Name: 동기화를 필요로하지 않고 유동 세포 계측법을 사용하여 세포주기 진행의 시간적 추적 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-08-16T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 52 s
Description: 배우세요 BrdU를 이용한 세포주기 S기 세포 추적 방법으로, DNA 염료와 항체라벨링을 결합하여 세포 운명을 분석합니다. 이 기법은 세포생물학 및 신경과학 연구에 활용됩니다.

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이 연구는 미국 백혈병 및 림프종 학회(6105-08), NSW 암 위원회 보조금(13-02), NHMRC 선임 연구 펠로우십(LJB)(1042305) 및 프로젝트 보조금(1041614)의 지원을 받았습니다.

여기에 설명 된 프로토콜은 급성 림프 모구 백혈병 세포주 NALM6를 사용하지만, 다른 유형의 세포에도 적용 할 수있다. 1. 솔루션 및 시약 <ol><li> 전체 RPMI <ol><li> 56 ml의 소 태아 혈청 (FCS) 및 RPMI-1640 배지 500㎖의 병에 200 ml의 5.5 mm의 L - 글루타민 추가. </li></ol></li><li> BrdU의 원액 <ol><li> 둘 베코 인산염 완충 생리 식염수 (DPBS)에서 32.5 mM의 BrdU의 (10 ㎎ / ㎖)을 준비합니다. </li></ol></li><li> BrdU의 전체 RPMI <ol><li> 전체 RPMI 10 ㎖에 BrdU의 주식 솔루션의 6.2 μl를 추가합니다. </li></ol></li><li> DNase의 솔루션 <ol><li> 1 밀리그램의 DNase / DPBS에 mL로 준비합니다. </li></ol></li><li> 염색 버퍼 <ol><li> DPBS에서 3 % 열 - 불 활성화 FCS 및 0.09 %의 아 지드 화 나트륨을 준비한다. </li></ol></li><li> 고정 버퍼, 투과성으로 버퍼 및 세척 버퍼의 정의에 대한 자료 목록을 참조하십시오. </li></ol> 2. 세포 아니테 : 세포 6 개월을 초과하는 배양하지 않았다. 이 방법은 셀 밀도 및 배양 배지에 대한 조정과 비 - 부착 세포 라인에 직접 적용 할 것이다. 실험의 개시에 기하 급수적으로 증가하고 세포를 사용합니다. <ol><li> 전체 RPMI에서 T-75 배양 플라스크에 NALM6 세포를 유지한다. 클래스 II 바이오 안전성 캐비닛을 사용하여 무균 조건 하에서 모든 단계를 수행합니다. <ol><li> 세 번 주간 문화를 분할하여 ml의 당 6 10 × 1-2 사이의 세포를 NALM6 세포를 유지한다. </li><li> 공기에서 이산화탄소 5 %에서 37 ° C에서 품어. </li></ol></li></ol> BrdU의와 세포의 3 펄스 라벨링 주의 : 잠재적 돌연변이와 기형은주의하여 BrdU의를 처리합니다. <ol><li> 5 분 150 XG에 원심 분리기 세포. 참고 : 신선한 매체에 세포를 전송하는 것은 결과의 재현성을 향상시킨다. </li><li> 2 × 106 (C)에서 완전 RPMI에서 세포 수와 세포를 재현 탁 수행ELL 학생 / ㎖. </li><li> BrdU를 완전 RPMI 1 × 106 세포 / ml의 최종 세포 농도를 생산하는 두 셀 1 희석. </li><li> 다음 완전한 RPMI 10 셀 1 희석, 45 분 동안 5 % CO 2, 37 ℃에서 인큐베이션. 조심스럽게 (150) 5 분 XG와 원심 분리기 세포 상층 액을 모두 폐기합니다. </li><li> 완전한 RPMI의 작은 부피 (~ 100 μL)에 재현 탁 된 세포는 세포 수를 수행하고 1 × 106 세포 / ml로 조정한다. </li><li> 피펫 48 웰 플레이트로 세포를 1 ㎖. 모든 빈 우물에 DPBS의 피펫 1 ml를 더 재현 가능한 결과를 얻을 수있다. </li><li> (17) 여기에서, 원하는 시점들, 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 공기 중 5 %에서 37 ° C에서 CO 2 부화 , 18, 19, 20, 21, 22, 23, 및 24 시간. 참고 : 시간의 길이는 실험 설계 측정하는 것을 목표로 무엇에 따라 달라집니다. </li><li> 피펫을 사용하여 외과 튜브로 모든 세포를 전송합니다. 