Name: 성인 인간 섬유 아세포의 유도 및 확장 신경 전구 세포에 자신의 직접 변환 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-07-29T13:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 58 s
Description: 배우세요 성인 인간 피부 섬유아세포를 직접 유도 신경 전구세포로 변환하는 방법을. 환자 특이적 신경 세포를 빠르게 생성하여 재생의학 치료에 활용할 수 있습니다.

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우리는 우수한 기술 지원을위한 유용한 제안과 마티 나 겝 하르트뿐만 아니라 헤이 케 Arthen의 줄기 세포와 뷔르츠부르크 대학의 재생 의학 그룹의 모든 회원들에게 감사의 말씀을 전합니다. 이 작품은 독일 Forschungsgemeinschaft DFG (ED79 / 1-2), 교육의 독일 연구부 BMBF (0813 01 GN), 바이에른 연구 네트워크 유도 만능 줄기 세포 &quot;forIPS&quot;와 &quot;재단 Sibylle Assmus에서 보조금에 의해 지원되었다 &quot;. 그림 1 www.servier.com에서 사용할 수 Servier에 의료 아트를 사용하여 제조 하였다.

이 연구에 사용 된 인간의 섬유 아세포는 뷔르츠부르크, 독일 대학의 윤리위원회의 동의와 윤리 허가를 통보받은 후 피부 펀치 생검에서 얻었다 (윤리적 보고서 번호 : 11분의 96 2011년 10월 6일 일자). 1. 펀치 생검 <ol><li> 환자의 피부를 소독. 피내 0.5 ml의 1에 mepivacaine 염산염을 사용하여 조직 검사가 (우선적으로 덜 태양에 노출 된 지역)에서 촬영 될의 피부 부분을 마취 및 멸균 3mm 생검 펀치를 사용하여 피부 조직 검사를 준비, DPBS와 조직 검사 + 1 μL / 1ml를 젠타 마이신을 씻어 제거 지방. DPBS + 겐타 마이신, 스파 아제 (Dispase) II를 흡인 DPBS 완전히 커버 생검 (2.4 U / ml)로 두 번 생검을 씻어 16 품어 - 4 ℃에서 18 시간을. </li><li> 대기음 스파 아제 (Dispase) 완전히 DPBS로 두 번 씻어 핀셋으로 표피를 제거합니다. 15 ML 튜브에서, 전송 2 ml의 콜라게나 제 2 형 (500 U / ㎖ CDU)을 추가, DPBS로 두 번 생검을 씻고 Collagena 추가SE 최대 5 ml의 총 부피. 37 ° C, 5 % CO 2에서 45 분 동안 인큐베이션. </li><li> 원심 분리기 (5) 180 XG에 분, 그 후 상층 액을 버린다. 180 x g에서 5 분 다시 10 ml의 DMEM-FCS-겐타 마이신 미디어 (10 % FCS, 1 μL / ㎖ 젠타 마이신)과 원심 분리기를 Resuspend 펠렛. 1.5 ml의 DMEM-FCS-겐타 마이신 미디어에서 뜨는에 resuspend 펠렛을 폐기하십시오. 자기편 조직 배양 플라스크 T25, 37 ° C, 5 % CO 2에서 부화 전송합니다. </li><li> 3 일마다 미디어를 변경합니다. </li><li> 후 약 2 주, 세포가 피부 부품, 트립신 / EDTA (0.05 %)를 사용하여 분할 세포 주위에 컨 플루 언트 때 : 세척 세포를 한 번 DPBS로, 37 ℃에서 5 분을 품어, 5 % CO 2 2 ㎖의 트립신 / EDTA를 첨가 한 후 (0.05 %), DMEM-FCS-겐타 마이신 미디어 2 ㎖를 추가 5 분 동안 180 XG에 15 ML 튜브와 원심 분리기로 전송; DMEM-FCS-겐타 마이신 미디어의 적절한 양 뜨는에 resuspend 펠렛을 폐기합니다. </li><li> 또한 매체마다 3 R을 변화시킴으로써 세포를 확장세포가 합류 할 때 전술 한 바와 같이 D의 하루 분할; 겐타 마이신이 첨가 경과 후 정지 될 수있다. </li><li> 직접 변환 실험에 대한 세포를 사용하기 전에, 표준 분석에서 마이코 플라스마 오염을 제외해야합니다. </li><li> 세포가 확장되었을 때, 당신은 직접 변환을 시작하거나 10 % DMSO 90 % FCS를 사용하여 세포를 정지 할 수 있습니다. 세포를 2 일 동안 -80 ° C에 저장하고 장기 보관을 위해 액체 질소로 전송되어야한다. </li><li> 변환의 준비를위한, DPBS, 흡인 DPBS 한 번 세포를 씻으 2.5 ml의 트립신 / EDTA (0.05 %)를 추가합니다. 37 ℃, 5 % CO 2에서 5 분 동안 유지합니다. 탭 플라스크 부드럽게 섬유 아세포 배지 2.5 ㎖ (DMEM 포함. L-Glu가 + 10 % FCS + 1 % NEAA + 1 % 나트륨 피루 베이트)에 재현 탁을 세포를 분리하고 15 ㎖의 튜브로 전송. 5 분 180 XG에 원심 분리기와 뜨는을 대기음. 1 ml의 아래로 섬유 아세포 미디어와 피펫 위로에 재현 탁 세포는 단일 세포 현탁액을 생성합니다. &lt;/ 리&gt; <li> Fuchs의-Rosenthal- 또는 노이 바 우어 - 셀 카운팅 챔버와 플레이트 24 웰 플레이트의 웰 당 3 × 104 세포를 이용하여 세포의 수를 계산. 37 ℃, 5 % CO 2에서 O / N을 품어. </li></ol> 센다이 바이러스와 분화 인간의 섬유 아세포 2. 감염 주 : 바이러스 운반 다음 단계 생물학적 안전 캐비넷과 층류 후드에서 점막 노출을 방지하기 위해 적절한 보호 장비, 특히 외과 마스크로 수행 될 필요가, 안전성을 보장한다. <ol><li> 100 μL 섬유 아세포 미디어 (단계 1.9)에 세포를 전환합니다. Oct4-, Klf4-, Sox2-의 분취 및 C-myc의 - 센다이 바이러스를 해동하고 1 ml의 섬유 아세포 미디어에 각각의 바이러스를 재현 탁. 셀 3의 관성 모멘트 (바이러스 역가가 많은에 많이 다릅니다 만, 각각의 바이러스 중 하나 나누어지는 일반적으로 24 잘 플레이트의 10 우물의 감염에 사용할 수 있습니다) 각 바이러스를 추가하고 부드럽게 섞는다. 37 ℃, 5 % CO 2에서 O / N을 품어 </sUB&gt;. </li><li> 24 시간의 흡인 후 매체와 neuroinduction 미디어 (: 1 DMEM / F-12로 Neurobasal, 1X N2, 1X B27, 1 % 루타, 10 NG / ㎖ hLIF, 3 μm의 CHIR99021, 2 μm의 SB431542 1)의 500 μl를 추가 지금부터 39 ° C, 5 % CO 2에서 문화. 매일 미디어를 변경합니다. </li><li> , DPBS에 1 μg의 / ml의 라​​미닌을 희석 6 잘 판에 액 1ml를 추가하고 24 시간 동안 4 ° C에서 유지 : 1 일 6 일 감염 후 라미닌 코팅 6 웰 플레이트를 준비합니다. </li><li> 미디어를 기음과 DPBS 한 번 세포를 세척 한 후 DPBS / EDTA의 500 μl를 추가하고 37 ℃, 5 % CO 2에서 10 분 동안 품어 : 7 일에 감염 후 DPBS / EDTA를 사용하여 세포를 분리. </li><li> DMEM / F12 500 μl를 추가하고 5 분 동안 180 XG에 15 ML 튜브와 원심 분리기에 판에서 정지를 제거합니다. </li><li> 뜨는을 기음과 neuroinduction 미디어, 라미닌 코팅 6 잘 접시에 플레이트의 1.5 ml의 펠렛을 재현 탁하고 최종 conce 락 억제제 Y27632 추가39 ° C에서 세포 배양에 10 μM의 ntration, 5 % CO 2. </li><li> 매일 미디어를 변경합니다. </li><li> 감염 배양 후 14 일째부터 37 ° C에서 세포, 5 % CO 2. Neuroepithelial 식민지는 위상차 현미경에 의한 감염 후 하루 (17)의 주위에 명확하게. 그들은 감염 후 20 일 주위에 뽑힐 정도로 커야한다. </li></ol> 추정 적 INPC의 식민지 3. 분리 <ol><li> 따기 전에 어느 날, 코트 한 48 라미닌 잘 플레이트 : DPBS에 1 μg의 / ml의 라​​미닌을 희석 판에 솔루션 300 μl를 추가하고 24 시간 동안 4 ℃에서 보관하십시오. 어느 날 후에 흡인 라미닌 판에서와 우물에 neuroinduction 매체의 200 μl를 추가합니다. </li><li> 6 잘 플레이트 잘 당 6 잘 플레이트 식민지를 포함하는이 DPBS 한 번 포착하고 추가 할 2 ML의 DPBS을 씻으십시오. 기계적으로 식민지를 선택 : 세포를 둘러싼 제거하는 얇은 바늘을 사용하여 식민지 주위 긁어; (200)를 설정1, L 50 μL에 pipetman과 각각의 피펫 팁을 사용하여 식민지를 선택합니다. </li><li> 라미닌 코팅 48 잘 플레이트 잘 하나에 하나의 식민지 각 이동 및 아래로 10 회를 피펫 팅에 의해 기계적으로 단일 세포 현탁액을 생성합니다. 세포에 10 μm의 최종 농도 락 억제제 Y27632를 추가합니다. </li><li> 2 일 동안 37 ℃, 5 % CO 2에서 48 잘 접시에 세포를 성장. 90 % 컨 플루 (약 3 - -. 4 일) 세포가 80에 도달 할 때까지의 모든 둘째 날 미디어를 변경합니다. </li></ol> 4. 확장 및 iNPCs의 곳을 알아내는 보존 <ol><li> 계대 및 iNPCs 확대 <ol><li> 매체를 기음과 DPBS로 세포를 씻어. DPBS를 대기음 200 μL의 DPBS / EDTA를 추가하고, 37 ℃, 5 % CO 2에서 10 분 동안 품어, 추가 DMEM / F12 200 μl를 5 분 동안 180 XG에, 15 ML 튜브에 판에서 원심 분리기를 정지 제거 . </li><li> 뜨는을 기음과 neuroi 0.5 ml의 펠렛을 재현 탁nduction 미디어 (2.2 단계), 라미닌 코팅 12 잘 접시에 플레이트와 세포에 10 μm의 최종 농도 락 억제제 Y27632를 추가, 37 ° C에서 문화, 5 % CO 2. 세포가 80에 도달 한 후 - 90 % 포화 상태 그들 중 하나를 추가로 확장 할 수 있습니다 또는 다음과 같이 아래로 고정. </li></ol></li><li> iNPCs의 동결 <ol><li> 매체를 기음과 DPBS로 세포를 씻어. 기음 DPBS와 300μl DPBS / EDTA를 추가하고, 37 ℃, 5 % CO 2에서 10 분 동안 품어, DMEM / F12 300 μl를 추가하고 5 분 동안 180 XG에, 15 ML 튜브에 판에서 원심 분리기를 정지를 제거합니다. </li><li> 뜨는을 대기음 및 상업 NSC 동결 매체의 0.5 ml의 펠렛을 재현 탁. 냉동 유리 병에 전송 중단 및 세포 냉동 컨테이너에 넣어. 2 일간 -80 ° C에서 보관 후 장기간 저장을 위해 액체 질소로 옮긴다. </li></ol></li></ol> iNPCs 5. 차별화 <ol><li> 뉴런으로 차별화알 계보 <ol><li> 라미닌 - 코팅 된 플레이트에서 배양 된 세포를 전술 한 바와 같이. 세포는 약 70 %이다 신경 DIFF 미디어 (DMEM / F-12, 1X N2, 1X B27, 300 NG / ㎖ 캠프, 200 μm의 비타민 C, 10 NG / ㎖ BDNF, 10 NG / ㎖ GDNF) 미디어를 변경 합류. 3 주 동안 매일 미디어를 변경합니다. 분화 동안하지 분할 세포를 수행합니다. </li><li> 삼주 후 세포는 신경 세포 마커 TUJ1을 표현한다. 더 성숙한 신경 세포를 얻고 신경 하위 유형 3 개월 차별화까지 계속합니다. </li></ol></li><li> 아교 혈통으로 차별화 <ol><li> 아교 유도 매체 (1 미디어를 변경 : 1 DMEM / F-12로 Neurobasal, 1X N2, 1X B27, 10 μM의 β - 머 캅토 에탄올, 100 μm의 비 필수 아미노산, 1.5 mM의 L 글루타민, 5 μg의 / ㎖ 인슐린, 각 40ng / ㎖의 T3) 20 NG / ㎖ EGF는 신경교 전구 세포로의 분화를 유도하는 방법 등. 미디어의 절반을 제거하고 약 2 주 동안 매일 신선한 매체로 대체합니다. 이 기간 동안 세포는 분리되어야한다1 : 100 % 컨 플루 언시가 10 μM ROCK Y27632 억제제의 존재하에 3에 도달 할 때. </li><li> 세포가 상업 사용할 수 성상 세포 미디어에 거의 합류 변경 미디어 때마다 둘째 날 미디어를 변경 : 2 주 후 더 성상 세포에 세포를 분화. 약 7 일 후 세포 성상 세포 마커 (예를 들어, GFAP)을 표현하기 시작합니다. 10 μm의 ROCK 억제제 Y27632의 존재 2 비율 : 세포 분화 프로토콜 동안 100 % 합류를 얻을 경우, 1을 분할합니다. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Takahashi, K., Yamanaka, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+pluripotent+stem+cells+from+mouse+embryonic+and+adult+fibroblast+cultures+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors.</a> Cell. 126 (4), 663-676 (2006).</li>
<li>Takahashi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+pluripotent+stem+cells+from+adult+human+fibroblasts+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors.</a> Cell. 131 (5), 861-872 (2007).</li>
<li>Cai, J., Yang, M., Poremsky, E., Kidd, S., Schneider, J. S., Iacovitti, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dopaminergic+neurons+derived+from+human+induced+pluripotent+stem+cells+survive+and+integrate+into+6-OHDA-lesioned+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+Dev%22%5BJournal%5D)">Dopaminergic neurons derived from human induced pluripotent stem cells survive and integrate into 6-OHDA-lesioned rats.</a> Stem Cells Dev. 19 (7), 1017-1023 (2010).</li>
<li>Kriks, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dopamine+neurons+derived+from+human+ES+cells+efficiently+engraft+in+animal+models+of+Parkinson%E2%80%99s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Dopamine neurons derived from human ES cells efficiently engraft in animal models of Parkinson’s disease.</a> Nature. 480 (7378), 547-551 (2011).</li>
<li>Rhee, Y. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein-based+human+iPS+cells+efficiently+generate+functional+dopamine+neurons+and+can+treat+a+rat+model+of+Parkinson+disease%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">Protein-based human iPS cells efficiently generate functional dopamine neurons and can treat a rat model of Parkinson disease.</a> J Clin Invest. 121 (6), 2326-2335 (2011).</li>
