Name: 효능 평가 H. 파이로리 단백질 HP-NAP (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-05-29T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 12 s
Description: 배우세요 방광암 정위 이종이식 마우스 모델에서 HP-NAP 단백질의 항종양 효능을 평가하는 방법을. 이 기법은 종양 주사와 치료제 전달을 포함하며, 조직학적 분석으로 치료 효과를 검증합니다.

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이 작품은 Associazione Italiana의 당 라 Ricerca 술 Cancro, 대학의 이탈리아어 연구부, 인쇄용 프로젝트와 PROGETTI 디 Ricerca 디 아테네 오, 부여 N ° CPDA137871, Fondazione Cariplo에 의해 지원되었다, N은 MDB에 2011-0485을 ° 및 Finanziamento 지오반니에 의해 부여 가이아 Codolo에 Studiosi, 파도바 대학.

동물 처리를위한 모든 절차는 건강의 이탈리아 교육부 (DM 2,011분의 204-B)에 의해 승인되었습니다. 1. 동물 <ol><li> microisolation 필터를 개별적으로 환기 케이지 연령 8 주에 C57BL6 / J 여성 쥐를 성장. 참고 : 자신의 외부 URO-생식기 장치의 해부학 적 형태가 남성에 비해 카테터 쉽게 렌더링하기 때문에 여성이 바람직하다. </li></ol> 2. 세포 배양 <ol><li> 가습 된 5 % CO 2에서 37 ° C에서 10 %의 열 - 불 활성화 된 소 태아 혈청 및 50 μg의 / ㎖ 젠타 마이신으로 보충 된 RPMI 1640 배지에서 마우스 urothelial 암종 세포주 MB49을 유지한다. </li><li> 80 %의 합류에 T-75 플라스크에 MB49 세포를 성장. 를 Trypsinize 0.5 × 105에서 재현 탁 - 마우스에 이식하기 전에 PBS 150 μL 당 0.5 × 10 6 세포. </li></ol> 3. 방광 내 종양 임플란트 <ol><li> (각각 33 ㎎ / ㎏ 및 20 ㎎ / ㎏)의 마취제 zoletil xylor과의 혼합을 사​​용하여 마우스를 마취, 복강 내 주사. </li><li> 앙와위에서 동물을 놓고 스카치 테이프로 패드에 뒷다리를 해결. 앞발을 충분히 잘 표시하고 카테터의 삽입을 위해 용이하게 액세스 가능한 요도를 렌더링하기 위해 분리되어야한다. </li><li> 참고 : 카테터를 들어, 24 G 소아 정맥 카테터는 8-10주 된 쥐에 적합합니다. 카테터의 선택은 요도 벽과 카테터 사이의 액 누설을 방지하기 위해 매우 중요하다. 큰 구멍 카테터는 큰 이상 마우스를 사용해야합니다. </li><li> 작은 집게를 사용하여, 요도의 외부 부분 중 하나 가장자리를 끼와 마우스의 &quot;머리 끝&quot;으로 아주 조심스럽게 비틀. 이 작업은 요도를 노출합니다. </li><li> 45 °의 각도로 요도에서 후자를 카테터의 내부 바늘을 제거하고 삽입 약간 지향마우스의 &quot;꼬리 끝&quot;으로. 카테터의 입구를 강요하지 마십시오 그 내부에 미끄러까지 요도 저항의 경우에는, 단지 매우 부드럽게 카테터 트위스트. 카테터의 약 0.5-0.8 cm가 요도에있을 때, 신중 마우스의 꼬리에 카테터를 병렬 배치하고 완전히 삽입. </li><li> 카테터 삽입되어야하는 바늘의 1 mL의 주사기를 이용하여, 멸균 PBS의 200-300 μl를 주입하여 잔류 뇨로부터 방광을 씻어 방광에서 모든 액체를 흡인. </li><li> 참고 : PBS를 주입하면 방광이 채워하고 붓기가 쥐의 뒷다리 사이에 볼 수 있습니다; 이 카테터가 올바른지 확인한다. 