 성공적으로 주입되었음을 보여주는 대표적인 뇌 절편 사진입니다. 이 그림은 대조군 및 실험군 생쥐가 새로운 오픈 필드(open field)의 중앙에서 보낸 시간을 나타냅니다. 실험군 생쥐는 경기장 중앙에서 보낸 시간이 유의미하게 적었으며, 이는 불안 표현형을 나타냅니다. 또한 이 그림은 강제 수영 검사(forced swim test)에서 대조군 및 실험군 생쥐가 부동 상태로 있었던 시간을 보여줍니다.실험군 쥐는 부동 상태로 머문 시간 측면에서 대조군과 유의미한 차이를 보이지 않았습니다. 이 영상을 시청한 후, 시청자는 설치류 행동 평가를 위해 정위 주사법을 사용하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

applying-stereotactic-injection-technique-to-study-genetic-effects-on

Research

연구

JoVE Journal

Behavior

행동

출처: Porlan, E., et al. 신경줄기세포 자율 및 비자율 효과 분석을 위한 성체 마우스 V-SVZ 세포의 안정적이고 효율적인 유전자 변형. J. Vis. 경험. (2016년)이 비디오는 마우스 모델에서 바이러스 운반 치료 유전자의 정위 주입을 통해 심실-뇌실하 영역(V-SVZ)에서 신경 줄기 세포(NSC)의 안정적인 유전자 변형을 보여줍니다. 바이러스는 NSC에 들어가 역전사를 거쳐 게놈에 통합되어 신경치료 응용을 위한 안정적이고 효율적인 유전자 변형을 가능하게 합니다.

마우스 모델에서 안정적인 유전자 변형을 위한 바이러스의 정위 주사

출처: Fricano-Kugler, CJ, et al. 정위 주사를 통한 고역가 CRISPR 레트로 및 렌티바이러스의 설계, 포장 및 전달. J. Vis. 경험. (2016년)이 비디오는 마우스 뇌에서 정밀한 신경 유전자 편집을 위한 정위 바이러스 주입을 보여줍니다. 이 프로토콜은 치상회로의 정확한 바이러스 전달을 보장하여 형광 표지 및 CRISPR 매개 유전자 녹아웃을 가능하게 하여 생체 내에서 신경 회로, 유전자 기능 및 질병 메커니즘을 연구할 수 있습니다.

마우스 뇌에서 표적 신경 유전자 편집을 위한 정위 바이러스 주사

이 문서에서는 마우스의 뇌에 바이러스 벡터를 microinject하고 수집, 멸종 위기 및 회복 단계를 포함하는 에어컨 장소 환경 패러다임에서 테스트하는 방법에 대해 설명합니다.

크레 재조합이 코카인 컨디셔닝 장소 환경에있는 표적 유전자의 역할을 연구하는 표현 바이러스 성 벡터의 정위 미세 주입

여기에서는 신경 줄기세포에 대한 세포 자율 및 비자율적, 틈새 의존적 효과를 별도로 분석할 수 있는 성인 심실-심실하 신경인성 틈새에서 신경 줄기 세포 및/또는 인접한 뇌실막 세포의 장기 유전자 변형을 위한 렌티바이러스 입자의 사용을 기반으로 하는 절차를 설명합니다.

신경의 분석을위한 성인 마우스 V-SVZ에서 세포의 안정적이고 효율적인 유전자 변형 줄기 세포 자율 및 비 자치 효과

이 문서는 GPCR 이종 형성을 요구하는 행동 분석을 테스트 할 마우스 정면 피질로 바이러스 벡터를 주입하는 방법을 설명합니다.

키메라를 구축의 HSV-중재 형질 전환 유전자의 발현은 마우스의 GPCR Heteromers의 행동 기능을 연구하는

우리는 신생아 마우스 두뇌의가에 microinjecting 시 약에 대 한 수 제 머리 고정 장치 stereotaxic 수술의 프로토콜을 설명합니다. 이 기술은 신생아 마우스 두뇌의 특정 영역의 신경 세포에서 유전자 조작...

신생아 마우스 두뇌의 Striatal 세포에서 유전자 조작에 대 한 stereotaxic 수술

이 프로토콜은 생체 뇌 슬라이스에서 광유전학 자극을 사용하여 먼 뇌 영역에서 장거리 입력의 세포 유형 특정 기능적 연결을 식별하는 일련의 방법을 설명합니다.

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신경 정신 장애의 병인에 있는 최근에 발견된 질병 관련 유전자의 역할은 모호하게 남아 있습니다. 자궁 전기 기화 기법에서 수정된 양자간은 뉴런의 큰 인구에서 유전자 전송을 허용하고 사회적 행동에 대한 유전자 발현 변화의 원인 효과의 검사를 허용한다.

자궁 전자기화에서 양자 간을 사용하여 설치류 행동에 대한 유전적 영향을 심문하는 파이프라인

본 프로토콜은 염료 및 동결 절편을 사용하여 바이러스 추적을 수행하기 전에 입체탁 주입 좌표의 검증 단계를 신속하게 처리하기 위한 실용적인 전략을 설명합니다.

Preliminary Validation of Stereotaxic Injection Coordinates via Cryosectioning

마이크로 RNA는 뇌의 구조와 기능에 중요한 역할을한다. 여기에 우리가 과다 발현은 설계 miRNA의 발현 렌티 바이러스의 정위 주사를 사용하여 해마 miRNA의를 적용하는 방법을 설명합니다. 이 방법은을 평가하는 상대적으로 빠른 방법으로 사용할 수...

의 정위 주입 MicroRNA의 발현 마우스 해마 CA1 영역으로 렌티 바이러스 및 행동 결과의 평가

학습하세요 정위 사출 기술을 이용하여 쥐의 특정 뇌 영역에서 유전자 발현을 조절하고 불안 및 우울 관련 행동을 정량적으로 평가하는 방법을. 이 기법은 신경과학 연구에서 유전자-행동 관계를 규명하는 데 활용됩니다.

정위 사출 기술을 적용하는 것은 동물의 행동에 유전 적 영향을 연구하기

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