<li>Okita, K., Ichisaka, T., Yamanaka, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+germline-competent+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Generation of germline-competent induced pluripotent stem cells.</a> Nature. 448 (7151), 313-317 (2007).</li>
<li>Soldner, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Parkinson%E2%80%99s+disease+patient-derived+induced+pluripotent+stem+cells+free+of+viral+reprogramming+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Parkinson’s disease patient-derived induced pluripotent stem cells free of viral reprogramming factors.</a> Cell. 136 (5), 964-977 (2009).</li>
<li>Sommer, C. A., Stadtfeld, M., Murphy, G. J., Hochedlinger, K., Kotton, D. N., Mostoslavsky, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induced+pluripotent+stem+cell+generation+using+a+single+lentiviral+stem+cell+cassette%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Induced pluripotent stem cell generation using a single lentiviral stem cell cassette.</a> Stem Cells. 27 (3), 543-549 (2009).</li>
<li>Zhou, W., Freed, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adenoviral+gene+delivery+can+reprogram+human+fibroblasts+to+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Adenoviral gene delivery can reprogram human fibroblasts to induced pluripotent stem cells.</a> Stem Cells. 27, 2667-2674 (2009).</li>
<li>Fusaki, N., Ban, H., Nishiyama, A., Saeki, K., Hasegawa, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+induction+of+transgene-free+human+pluripotent+stem+cells+using+a+vector+based+on+Sendai+virus%2C+an+RNA+virus+that+does+not+integrate+into+the+host+genome%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Jpn+Acad+Ser+B+Phys+Biol+Sci%22%5BJournal%5D)">Efficient induction of transgene-free human pluripotent stem cells using a vector based on Sendai virus, an RNA virus that does not integrate into the host genome.</a> Proc Jpn Acad Ser B Phys Biol Sci. 85, 348-362 (2009).</li>
<li>Montserrat, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simple+generation+of+human+induced+pluripotent+stem+cells+using+poly-beta-amino+esters+as+the+non-viral+gene+delivery+system%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Simple generation of human induced pluripotent stem cells using poly-beta-amino esters as the non-viral gene delivery system.</a> J Biol Chem. 286 (14), 12417-12428 (2011).</li>
<li>Warren, L., Nu, Y., Wang, J., Guo, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Feeder-free+derivation+of+human+induced+pluripotent+stem+cells+with+messenger+RNA%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Feeder-free derivation of human induced pluripotent stem cells with messenger RNA.</a> Sci Rep. 2, 657(2012).</li>
<li>Bosnali, M., Edenhofer, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+transducible+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Generation of transducible factors.</a> Biol Chem. 389 (7), 851-861 (2008).</li>
<li>Zhou, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+induced+pluripotent+stem+cells+using+recombinant+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Generation of induced pluripotent stem cells using recombinant proteins.</a> Cell Stem Cell. 4 (5), 381-384 (2009).</li>
<li>Awe, J. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+and+characterization+of+transgene-free+human+induced+pluripotent+stem+cells+and+conversion+to+putative+clinical-grade+state%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Res+Ther%22%5BJournal%5D)">Generation and characterization of transgene-free human induced pluripotent stem cells and conversion to putative clinical-grade state.</a> Stem Cell Res Ther. 4 (4), 87(2013).</li>
<li>Kadari, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Excision+of+viral+reprogramming+cassettes+by+Cre+protein+transduction+enables+rapid%2C+robust+and+efficient+derivation+of+transgene-free+human+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Res+Ther%22%5BJournal%5D)">Excision of viral reprogramming cassettes by Cre protein transduction enables rapid, robust and efficient derivation of transgene-free human induced pluripotent stem cells.</a> Stem Cell Res Ther. 5 (2), 47(2014).</li>
<li>Vierbuchen, T., Ostermeier, A., Pang, Z. P., Kokubu, Y., Südhof, T. C., Wernig, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+conversion+of+fibroblasts+to+functional+neurons+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Direct conversion of fibroblasts to functional neurons by defined factors.</a> Nature. 463 (7284), 1035-1041 (2010).</li>
<li>Caiazzo, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+generation+of+functional+dopaminergic+neurons+from+mouse+and+human+fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Direct generation of functional dopaminergic neurons from mouse and human fibroblasts.</a> Nature. 476 (7359), 224-227 (2011).</li>
<li>Pang, Z. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+human+neuronal+cells+by+defined+transcription+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Induction of human neuronal cells by defined transcription factors.</a> Nature. 476 (7359), 220-223 (2011).</li>
<li>Ladewig, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+molecules+enable+highly+efficient+neuronal+conversion+of+human+fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Small molecules enable highly efficient neuronal conversion of human fibroblasts.</a> Nat Methods. 9 (6), 575-578 (2012).</li>
<li>Han, D. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+reprogramming+of+fibroblasts+into+neural+stem+cells+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Direct reprogramming of fibroblasts into neural stem cells by defined factors.</a> Cell Stem Cell. 10 (4), 465-472 (2012).</li>
<li>Thier, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+conversion+of+fibroblasts+into+stably+expandable+neural+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Direct conversion of fibroblasts into stably expandable neural stem cells.</a> Cell Stem Cell. 10 (4), 473-479 (2012).</li>
<li>Lu, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+integration-free+and+region-specific+neural+progenitors+from+primate+fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Rep%22%5BJournal%5D)">Generation of integration-free and region-specific neural progenitors from primate fibroblasts.</a> Cell Rep. 3 (5), 1580-1591 (2013).</li>
<li>Lujan, E., Chanda, S., Ahlenius, H., Südhof, T. C., Werning, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+conversion+of+mouse+fibroblasts+to+self-renewing%2C+tripotent+neural+precursor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">Direct conversion of mouse fibroblasts to self-renewing, tripotent neural precursor cells.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 109 (7), 2527-2532 (2012).</li>
<li>Tian, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+conversion+of+dermal+fibroblasts+into+neural+progenitor+cells+by+a+novel+cocktail+of+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Mol+Med%22%5BJournal%5D)">Direct conversion of dermal fibroblasts into neural progenitor cells by a novel cocktail of defined factors.</a> Curr Mol Med. 12 (2), 126-137 (2012).</li>
<li>Zhu, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+molecules+enable+OCT4-mediated+direct+reprogramming+into+expandable+human+neural+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Small molecules enable OCT4-mediated direct reprogramming into expandable human neural stem cells.</a> Cell Res. 24 (1), 126-129 (2014).</li>