대부분 카테터 주입량을 계산할 때 고려되어야 데드 볼륨을 갖는다. </li><li> 1 mL의 멸균 주사기를 사용하여, 0.1 N의 HCl 200 μl를 주입. 전체 벽을 레코딩하기 위해 방광을 입력합니다. 10 초 후, 모든 산을 제거하고 즉시 neutrali멸균 주사기와 0.1 N NaOH를 200 μl를 주입하여 ZE. 셀의 가장 높은 숫자 (0.5 × 106)의 주입시, 산성화 단계는 필요하지 않다. </li><li> 기음 모든 잔류 액 즉시 멸균 PBS 300 μL와 공동을 세척. </li><li> 방광 - (0.5 × 106의 범위는 0.5 × 10 5) 흡인 방광을 비우고, MB49 및 세포를 함유하는 PBS 150 μl를 주입. 세포의 누설을 방지하기 위해 카테터에 조립 주사기를 남겨. 이 스카치 테이프 패드를 고정하여 주사기를 고정하는 것이 좋다. </li><li> 1 시간 후, 부드럽게로부터 요도 카테터를 추출하고 깨어까지 백열등, 케이지에서 마우스를 배치 이것은 보통 치료 종료 후의 1 ~ 2 시간이 발생한다. </li></ol> HP-NAP 4. 방광 내 배달 <ol><li> 주 : 셀 점안 후 최소 3 일, 그것은 시작하는 것이 가능하다치료. </li><li> 단계 3.1-3.4에 설명 된대로 카테 테르를 꽂다. 이 단계에서, 그것은 HCl로 방광 벽을 구울 필요가 없습니다. </li><li> 1 ML의 주사기를 사용하여 멸균 PBS의 200 ~ 300 μl를 주입하여 잔류 소변에서 방광 세척과 방광의 모든 액체를 대기음. </li><li> 방광에 150 μL PBS 당 HP-NAP의 50 μg의를 주입한다. 단백질 용액의 누출을 방지하는 카테터에 부착 된 주사기를 남겨. 스카치 테이프로 패드에 고정하여 주사기를 고정합니다. </li><li> 그들이 깨어 때까지, 백열 램프에서 1 시간 후, 부드럽게 요도에서 카테터를 추출하고 새장에 마우스를 놓습니다. </li></ol> 5. 종양의 Explants 및 조직 학적 분석 <ol><li> 처리의 끝에서, 동물을 희생 누운 위치에 배치하고 스카치 테이프 패드를 고정 뒷다리. </li><li> 외과 용 메스를 사용하여, 피부를 통해 약 1.52 cm 긴 수직 절개를복막 바로 마우스의 &quot;헤드 엔드&quot;외부 생식기 위에서 시작. 방광 손상의 위험을 최소화하기 위해, 절삭 깊이에 특히주의. </li><li> 방광은 절단의 중앙 왼쪽에 배치되고 종양 어두운 핑크 / 바이올렛 질량으로 표시됩니다. 그 절제시, 조직 학적 새장에 전체 방광을 배치하고 파라핀에 삽입하기 전에 10 % 포르말린에 고정합니다. </li><li> 조직 학적 및 면역 조직 화학적 분석을 위해, 표준 마이크로톰을 이용하여 방광 (46 μm의 두께)의 시리얼 섹션을 준비합니다. </li><li> 헤 마톡 실린 / 에오신으로 섹션 얼룩과 종양 크기 (D XD는 2), 컴퓨터 보조 화상 분석기를 사용 단면적 당 괴사의 비율을 결정하는 계산을 진행. </li><li> 용기 카운트, immunoperoxidase 표준 기술을 이용하여, 내피 세포 마커 CD31 / PECAM에 대한 부분을 염색하여 진행. 섹션을 스캔가장 높은 혈관 밀도의 영역을 식별하기위한 저전력 (× 4)를 t. 이 지역 내에서 높은 전력 (20 ×)에서 다섯 별도의 임의의 필드에서 개별 미세 혈관을 계산합니다. </li></ol>