1ml의 volu로 잘 헹구고 순차적5 ㎖의 최종 총 부피의 PBS MES. </li><li> 5 분 150 XG에 원심 분리기 조심스럽게 모든 뜨는을 제거합니다. 세포를 염색 할 준비가 즉시 (4 절)을 수행합니다. </li></ol> 4. 세포 얼룩 주 : 세포 표면 염색이 필요한 경우 세포에 걸쳐 4 ℃로 유지되는 것을 보장하기 전에 고정을 수행한다. <ol><li> 염색 버퍼 100 ㎕에 재현 탁 세포 (옵션 표면 염색은 항원을 표면 및 4 ℃에서 30 분 동안 배양 항체의 권장 볼륨을 추가). </li><li> 150 XG에서 5 분 동안 염색 버퍼 1 ㎖, 원심 분리기를 추가하고 상층 액을 버린다. 참고 : 등 특정 항체 농도, 배양 시간을 특정 실험 목적에 따라 달라질 수 있습니다. </li><li> 고정과 투과성으로 <ol><li> 고정 버퍼 100 ㎕에 세포를 재현 탁하고 실온에서 15 분 동안 배양한다. </li><li> 1 ml의 O 추가F 세척 버퍼, 150 XG에서 5 분 동안 원심 분리하고 상층 액을 버린다. </li><li> 투과성으로 완충액 100 ㎕에 세포를 재현 탁하고 얼음에 10 분 동안 세포를 배양한다. </li><li> 150 XG에서 5 분 동안 세척 버퍼 1 ㎖, 원심 분리기를 추가하고, 상층 액을 버린다. </li><li> 튜브 당 고정 버퍼 100 ㎕에 세포를 재현 탁하고 실온에서 5 분 동안 배양한다. </li><li> 150 XG에서 5 분 동안 세척 버퍼 1 ㎖, 원심 분리기를 추가하고, 상층 액을 버린다. 주 : 필요한 경우, 프로토콜은 여기에서 일시 정지 될 수있다. 염색 완충액 경우 고정 된 세포는 4 ° C에서 며칠 동안 안정하다. 진행하기 전에 원심 분리 다음 염색 버퍼를 제거합니다. </li></ol></li><li> DNase의 치료 <ol><li> DNase의 용액 100 ㎕ (30 DNase의 / 10 6 세포의 μg의), 37 ℃에서 1 시간 동안 세포를 배양에 재현 탁 세포. </li><li> 5 분 150 XG에 세척 버퍼, 원심 분리기 1 ML을 추가하고 상층 액을 버린다. </리&gt; </ol></li><li> 항체 염색 주 : BrdU의 이외의 세포 마커 염색 BrdU의 염색과 동시에 행할 수있다. <ol><li> 중요 : 각 하나의 형광 색소로 표지 흠없는 세포와 세포로 구성된 보상 컨트롤을 준비합니다. 이상적으로, 실험 튜브에 사용되는 것과 같은 보상 컨트롤 같은 항체를 사용합니다. 이것이 가능하지 않을 경우, 고도로 발현 항원 항체 대신 동일한 형광 색소에 접합. </li><li> 세척 완충액 50 μL에 재현 탁하고 세포를 1 μL / BrdU의 항체 10 6 세포를 추가한다. 참고 : 다른 특정 세포 내 항원에 직접 결합하는 항체도 추가 할 수 있습니다. 주 :. cdc2에 Ser10 인산화 히스톤 H3에 항체가 G2 및 M에서 세포를 구별하는 데 사용할 수있는, 히스톤 H3 유사 분열 동안 Ser10에 인산화 10 항체는 근래 세포를 검출하는데 사용될 수 Tyr15 인산화전자 유사 분열에 최선을 다하고 있습니다. (11) </li><li> 실온에서 20 분 동안 세포를 인큐베이션. </li><li> 5 분 동안 150 XG에서 1 세척 버퍼의 ml의 원심 분리기 세포를 추가하고 상층 액을 버린다. </li></ol></li></ol><ol start="6"><li> 세포주기 분석을위한 얼룩의 DNA <ol><li> 펠렛을 풀고 7-AAD 용액 (0.25 μg의) 20 μl를 추가합니다. 주 : 7-AAD / 셀의 일정한 양을 사용하는 것이 중요합니다. </li><li> 염색 완충액 1 ml의 세포를 재현 탁. </li></ol></li></ol> 유동 세포 계측법 데이터 5. 컬렉션 참고 : 사용되는 형광 색소의 수와 특성에 따라 달라집니다 필요한 기계. <ol><li> 다음과 같은 파라미터를 수집 FSC-A, SSC-A, FSC-H 선형 스케일 7- AAD 형광 (FSC-W는 FSC-H 대신에 사용될 수있다). 로그 스케일 APC 채널 모아서. 로그 스케일을 사용하여 표면 또는 내부 라벨의 평가를 위해 필요한 추가 채널을 수집합니다. </li><li> COM을 수행시료를 분석하기 전에 다른 형광 색소 사이의 발광 스펙트럼 관찰에 신호를 중첩 보정 :. 