<li>Hemmer, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induced+neural+stem+cells+achieve+long-term+survival+and+functional+integration+in+the+adult+mouse+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">Induced neural stem cells achieve long-term survival and functional integration in the adult mouse brain.</a> Stem Cell Reports. 3 (3), 423-431 (2014).</li>
<li>Conti, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Niche-independent+symmetrical+self-renewal+of+a+mammalian+tissue+stem+cell%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Biol%22%5BJournal%5D)">Niche-independent symmetrical self-renewal of a mammalian tissue stem cell.</a> PLoS Biol. 3 (9), e283(2005).</li>
<li>Elkabetz, Y., Panagiotakos, G., Al Shamy,, Socci, G., Tabar, N. D., Studer, V., L, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+ES+cell-derived+rosettes+reveal+a+functional+distinct+early+neural+stem+cell+stage%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Dev%22%5BJournal%5D)">Human ES cell-derived rosettes reveal a functional distinct early neural stem cell stage.</a> Genes Dev. 22 (2), 152-165 (2008).</li>
<li>Koch, P., Opitz, T., Steinbeck, J. A., Ladewig, J., Brüstle, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+rosette-type+self-renewing+human+ES+cell-derived+neural+stem+cell+with+potential+for+in+vitro+instruction+and+synaptic+integration%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">A rosette-type self-renewing human ES cell-derived neural stem cell with potential for in vitro instruction and synaptic integration.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 106 (9), 3225-3230 (2009).</li>
<li>Li, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+induction+and+long-term+self-renewal+of+primitive+neural+precursors+from+human+embryonic+stem+cells+by+small+molecule+inhibitors%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">Rapid induction and long-term self-renewal of primitive neural precursors from human embryonic stem cells by small molecule inhibitors.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 108 (20), 8299-8304 (2011).</li>
<li>Reinhardt, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Derivation+and+expansion+using+only+small+molecules+of+human+neural+progenitors+for+neurodegenerative+disease+modeling%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Derivation and expansion using only small molecules of human neural progenitors for neurodegenerative disease modeling.</a> PLoS One. 8 (3), c59252(2013).</li>
<li>Ring, K. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+reprogramming+of+mouse+and+human+fibroblasts+into+multipotent+neural+stem+cells+with+a+single+factor%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Direct reprogramming of mouse and human fibroblasts into multipotent neural stem cells with a single factor.</a> Cell Stem Cell. 11 (1), 100-109 (2012).</li>
<li>Zou, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+conversion+of+human+fibroblasts+into+neuronal+restricted+progenitors%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Direct conversion of human fibroblasts into neuronal restricted progenitors.</a> J Biol Chem. 289 (8), 5250-5260 (2014).</li>
<li>Aharonowiz, M., Einstein, O., Fainstein, N., Lassmann, H., Reubinoff, B., Ben-Hur, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuroprotective+effect+of+transplanted+human+embryonic+stem+cell-derived+neural+precursor+in+an+animal+model+of+multiple+sclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Neuroprotective effect of transplanted human embryonic stem cell-derived neural precursor in an animal model of multiple sclerosis.</a> PLoS One. 3 (9), e3145(2008).</li>
<li>Kim, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunomodulation+by+transplanted+human+embryonic+stem+cell-derived+oligodendroglial+progenitors+in+experimental+autoimmune+encephalomyelitis%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Immunomodulation by transplanted human embryonic stem cell-derived oligodendroglial progenitors in experimental autoimmune encephalomyelitis.</a> Stem Cells. 30 (12), 2810-2829 (2012).</li>
<li>Kondoh, T., Pundt, L. L., Blount, J. P., Conrad, J. A., Low, W. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transplantation+of+human+fetal+tissue+from+spontaneous+abortions+to+a+rodent+model+of+Parkinson%E2%80%99s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Transplant%22%5BJournal%5D)">Transplantation of human fetal tissue from spontaneous abortions to a rodent model of Parkinson’s disease.</a> Cell Transplant. 5 (1), 69-75 (1996).</li>
<li>Takagi, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dopaminergic+neurons+generated+from+monkey+embryonic+stem+cells+function+in+a+Parkinson+primate+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">Dopaminergic neurons generated from monkey embryonic stem cells function in a Parkinson primate model.</a> J Clin Invest. 115 (1), 102-109 (2005).</li>
<li>Kikuchi, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Survival+of+human+induced+pluripotent+stem+cell-derived+midbrain+dopaminergic+neurons+in+the+brain+of+a+primate+model+of+Parkinson%E2%80%99s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22J+Parkinson%E2%80%99s+Dis%22%5BJournal%5D)">Survival of human induced pluripotent stem cell-derived midbrain dopaminergic neurons in the brain of a primate model of Parkinson’s disease.</a> J Parkinson’s Dis. 1 (4), 395-412 (2011).</li>
<li>Kirkeby, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+regionally+specified+neural+progenitors+and+functional+neurons+from+human+embryonic+stem+cells+under+defined+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Rep%22%5BJournal%5D)">Generation of regionally specified neural progenitors and functional neurons from human embryonic stem cells under defined conditions.</a> Cell Rep. 1 (6), 703-714 (2012).</li>
<li>Dezawa, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Specific+induction+of+neuronal+cells+from+bone+marrow+stromal+cells+and+application+for+autologous+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">Specific induction of neuronal cells from bone marrow stromal cells and application for autologous transplantation.</a> J Clin Invest. 113, 1701-1710 (2004).</li>
<li>Izrael, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+oligodendrocytes+derived+from+embryonic+stem+cells%3A+Effect+of+noggin+on+phenotypic+differentiation+in+vitro+and+on+myelination+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Human oligodendrocytes derived from embryonic stem cells: Effect of noggin on phenotypic differentiation in vitro and on myelination in vivo.</a> Mol Cell Neurosci. 34 (3), 310-323 (2007).</li>
<li>Cassady, J. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+lineage+conversion+of+adult+mouse+liver+cells+and+B+lymphocytes+to+neural+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Rep%22%5BJournal%5D)">Direct lineage conversion of adult mouse liver cells and B lymphocytes to neural stem cells.</a> Stem Cell Rep. 3 (6), 948-956 (2014).</li>
<li>Castano, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fast+and+efficient+neural+conversion+of+human+hematopoietic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Rep%22%5BJournal%5D)">Fast and efficient neural conversion of human hematopoietic cells.</a> Stem Cell Rep. 3 (6), 1118-1131 (2014).</li>
<li>Thoma, E. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemical+conversion+of+human+fibroblasts+into+functional+Schwann+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Rep%22%5BJournal%5D)">Chemical conversion of human fibroblasts into functional Schwann cells.</a> Stem Cell Rep. 3 (4), 539-547 (2014).</li>
</ol>