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<li>Miyazaki, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preconditioning+methods+influence+tumor+property+in+an+orthotopic+bladder+urothelial+carcinoma+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Clin+Oncol%22%5BJournal%5D)">Preconditioning methods influence tumor property in an orthotopic bladder urothelial carcinoma rat model.</a> Mol Clin Oncol. 2, 65-70 (2014).</li>
<li>Horiguchi, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishment+of+orthotopic+mouse+superficial+bladder+tumor+model+for+studies+on+intravesical+treatments%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Cell%22%5BJournal%5D)">Establishment of orthotopic mouse superficial bladder tumor model for studies on intravesical treatments.</a> Hum Cell. 21, 57-63 (2008).</li>
</ol>

저자는 그들이 더 경쟁 재정적 이익이 없다는 것을 선언합니다.

암 치료에서의 진보의 대부분은 임상 시험을 시작하기 전에 동물 모델에서 시험을 요구한다. 생체 내 종양 생물학을 연구 동물 모델을 활용 가능성이 다른 치료 적 접근 방식을 평가할 수있는 암 발병 조사 연구를위한 중요한 도구를 나타낸다. 동 소성 모델은 금본위 제 14 ~ 15을 유지, 모두 때문에 종양 모델을 설정하고 할 수 세포주의 거대한 양의가 자연적으로 발생하는 종양 (16)의 환경을 모방하기 때문이다. 여기에 기술 된 바와 같이, 후자는 xenoimplants를 거쳐 면역 결핍 마우스에서 가능하지 않기 때문에 또한, 동계 마우스에서 암의 동소 모델을 설정하는, 면역 요법에 기초하여 새로운 치료 전략을 조사하는 목적으로 연구의 경우에 특히 적합하다. 이 프로토콜에 묘사 된 방법은 T를 설명종양 세포의 접종 및 방광 공동 내로 치료제의 투여를 모두 허용 암컷 마우스 ...

