Name: 3 차원 조직 공학 인간의 식도 점막 모델의 제조, 특성 및 사용 가능성 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-05-18T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 16 s
Description: 배우세요 3D 조직 공학 기법을 사용하여 인간 식도 상피 모델을 제조하고 특성화하는 방법을. 이 모델은 재생의학 및 질병 연구에 활용될 수 있는 유용한 실험 플랫폼을 제공합니다.

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우리는 식도 조직 샘플 및 우리의 작업의지지를 획득 그들의 도움 씨 로저 애크로이드 씨 앤드류 와이 먼 씨 크리스 스토 다드, 셰필드 교육 병원 NHS 재단 트러스트에서 컨설턴트 외과 의사에 감사하고 있습니다. 우리는 모델로 종양 세포 라인을 통합 그의 도움을 Ashraful Haque 씨 감사합니다. 우리는 감사 Bardhan 연구 및 교육 신탁 (브렛)와 요크셔 암 연구 (YCR)에서 보조금이 연구에 대한 재정 지원을 인정합니다.

인간의 식도 세포는 위 또는 식도 수술을받은 환자에서 얻을 수 있습니다. 조직은 연구 목적을 위해 사용될 수 있도록 동의 수득하고, 조직은 적절한 윤리적 승인 (SSREC 165/03, 인간 연구 조직 은행 라이선스 12,179)하에 익명 사용. 인간의 식도 상피 세포의 분리 (1) <ol><li> : 1 비율 층류 조직 문화 후드에서 작업 및 무균 기술을 사용하여, 둘 베코의 수정 이글의 중간 (DMEM)과 3 햄의 F12 혼합하여 상피 세포 배양 배지를 준비 (절 : V). 10 % 추가 (v / v)의 FCS, 10 ng / ml의 상피 세포 성장 인자, 0.4 μg의 / ㎖ 하이드로 코르티손, 1.8 × 10-4 M 아데닌, 5 μg의 / ㎖ 인슐린, 5 μg의 / ㎖ 트랜스페린, 2 × 10-7 M 트리 요오 도티 로닌, 1 × 10 -10 M 콜레라 독소, 2 × 10 -3 M 글루타민, 100 IU / ml의 페니실린, 100 μg의 / ㎖ 스트렙토 마이신, 및 0.625 μg의 / ㎖ 암포 테리 신 B를 </li><li> 표준을 사용하여무균 기법, T75 조직 배양 플라스크에 100 μg의 / ㎖ 스트렙토 마이신 DMEM 11 ㎖, 10 % FCS, 2 × 10-3 M L- 글루타민, 100 IU / ml의 페니실린, 및 0.625 μg의 / ml의 암포 테리 신 B 넣어. 동일한 배지 1 ㎖를 1 × 106 치사량 조사 마우스 3T3 섬유 아세포 (12)를 추가하고, 5 % CO 2의 가습 분위기에서 37 ℃에서 밤새 배양한다. 이 상피 세포의 후속 문화에 대한 피더 레이어를 생성합니다. </li><li> 메스를 사용하고 histopathologist의 권고에 따라, 위 또는 식도 수술을받은 환자에서 얻은 식도 편평 상피 점막의 무병 배경 영역에서 조직의 약 2cm 2 샘플을 해부하다. 멸균 전송 매체의 50 mL의 용기에 실험실에 전송 (PBS 100 IU / ml의 페니실린, 100 μg의 / ㎖ 스트렙토 마이신 및 0.625 μg의 / ml의 암포 테리 신 B)을 실온에서. </li><li> 이 시점에서, 전송에서 티슈를 저장할4 ° C에서 (밤새) 최대 12 시간 동안 매체의 편의를 위해; 그들은 감소 세포 생존을 초래할 그러나 더 이상 저장 기간을 사용하지 마십시오. </li><li> 층류 조직 배양 후드에서 작업 무균 기술을 사용하여, 5 분 동안 70 % 에탄올에 담가 메스 블레이드 살균. 멸균 PBS로 씻어. </li><li> 멸균 페트리 접시에 조직을두고 0.5 cm의 스트립으로 잘라 메스를 사용합니다. 0.1 %의 5 ML을 추가 페트리 접시에 PBS에 트립신 (/ V W), 접시에 뚜껑을 배치하고 37 ℃에서 1 시간 동안 배양한다. </li><li> 트립신을 억제하는 페트리 접시에 조직에 FCS 5 mL를 추가합니다. 스트립 당 1 ~ 2 분 주변 매질로 상피 세포를 제거하는 살균 집게로 조직의 스트립을 잡고 조심스럽게 메스 블레이드와 상피 표면을 긁어. 스크랩 한 조직을 제거하고 따로 설정합니다. 모든 조직 스트립의 과정을 반복합니다. </li><li> 15 mL의 원심 분리 튜브에 상피 세포를 포함하는 배지를 수집원심 분리 (5 분, 200 XG). 상층 액을 붓고 상피 매체의 12 ml의에서 펠렛을 재현 탁 (단계 1.1에서 설명). </li><li> 붓고 단계 1.2에서 제조 한 T75 플라스크에 피더 세포층에서 매체를 폐기. 5 % CO 2의 가습 분위기에서 37 ℃에서 플라스크에 갓 절연 상피 세포를 포함하는 세포 현탁액을 추가 배양 멸균 피펫을 사용한다. </li><li> 24 시간 후 부어도 세포 파편을 포함 배지를 버리고, 신선한 상피 매체의 12 ㎖로 대체합니다. 5 % CO 2의 가습 분위기에서 37 ℃에서 배양을 계속. 식민지는 다음 24-48 시간에 걸쳐 나타날 시작하고 표준 광 현미경 문화 플라스크를 배치하여 볼 수 있습니다. 폐 배지를 붓고 신선한 매체의 동일한 볼륨 모든 2~3일로 교체. </li><li> 플라스크를 80 % 컨 플루, 통로 (13)를 세포에 도달하면. C 분할(1)의 비율의 ELL : 5 모델에서 사용하기 위해 세포 수를 증가한다. 세포를 계대에 24 시간 이전에 상피 세포를 수신 할 각 플라스크에 조사 3T3 세포의 피더 층을 설정하는 단계 1.2를 따릅니다. 참고 : 통로 1 만 4 사이에 아래에 설명 된 식도 모델에서 상피 세포를 사용합니다. </li></ol> 인간의 식도 섬유 아세포 2. 분리 <ol><li> 층류 캐비닛 작업과 멸균 기술을 이용하여, 단계 1.7에 따로 조직을 가지고. 