참고 : 대부분의 유동 세포 계측기가이 작업을 자동으로 수행합니다. </li><li> 각 샘플에 대해 적어도 10,000 이벤트를 수집합니다. </li></ol> 유동 세포 계측법 데이터의 분석 (6) 주 : 데이터 해석되지만, 다른 소프트웨어 패키지가 또한 사용될 수있다 계측법 FlowJo 흐름이 연구에 사용 하였다. 게이팅 전략은도 1에 도시되어있다. <ol><li> FSC-A와 SSC-매개 변수를 사용하여 실행 가능한 세포 인구를 식별합니다. </li><li> 이 인구 내에서 이중선과 (도 여기에 사용할 수있는 FSC-W) FSC-A 및 FSC-H를 사용하여 집계를 제외합니다. </li><li> 모집단 내의 Y 축의 X 축 및 BrdU의 APC-7-AAD를 사용하여 도트 플롯을 설정한다. </li></ol><img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/52840/52840fig1highres.jpg" width="700" /> 그림 1 : 게이팅 전략 왼쪽 PA.Nel 보낸 : ungated 세포는 SSC-도트 플롯 대 FCS-에 표시됩니다. 가능한 세포 인구가 도시 게이트로 식별됩니다. 센터 패널 : 왼쪽 패널에서 문이 세포는 FSC-H 도트 플롯 (대신 높이를 사용할 수 있습니다 FSC-W) 대 FSC-에 표시됩니다. 이중선과 집계가 확인하고 그림과 게이트에 의해 제외됩니다. 오른쪽 패널 : 중앙 패널에 이중 배제 날로부터 게이트 세포가 APC-도트 플롯 대 7-AAD에 표시됩니다. BrdU의 항체는 APC는 펄스 라벨 동안 BrdU의를 통합 한 세포의 식별을 가능하게 표시되어 있습니다. 7-AAD는 DNA 콘텐츠에 대한 정보를 제공합니다. 상단 게이트는 BrdU의 펄스, 왼쪽 하단 게이트, 세포 G 0/1 및 G에 그 오른쪽 게이트의 시간에 S 단계에 따라서 BrdU의 양성 세포를 정의 / M 2. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52840/52840fig1highres.jpg" target="_blank">를 보려면 여기를 클릭하십시오 이 그림의 더 큰 버전.</a> <ol start="4"><li> 세포주기<html> nalysis <ol><li> 이중 제외 게이트의 셀의 첫 번째 데이터 파일과 문을 엽니 다. </li><li> (FloJo 소프트웨어 플랫폼 아래에있는) 세포주기 분포이 인구를 분석하고 딘 - 제트 - 폭스 모델을 사용합니다. </li><li> G 0/1 및 G 게이트를 작성하여 2 / M 피크의 위치를 가져옵니다. </li><li> BrdU의 양성 세포와 주제에 게이트 같은 세포주기 분석이 인구. </li><li> 만들 게이트에서 같은 게이트를 적용하고 G 0/1 및 G 2 / M 피크의 위치에 대한 (생성 된 게이트를 사용하여) 제약 조건을 설정하여 G 0/1 및 G 2 / M 피크의 위치를 제공합니다. 이는도 2의 제 2 패널에 도시되어있다. 주의 : 다른 소프트웨어는 데이터를 분석하는데 사용될 수 있으며, 설명은 따라서 변할 것이다. </li></ol></li></ol>840 / 52840fig2highres.jpg &quot;폭 =&quot;700 &quot;/&gt; 그림 2. 세포주기 진행 첫번째 패널 (모든 셀)을 겹 배제 게이트에 의해 정의 세포군에 게이팅된다. 이 인구는 X 축에 7-AAD와 히스토그램 표시했다. G 0/1 피크의 피크 축 아래 화살표로 표시된다. 도 1에 도시 된 바와 같이 후속하는 패널에서의 BrdU 양성 세포상의 게이팅되었다. 이중선 배제 게이트의 게이팅 때 얻어지는 G 0/1 위치에 대한 값은 FlowJo 세포주기 소프트웨어 내에서의 BrdU 양성 게이팅 셀에인가된다. 도 1과 처음 두 패널에 도시 된 바와 같이 전체 모집단을 분석 할 때 얻어진 값에 기초하여 G 0/1 피크의 위치에서와 같이 이후의 각 패널은 BrdU의 양 인구에 게이팅되었다. 동일한 SAMP에서의 BrdU 양성 세포에 대해 G 0/1 인구의 위치를 식별하는 BrdU의 음 부분을 사용하여제작 샘플의 DNA를 얼룩의 강도에 어떤 약간의 차이를 제어합니다. 각각의 패널 상에 표시된 숫자는 BrdU의 펄스가 종료 된 이후의 시간을 나타낸다. 계산 된 세포주기 단계가 음영 녹색으로 표시되어있다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52840/52840fig2highres.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