방광암 USA 1 거의 75,000 매년 새로운 사례로, 비뇨 생식 관의 가장 흔한 암이다. 재발의 높은 비율은 방광암 치료하는 비싼 암 중 하나를 만드는 평생 추적 관찰을 필요로한다. 고급 NMIBC의 황금 표준 치료는 BCG와 방광 면역 다음, 트랜스 요도 절제술이다. BCG의 항 종양 활성의 정확한 메카니즘은 완전히 밝혀지지 그대로지만, 그것은 T 헬퍼 (토륨) (1) 및 세포 독성 T (TC) 한 세포가 풍부한 세포 매개 면역 반응의 활성화에 중요한 것으로 받아 들여 이 요법의 성공. BCG는 NMIBC위한 선택의 처리는 남아 있다는 사실에도 불구하고, 치료에 반응하지 않는 환자의 높은 비율; 또한, 부작용의 수를 일으킬 수있다 : 처리 된 종양의 약 70 %의 근육 침습적 형태 ~ 15 %의 진행을 일정 시간 후 재발 및질병. BCG 치료와 관련된 다른 부작용은 배뇨 장애, 방광염, 신장 감염 3-6을 포함한다. 신규 한 치료 전략의 개발은 초기 시험 관내 평가 다음, 고려 전임상 모델을 사용한다; 이것은 누구의 미세 크게 치료에 자신의 개발 및 응답에 영향을 미칠 수있는 종양에 특히 관련이있다. 지난 10 년간, 우리는 HP-NAP, 헬리코박터 파일로리 균에 의해 생성 된 단백질의 면역 변조 활동의 여러 측면을 언급 한 초기 다형 핵 세포 (백혈구) (7)의 내피 부착을 촉진 할 수있는 것으로 확인. 구조적으로, HP-NAP는 공복 상태 (DPS) 가족 (8)에서 DNA를 보호하는 단백질에 속하고 dodecameric 쉘에 배치 (12)와 동일한 서브 유닛으로 구성되어 있습니다. 우리는 HP-NAP가 있음을 증명하고있다T의 분화를 구동 할 책임 강력한 면역 조절 활성을 갖는 수신자 같은 수용체 (TLR) 2 효능 제는 시험 관내 및 생체 내 9-10 모두에서, 한 Th1 표현형으로 림프구. 이 활동의 미덕에서, HP-NAP는 알레르기 성 천식 (11)의 쥐 모델에서 더 유리한받은 Th1 반응에 TH2 면역 반응을 리디렉션 할 수 있습니다. HP-NAP의받은 Th1 종속 항 종양 가능성을 평가하기 위해 BCG 투여의 영향을 평가하기위한 O&#39;Donnel 동료 (12)에 의해 수년 전에 개발 방광암의 마우스 모델을 이용했다. 이 프로토콜로, 우리는 HP-NAP는 방광암에 대한 강력한 항 종양 가능성을 가지고 및 HP-NAP 관리의 효능 (인터페론을 생산 모두받은 Th1과에 T 림프구의 종양 및 지역 림프절 내에서 상당한 축적을 평행을 입증 IFN)은 13 -γ </&gt; SUP. HP-NAP-처리 된 마우스로부터 분리 된 종양을 더 괴사 미처리 대조 미만 혈관 신생을 나타내었다. 본 보고서는 동물의 준비, 그들의 요도 카테터, 방광 점막 세포의 부착을 위해 필요한 화학적 연소 및 종양 세포의 주입을 자세하게, stepbystep으로 프로토콜을 제공한다. 또한 방광암의 치료를 위해 개발 된 임의의 치료제의 원형으로 간주 할 수있는 HP-NAP의 국소 투여를 기술한다. 제어 및 HP-NAP 처리 된 동물로부터 분리 된 종양을 비교하여 얻은 증거는 단지 HP-NAP 방광 암 면역 요법을위한 좋은 후보뿐만 아니라 셋업 실험의 전반적인 효율성이 될 수 있다는 사실을 강조한다.

<table><tbody><tr><td colspan="4">재료</td></tr><tr><td>C57BL/6J 암컷 마우스</td><td>Harlan Italy (Udine, Italy)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>MB49 Cells</td><td></td><td></td><td>Obtained from Prof. O'Donnel, University of Iowa Carver College of Medicine, Iowa,</td></tr><tr>USA<td>RPMI</td><td>Sigma-Aldrich (St. Louis, Missouri, USA)</td><td>R8758</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F7524</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D1408</td><td>10X, apyrogenic water</td></tr><tr><td>Flask</td><td>Becton Dickinson (Franklin Lakes, New Jersey, USA)</td><td>353135</td><td></td></tr><tr><td>주사기 1ml</td><td>Becton Dickinson</td><td>301358</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin</td><td>Life Technologies (Waltham, Massachusetts, USA)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gentamycin</td><td>Life Technologies</td><td>15710-049</td><td></td></tr><tr><td>Xilor</td><td>Bio 98 s.r.l. (밀라노, 이탈리아)</td><td></td><td>2% 자일라진</td></tr><tr><td>졸레틸</td><td>비르박(카로스, 프랑스)</td><td>359713301992</td><td>5% 졸라제팜 + 5% 틸레타민</td></tr><tr><td>24G 카테터</td><td>테루모(로마, 이탈리아)</td><td>SR+DM2419PX</td><td></td></tr><tr><td>HCl</td><td>Carlo Erba 시약(밀라노, 이탈리아)</td><td>403871</td><td>액상</td></tr><tr><td>NaOH</td><td>JT 베이커(미국 펜실베니아 센터 밸리)</td><td>10095011</td><td>분말</td></tr><tr><td colspan="4">장비</td></tr><tr><td>외과용 메스</td><td>Albion Surgical Limited (Sheffield, England)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microtome</td><td>Leica Microsystem ( Wetzlar, Germany)</td><td>RM2235</td><td></td></tr><tr><td>Microscope Slides</td><td>VWR International (Radnor, Pennsylvania, USA)</td><td>631-0108</td><td></td></tr><tr><td>Image Analyzer</td><td>Zeiss (Jena, Germany)</td><td>Cyres System</td><td></td></tr></tbody></table>