멸균 페트리 접시에 넣고 멸균 메스 블레이드 도마에 의해 미세하게 말하다. (V / W) 솔루션을 콜라와 페트리 접시에 뚜껑을 배치하고 5 % CO 2, 가습 분위기에서 하룻밤 37 ℃에서 부화 0.5 %의 10 ML을 추가합니다. </li><li> 조심스럽게, 15 mL의 원심 분리기 튜브와 원심 분리기 (10 분, 200 XG)에 다이제스트를 전송 부어 상층 액을 버리고 섬유 아세포 배양 배지 (DMEM 10 % FCS 10ml에 펠렛을 재현 탁, 2 × 10-3 M의 L 글루타민 / ㎖ 페니실린 100 IU, 100 μg의 / ml의 스트렙토 마이신, 및 0.625 μg의 / ml의 암포 테리 신 B). </li><li> T75 플라스크에 현탁액을 놓고 5 % CO 2, 가습 분위기에서 37 ° C에서 품어. 24 시간 후 파편을 포함하고 신선한 섬유 아세포 매체의 12 ㎖로 대체 할 매체를 부어. 세포 수를 증가시키기 위해 5 비율 : 그들은 하나의 셀을 분할, 80 % 컨 플루 (13)에 도달 한 후 배양 배지마다 2~3일 및 통로 세포를 교체합니다. 주 : 통로 4와 10 사이 후술 모델에서 섬유 아세포를 사용한다. </li></ol> 드 - cellularized 식도 비계 3. 준비 <ol><li> 식량 생산에 사용되는 갓 도살 랜드 레이스 돼지에서 도살장에서 그대로 돼지의 esophagi를 얻습니다. 하나의 단일 식도는 약 30 별도의 구조에 대한 충분한 발판을 제공 할 것입니다. 참고 : 인해 광범위하고 시간이 공동으로멸균 프로토콜이 필요 nsuming, 그것을 획득하고 한번에 10 esophagi의 최소 처리 통상 가치가있다. </li><li> 즉시 임의의 미생물 오염 부하를 줄이기 위해 5 분 동안 10 % 포비돈 - 요오드 용액을 약 150 ㎖을 함유하는 180 ㎖의 멸균 냄비에 갓 절제 식도를 배치했다. / ㎖ 스트렙토 마이신 200 IU / ml의 페니실린, 200 μg의 및 1.25 μg의 / ml의 암포 테리 신 B를 포함하는 멸균 PBS 약 100 ㎖를 함유하는 제 냄비 식도 전송 <ol><li> 용기에 뚜껑을 교체하고, 실온에서 다시 실험실로 esophagi을 운반 할 것. 두 개 또는 세 개의 esophagi는 자신의 크기에 따라, 각각의 용기에 이송 할 수있다. </li></ol></li><li> 실험실 한번에, 미생물 오염을 최소화하기 위해 무균 기술을 사용하여 층류 후드에서 조직을 처리한다. 70 % 에탄올에 5 분간 침지하고, 멸균 PBS에 세척하여 핀셋, 가위와 메스 블레이드를 소독. </li><li> ES를 처리ophagus 멸균 핀셋을 사용하여. 가위를 사용하여, 길이 방향으로 식도를 오픈. 멸균 PBS 약 100 ㎖을 함유하는 180 ㎖의 멸균 냄비에 식도를 배치하고 이물질을 제거하기 위해 부드럽게 흔들어 조직을 헹군다. </li><li> 자유주의와 70 % 에탄올을 분사하여 코르크 해부 보드를 깨끗하고 건조하게 할 수 있습니다. </li><li> 보드, 점막 표면의 최상부에 식도를 핀, PBS에서 식도를 제거하고 멸균 된 바늘을 사용. 멸균 핀셋 식도의 한쪽 끝에서 점막 표면을 잡고 멀리 보드에서 빼냅니다. 이 기본 점막하에서 점막을 분리합니다. <ol><li> 그리고,이 점막 해부 떨어져 상승 될 수 있도록 진행에 따라 핀을 제거하는, 점막 고유 따라 길이 방향 식도 해부 멸균 메스 블레이드를 사용한다. </li></ol></li><li> 해부 점막을 유지하고 기본 점막하을 폐기합니다. </li><li> 잘라 및 T의 가장 근위부와 원위부 2cm를 폐기각각 7 그 지역에서 점막하 동맥의 큰 번호와 두꺼운 점막 고유 층이있는 한 그는 점막. </li><li> 5cm (2)에 남아있는 조직을 잘라 메스를 사용합니다. 멸균 PBS의 약 150 ㎖를 포함하는 180 ml의 멸균 냄비에 모든 컷 조직을두고 조직을 씻어 부드럽게 교반. 한 번에 둘 이상의 다섯 esophagi 처리하면이 여러 냄비와 세 후속 단계를 사용하는 것이 필요할 수있다. </li><li> 무균 핀셋을 사용하여, 37 ° C에서 72 시간 동안 150 멸균 1 M의 NaCl ㎖, 200 IU / ml의 페니실린, 200 μg의 / ㎖ 스트렙토 마이신 및 1.25 μg의 / ml의 암포 테리 B. 인큐베이션을 함유하는 180 mL의 냄비로 절단 조직을 전송. </li><li> 150 ml의 멸균 PBS를 포함하는 신선한 180 ml의 냄비에 조직을 놓습니다. 상피는 눈에 띄게 기본 조직에서 분리하기 시작합니다. 조심스럽게 돼지 식도에서 분리 상피 멸균 집게를 사용하고 폐기 껍질. <ol><li> 나머지 T를 배치신선한 180 ML의 냄비에 문제 및 멸균 PBS 150 ㎖를 추가합니다. 5 분 세척을 위해 부드럽게 저어. PBS를 붓고 신선한 PBS로 추가 두 번 반복합니다. </li></ol></li><li> 실온에서 24 시간 동안 살균 한 80 %의 400 ㎖ (v / v)의 글리세린을 함유하는 용액 500 ml의 유리 병에 모든 조직을 놓는다. 추가 24 시간 동안 멸균 90 % (V / V) 글리세롤 용액 400ml를 갈아. </li><li> 탈수 및 기저막의 무결성을 유지하면서 조직을 멸균 4 개월 이상 상온에서 살균을 100 % 글리세롤 용액 400 ㎖에 보관. </li></ol> 문화 미디어 4. 생산 <ol><li> 배양 배지에 사용하기 위해 킬레이트 신생아 송아지 혈청을 준비한다. <ol><li> 유리 1 리터 병에 Chelex (100) 100g을 붓고 탈 이온수를 추가합니다. 정확한 부피는 중요하지 않지만 충분한 물 Chelex 분말을 덮도록 첨가되어야한다. 자석 교반기를 추가하고 고압 증기 멸균 (121 ° C의에 의해 소독15 분). </li><li> 병을 식히와 Chelex가 정착. 층류 캐비닛, 여분의 물을 부어 신생아 혈청 (NCS)의 500 mL로 추가하고 4 ℃에서 밤새 교반 둡니다. </li><li> 교반 중지하고 Chelex이 30 분까지 걸릴 수 있습니다, 정착 할 수 있습니다. 