저자는 경쟁하는 금전적 이해관계가 없음을 선언합니다.

여기에서 우리는 고립과 확장 형질 전환 유전자가없는 신경 전구 세포로 인간의 섬유 아 세포의 직접 변환 및 세포 대체 요법 또는 약물 검사 분석의 응용 프로그램에 대한 추정 근거로 그들의 차별화 된 자손을 보여줍니다. NPC들에 체세포의 직접 혈통 변환은 혈통 특정 전사의 강제 식 26,33,34 요인에 의해 달성되었다. 그럼에도 불구하고, 많은 경우에 태아 섬유 아세포는 분화 실험 33, 34을 사용 하였다. 이 셀 소스는자가 세포 대체 요법에 대한 임상 적 사용을 배제 같은 생의학 애플리케이션이 세포의 사용은 부적당하다. 최근 연구는 조혈 세포 43,44 같은보다 쉽게 접근 조직에서 신경 전구 세포의 생성을 설명하는 발표되었다. tripotent 신경 줄기 세포의 성공적인 생성을 유도하여 뮤린 overexpr 혈액 유래의 B 세포에 대해 도시 될 수있다팔 유전자 (43)의 esion. 또한, 카스타 등은. 인간의 Sox2-을 사용...

2006 년 야마나카와 동료들은 처음 능성 상태 (1)로, 체세포의 프로그래밍 가능성을 보여줄 수있다. 이 탈분화는 인 Oct4, Sox2이, Klf4 및 c-Myc와는 쥐의 섬유 아세포에서 네 전사의 과발현에 의해 요인 달성되었다. 생성 된 소위 유도 다 능성 줄기 세포 (iPSCs)는 배아 줄기 세포 (는 ESC)에 동등한 기능을 보여 주며, 따라서 성인 유기체의 모든 유형의 세포로 분화 될 수있다. 나중에 iPSCs에 재 프로그래밍 한 해는 인간 섬유 아세포이 달성 될 수있다. 동물 모델에서 실험 IPSC 유래 세포는 일반적으로 파킨슨 병 (PD) 등의 세포 대체 요법, 3-5에 사용될 수 있음을 입증한다. 그러나, iPSCs의 사용과 관련된 몇 가지 제한은 치료 가능성의 완전한 실현을위한 방책을 나타냅니다. 만능 상태 이후에 세포의 리 프로그래밍, 우선품질 관리는 일반적으로 시간이 많이 소요되고, 따라서 비용이 많이 드는 광범위한 세포 배양 과정에서 산출 비효율적 과정이다. 둘째, iPSCs 상당한 발암 가능성을 품고 생의학 도장 전에 관심 원하는 세포 유형과 차별화 인구 잔류 다 능성 세포의 확률로 다시 구분 될 필요가있어 세포 이식 6 후의 높은 위험을 표시한다. 셋째, 프로그래밍 프로세스는 일반적 렌티 또는 레트로 바이러스 감염에 의해 재 프로그램 인자를 유도함으로써 달성된다. 숙주 게놈에이 바이러스의 통합은 삽입 성 돌연변이 유발 및 / 또는 유전자 7,8의 제어되지 않은 활성화로 이어질 수 있습니다. 비 통합 시스템은 삽입 성 돌연변이 유발 및 트랜스 활성화의 위험을 최소화하는 표적 세포 리 프로그래밍 요소들을 제공하기 위해 개발되었다. 이러한 유전자가없는 방식의 예로는 비 - 적분을 이용한 세포의 리 프로그래밍 아르아데노 또는 센다이 바이러스 9, 10, DNA 기반 벡터 (11) 또는 재조합 단백질 (13, 14)의 합성 mRNA의 12 또는 전달의 형질 같은 DNA가없는 방법의 응용 프로그램. 트랜스 프리 IPSC의 유도를위한 또 다른 방법은 유망한에 loxP 변성 렌티 프로그래밍 구조와 Cre 호텔-DNA에 loxP 재조합 시스템 (15, 16)를 사용하여 유전자의 삭제 이후의 사용이다. 세포 대체 요법은 포스트 - 유사 분열 뉴런 17-20으로 섬유 아세포의 직접 변환을 나타낸다위한보다 간단한 방법은 신경 세포를 생성한다. Vierbuchen 등은. 전사의 과발현은 쥐의 섬유 아세포를 17에서 20 %의 신경 세포의 생성에 Ascl1, Brn2 및 Myt1l 결과를 요인 보도했다. 그것은 2011 년 NeuroD1 과발현과 조합 같은 세 가지 전사 인자가 NEU로 인간 섬유 아세포의 분화를 사용하는 것이 도시되었다rons 19. 인간 유도 된 신경 세포는 또한 듀얼 SMAD-과 GSK3β- 억제 (20) 아래 Ascl1과 Ngn2의 과발현에 의해 생성 될 수있다. 특히, 신경 세포에 섬유 아 세포의 직접 변환은 추가 확장 및 biobanking을 허용하지 않는 비 증식, 후 유사 분열 세포 인구를 생성합니다. 최근, 신경 줄기 증식 / 전구 세포 집단으로 섬유 아세포의 직접 변환은 21-26을보고 하였다. 명확성을 위해, 모든 세포 유형은이 보고서에서 유도 된 신경 전구 세포 (iNPCs)로 지정됩니다. 한 등은. iNPCs를 생성하는 Brn4, Sox2이, C-Myc와 Klf4과를 과발현. 기본 조직 또는 만능 중 세포에서 파생 된 자신의 신경 줄기 세포의 대응과 마찬가지로이 iNPCs는 tripotential하고 신경 세포, 성상 세포 및 희소 돌기 아교 세포 (21)로 분화 될 수있다. 우리 그룹은 Sox2이, Klf4의 과발현을 포함하는 약간 다른 변환 프로토콜을보고, C-Myc와와 5 일 동안 유도 인 Oct4 표현합니다. 이 방법을 우리는 재 프로그래밍 (22) 요인의 완전한 침묵을 나타내는 쥐의 배아와 성인 섬유 아세포에서 안정적으로 증식 iNPCs을 생성 할 수 있습니다. iPSCs는 대조적으로, iNPCs 이식 27 일 후 종양 가능성을 나타내지 않는다. 우리는 iNPCs 임상 (22) 유용한 것으로 보여, 동물 탈수 초화의 모델, 수초 결핍 쥐에서 성공적으로 세포를 변환 할 때 사용합니다. 그때까지의 NPC은 다 능성 줄기 세포 또는 기본 신경 조직 28-32에서 생성 될 수있다. iNPCs는 동결 보존 및 신경 세포, 성상 세포 및 희소 돌기 아교 세포로 분화 할 수있는 수를 안정적으로 확장 세포이다. 많은 노력이 인간의 세포 23,26,33,34 마우스에서 직접 변환 프로토콜을 적응하기 위해 만들어졌다. 2012 년은 섬유 아세포의 단일 요인 Sox2이의 과발현은 쥐와 인간의 iNPCs를 생성하는 데 충분하다고 출판 되었음 <s&gt; 33까지. 저자는 태아 포피의 섬유 아 세포에서 인간의 iNPCs의 생성을보고 Sox2이와 네 스틴에 염색하여 그들을 특징. 그러나, 리 프로그래밍에 사용되는 표적 세포는 임상에서 사용할 수 있으며 수행 동물 모델에 이식에 의해 변환 된 세포의 기능적 특성은 없었다되지 매우 특정 세포 유형을 나타낸다. 최근 출판물은 Sox2이, C-Myc와 및 Brn2 또는 Brn4 (34) 중 하나의 과발현에 의해 인간의 태아 섬유 아세포에서의 연결을 제한 전구 세포의 생성을 설명합니다. 생성 된 세포주는 자기 갱신 능력을 보였고, 단말기의 여러 유형의 신경 세포로 분화 될 수있다. 이들 세포는 이종 기원이며 하나 잔류 예 제제에서 신경 능선 줄기 세포의 존재를 배제 할 수 없다 그러나, 태아 섬유 아세포의 사용은 바람직하지 않다. 2014 년, 주홍 등은. 인간의 성인과 네오의 직접 변환을보고단독으로 또는 인 Oct4 인 Oct4와 함께 Sox2이 과발현 및 세포 배양 배지에 작은 분자의 첨가에 의해 tripotential 신경 전구 세포로 탈 섬유 아세포. 특히, Sox2이 그들의 연구에 기초하여 단독으로 직접 변환 (26)을 유도하기에 충분 하였다. 최근 루 외는. 야마나카의 과발현은 팽창성 tripotential 신경의 세대에서 증가 된 온도의 결과에 의해 바이러스의 24 시간 이후의 불 활성화 센다이 바이러스에 Oct4-, Sox2-, Klf4-, C-Myc와 인자보고 전구 세포 (23). 인간 세포 출판 변환 프로토콜까지 적시 제한된 방식으로 흔히 야마나카 인자 중 적어도 하나 이상의 공통 과발현에했지만 결론적으로, 직접 구동하기 위해 필요한 최소한의 분자 계수의 명확한 지시가 없다 iNPCs로 변환. 어느 유전자에 의해 인 Oct4의 적절한 제한 과발현, 합성의 mRNA와 형질 전환, 또는 C함께 Sox2이, KLF-4, C-Myc와의 구성 적 표현과 ELL-투과 단백질은 아직 안정 인간 INPC 라인을 초래하지 않았다. 따라서, 센다이 바이러스의 적용은 모든 야마나카 인자를 과발현 적시 22,31 지금까지 바람직한 방법을 나타낸다 함께 최적화 신경 미디어 유도 조건 23 바이러스의 열 불 활성화하여 활성을 제한한다. 몇몇 연구 NSCs의 또는 다른 동물 질병 모델에서의 분화 세포의 대조 기능을 보여준다. 인간 다 능성 줄기 세포로부터 신경 전구 세포가 여러 35,36 경화증 신경 염증성 질환의 마우스 모델에 이식 하였다. EAE에 hESC의 유래 신경 전구 세포의 적용 (실험자가 면역 뇌척수염) 때문이야 먼저 2008 35에 도시 하였다. 능성 신경 전구 세포는 마우스 뇌의 심실에 주입하고, 이식 결과EAE의 임상 증상의 감소에 에드. Kim 등. 인간 배아 줄기 세포로부터 희 돌기 전구체를 생성 EAE-마우스로 뇌 실내 사람들을 이식. 이식이 10 일 이상 생존하지 않았지만, 마우스는 신경 학적 기능과 백질 (36)의 염증성 면역 세포의 감소의 상당한 개선을 보여 주었다. 줄기 세포 치료는 또한 NPC가 성공적으로 각각의 동물 모델에서 이용 될 수 있기 전임상 파킨슨 병 타겟팅 적용되었다. 이를 위해 전구 세포는 어느 능성 줄기 세포를 38 ~ 40 또는 41을 사용 하였다는 중간 엽 줄기 세포로부터 분화 태아 뇌 조직 (37)로부터 유래되었다. 2012에서는 마우스 iNPCs는 미엘린 결손 (MD) (22) 쥐의 뇌에 이식 후 테오 단백질, 주요 미엘린 단백질 성분을 생산할 수 있음을 보여 주었다. 그 원리 증명 실험 치료 applicabil으로iNPCs의 성만이 먼저 입증 곧 또 다른 연구 (32)에 의해 확인되었다. 그러나, 인간의 iNPCs의 치료 적 사용의 잠재력을 탐구 일이다. 여기에 우리가 피부 조직 검사를 통해 성인 환자에서 인간의 일차 전지의 (I) 유도의 강력하고 통합 된 과정을 보여, (II) 신경 전구 상태와 iNPCs의 (ⅲ) 능력으로 인간의 섬유 아 세포의 직접 변환은 신경 세포로 분화 할 그리고 아교 계통. 이 프로토콜의 사용은 치료 응용 프로그램에 대한자가 인간 세포의 생성을 가속화하는 데 도움이 될 것입니다.