효능 평가<em&gt; h. 파이로리</em동소 이식 쥐 모델에서 방광암의 치료를위한 치료 도구로&gt; 단백질 hp-nap

Evaluation of the Efficacy of the H. pylori Protein HP-NAP as a Therapeutic Tool for Treatment of Bladder Cancer in an Orthotopic Murine Model

방광암은 비뇨생식관에서 가장 흔한 악성 종양 중 하나입니다. 바실러스 칼메트-게린(BCG)의 방광 내 주사는 고급 비근육 침습성 방광암(NMIBC)에 대한 표준 치료법입니다. 그러나 치료 관련 부작용이 관련성이 있기 때문에 편익/부작용 비율이 더 나은 새로운 생물학적 반응 조절제가 필요합니다.
종양 미세환경은 종양 발달과 치료 효능 모두에 영향을 미칠 수 있습니다. 좋은 모델을 얻기 위해서는 암이 발생하는 기관에 종양 세포를 이식하는 것이 바람직합니다.
이 프로토콜에서는 암컷 마우스의 방광강에 종양을 형성하고 이후 치료제를 전달하는 방법을 설명합니다. 후자는 Helicobacter pylori 호중구 활성화 단백질(HP-NAP)을 사용하여 예시됩니다. 점막을 화학적으로 촬영한 후 요도 카테터 삽입을 통해 마우스 요로상피암 세포주 MB49를 주입하면 세포가 방광 점막에 부착할 수 있습니다. 세포의 초기 증식을 허용하는 데 필요한 일정 기간이 지난 후 마우스는 HP-NAP로 치료하고 카테터 삽입을 통해 다시 투여합니다. HP-NAP의 항종양 활성은 차량 및 HP-NAP 투여된 동물 간의 종양 부피, 괴사 정도 및 혈관화 정도를 비교하여 평가됩니다.

도 1은 카테터 기법을 나타낸 것이다; 마우스는 카테터 0.5 × 10 6 MB49 세포를 주입한다. HP-NAP와 치료는 방광 벽에 ​​부착하고 증식 할 수 있도록하기 위해 3 일 종양 세포의 주입 후 시작된다. 대조군에 속한 모든 동물들은 종양의 개발; 그들 중 일부는 의한 요도의 폐색에 13 일의 기간이 종료하기 전에 다이있다. HP-NAP와 첫번째 주입 후에, 동물은 네 주사, 총 3 일마다 처리된다. 실험의 끝에, 열세 일에, 동물을 희생하고 블래 조직학 및 면역 조직 화학 분석을 위해 수집 하였다. 도 2a에 도시 한 바와 같이, HP-NAP - 처리 된 마우스에서 방광 내 종양의 부피는 830 ± 1 대 (220 ± 62mm 3 비히클 - 처리 된 마우스의 종양보다 훨씬 작80mm 3). <p class="jove_cont...

여기에서는 박테리아 단백질 HP-NAP의 항종양 효능을 평가하기 위해 정소성 방광 종양의 syngeneic mouse model을 설정하는 방법을 설명합니다.

효능 평가<em&gt; H. 파이로리</em동소 이식 쥐 모델에서 방광암의 치료를위한 치료 도구로&gt; 단백질 HP-NAP

Bladder cancer is one of the most common malignancies of the urogenital tract. Intravesical injection of Bacillus Calmette-Gu&#233;rin (BCG) is the gold ...