층류 캐비닛에 -20 ℃에서 10 ㎖ 분량 씩 Chelex 및 저장을 방해하지 않도록주의하면서, 멸균 피펫을 사용하여 킬레이트 혈청 캔트. </li></ol></li><li> 프로 증식으로 시작하여 프로 differentiative 제제로 끝나는, 층류 캐비닛에 세 가지 다른 미디어를 준비합니다. <ol><li> 1 비율 (V : V), 4 × 10-3 M의 L- 글루타민, 0.5 μg의 / ㎖ 하이드로 코르티손, 1 × 10 -4 M O를 -phosphorylethanolamine, 2 × 복합 미디어를 준비 나는 3 DMEM과 햄 F12 구성 10 -12 M의 트리 요오 도티 로닌, 1.8 × 10 -4 M 아데닌, 1.88 × 10 -3 M 염화칼슘 2, 4 × 10 -12 M 프로게스테론, 10 ㎍ / ㎖의에sulin, 10 μg의 / ㎖ 트랜스페린, 10 NG / ㎖ 셀레늄, 1 × 10 -3 M 에탄올 아민과 0.1 % (v / v)의 킬레이트 NCS. </li><li> 0.1 % (v / v)의 비 킬레이트 NCS와 킬레이트 혈청 교체를 제외하고 복합 매체 나 같은 복합 중간 II를 준비합니다. </li><li> 2 % (v / v)의 비 킬레이트 NCS에 생략 프로게스테론과 증가 혈청을 제외하고 복합 중간 II와 같은 복합 매체 III를 준비합니다. </li></ol></li></ol> 인간의 식도 점막 모델 5. 생산 <ol><li> 멸균 환경을 유지하기 위해 무균 기술을 사용하여, 층류 후드에서 모든 작업을 수행한다. 멸균 PBS로 세척하기 전에 5 분 동안 70 % 에탄올에 담가 모든 도구를 소독. </li><li> 이 요구되기 전에 날, 무 세포 돼지 식도 발판을 재수. 각각의 구조가 준비하는 발판의 한 조각이 필요합니다. <ol><li> 멸균 PBS 100 ㎖을 함유하는 냄비에 돼지 지지체의 조직 장소 충분한 개 재수, 교반하고 10 분 동안 담가. 데카PBS를 NT 및 신선한 PBS로 교체합니다. 모든 글리세롤 흔적의 제거를 보장하기 위해 세척 과정을 다섯 번 반복한다. </li></ol></li><li> 37 ℃에서 하룻밤 DMEM 100 mL에 재수 조직을 배양하여 발판 불임을 테스트합니다. 지지체는 멸균 것으로 가정 배양 종료 시점 배지 색깔 또는 탁도에 아무런 변화가 없다면. 불임이 확인되면, 맨, 6 웰 플레이트에 점막하 측 5cm 2 무 세포 지지체를 배치합니다. </li><li> 각 발판의 중심에 멸균 의료용 스테인레스 스틸 링 (내경 10mm, 외경 20mm)를 놓고 부드럽게 조직과 적절한 밀봉을 보장하기 위해, 멸균 집게를 사용 누르십시오. </li><li> 세포 현탁액을 제조 트립신 EDTA-13을 사용하여 섬유 아세포 수확. 혈구 (14)를 사용하여 세포를 계산합니다. 세포 현탁액 (10 분, 200 XG)를 원심 분리기. appropria으로 세포 펠렛을 재현 탁섬유 아세포 배지의 부피는 TE 용액 당 2.5 × 106 세포의 최종 세포 수를 생성한다. </li><li> 각각의 링에서, 5 × 10 5 인간의 식도 섬유 아 세포를 포함하는 섬유 아세포 매체의 0.2 ml에 추가합니다. 섬유 아세포 배지의 약 2 ㎖로 링의 외부 주위 영역 홍수. 5 % CO 2의 가습 분위기에서 37 ℃에서 인큐베이션. </li><li> 24 시간 후 고리와 섬유 아세포 배지를 제거하고 지지체 완전히 매질에 침지 보장 각 웰에 신선한 아세포 매체의 적어도 5 mL를 추가한다. 5 % CO 2에서 37 ℃에서 1 주간 배양, 매체마다 2~3일 교체 가습 분위기. </li><li> 일주 후 맨 점막 표면을 배치, 층류 홍수 후드에 비계를 포함하는 6 웰 플레이트를 제거 매체를 제거하고 살균 집게를 사용하여 각 발판을 반전. 이 시점은 0 일째로 지칭된다. </li><li> 중앙의 점막 표면에 스틸 링을 배치단계 5.4에서와 같이 조직. </li><li> 트립신 13 상피 세포의 T75 플라스크를 준비합니다. PBS 세척 전에 트립신 EDTA 용액을 첨가 한 후, 각각의 플라스크에 멸균 0.02 %의 2 ㎖ (w / v)의 EDTA 용액을 추가한다. 37 ℃에서 2 분 동안 품어. 첨부 된 상피 세포를 유지하면서 선택적으로 i3T3 세포층을 분리 부드럽게 플라스크를 누릅니다. 참고 : 일반적으로 이미 지난 주 모델에 통합 된 섬유 아세포에 상피 세포와 일치하는 환자에게 실제적인 또는 필요가 없습니다. </li><li> 세포층을 함유 EDTA 용액을 붓고 13 상피 세포 수확 트립신 EDTA 용액을 추가한다. 혈구 (14)를 사용하여 세포를 계산합니다. 세포 현탁액 (10 분, 200 XG)를 원심 분리기. 용액 당 5 × 106 세포의 최종 세포 수를 생산하는 복합 매체 (1)의 적절한 양으로 세포 펠렛을 재현 탁. </li><li> 포함하는 복합 중간 나는 0.2 ML을 추가 1 × 1링 내에서 0 ~ 6 상피 세포. 복합 중간 나는 약 2 mL를 링의 외부 주변 지역 홍수와 5 % CO 2, 가습 분위기에서 37 ° C에서 인큐베이터에 구조를 놓습니다. </li><li> 24 시간 (1 일) 후 링과 매체를 제거하고 신선한 복합 중간 나는 적어도 5 mL를 추가, 비계가 완전히 침수되는 보장하고 인큐베이터로 돌아갑니다. 또 24 시간 (2 일) 후 매체를 제거하고 다시 비계가 완전히 침수 및 인큐베이터로 돌아된다 보장, 복합 매체 II의 적어도 5 ㎖로 대체했다. </li><li> 날 4 곳 멸균 의료용 스테인레스 스틸 메쉬 그리드 신선한 6 웰 플레이트에 (2cm 길이 X 0.5 cm 높이 x 세로 2cm), 구조 당 하나. 강철 격자, 점막 표면 맨의 상단에 구조를 전송하는 멸균 핀셋을 사용합니다. <ol><li> 복합 액체의 아래쪽에 도달하지만, 표면이되도록 충분한 중간 복합 III 추가공기에 노출, 이것은 샘플이 공기 - 액체 계면에서 유지되는 것을 보장한다. 지지체, 웰의 부피 및 스테인레스 그리드의 정확한 높이의 두께에 따라 달라질 필요 매체의 정확한 볼륨. </li></ol></li><li> 실험의 조건에 따라, 10 및 20 일 사이에 (주 24 주 14)에 대한 공기 - 액체 계면에서 합성을 유지한다. 신선한 매체와 복합 매체 III를 교체 모든 2~3일 (월요일, 수요일, 금요일 사용자 친화적 인 정권이다). 주 : 공기 - 액체 계면 (9 일)에서 5 일 후 구조물이 식도 상피의 환경 적 요인의 영향을 실험에 사용하기에 충분히 성숙 식도 상피있다. </li><li> 실험의 끝에, 상기 분석가 대한 상피에서 조직 학적 분석 및 면역 조직 화학 염색 7 또는 추출물 단백질 15 또는 RNA 11,16위한 구조를 해결이다. 필요한 경우 세포 외 신호 전달 분자 (17)의 분석 조건 배지를 유지한다. </li></ol>