<table><tbody><tr><td>성상세포 매체</td><td>ScienCell</td><td>1801</td><td></td></tr><tr><td>B27</td><td>LifeTechnologies</td><td>17504-044</td><td></td></tr><tr><td>BDNF</td><td>Peprotech</td><td>450-02</td><td></td></tr><tr><td>생검 펀치</td><td>pfm 의료</td><td>48301</td><td></td></tr><tr><td>cAMP</td><td>시그마</td><td>A6885</td><td></td></tr><tr><td>CHIR99021</td><td>축삭 메드켐</td><td>1386</td><td></td></tr><tr><td>콜라겐분해효소 2형</td><td>Worthington Biochemical</td><td>LS004177</td><td></td></tr><tr><td>Dispase</td><td>PAN&nbsp;</td><td>P10-032100</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>라이프테크놀</td>로지스 <td>41966-029</td><td></td></tr><tr><td>DMEM F12</td><td>라이프테크놀러지</td><td>11320-033</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>로스</td><td>4720</td><td></td></tr><tr><td>DPBS</td><td>라이프테크놀러지</td><td>14190-094</td><td></td></tr><tr><td>EGF</td><td>라이프 테크놀로지</td>스 <td>PHG0313</td><td></td></tr><tr><td>FCS</td><td>바이오크롬 AG</td><td>50115</td><td></td></tr><tr><td>GDNF</td><td>Peprotech</td><td>450-10</td><td></td></tr><tr><td>Gentamicin</td><td>Sigma</td><td>G1397</td><td></td></tr><tr><td>GFAP-항체</td><td>Dako</td><td>Z0334</td><td></td></tr><tr><td>GlutaMAX</td><td>LifeTechnologies</td><td>35050-038</td><td></td></tr><tr><td>hLIF</td><td>Peprotech</td><td>300-05</td><td></td></tr><tr><td>Insulin</td><td>Seralab</td><td>GEM-700-112-P</td><td></td></tr><tr><td>Ki67-항체</td><td>NeoMarkers</td><td>RM-9106-S</td><td></td></tr><tr><td>L-글루타민</td><td>LifeTechnologies</td><td>25030-024</td><td></td></tr><tr><td>라미닌</td><td>시그마</td><td>L2020</td><td></td></tr><tr><td>N2</td><td>LifeTechnologies</td><td>17502-048</td><td></td></tr><tr><td>네스틴 항체</td><td>R& D Systems</td><td>MAB1259</td><td></td></tr><tr><td>Neurobasal</td><td>LifeTechnologies</td><td>21103-049</td><td></td></tr><tr><td>비필수 아미노산</td><td>LifeTechnologies</td><td>11140-050</td><td></td></tr><tr><td>NSC 냉동 매체</td><td>Sigma</td><td>C6295</td><td></td></tr><tr><td>Oct4-항체</td><td>Santa Cruz</td><td>sc9081</td><td></td></tr><tr><td>Pax6-항체</td><td>Covance</td><td>PRB-278P</td><td></td></tr><tr><td>SB431542</td><td>Invivogen</td><td>inh-sb43</td><td></td></tr><tr><td>센다이 바이러스: CytoTune 센다이 재프로그래밍 키트</td><td>&nbsp; LifeTechnologies</td><td>A1378001</td><td></td></tr><tr><td>나트륨피루베이트</td><td>Life Technologies</td><td>11360-039</td><td></td></tr><tr><td>Sox1-항체</td><td>R& D Systems</td><td>AF3369</td><td></td></tr><tr><td>Sox2-항체</td><td>R& D Systems</td><td>MAB2018</td><td></td></tr><tr><td>T3</td><td>Santa Cruz</td><td>sc-205725</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin/EDTA</td><td>Life Technologies</td><td>15400-054</td><td></td></tr><tr><td>TUJ1-항체</td><td>Covance</td><td>MMS-435P-250</td><td></td></tr><tr><td>비타민 C</td><td>Sigma</td><td>A4544</td><td></td></tr><tr><td>Y27632</td><td>Calbiochem</td><td>CAS 146986-50-7</td><td></td></tr><tr><td>&beta;-Mercaptoethanol</td><td>LifeTechnologies</td><td>21985023</td><td></td></tr></tbody></table>

성인 인간 섬유 아세포의 유도 및 확장 신경 전구 세포에 자신의 직접 변환

Derivation of Adult Human Fibroblasts and their Direct Conversion into Expandable Neural Progenitor Cells

체세포에 성인 피부 섬유 아세포에서 유도 만능 줄기 세포 (iPSCs) 이후 분화의 세대는 조직 적합성 장벽을 우회자가 이식의 유도에 대한 매혹적인 전망을 제공합니다. 그러나, 만능 상태와 원하는 계보로 이어지는 완벽한 차별화를 통해 진행하기 때문에 관련 종양 잠재력과 게놈 불안정성의 IPSC 기술의 임상 번역 장애물 남아있다. 최근에, 우리와 다른 체세포만을시켜 만능 상태를 통해 진행을 우회 정의 요소를 이용하여 iPSCs으로뿐만 아니라 다 능성 줄기 세포의 체세포의 다른 유형으로 변환 할 수 없다는 것을 보여 주었다. 특히, 유도 된 신경 전구 세포 (iNPCs)에 인간의 섬유 아세포의 직접 변환은 셀 교체, 질병 모델링과 같은 다양한 애플리케이션을위한 새로운자가 셀 소스의 가능성을 알린다및 약물 검사. 여기, 우리는 적시에 제한 인 Oct4, Sox2이, Klf4의 표현뿐만 아니라, C-Myc와에 의해 iNPCs에 피부 생검과 효율적인 직접 변환하여 성인의 주요 섬유 아 세포의 분리에 대해 설명합니다. SOX2 양성 neuroepithelial 식민지 유도 17 일 후에 나타나며 INPC 라인은 단일 클론 분리 및 확장에 의해 효율적으로 설정할 수 있습니다. 유도 단계에서 감염과 백혈병 억제 인자의 보충의 바이러스 성 다양성의 정확한 조정은 최대 0.2 %의 변환 효율을 달성하기 위해 중요한 요소를 나타냅니다. 지금까지, 환자 맞춤형 INPC 라인은 12 개 이상의 구절에 대한 확장 및 균일하게 네 스틴 및 Sox2이의 발현으로 신경 줄기 / 전구 세포의 형태 학적 및 분자 기능을 표시 할 수있다. 각각 TUJ1 및 GFAP,에 염색하여 판단으로 INPC 라인은 신경 세포와 성상 세포로 분화 할 수있다. 결론적으로 유도하고 디레위한 강력한 프로토콜 신고이러한자가 신경 세포 교체 및 질병 모델링으로 생물 의학 응용 프로그램에 대한 휴대 소스를 제공 할 수 있습니다 안정적으로 확장 신경 전구 세포로 인간 섬유 아세포의 CT 변환.

여기에서는 이하 8주 (도 1) 내에서 피부 생검 펀치에 의해 수득 된 인간 섬유 아세포에서 유도 된 신경 전구 세포 (iNPCs)의 생성을 허용하는 통합 공정에 대한 설명을 제시한다. 환자로, 특정 iNPCs 더 신경 세포와 교세포 계보로 분화 및 세포 대체 요법과 질병 모델링을위한 거대한 잠재력을 정박 할 수있다. Oct4-, Klf4-, Sox2- 및 C-myc- 센다이와 섬유 아 세포의 감염은 섬유 아세포와 십칠일 감염 후 식민지의 후속 출현의 형태의 변화 결과 neuroinductive 미디어 조건 22,31에서 23과 문화를 바이러스 (그림 2). 그들은 pluripotency-을 표현하지 않는 반면, 생성 된 단일 클론 세포 라인 확장 및 Sox2이, Sox1, 네 스틴, 멘틴,의 Otx2 및 PAX6 같은 신경 줄기 세포 마커에 대한 긍정적 인 얼룩뿐만 아니라 증식 마커 사료된다 위...

유도 만능 줄기 세포의 생성은자가 이식의 유도에 대한 매혹적인 전망을 제공합니다. 그러나, 만능 상태와 힘든 다시 차별화를 통해 진행은 여전히​​ 임상 번역을 방해한다. 여기에서 우리는 성인 인간 섬유 아세포의 유도와 유도 된 신경 전구 세포에 자신의 직접 변환과 신경 계통에 후속 차별화를 설명합니다.

Generation of&#160;induced pluripotent stem cell (iPSCs) from adult skin fibroblasts and subsequent differentiation into somatic cells provides ...