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세포주기 분석하는 능력은 암 생물학을 이해하고 세포 증식 및 성장에 영향을 미치는 두 약물 및 유전자의 작용 메카니즘에 중요하다. 전하는 세포 증식을 측정하는 검정법 다수 존재하지만, 대부분은 단지 본 셀 번호를 나타내는 측정 값을 제공한다. 이들은 직접 시각화 및 계산, 신진 대사 활동 또는 ATP 농도로 세포 수를 측정 분석을 포함한다. 이러한 방법의 많은의 주요 장점은 조건 또는 화합물의 큰 숫자를 선별하기에 유용하고, 마이크로 포맷과 자동화에 상대적으로 수행하기 쉽고 의무가 있다는 것입니다. 이러한 방법의 많은 단점은 죽음으로 인해 세포의 손실이 잠재적으로 세포 증식의 과소 평가로 이어지는 고려되지 않는 것입니다. 또한 이러한 방법은 대량 인구를 측정 및 단일 세포의 연구 또는 세포의 교통을 통해 허용하지 않습니다세포주기. 아마도 가장 신뢰할 수 있고 정확한 일반적으로 사용되는 확산 분석, 중 DNA 합성을 측정하는 것들이다. 기존의 세포 증식 분석은 몇 시간 밤새 새...