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</ol>

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이 원고는 식도 상피시의 환경 스트레스에 대한 노출의 영향을 연구하는 실험 플랫폼으로 사용하기에 적합한, 생물학적으로 중요한 인간 식도 점막 모델의 제조 및 특성을 설명한다. 인간 식도 점막 모델의 성공적인 제조를위한 가장 중요한 단계는 다음과 상피 세포의 대부분이 남아 증식 이미 지지체에이를 파종하기 전에 구별하기 시작되지 않았 음을 보장; 합성을 위해 공기 - 액체 계면을 유지하는 상피의 정확한 성숙을 보장하는 단계; 연장 된 기간 동안 배양 무균 유지. 때문에 세포 분리에 사용할 수 인체 조직의 제한된 양에 직접 발판에 결과적으로 세포 확장 산도 갓 고립 된 세포를 시드하는 하나의 조직 샘플에서 충분한 세포를 얻기 위해 일반적으로 가능하지 않다세포를 표준 2D 세포 배양 조건에서 배양되는 경우 ASE가 필요하다. 이는 세포가이 기간 동안 증식을 유지하는 것이 중요하다. 이것은, 배양액 전체 포화 상태에 도달하도록 적이되...

식도 점막은 결합 조직, 점막 고유 층 위의 층상 편평 상피 세포를 포함하고, 섭취 한 환경 스트레스가 발생하는 최초의 사이트 중 하나입니다. duodenogastro - 식도 역류 식도 선암종으로 진행 위험의 증가와 연관되어 바레트 화생의 발병 기전에 중요한 요소 인 반면,식이 성 독소 노출이 식도 편평 세포 암종의 발달에 관여한다. 식도 암은 영국 남성과 식도 선암에서 8 번째 가장 일반적인 악성 종양이 빠르게 서방 세계 1 증가하고 있습니다. 또한, 약 15 %의 5 년 생존율과 질환 예후 작은 개선이 있었다. 결과적으로이 develo의 식도 상피의 환경 스트레스에 대한 노출의 영향과 잠재적 관련을 조사하는 실험 플랫폼에 대한 필요성이 존재상피화 생 또는 신 생물의 pment. 불멸화 또는 종양 세포주가 시험 관내 연구는 이러한 스트레스에 대한 상피 세포의 반응을 연구 할 수 있지만, 이들은 증식 남아 식도 점막의 최상층에있는 성숙한 상피 세포로 분화하는 데 실패한다. 또한, 이미 종양을받은 세포 라인은 환경 요인 상피 내에 정상 세포의 초기 반응에 관한 제한된 정보를 제공 할 수있다; 이는 치료 적 개입 가능성이 가장 높을 수도 단계이다. 마지막으로, 통상의 세포 배양 시스템은 상피 및 간엽 세포와 생체 내에서의 조직 내에서 발생하는 이들 세포와 주변 매트릭스 사이의 중요한 상호 작용을 잠재적으로 캡처하지 못한다. 동물 모델은 식도 epitheli의 반응을 연구보다 현실적인 미세 환경을 제공 할UM 및 위식도 역류 질환 (2)의 인공 유도를 포함 할 수있다. 그러나이 모델에서 환경 스트레스를 조작하는 것이 더 어려울 수 있습니다 그들은 완전히 인간의 식도 내에서 응답을 대표하지 않을 수 있습니다. 다른 실험 인간 식도 모델은 콜라겐에 일차 세포, 불멸화 세포 또는 종양 세포주를 이용하는이 개발, 또는 콜라겐 / 마트 리겔, 골격 함유 섬유 아세포 3,4- 결합되었다. 그것은이 원고에 기재된 무 세포 식도 지지체보다 이들 골격을 생성 덜 노동 집약적이며, 이들의 Organotypic 모델은 특히 콜라겐 겔에 종양 세포 침투를 용이하게 할 수있다 종양 침윤 5,6의 연구에 유용한 도구를 제공한다 관찰했다. 그러나 이러한 콜라겐 겔 비원 기계적 특성을 가지고 특정 기저막 및 appropriat 포함한 원래 조직의 특정 기능을 결여전자 표면 지형. 콜라겐 겔 지지체 (7)를 사용할 때, 예를 들면, 상피와 지지체 간의 열악한 부착을 초래 셀들의 동작에 영향을 미칠 수있다. 결과적으로 무 세포 돼지 식도 비계 더 생물학적으로 실제와 비계 실험 플랫폼으로서 사용하기에 따라서 더 적절하다는 장점과 함께 개발되었다. 그것은 또한 이들 세포는 다층 상피를 형성하기 때문에, 이러한 헷-1A와 같은 불멸화 식도 상피 세포주보다 식도 제물로 일차 전지를 포함하지만, 계층화 또는 4,7,8 차별화 실패 좋다고 보여왔다 . 따라서,이 프로토콜은 이미 조직 설계 피부와 구강 점막 9,10를 만들기위한 맥닐 실험실에서 사용하는 방법에서 적응 및 기본 인간의 식도 상피 세포와 섬유 아세포와 함께 드 cellularized 돼지 식도 발판을 통합하고있다. 티CK4, CK14, 사료된다 의해 염색 involucrin 있듯이 S 프로토콜은 정상적인 인간 식도 유사한 성숙 성층 상피 세포를 생성한다. 결과 모델은 환경 스트레스에 대한 반응을 연구하는 실험 플랫폼을 제공하고, 구성 요소 (11)에 응답 refluxate 식도 상피 세포에서의 유전자 발현의 변화를 조사하기 위해 효과적으로 사용되어왔다.