이 절차의 전반적인 목표는 암컷 생쥐의 방광강 내에 종양을 형성하고, 이후 치료제를 전달하는 것입니다. 이는 먼저 배양된 종양 세포를 수확하여 PBS에 재현탁함으로써 수행됩니다. 그다음 생쥐에게 카테터를 삽입하고 종양 세포를 방광강 내로 주입합니다.종양 이식 3일 후 치료제를 마우스에 주입하며, 총 13일 동안 3일마다 주입을 반복합니다. 마지막으로 방광을 적출하여 조직학적 분석을 수행합니다. 최종적으로 주입된 치료제의 효능을 검증하기 위해 조직학적 분석 및 면역 조직 화학 분석을 이용합니다.복강 내 또는 피하 종양 모델과 같은 기존 방법과 비교하여 이 기술의 주요 장점은 정위 모델(orthotopic model)이 종양의 자연 발생 환경을 모방한다는 점입니다. C 57 BL six J 암컷 생쥐를 8주령까지 키운 후, 텍스트 프로토콜에 따라 FBS와 Gentamycin이 보충된 RPMI 1640 배지에서 MB 49 세포를 80% 합류도(confluence)까지 배양합니다. T 75 플라스크에서 세포를 트립신 처리한 후, Zola, te 및 Xor를 복강 내로 주사하여 생쥐를 마취한 다음, PBS 150 µL당 0.5 × 10⁵ ~ 0.5 × 10⁶ 개의 세포 농도로 재현탁합니다.동물을 패드 위에 배측으로 눕히고 테이프를 사용하여 뒷다리를 패드에 고정하며, 이때 카테터를 삽입할 수 있도록 발이 충분히 벌어지도록 합니다. 소형 니퍼로 요도의 외부 부분 한쪽 끝을 집어 생쥐의 머리 방향으로 살짝 비틉니다. 이렇게 하면 요도구가 노출됩니다. 카테터의 내부 바늘을 제거하고 요도에 45도 각도로, 생쥐의 꼬리 방향으로 약간 기울여 조심스럽게 삽입합니다.카테터를 강제로 밀어 넣지 말고, 저항이 느껴지면 부드럽게 회전시키십시오. 카테터의 약 0.5에서 0.8 cm가 요도에 삽입되었을 때, 카테터를 마우스의 꼬리와 평행하게 조심스럽게 배치하여 완전히 삽입하십시오. 200에서 300 µL의 멸균 PBS가 담긴 1 mL 시린지를 카테터에 연결하여 방광 내의 잔뇨를 세척한 후, 방광 내의 모든 액체를 흡인하십시오.다음으로, 멸균된 1 mL 주사기를 사용하여 0.1 N HCl 200 µL를 주입합니다. 방광 전체 벽을 소작하기 위해 방광을 채웁니다. 10초 후, 모든 산성 용액을 제거하고 즉시 0.1 N NaOH 200 µL를 주입하여 중화합니다.그 다음 잔여 액체를 모두 흡입하고, 즉시 300 µL의 멸균 PBS를 사용하여 강내를

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Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

마우스 방광 벽 주입은 orthotopically 방광 줄기 세포와 암 생물학을 연구하는 유용한 방법입니다. 이 섬세한 microsurgical 방법은 신중 기술과 연습 마스터하실 수 있습니다.

마우스 블레더 월 주입

방광 종양은 catheterization, 지역 소작하고, 화상 사이트에 암종 세포의 후속 유착을 통해 법으로서 방식으로 여성의 생쥐에 설립되었습니다.

Murine 방광 암의 Orthotopic 모델

초음파와 발광 생물 이미징에 의한 intravesically 전달 saRNA 및 모니터링 종양 성장의 antitumor 효과를 평가하는 orthotopic 방광 종양 모델을 수립.

Orthotopic 방광 종양 모델 및 Intravesical saRNA 트리 트먼트의 평가

이 비디오에서는 암세포를 마우스 모델의 방광으로 전달하는 방광 내 절차에 대해 설명합니다. 이 절차는 치료 전략을 개발하는 데 사용할 수 있는 정형소 방광 종양 모델을 생성하는 데 도움이 됩니다.