세포주기 진행 동안에 세포주기 및 세포 기능에서 발생하는 변화의 평가는 생물, 특히 암 생물학의 여러 측면의 이해에 기초한다. 악성 종양의 치료를 위해 개발에 많은 제제는 세포주기 진행에 지대한 영향을 미칠 또는 세포주기 - 종속 메카니즘을 통해 세포 사멸을 유도한다. 세포주기의 특정 단계에서 세포주기 역학 또는 세포를 연구하기 위해, 세포를 동기화하는 것이 일반적이다. 그러나 동기화 방법은 잠재적 결과 얻어진 교란, 검토되고 세포에 해로운 영향을 가질 수있다. 1 시간에 걸쳐 하나의 세포에서 세포주기 진행의 최근 세포주기의 특정 단계에서만 존재하는 형광 태그 된 단백질의 사용이 허용 된 분석 (2) 그러나,이 세포는 유전자가 읽을 수있는 시스템의 사용을 제한하는, 이들 태그가 단백질을 발현하도록 조작 할 필요가 공부 될ILY 달성했다. 합성 (S) 상, DNA 복제와 유사 분열 (M) 여기서 세포 분열이 발생되어 세포주기는 두 개의 활성 단계로 구성됩니다. 이 단계는 세 갭 단계, G 0, G 1 및 G 2로 구분됩니다. 셀의 크기가 종래 세포 성장은 DNA 복제의 완료 사이하지만 세포 분열 전에 계속 DNA 복제와 G이 증가 여기서 G는 0 또는 정지, 세포주기를 떠난 쉬고 위상이고, G 1이다. 세포주기를 통해 진행이 체크 포인트의 수에 의해 제어된다. 환경 조건이 DNA 합성을지지하지 않으며 S 단계 진입을 방지 할 때 G 1 체크 포인트가 활성화됩니다. 인트라 S 상 검문소 또는 지연 실속 복제 포크 초래할 수 DN​​A 손상에 의해 유발 될 수있다. 손상 후 G 2 검출되면 G 2 중 DNA의 복제 충실도를 확인되고 </서브&gt; 체크 포인트는 분열을 셀에 DNA 복구 전에 허용 활성화됩니다. 유사 분열 동안 최종 체크 포인트는 세포 분열이 성공적으로 완료 될 수 있도록 염색 분체가 제대로 유사 분열 판에 정렬되어 있는지 확인합니다.이 체크 포인트 3 활성화는 일반적으로 세포 인구를 동기화하는 데 사용됩니다. 세포주기 체크 포인트는 다수의 인자에 의해되지만 가​​장 일반적인 DNA 손상의 검출의 암 생물학에서 활성화 될 수있다. DNA 손상 응답 (ATR) 관련 PI3 키나아제 형 키나제의 실조증 모세 혈관과 Rad3 의해 개시 및 운동 실조의 모세 혈관이 (ATM) 각각 하류 효과기 키나아제 CHK1 및 Chk2를 활성화하는 돌연변이. 3 이벤트 범위가 정지 포함 CHK1를 기동 복제 포크 DNA 가교 결합 및 자외선 손상 Chk2는 주로 이중 가닥 바꿈에 의해 활성화된다. 세포주기의 전 길이에 변경된 조건의 효과를 연구하기위한 통상의 방법S는 세포주기의 특정 단계에서 세포를 동기화한다. 한 이것은 여러 가지 방법을 통해 달성 될 수있다. 세포를 물리적 크기, 밀도, 측면 스 캐터 (입상), 및 세포 표면 마커의 발현에 기초하여 분리 될 수있다. 더 실제적으로, 세포는 화학적 수단에 의해 동기화 될 수있다. 예컨대 티미 딘, 히드 록시 우레아 및 시토신 아라 비노 여러 에이전트는 에이전트가 제거 된 후 순환을 계속 S 단계에서 세포의 축적으로 인한 세포주기의 S 단계에서 DNA 합성을 억제하는데 사용될 수있다. 또는 M 상 DNA 함량 - 세포는 G 2 방추사 형성 체포 방지 nocodazole으로 처리. G 0 단계에서 세포의 축적 배지 결과에서 혈청의 제거. 배양 혈청 내의 영양소의 재 첨가 세포의 정상적인 순환을 재 - 시작한다. 그러나 이러한 동기화 방법은 모든 세포의 정상적인 순환과 성장을 방해 할 수 resul중요한 세포 사멸에 T. 급성 림프 구성 백혈병 세포의 동기화는 특히 도전이며,이 세포는 유전자 조작 의무가 없습니다. 여기에 설명 된 방법은 세포주기 역학 평가 전통적인 동기화 또는 유전자 조작없이 세포주기의 특정 단계에서 세포의 연구를 허용한다. 이 방법은 유전자 변형 전통적인 동기화 과정이 용이하게 달성되지 않은 다른 세포 유형에 유용 할 수있다. 방법은 세포의 단기 성장과 증식에 거의 영향을 미치지 브로 모데 옥시 우리 딘 (BrdU의) 혼입의 노포 사용에 기초한다. 4 설립 BrdU의 프로토콜은 S 단계에서 새로 합성 된 DNA 내로 BrdU의 혼입을 활용 . 이것은 영구적 BrdU의 노광 중에 S 단계에서 된 것으로 세포를 표시한다. 이는 인구의 BrdU의 incorpor위한 염색하여 나중 시점에서 식별 될 수있다ATION 이에 따라야하고 세포주기 교통 약물 효과의 연구를 허용하는 시간에 걸쳐 평가 될 수 동기 인구로서 작용한다. BrdU의 보통의 DNase 또는 산 처리 다음 달성 전에 항체 염색에 노출 될 필요가있다. -6,7- BrdU의 도입은 부가적인 마커의 포함을 가능하게 검출하기 위해 유세포 사용. 가장 중요한 연구의 개시시에 S 상에 있던 세포의 세포주기 위상 분포의 평가를 가능하게 DNA 함량을 측정하기 위해 염료를 사용하는 것이다. (8) 또한 추가적인 표면 또는 세포 항원은 또한 조사 할 수있다. (9) 이러한 이러한 사료된다 등의 세포주기 이벤트 관련 또는 절단 카스파 제 -3와 같은 세포 사멸 마커 등으로 관련이 없어 보이는 세포의 기능을 할 수 있습니다. 잠재적 인 응용 프로그램은 연구자의 상상력에 의해 제한됩니다.