<table><tbody><tr><td>Trypsin</td><td>BD Biosciences</td><td>215240</td><td>PBS에서 0.1% w/v 용액을 준비하고 필터를 살균합니다. 37&nbsp; &데그; C 사용 전 수조.</td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Labtech</td><td>LM-D1112</td><td>웜 인 37&nbsp; &데그; 사용 전 C 수욕</td></tr><tr><td>Ham's F12</td><td>Labtech</td><td>LM-H1236</td><td>Warm in 37&nbsp; &데그; C 사용 전 수욕</td></tr><tr><td>태아 송아지 혈청</td><td>Labtech</td><td>FB-1090</td><td></td></tr><tr><td>표피 성장 인자</td><td>R + D 시스템</td><td>236-EG-200</td><td>준비 200 &마이크로; 10 mM 아세트산의 g/ml 재고 용액, 1% FCS</td></tr><tr><td>Hydorcortisone</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H0396</td><td>PBS에 재고 용액을 준비하고 사용 전에 필터를 살균하십시오</td></tr><tr><td>Adenine</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A2786</td><td>PBS에 재고 용액을 준비하고 사용 전에 필터를 살균하십시오</td></tr><tr><td>Insulin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I2767</td><td>0.01&nbsp에 10 mg/ml 용액을 준비하십시오; M HCl, 증류수에 1:10 희석 및 필터 사용 전 살균</td></tr><tr><td>트랜스페린</td><td>시그마-알드리치</td><td>T2036</td><td>증류수 및 필터에 원액 준비 사용 전 살균</td></tr><tr><td>트리요오드티로닌</td><td>시그마-알드리치</td><td>T2752</td><td>증류수 및 필터에 원액 준비 사용 전 살균</td></tr><tr>콜<td>레라 독소 시</td><td>그마-알드리치</td><td>C8052</td><td>물에 원액 준비</td></tr><tr><td>L-글루타민</td><td>시그마-알드리치</td><td>G7513</td><td></td></tr><tr><td>페니실린-스트렙토마이신</td><td>시그마-알드리치</td><td>P0781</td><td></td></tr><tr><td>암포테리신 B</td><td>Gibco</td><td>15290-026</td><td>브랜드 이름 Fungizone</td></tr><tr><td>PBS</td><td>Oxoid</td><td>BR0014</td><td>1정을 100개에 용해; 살균을 위한 ml 물과 오토클레이브</td></tr><tr><td>콜라겐분해효소 A</td><td>Roche</td><td>10103578001</td><td></td></tr><tr><td>포비돈-요오드 용액</td><td>Ecolab</td><td>10830E</td><td>브랜드명 비딘</td></tr><tr><td>에탄올</td><td>시그마-알드리치</td><td>E7023</td><td></td></tr><tr><td>첼렉스 100</td><td>시그마-알드리치</td><td>C7901</td><td></td></tr><tr><td>신생아 송아지 혈청</td><td>Gibco</td><td>26010074</td><td></td></tr><tr><td>프로게스테론</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P8783</td><td>DMEM에 원액을 준비하고 필터를 사용하여 사용 전 살균</td></tr><tr><td>시</td><td>그마-알드리치</td><td>E9508</td><td>DMEM에 원액을 준비하고 필터를 사용하여 사용 전 살균</td></tr><tr><td>Hydrocortisone</td><td>시그마-알드리치</td><td>H0888</td><td>DMEM에 원액을 준비하고 필터를 사용하여 사용 전 살균</td></tr><tr><td>O-phosphorylethanolamine</td><td>시그마-알드리치</td><td>P0503</td><td>DMEM에서 원액을 준비하고 사용 전 필터 살균</td></tr><tr><td>ITS(인슐린, 트랜스페린, 셀레늄)</td><td>Lonza</td><td>17-838Z</td><td>복합 매체 준비에 사용</td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T3924</td><td>Warm in 37&nbsp; &데그; C 사용 전 수조</td></tr><tr><td>EDTA 0.02% 용액</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E8008</td><td>웜 37&nbsp; &데그; C 수조 사용 전</td></tr><tr><td>T75 배양 플라스크</td><td>VWR</td><td>734-2313</td><td></td></tr><tr><td>50ml 원심 분리기 튜브</td><td>Fisher</td><td>11819650</td><td></td></tr><tr><td>15ml 범용 튜브</td><td>SLS</td><td>SLS7504</td><td></td></tr><tr><td>180ml 냄비</td><td>VWR</td><td>216-2603</td><td></td></tr><tr><td>페트리 접시</td><td>SLS</td><td>150350</td><td></td></tr><tr><td>6 웰 플레이트</td><td>VWR</td><td>734-2323</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td>집에서 제조 - 의료 등급 스테인리스 스틸, 내부 직경 10mm, 외부 직경 20mm</td></tr><tr><td>스틸 메시 그리드</td><td></td><td></td><td>집에서 제조 - 시트에는 0.3cm 직경의 구멍이 있으며, 그리드 2&nbsp를 생성하기 위해 굽혀져 있습니다. cm (w) x 2cm (d) x 0.5 cm (h)</td></tr> <tr><td>ki67</td><td>Novocastra</td><td>KI67-MM1-L-CE</td><td>클론 MM1. 1:100에 사용합니다.</td></tr><tr><td>CK4</td><td>Abcam</td><td>ab9004</td><td>클론 6B10. 1:200에 사용합니다.</td></tr><tr><td>CK14</td><td>노보카스트라</td><td>LL002-L-CE</td><td>클론 LL002. 1:200에 사용합니다.</td></tr><tr><td>Involucrin</td><td>Novocastra</td><td>INV</td><td>클론 SY5. 1:100에 사용합니다.</td></tr><tr><td>OE21</td>, <td>시그마-알드리치</td><td>, 96062201</td><td></td></tr>, <tr><td>OE33</td>, <td>시그마-알드리치</td><td>, 96070808</td><td></td></tr>, <tr><td>Het-1A</td>, <td>ATCC-LGC,</td><td>CRL-2692</td><td></td></tr>, <tr><td>마우스, 3T3, 섬유아세포,</td><td>ATCC-LGC</td>, <td>CRL-1658</td>, <td>방사선 조사(60 Gy)에 의해 이전에 성장이 멈췄습니다.</td></tr></tbody></table>

3 차원 조직 공학 인간의 식도 점막 모델의 제조, 특성 및 사용 가능성

Production, Characterization and Potential Uses of a 3D Tissue-engineered Human Esophageal Mucosal Model