이 절차의 전반적인 목표는 환자의 피부 생검 조직으로부터 유도 신경 전구 세포를 직접 생성함으로써 치료 응용을 위한 고전적인 Yamanaka IPS 접근 방식을 단축하는 것입니다. 이는 먼저 환자로부터 펀치 생검을 수행하여 체외에서 배양 가능한 일차 섬유아세포를 유도함으로써 달성됩니다. 두 번째 단계는 배양된 섬유아세포를 증식시킨 후, 전환 분화를 유도하기 위해 재프로그래밍 인자를 인코딩하는 바이러스를 감염시키는 것입니다.다음으로, 감염 후 약 20일이 지나면 시각적 검증을 통해 전환된 것으로 추정되는 유도 신경 전구세포(INPC) 콜로니를 신중하게 선택하고 수동 피킹으로 분리해야 합니다. 마지막 단계는 신경 유도 배지에서 IPC를 단일 클론화 및 증식시키는 것이며, 최종적으로는 인 비트로(in vitro) 분화를 유도합니다. 또한 면역형광 현미경을 사용하여 환자 본인의 직접 전환된 IPC가 신경 세포뿐만 아니라 글리아 세포로 분화할 수 있음을 보여줌으로써, 이들이 생의학적 응용을 위한 사실상 무제한의 자원이 될 수 있음을 입증합니다. 이러한 직접 전환 기술이 야마나카 방식의 유도 다능성 줄기세포 유도 및 그 후속 분화와 같은 기존 방법보다 갖는 장점은 두 가지입니다.DI를 다능성 유도 신경 줄기세포(우리는 이를 INS 세포라고 부릅니다)로 전환하는 과정은 상당히 더 빠를 뿐만 아니라 더 안전합니다. 따라서 이러한 교차 분화 절차는 치료 목적의 환자 맞춤형 세포 생산을 훨씬 더 가능하게 하며, IPS 세포와 비교했을 때 종양 형성 위험을 획기적으로 낮출 수 있습니다. 이를 통해 우리는 현재 재생 의학의 두 가지 주요 장애물을 제거할 수 있게 되었습니다.이는 임상적 안전성과 효율성을 위한 것입니다. 펀치 생검을 시작하기 위해 환자의 피부를 소독하고, 생검을 실시할 부위의 피부에 0.5에서 1 mL의 mepivacaine hydrochloride를 피내 주사하여 마취합니다. 멸균된 3 mm 생검 펀치를 사용하여 피부 생검을 수행합니다.생검 조직을 DPBS(phosphate buffered saline)에 mL당 1 µL의 gentamycin을 첨가한 용액으로 헹굽니다. 메스와 핀셋을 사용하여 생검 조직에서 지방을 제거합니다. 그 다음, 버퍼로 생검 조직을 두 번 더 헹군 후 완전히 흡입하여 제거합니다.생검 조직을 디스크 페이스트(disk paste)로 덮고 4°C에서 16~18시간 동안 배양합니다. 배양 후, DPBS로 생검 조직을 두 번 세척하기 전에 디스크 페이스트를 완전히 흡입하여 제거합니다. 핀셋으로 표피를 제거한 다음, 생검 조직을 DPBS로 두 번 더 세척합니다.다음으로, collagenase type two 2 mL를 추가하고 15 mL 튜브로 옮깁니다. collagenase를 추가하여 총 부피를 5 mL로 맞춥니다. 37 °C에서 45분 동안 인큐베이션합니다.샘플을 180 ×g에서 5분 동안 원심분리한 후 상층액을 제거합니다. 펠릿을 10 mL의 DMEM fetal calf serum gentamicin 배지에 다시 현탁시킨 후, 다시 180 ×g에서 5분 동안 원심분리합니다. 상층액을 제거하고 펠릿을 동일한 배지 1.5 mL에 다시 현탁시킵니다. 그런 다음 샘플을 T 25 부착성 조직 배양 플라스크로 옮겨 37 °C, 5% CO2 조건에서 배양하며, 약 2주 후부터는 3일마다 배지를 교체합니다.세포가 피부 부위 주변으로 합류(confluent)되면, 텍스트 프로토콜에 기술된 대로 trypsin EDTA를 사용하여 세포를 분리합니다. 3일마다 배지를 교체하고 세포가 합류될 때마다 분리하여 세포를 추가로 증식시킵니다. 표준 분석법으로 마이코플라스마 오염이 없음을 확인한 후, 세포를 DPBS로 한 번 세척한 다음 DPBS를 흡입 제거하고 trypsin EDTA 2.5 milliliters를 첨가하여 직접 전환 실험을 위한 세포 준비를 수행합니다. 37 °C, 5% CO2 조건에서 세포를 5분 동안 배양한 후, 플라스크를 가볍게 두드려 세포를 탈착시킵니다.세포를 2.5 milliliters의 섬유아세포 배지에 재현탁하여 15 milliliter 튜브로 옮깁니다. 튜브를 180 times G에서 5분 동안 원심분리하고 상층액을 흡입하여 제거합니다. 세포를 1 milliliter의 섬유아세포 배지에 재현탁하고 피펫팅하여 단일 세포 현탁액을 만듭니다.분주 전 세포 계수기(cell counting chamber)를 사용하여 세포 수를 측정합니다. 웰당 30,000개의 세포를 분주합니다. 24웰 플레이트에서 세포를 37 °C, 5% CO2 조건으로 하룻밤 동안 배양합니다. 바이러스를 다루는 단계는 점막 노출을 방지하기 위한 수술용 마스크를 포함하여 적절한 개인 보호 장비를 착용한 상태로 생물 안전 작업대(biological safety cabinet) 내에서 수행해야 합니다.감염을 수행하려면 먼저 기존의 세포 배지를 100 µL의 섬유아세포 배지로 교체하십시오. 그 다음, 해동된 T4, KLF4, SOX2 및 c-Myc 렌티바이러스 분주액을 1 mL의 섬유아세포 배지에 재현탁하십시오. 각 바이러스를 MOI 3으로 세포에 첨가하고 부드럽게 섞은 후, 37 °C, 5% CO2 조건에서 하룻밤 동안 세포를 배양하십시오. 