<table><tbody><tr><td>APC BrdU 플로우 키트</td><td>BD Biosciences</td><td>552598</td><td>BrdU 항체, 7-AAD 및 BD Cytofix/Cytoperm Buffer(고정 완충액이라고 함)</td></tr><tr><td>BD Cytoperm Permeabilization Buffer Plus</td><td>BD Biosciences</td><td>561651</td><td>Permeabilization Buffer</td></tr> BD <tr><td>Perm/Wash Buffer</td><td>BD Biosciences</td><td>554723</td><td>Wash buffer</td></tr><tr><td>DNase</td> Sigma라고 함 <td></td><td>D-4513</td><td></td></tr><tr><td>BD 팔콘 12 x 75&nbsp; mm FACS 튜브</td><td>BD Biosciences</td><td>352008</td><td></td></tr><tr><td>BD Pharmingen 얼룩 완충제</td><td>BD Biosciences</td><td>554656</td><td></td></tr><tr><td>BD LSR FORTESSA 유세포 분석기</td><td>BD Biosciences</td><td>FORTESSA</td><td></td></tr><tr><td>Pipetman</td><td>Gilson</td><td>P2, P20, P100, P1000</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1,640 w/o L-Gln 500 ml</td><td>Lonza</td><td>12-167F</td><td></td></tr><tr><td>DPBS</td><td>Lonza</td><td>17-512F</td><td></td></tr><tr><td>태아 소 혈청</td><td>FisherBiotec</td><td>FBS-7100113</td><td></td></tr><tr><td>L-글루타민</td><td>시그마</td><td>G7513-100ML</td><td></td></tr><tr><td>5-Bromo-2&prime;-deoxyuridine</td><td>시그마</td><td>B5002-1G</td><td></td></tr><tr><td>Falcon TC 150&nbsp; cm2 벤티드 플라스크</td><td>BD Biosciences</td><td>355001</td><td></td></tr><tr><td>피펫 25&nbsp; ml</td><td>Greiner</td><td>760180</td><td></td></tr><tr><td>Aersol 피펫 200&nbsp; &마이크로; l</td><td>Interpath</td><td>24700</td><td></td></tr><tr><td>Aersol 피펫 1&nbsp; ml</td><td>Interpath</td><td>24800</td><td></td></tr><tr><td>원심분리기</td><td>Spintron</td><td>GT-175R</td><td></td></tr><tr><td>CO2 인큐베이터</td><td>바인더</td><td>C 150</td><td></td></tr><tr><td>AF488 안티 히스톤 H3 Phospho (Ser10) 항체</td><td>세포 신호</td><td>9708S</td><td></td></tr><tr><td>Phospho-Chk2 (Thr68) (C13C1) 토끼 mAb</td><td>세포 신호</td><td>2197S</td><td></td></tr><tr><td>Phospho-Chk1 (Ser345) ( 133D3) 토끼 mAb</td><td>세포 신호</td><td>2348S</td><td></td></tr><tr><td>NALM6&nbsp;</td><td>DSMZ</td><td>ACC-128</td><td></td></tr></tbody></table>