마우스 모델에서 정소성 방광 종양 모델링: 쥐 방광에 암세포의 방광 내 투여 절차

이 비디오는 마우스 방광암 모델에서 Helicobacter pylori 호중구 활성화 단백질(HP-NAP)의 항종양 활성을 평가하는 기술을 보여줍니다. HP-NAP는 종양세포 호중구와 상호 작용하여 전염증성 사이토카인을 생성함으로써 미접촉 T 세포를 1형 T helper(Th1) 및 1형 세포독성(Tc1) T 세포 표현형으로 분화시킵니다. Th1 및 Tc1 세포는 인터페론-감마를 분비하여 종양 혈관 신생을 억제하고 세포독성 T 세포 매개 종양 파괴를 촉진하여 종양 부피를 감소시킵니다.

Evaluating the anti-tumor efficacy of a bacterial immunomodulatory protein in a murine model(쥐 모델에서 박테리아 면역조절 단백질의 항종양 효능 평가)

기원의 장기에 암 세포의 주입은 새로운 치료법을 평가하는 유용한 전임상 모델이 될 수 있습니다. MB49 방광 암 세포가 방광 내 점적 다음 방광 내에서 성장시킬 수있다. 이 프로토콜은 종양 이식 및 아데노 바이러스 전달의 목적을 위해 마우스 방광 카테터를 보여준다.

유전자 전달 연구 동소 방광암 모델

N-부틸-N-(4 - 히드 록시 부틸) 니트로사민 유도 방광암 모델은 인간의 점액 1 (MUC1) 테스트의 목적 MUC1-감독 면역 형질 전환 생쥐에서 개발되었다. MUC1 표적 펩타이드 백신을 투여 한 후, MUC1에 대한 세포 독성 T 림프구 반응은 혈청 사이토 카인 수준과 T 세포의 특정 활동을 측정하여 확인 하였다.

면역 본래대로 사람 MUC1 유전자 변형 마우스의 침략 과도 셀 방광 암의 유도 : 면역 요법 개발을위한 모델

재조합 헬리코박터의 원스텝 제외 정제 고 수율 방법에 대하여 설명한다 배치 모드에서 디 에틸 아미노 에틸 수지를 이용하여 대장균에서 과발현 호중구 - 활성화 단백질 (HP-NAP) 파이로리. 이 방법에 의해 정제 HP-NAP는 H. 백신, 약물, 또는 진단의 발전을 위해 도움이됩니다 파이로리는 질병을 -associated.

한 단계의 부정적인 크로마토 그래피 정제<em&gt; 헬리코박터 파이로리</em&gt; 호중구 - 활성화 단백질 과발현<em&gt; 대장균</em&gt; 배치 모드에서

이 프로토콜은 암컷 C57BL / 6J 마우스의 종양 성장을 모니터링 뮤린 동소 방광 종양의 발생을 설명한다.

쥐 동소 이식 방광 종양 모델 및 종양 탐지 시스템

재발성 UPEC UTI를 유도하기 위해 잠복성 세포내 방광 저장소와 G. 질리스에 대한 후속 방광 노출을 확립하는 비뇨병원성 대장균(UPEC) 경요도 접종의 마우스 모델이 입증된다. 또한 박테리아의 열거, 소변 세포학 및 주사 전자 현미경을위한 현장 방광 고정 및 처리가 입증되었습니다.

재발 성 에스케리치아 콜라 이 요로 감염 Gardnerella 질 방광 노출에 의해 유발 마우스에서

배우세요 방광암 정위 이종이식 마우스 모델에서 HP-NAP 단백질의 항종양 효능을 평가하는 방법을. 이 기법은 종양 주사와 치료제 전달을 포함하며, 조직학적 분석으로 치료 효과를 검증합니다.

효능 평가

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