24시간 후 배지를 흡입하여 제거하고 500 µL의 신경 유도 배지를 첨가한 다음, 39 °C, 5% CO2 조건에서 세포를 배양하며 이틀마다 배지를 교체하십시오. 감염 후 6일째에 라미닌이 코팅된 6-well 플레이트를 준비하십시오.감염 후 7일째 되는 날, 6-웰 플레이트에 1 µg/mL 농도의 laminin 1 mL를 DPBS에 희석하여 첨가하고 4 °C에서 24시간 동안 보관합니다. 텍스트 프로토콜에 기술된 대로 DPBS-EDTA를 사용하여 세포를 분리합니다. DMEM/F12 500 µL를 첨가하고 현탁액을 15 mL 튜브로 옮깁니다. 그런 다음 샘플을 180 ×g에서 5분 동안 원심 분리합니다.상층액을 흡입하여 제거하고 펠릿을 1.5 milliliters의 신경 유도 배지에 재부유시킨 후, 라미닌이 코팅된 6-웰 플레이트에 세포를 분주하고 RO kinase 억제제를 최종 농도 10 micromolar가 되도록 첨가합니다. 세포를 39 °C, 5%CO2 조건에서 배양하며, 14일째부터 이틀마다 배지를 교체합니다. 감염 후에는 세포를 37 °C, 5%CO2에서 배양합니다. 위상차 현미경으로 관찰했을 때, 감염 후 약 17일경에 신경 상피 콜로니가 나타납니다.이들은 감염 후 약 20일째, laminin으로 코팅된 48-well 플레이트(텍스트 프로토콜에 기술된 방식)에 분주하기 하루 전쯤 피킹할 수 있을 정도로 충분히 성장해야 합니다. 하루 뒤, 플레이트에서 laminin을 흡입하여 제거하고 웰에 200 µL의 신경 유도 배지를 추가합니다. 피킹할 콜로니가 포함된 6-well 플레이트를 DPBS로 한 번 세척한 다음, 2 mL의 신경 유도 배지를 추가합니다.6-well 플레이트의 well당 배지를 준비하고, 얇은 바늘을 사용하여 콜로니 주변을 긁어내어 주변 세포들을 제거한 뒤 피펫 팁으로 콜로니를 기계적으로 분리하여 채취합니다. 50 µL로 설정된 200 µL 피펫을 사용합니다. 각 콜로니를 laminate 코팅된 48-well 플레이트의 각 well로 옮긴 후, 피펫팅을 10회 반복하여 기계적으로 단일 세포 현탁액을 생성합니다.최종 농도가 10 micromolar가 되도록 R kinase inhibitor를 세포에 첨가합니다. 48-well plate에서 37 degrees Celsius, 5%CO2 조건으로 이틀 동안 세포를 배양합니다. 세포의 밀도가 80~90% confluence에 도달할 때까지 이틀마다 배지를 교체합니다.IPCs를 신경 계통 배양으로 분화시키기 위한 IPC의 확장 및 동결 보존에 대해서는 텍스트 프로토콜을 참조하십시오. 세포를 라미네이트 코팅 플레이트에 배양합니다. 이전과 마찬가지로, 세포가 약 70% 정도로 합쳐지면(confluent) 배지를 신경 분화 배지로 교체하고, 3주 동안 이틀에 한 번씩 배지 교체를 계속합니다.3주 후 분화 과정 중에는 세포를 분할하지 마십시오. 더 성숙한 뉴런과 뉴런 하위 유형을 얻기 위해 세포가 뉴런 마커 TUJ one을 발현해야 합니다. IPC의 분화, 특히 글리아 계통으로의 분화를 위해 최대 3개월까지 분화를 계속하십시오. 글리아 전구 세포로의 분화를 유도하기 위해 20 ng/mL의 상피세포 성장인자가 포함된 글리아 유도 배지로 교체하십시오.배지의 절반을 제거하고 약 2주 동안 이틀마다 새 배지로 교체합니다. 이 기간 동안, 2주 후 100% confluence에 도달하면 10 micromolar R kinase inhibitor가 포함된 상태에서 세포를 1:3 비율로 분할 배양해야 합니다. 세포가 거의 confluent 상태가 되면 시판되는 astrocyte medium으로 배지를 교체하여 세포를 astrocyte로 추가 분화시키며, 이틀마다 배지 교체를 계속하면 약 7일 후에 세포가 astrocyte 마커를 발현하기 시작합니다.분화 프로토콜 진행 중 세포가 100% 합류(confluent) 상태가 되면, 1:2 비율로 분할 배양하십시오. 10 µM RO kinase 억제제가 존재하는 상태에서 섬유아세포에 T 4K LF four, SOX two 및 cmix sendi 바이러스를 감염시키고 신경 유도 배지 조건에서 배양한 결과, 섬유아세포의 형태 변화와 그에 따른 콜로니 형성이 나타났습니다. 감염 17일 후 생성된 단일클론 세포주는 확장 배양할 수 있으며, SOX two, SOX one neston, PAC six와 같은 신경 줄기세포 마커 및 증식 마커인 KI 67에 대해 양성 반응을 보였으나, 다능성 관련 마커인 T four는 발현하지 않았습니다.또한, 세포 배양액에 신경 성장 인자를 첨가함으로써, 성상교세포 분화를 유도하여 신경 전구 세포를 뉴런으로 분화시킬 수 있습니다. 프로토콜로 유도된 신경 전구 세포주는 전형적인 형태학적 변화 분석과 GFAP 염색을 통해 판별되는 것과 같이 글리아 계통으로도 분화될 수 있습니다. 이러한 직접 전환법을 통해, 우리는 3~4주 이내에 환자 유래 섬유아세포로부터 다분화능 유도 신경 전구 세포를 생성합니다.이 세포들은 수많은 생의학적 응용 분야에 활용될 수 있습니다. 이 기술의 영향은 알츠하이머병 및 파킨슨병과 같은 신경퇴행성 질환뿐만 아니라 다른 신경계 질환의 치료, 진단 및 모델링으로까지 확장됩니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