동기화를 필요로하지 않고 유동 세포 계측법을 사용하여 세포주기 진행의 시간적 추적

Temporal Tracking of Cell Cycle Progression Using Flow Cytometry without the Need for Synchronization

이 프로토콜은 셀을 동기화할 필요 없이 셀 주기를 통해 셀을 추적할 수 있도록 하는 방법을 설명합니다. 세포 동기화를 달성하는 것은 많은 세포 시스템에서 어려울 수 있습니다. 표준 관행은 특정 단계에서 세포주기 진행을 차단한 다음 축적된 세포를 방출하여 주기를 통해 일제히 진행되는 세포의 파동을 생성하는 것입니다. 그러나 일부 세포 유형은 이 차단이 독성이 있어 비정상적인 세포 순환 또는 대량 사멸을 초래합니다. 브로모데옥시우리딘(BrdU) 흡수는 개별 세포의 세포주기 단계를 추적하는 데 사용할 수 있습니다. 세포는 이 합성 티미딘 유사체를 통합하면서 S기 동안 새로운 DNA를 합성합니다. 짧은 기간 동안 BrdU를 제공하면 BrdU가 존재하는 동안 S 단계에 있던 세포 풀을 표시할 수 있습니다. 그런 다음 이러한 세포를 세포주기의 나머지 부분을 통해 다음 복제 라운드로 추적할 수 있으므로 잠재적으로 독성이 있는 세포주기 차단을 유도할 필요 없이 세포주기 단계의 지속 기간을 결정할 수 있습니다. 또한 세포주기의 후속 단계에서 내부 및 외부 단백질의 발현을 결정하고 상관시키는 것이 가능합니다. 이는 세포주기 단계의 할당을 더욱 구체화하거나 체크포인트 활성화 또는 세포 사멸과 같은 다른 세포 기능에 미치는 영향을 평가하는 데 사용할 수 있습니다.

이 방법은 다양한 정보를 얻기 위해 사용될 수있다. 일부 응용 프로그램은 여기에 설명되어 있습니다. 세포주기의 지속 기간의 평가 세포주기를 통해 세포로 운송하는데 필요한 시간을 결정하기 위해, 세포를 BrdU의 펄스 아래의 다양한 시점에서 수확한다. 평가의 간격은 분석되는 특정 셀에 적용될 수있다. 조혈 세포주는 표준 배양 조건에서 세포주기 단계의 길이를 결정하는 임의의 약물 치료의 부재하에 24 시간 동안 매 시간마다 측정 하였다. (2)가 24 시간에 걸쳐 NALM6 셀 스냅 분석의 선택을 보여준다. BrdU의 피 후 10 시간을 검출 (즉,도 1에서의 BrdU의 양 게이트 이내) BrdU의 펄스시의 S 단계에서 세포 인 세포주기의 단계에있는 세포의 피크, G (2) / M으로 진행ulse. S ...