식도 선암과 그 전구체, 바렛 화생 모두의 발생 빈도는 서구 세계에 급속하게 증가하고있다. 또한 식도 선암은 일반적으로 최근 몇 년 동안 생존율에 약간의 개선 불량한 예후를 가진다. 이러한 연구하기 어려운 조건이며, 식도 점막의 질환을 연구에 적합한 실험 플랫폼의 부족이었다. 인간 식도 점막의 모델은 종래의 2 차원 세포 배양 시스템과 달리, 생체 내에 존재하는 세포 - 세포 및 세포 - 기질 상호 작용을 정확하게 되풀이하고 정상인과 동일한 성숙 성층 상피를 생산 맥닐 실험실에서 개발 된 식도. 간략하게, 모델은 돼지 유래의 무 세포 골격 식도 내에 성장 비 형질 전환 인간 식도 차 정상 섬유 아세포 및 상피 세포를 이용한다. 이 모델의 면역 조직 화학적 특성CK4, CK14, 사료된다 의해 involucrin 염색은 정상적인 인간의 식도 점막의 조직 학적 적절한 재현부을 보여줍니다. 이 모델은 인간의 식도 점막의 강력한 생물학적 관련 실험 모델을 제공합니다. 그것은 쉽게되는 약물의 유효성과 같은 알코올, 독소, 고온 또는 위식 refluxate 성분으로서 환경 인자에 대한 노출의 영향을 포함한 연구 문제의 수를 조사하기 위해 조작 될 수있다. 모델도 가능 기존의 2 차원 세포 배양, 특히와 달성하지 확장 문화 기간을 촉진, 최대 20 일 동안 관심의 에이전트에 성숙한 상피의 반복 노출의 영향에 대한 연구. 또한, 이러한 식도 종양인지 바렛 화생로부터 유도 된 것과 같은 세포주의 다양한, 종양 침윤 및 약물 responsivene 같은 과정을 조사하기 위해 모델에 통합 될 수있다더 생물학적으로 관련 환경에서 SS.

이 원고 성공적 인간 식도 상피의 배양 3D 모델로,도 1에 개략적 인 형태로 도시 필요한 프로세스를 설명한다. 실험 플랫폼 조직 학적 및 면역 조직 화학적 연구는 정상적인 인간의 식도 편평 점막으로 배양 조직을 비교 수행 된 같은 모델의 적합성을 확인합니다. 기재된 방법에 의해 제조 된 상피 조직 학적 평가는 세포의 더 얇은 (5 내지 10 층이라도 성숙, 다층, 층화 편평 상피 정상적인 인간 식도 (도 2A)에서 관찰되는 것과 유사한 것이다 (도 2b)를 보여준다 10 세포 아부 그들은 표면쪽으로 이동 anuclear 궁극적으로 점진적으로되고,)에 대한 정상적인 식도 (20)와 비교했다. 증식과 디 키 마커의 면역 조직 화학적 특성fferentiation 모델 상피 microanatomy는 정상적인 인간 식도 상피와 유사 함을 입증...

이 원고는 생산, 특성화 및 일반 차 인간의 식도 섬유 아세포와 드 cellularized 돼지 비계 내에서 시드 편평 상피 세포로부터 제조 된 조직 설계 3D 식도 구조의 사용 가능성에 대해 설명합니다. 결과 정상적인 인간 식도 유사한 성숙한 상피 성층의 형성을 입증한다.

The incidence of both esophageal adenocarcinoma and its precursor, Barrett&#8217;s Metaplasia, are rising rapidly in the western world. Furthermore ...