우리는 인간의 연결을 progenitors 및 신경 수리 개발 CNS에의 연결을 세포 유형의 대형 공급 파생을 가능하게 작은 분자와 함께 정의된 조건 하에서 유지 pluripotent 인간 배아 줄기 세포에서 직접 neuroblasts의 유도를위한 프로토콜을 설립했습니다.

작은 분자와 유도 Pluripotent 인간 배아 줄기 세포에서 인간의 연결을 Progenitors과 뉴런의 효율 유도

이 비디오는 성인 인간 섬유아세포에서 유래한 유도 신경전구세포(iNPC)를 분리하는 기술을 보여줍니다. iNPC 군집체를 분리하고 iNPC 개체군의 지속적인 증식 및 확장을 촉진하는 적절한 배양 배지가 있는 상태에서 라미닌 코팅된 다중 웰 플레이트 웰에서 배양하는 데 관련된 단계를 간략하게 설명합니다.

성체 인간 섬유아세포에서 유래한 유도 신경전구세포 군집(Induced Neural Progenitor Cell Colonies)

이 동영상은 특수 배지를 사용하여 유도 신경전구세포(iNPC)를 뉴런과 성상세포로 분화하는 과정을 보여줍니다.

유도 신경전구세포(Induced Neural Progenitor Cells)를 성상세포(astrocyte)로 분화(Differentiating Induced Neural Progenitor Cells into Astrocyte)

이 비디오는 성인 인간 진피 섬유아세포(aHDF)의 뉴런 생성을 보여줍니다. aHDF는 뉴런 전사 인자(neuronal transcription factor)와 짧은 헤어핀 RNA(short hairpin RNA, shRNA)에 대한 유전자를 운반하는 렌티바이러스 벡터를 사용하여 재프로그래밍됩니다. shRNA는 뉴런 전사 억제인자(neuronal transcriptional repressor)의 발현을 억제하고, 뉴런 전사 인자(neuronal transcription factor)는 aHDF를 뉴런으로 분화하기 위해 유전자를 활성화합니다. 이러한 재프로그래밍된 aHDF는 성숙한 뉴런을 생성하기 위해 초기 및 후기 뉴런 변환 배지에서 배양됩니다.

인간 피부 섬유아세포 리프로그래밍을 통한 뉴런 생성

우리는 인간의 기본 섬유 아세포 배양에서 순진 능성 피부에서 파생 된 전구체 (SKP) 세포를 분리하는 방법을보고합니다. 우리는 섬유 아세포 문화에서 파생 된 이러한 SKPs은 인간의 피부 생검에서 직접 파생 된 것과 유사한 줄기 세포 특성을 공유하는 것을 보여줍니다. 이러한 세포는 OCT4와 나노 등 능성 마커뿐만 아니라 신경 능선 마커 스틴을 표현한다.

인간의 기본 섬유 아세포 배양에서 순진 성인 줄기 세포 분리

이 프로토콜은 단일 세포 현탁액 분해없이 구형 신경 줄기 및 전구 세포 응집체의 확장을 허용 신규 기계적 자르고 방법을 설명한다. 세포 / 세포의 접촉을 유지하는 것은 40 구절에 대한 신속하고 안정적​​인 성장을 할 수 있습니다.

인간의 신경의 집계의 cGMP-해당 확장 방법은 줄기 및 전구 세포는 다 능성 줄기 세포 또는 태아 뇌 조직에서 파생 된

직접 혈통 프로그래밍에 대한 뇌 상주 세포를 표적으로하는 것은 뇌 수리에 대한 새로운 관점을 제공합니다. 여기서 우리는 성인의 대뇌 피질에서 뇌에 상주하는 혈관 주위 세포에 풍부한 문화를 준비하고 SOX2 및 Ascl1 요인 전사의 레트로 바이러스 매개 식에 의해 유도 된 신경 세포로 이러한 변환하는 방법의 프로토콜을 설명합니다.

유도 된 신경 세포로 성숙한 인간 두뇌의 혈관 주위 세포에서 파생 된 세포의 리니지 - 프로그래밍

직접 방법 말초 혈 세포로부터 농축 조혈 전구 세포로부터 인간 신경 줄기 세포를 유도하기 위해 개발되었다.

말초 혈액 조혈 전구 세포에서 인간 신경 줄기 세포의 직접 유도

직접 신경 프로그래밍 시작 체세포의 나이 유지 하는 신경 세포 생성 합니다. 여기, 우리는 성인 인간 기증자 로부터 얻은 피부 섬유 아 세포에서 유도 된 신경 세포를 생성 하는 단일 벡터 기반 방법을 설명 합니다.

성인 인간 피부 섬유 아 세포에서 유도 된 신경의 고수익 문화의 간단한 세대

세포 재프로그래밍은 다능성 세포 상태를 조절하고 유지하는 주요 유전자의 도입을 요구합니다. 기술된 프로토콜은 바이러스/통합 방법 없이 인간 진피 섬유아세포로부터 유도된 만능 줄기 세포(iPSCs) 콜로니의 형성을 가능하게 하지만, 세포 방어 메커니즘을 감소시키는 면역 회피 인자와 결합된 비변형 RNA(NM-RNAs)를 사용한다.

비통합 방법을 사용하여 복부 피부에서 성인 인간 진피 섬유 아세포의 분리 및 유도 만능 줄기 세포의 생성

우리는 유도 된 신경 전구 세포 (iNPC)로 인간의 피부 유래 섬유 아세포와 유도 된 천체 세포 (iA)로 후속 분화를 재프로그래밍하는 프로토콜을 설명합니다. 이 방법은 대량으로 iNPC 및 iA의 빠르고 재현 가능한 생성으로 이어집니다.

섬유아세포에서 신경 전구세포로의 직접 변환을 이용한 신경질환 시험관 모델링 및 성상세포로의 분화

배우세요 성인 인간 피부 섬유아세포를 직접 유도 신경 전구세포로 변환하는 방법을. 환자 특이적 신경 세포를 빠르게 생성하여 재생의학 치료에 활용할 수 있습니다.

성인 인간 섬유 아세포의 유도 및 확장 신경 전구 세포에 자신의 직접 변환

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