이 절차의 전반적인 목표는 실험 플랫폼으로 사용할 인간 식도 상피의 3D 조직 공학 모델을 제작하는 것입니다. 이는 먼저 인간 식도 조직 샘플에서 정상 인간 식도 섬유아세포와 상피 세포를 분리함으로써 수행됩니다. 두 번째 단계에서는 섬유아세포를 상피가 제거된 무세포 다공성 식도 스캐폴드에 파종하고 7일 동안 배양합니다.다음으로, 스캐폴드를 뒤집고 분리된 인간 식도 상피 세포를 배양액에 추가하여 4일 동안 배양합니다. 마지막 단계에서는 모델을 공기-액체 계면(air liquid interface)으로 옮겨 5일 더 배양함으로써 성숙한 층상 상피가 발달하도록 합니다. 최종적으로, 면역조직화학법을 사용하여 모델 상피 세포에서 발현되는 증식 및 분화의 주요 마커를 특성화합니다.이 기술이 기존의 2D 세포 배양보다 갖는 주요 장점은 세포가 생체 내(in vivo)에서 갖는 세포-세포 및 세포-기질 간의 상호작용을 가능하게 한다는 점입니다. 또한, 이 기술을 사용하여 정상 식도와 유사한 성숙한 층상 편평 상피를 생성할 수 있습니다. 일반적으로 이 방법에 익숙하지 않은 연구자들은 세 가지 이유로 어려움을 겪게 됩니다.첫째, 대부분의 상피세포가 스캐폴드에 포함되기 전에 분화되지 않도록 하는 것이 어려울 수 있습니다. 둘째, 상피가 성숙하는 기간 동안 적절한 공기-액체 계면(air liquid interface)이 제공되도록 주의해야 합니다. 셋째, 배양 기간 전반에 걸쳐 무결성을 유지하는 것이 어려울 수 있습니다.인간 식도 상피 세포를 분리하려면, 수확한 식도 편평 점막 조직을 멸균 페트리 접시에 넣고 에탄올로 멸균한 메스로 조직을 0.5 centimeter 스트립 형태로 자릅니다. 그런 다음 0.1%tryin에 조직을 넣고 37 degrees Celsius에서 배양하며, 한 시간 후 5 milliliters의 FCS를 넣어 소화를 중단시킵니다. 다음으로, 포셉으로 스트립을 고정한 채 메스 날을 사용하여 스트립당 1~2분 동안 상피 표면을 부드럽게 긁어 상피 세포가 주변 배지로 떨어져 나오게 합니다. 모든 스트립을 긁어낸 후, 분리된 상피 세포가 포함된 배지를 15 milliliter 원심 분리 튜브로 옮깁니다.세포를 원심 분리한 후, 상층액을 제거하고 펠릿을 12 milliliters의 상피세포 배지에 재현탁합니다. 그런 다음 피더 세포 배양액을 제거하고 멸균 피펫을 사용하여 상피세포를 피더 세포 위에 도말하여 인간 식도 섬유아세포를 분리합니다. 긁어낸 조직 조각들을 멸균 페트리 접시에 옮긴 후, 마지막으로 메스로 조직을 잘게 다집니다.0.5% Collagenase a 용액 10 milliliters에 조직 조각들을 넣고, 37 °C, 5% CO2 및 습윤 환경에서 하룻밤 동안 소화시킵니다. 다음 날, 소화된 조직을 50 milliliter 원심분리 튜브로 옮겨 세포를 침전시킵니다. 펠릿을 10 milliliters의 섬유아세포 배양 배지로 재현탁합니다.세포 배양 인큐베이터 내 T 75 플라스크에서의 배양 과정입니다. 탈세포화된 돼지 식도 스캐폴드를 준비하기 위해, 먼저 가위와 핀셋을 사용하여 돼지 식도를 세로 방향으로 절개합니다. 그다음, 조직을 헹구는 동안 이물질을 제거하기 위해 100 mL의 멸균 PBS가 담긴 180 mL 멸균 용기에서 10분 동안 부드럽게 흔들어 식도를 세척합니다.코르크 해부판에 70% ethanol을 분무하고, 코르크가 마르면 식도를 점막면이 위로 향하도록 판 위에 놓습니다. 이제 멸균 핀셋을 사용하여 식도 한쪽 끝의 점막 표면을 잡고, 조직을 판에서 들어 올려 점막을 아래쪽의 점막하층으로부터 분리합니다. 그런 다음 멸균 메스 날을 사용하여 고유판을 따라 식도를 세로로 절개하며, 절개가 진행됨에 따라 핀을 제거하여 점막이 들려 올라올 수 있도록 합니다.하층 점막하층을 제거하고 메스를 사용하여 남은 점막을 5cm 정사각형 조각으로 자릅니다. 방금 시연한 것처럼 150mL의 멸균 PBS에서 부드럽게 흔들어 조각들을 세척합니다. 5분 후, 조직을 150mL의 1M 염화나트륨 용액이 들어 있는 180mL 용기에 옮깁니다.37°C에서 항생제를 첨가하여 배양합니다. 72시간 후, 조직을 150 mL의 멸균 PBS로 옮기면 상피세포가 하부 조직으로부터 눈에 띄게 분리되기 시작합니다. 멸균 핀셋과 메스 날을 사용하여 분리되는 상피를 제거하고, 남은 조직을 150 mL의 신선한 멸균 PBS가 담긴 용기에 넣은 뒤 가볍게 흔들어 5분씩 3회 세척합니다. 이제 조직을 최소 4개월 동안 글리세롤에 보관해야 합니다.지지체를 완전히 멸균하기 위해, 글리세롤에서 최소 4개월 동안 멸균된 돼지 지지체 조각들을 재수화하여 식도 점막 모델 준비를 시작합니다. 100 mL의 멸균 PBS에서 10분씩 5회 교반하며, 매 세척 시마다 상층액을 신선한 PBS로 교체합니다.다섯 번째 교반 테스트 후, 37°C에서 100 mL의 DMEM에 하룻밤 동안 배양하여 스캐폴드의 무균 상태를 확인합니다. 다음 날 아침, 스캐폴드를 6-웰 플레이트의 개별 웰에 점막하측이 위로 오도록 옮깁니다. 그런 다음 멸균된 의료용 스테인리스 스틸 링을 각 스캐폴드의 중심에 배치하고, 멸균 집게를 사용하여 링을 가볍게 5회 눌러 조직과 충분히 밀착되었는지 확인합니다.0.2 mL의 섬유아세포 배지가 담긴 다섯 개의 인간 식도 섬유아세포를 각 링의 중앙에 배치합니다. 그런 다음 링 외곽 영역에 최소 2 mL 이상의 섬유아세포 배지를 가득 채우고, 세포 배양 인큐베이터에서 스캐폴드를 배양합니다. 24시간 후, 링을 제거하고 각 웰의 배지를 최소 5 mL의 신선한 섬유아세포 배지로 교체합니다.스캐폴드가 완전히 잠기도록 주의하며 배지를 첨가합니다. 일주일 후, 배지를 제거하고 포셉을 사용하여 스캐폴드의 점막 표면이 위를 향하도록 뒤집습니다. 링을 다시 스캐폴드 위에 배치한 다음, 0.2 milliliters의 혼합 배지에 부유하는 상피 세포를 각 링의 중심에 한 번씩 분주합니다.링 외부 영역을 약 2 mL의 복합 배지 1로 채우고 제작물을 인큐베이터로 옮깁니다. 24시간 후, 링을 제거하고 각 웰의 배지를 최소 5 mL의 신선한 복합 배지 1로 교체하여 스캐폴드가 완전히 잠기도록 합니다. 다시 24시간이 지나면, 배지를 최소 5 mL의 복합 배지 2로 교체합니다.4일 차에, 멸균된 의료용 스테인리스 스틸 메쉬 그리드를 새로운 6-well 플레이트의 웰에 배치하고, 제작물을 그리드 위에 점막면이 위를 향하도록 옮깁니다. 마지막으로, 표면은 공기에 노출시키면서 composite medium 3을 composite 하단까지 닿을 정도로 충분히 추가하여 샘플이 공기-액체 계면(air-liquid interface) 상태로 유지되도록 합니다. 이 과정에서 가장 까다로운 부분은 공기-액체 계면을 설정하는 것입니다.파이펫 팁이 액체에 잠겼는지 확인하는 것이 더 쉽기 때문에, 그리드가 멸균 파이펫 팁과 액체로 연결되어 있는지 명확하지 않은 경우 이를 확인하십시오. 또는 플레이트를 부드럽게 흔들어 액체가 움직일 때 더 잘 보이는 것을 이용하여 그리드에 액체가 있는지, 그리고 샘플이 덮여 있지 않은지 확인하십시오. 이를 통해 논리적으로 평가한 상피 조직은 성숙한 다층 편평 상피를 나타내며, 이는 정상 인간 식도에서 관찰되는 것과 유사하지만 더 얇으며, 세포가 표면으로 이동함에 따라 점진적으로 더 납작해지고 최종적으로는 핵이 없는 형태가 됩니다.증식 및 분화의 핵심 마커들에 대한 면역조직화학적 특성 분석 결과, 모델 상피의 미세해부학적 구조가 정상 인간 식도 상피의 구조와 유사함을 확인하였습니다. 예를 들어, 천연 식도와 모델 상피 모두에서 유사한 cytokeratin 14 발현이 관찰되었으며, 염색은 기저층의 세포들에 국한되어 나타났습니다. 본 모델은 일차 상피 세포를 암세포로 대체함으로써 종양 세포를 포함하도록 성공적으로 수정되었으며, 이는 해당 모델의 유연성을 입증합니다.예를 들어, 편평세포암종 세포는 구조체 상에서 명확한 노란색 영역으로 보이는 상피를 형성하며, 상피 내에 큰 틈새가 관찰되는데 이는 기능 이상이 있는 세포 접착 분자의 존재를 반영하는 것으로 보입니다. 모델 내에 식도 선암종 세포가 포함되면 육안으로 스캐폴드의 두께가 얇아지는 것으로 보이는 상당한 양의 스캐폴드 분해가 일어납니다. 공기-액체 계면(air liquid interface)에서 2주간 배양한 후, H&E 분석을 통해 세포 하단 영역의 스캐폴드 두께가 확연히 감소했음을 확인하였습니다. 이 절차 이후, 동일한 조직에 Northern blotting 또는 Western blotting과 같은 다른 유전자 발현 분석 방법을 적용하여 '상피가 환경적 스트레스에 어떻게 반응하는가?'와 같은 질문에 대한 답을 얻을 수 있습니다. 따라서 이는 개발 이후 더 심도 있는 추가 연구를 수행하는 데 매우 가치 있는 자원이 됩니다.이 기술은 바렛 식도(Barrett's Metaplasia)에 관심이 있는 연구자들이 특정 역류 성분으로의 노출이 정상 인간 식도의 유전자 발현에 미치는 영향을 연구할 수 있는 길을 열어주었습니다.

production-characterization-potential-uses-3d-tissue-engineered-human

Research

연구

JoVE Journal

Bioengineering

생명공학

이 비디오에서는 조직 공학 응용 분야를 위해 생화학적 구조와 구성이 보존된 탈세포화된 돼지 식도 골격을 준비하는 방법을 보여줍니다.

Decellularized Porcine Esophageal Scaffold Preparation: A Technique: A Techniques to Generate Acellular Scaffold from a Pig Esophagus (탈세포화된 돼지 식도 골격 준비: 돼지 식도에서 무세포 골격을 생성하는 기술)

이 비디오는 탈세포화된 돼지 골격 내에서 1차 인간 식도 섬유아세포와 편평 상피 세포를 공동 배양하여 인간 유기형 식도 구조를 생성하는 체외 배양 기술에 대해 설명합니다. 이러한 3D 배양 모델은 생체 내 조직 모델의 기능과 생리학을 모방합니다.

식도 3D 뗏목 배양 모델: 인간 식도 점막 모델을 생성하는 체외 배양 기술

테스트 시스템으로 인간의 3D 종양 조직을 만들 수있는 방법이 설명되어 있습니다. 이러한 기술은 decellularized 생물 혈관을 비계 (BioVaSc), 인간의 기본 세포와 흐름 생물 반응기의 동적 조건에서뿐만 아니라 정적에서 배양 할 수있는 종양 세포 라인을 기반으로합니다.

인간의 3 차원의 조직 공학<em&gt; 시험관</em&gt; 종양 테스트 시스템

3 차원 (3-D) 환경에서 성장하는 세포는 2-D 환경 (예 : 플라스크 또는 종) 세포 배양에 비해 현저한 개선을 나타낸다. 여기에서 우리는 회전 벽 혈관 (RWV) 생물 반응기에서 제공하는 미세 중력에서 배양 인간의 장 점막의 다세포 3 차원의 Organotypic 모델의 개발을 설명합니다.

인간의 장 점막의 다세포 3 차원의 Organotypic 모델의 개발은 미세 중력 하에서 성장

조건부 재 프로그래밍을 이용하여 인간의 소아 식도 상피 세포의 확장 결함이나 부상을 치료 및 치료 심사 분석을위한 저수지 역할을하는자가 이식을 위해 식도 구조 엔지니어링에 이용 될 수있는 셀의 환자 별 인구와 수사관을 제공합니다.

조직 공학 및 질병 조사에있는 사용을위한 소아 인간의 식도 상피 세포의 조건부 재 프로그래밍

식도 재건은 도전적인 절차이며, 식도 점막과 근육의 재생을 가능하게하고 인공 이식으로 이식 할 수있는 조직 공학 식도의 개발이 필요합니다. 여기에서는 스캐폴드 제조, 생물 반응기 재배 및 다양한 수술 기법을 포함한 인공 식도를 생성하는 프로토콜을 제시합니다.

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오가노이드-섬유아세포 공동배양은 생체 내 줄기세포 틈새를 연구하기 위한 모델을 제공한다. 여기서, 식도 오가노이드-섬유아세포 공동배양을 위한 프로토콜이 기재되어 있다. 또한 전체 마운트 이미징을 사용하여 섬유아세포-오가노이드 상호작용을 시각화합니다.

Functional Characterization and Visualization of Espacageal Fibroblasts using organoid co-cultures (오가노이드 공동 배양을 이용한 식도 섬유아세포의 기능적 특성 분석 및 시각화)

여기서는 기본 3차원(3D) 장 세포주 모델 시스템과 고정 장 등가물의 광학 현미경 평가를 위한 파라핀 임베딩 프로토콜을 구성하는 방법을 설명합니다. 선택한 단백질의 염색을 통해 단일 실험에서 여러 시각적 파라미터를 분석하여 전임상 약물 스크리닝 연구에 사용할 수 있습니다.

면역 성분이 있는 기본 3차원(3D) 장 모델 시스템

이 연구는 새로운 κ-carrageenan 서브 마이크로겔 현탁액 수조를 소개하여 놀라운 가역적 재밍-언재밍 전이 특성을 보여줍니다. 이러한 특성은 임베디드 3D 바이오프린팅에서 생체 모방 조직 및 장기를 구성하는 데 기여합니다. 고해상도와 세포 성장으로 심장/식도 유사 조직의 성공적인 프린팅은 고품질 바이오프린팅 및 조직 공학 응용 분야를 보여줍니다.

κ-Carrageenan Sub-Microgel Medium을 사용한 조직 유사 구조의 임베디드 바이오프린팅

용융 전기방사 쓰기(MEW), 폴리카프로락톤(PCL) 스캐폴드 및 피브린 하이드로겔을 hiPSC 유래 심근세포 및 섬유아세포와 결합한 3D 심근 조직을 생성하기 위해 재현 가능한 방법이 제시됩니다. 이 기술은 스캐폴드 아키텍처를 정밀하게 제어하며 전임상 약물 테스트 및 심장 질환 모델링에 적용할 수 있습니다.

폴리카프로락톤 골격 및 hiPSC 유래 심장 세포의 용융 전기방사 쓰기를 사용한 3D 인간 심근 조직 생성

배우세요 3D 조직 공학 기법을 사용하여 인간 식도 상피 모델을 제조하고 특성화하는 방법을. 이 모델은 재생의학 및 질병 연구에 활용될 수 있는 유용한 실험 플랫폼을 제공합니다.

3 차원 조직 공학 인간의 식도 점막 모델의 제조, 특성 및 사용 가능성

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