이 프로토콜은 특정 시점에서 S 상에 있었던 셀의 시간 추적을 허용 브로 모데 옥시 우리 딘 (BrdU의) 흡수의 사용을 설명한다. DNA 염료 및 표지 항체의 첨가는 이후 시간에 S 상 세포의 운명의 상세한 분석을 용이하게한다.

This protocol describes a method to permit the tracking of cells through the cell cycle without requiring the cells to be synchronized. Achieving cell ...

temporal-tracking-cell-cycle-progression-using-flow-cytometry-without

Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

안달 기반 기자 점점 라이브 세포 키나제와 인산 가수 분해 효소 활동을 모니터링하는 데 사용됩니다. 여기 대상 인산화에서 세포주기 종속 변화를 평가하기 위해 안달 기반의 기자를 사용하는 방법에 대한 방법을 설명합니다.

안달 Ratiometric하여 세포주기를 통해 키나제와 인산 가수 분해 효소 활동을 모니터링

세포의 인구의 세포주기의 위치를​​ 결정, 또는 신호가 증식에 미치는 영향에 대해 이해하고, 쉽게이 프로토콜을 사용하여 유동세포계측법에 의해 측정할 수 있습니다. 우리는 세포를 얼룩 및 세포주기 자신의 지위를 quantifying하는 간단한 실험 방법을보고합니다.

포유 동물 세포의 세포주기의 위치 분석

세포주기 단계의 진행과 속도론의 추적 미묘한 변화는 Propidium 요오드화물의를 통해 BrdU 및 전체 게놈의 DNA의 염색법과 핵산의 대사 라벨링의 조합을 사용하여 수행할 수 있습니다. 이 방법은이를 차례로 세포주기의 진행에 영향을 미치는가 아닌 특정의 DNA 손상의 도입을 방지, 자전거 전지의 화학 동기화의 필요성을 방지합니다.

신진 대사 레이블 및 유동세포계측법와 세포주기 진행의 동력학 측정

우리는 세포주기의 특정 단계와 관련된 사건을 연구하기위한 배경 정보를 제공하는 두 가지 세포 동기화 프로토콜을보고합니다. 우리는이 접근법이 교란되지 않은 세포주기 또는 세포주기에 영향을 미치는 약물에 노출되었을 때 특정 유전자의 조절을 분석하는데 유용하다는 것을 보여준다.

두 개의 상보적인 세포 동기화 프로토콜에 의한 세포주기 조절 유전자 발굴 연구

렌즈 무료 비디오 현미경 셀 문화 인큐베이터 안에 직접 모니터링할 수 있습니다. 여기 우리가 획득 하 고 배양된 HeLa 세포의 2.7 하루 종일 수집 분석 하는 데 사용 하는 전체 프로토콜 설명, 개별 셀 형태학 및 10584 세포 주기6 측정 추적 2.2 x 10의 데이터 집합에 지도.

동적에 대 한 렌즈 무료 비디오 현미경 및 부착 세포 배양의 정량 분석

여기서 우리는 단일 세포에서 다중 노화 관련 마커의 시각화 및 정량화를 위한 유세포 측정 기반 방법을 제시한다.

치료 유도 노인성 암 세포에서 다중 형광 노화 마커의 동시 이미징 및 유동 세포 측정 기반 검출

여기에 제시된 것은 세포 분열 수, 표면 세포 표현형 및 세포 친족 관계를 동시에 측정할 수 있는 유세포 분석 기반 기술입니다. 이러한 속성은 순열 기반 프레임워크를 사용하여 통계적으로 테스트할 수 있습니다.

조혈 줄기 및 전구 세포에 대한 유세포 분석을 통한 친족, 분열 수 및 표현형의 동시 평가

동기화된 시계열 실험 분석의 한 가지 과제는 실험이 종종 동기 및 세포 주기 기간으로부터의 회복 기간이 다르다는 것입니다. 따라서 서로 다른 실험의 측정값을 집계하여 분석하거나 쉽게 비교할 수 없습니다. 여기에서는 단계별 비교가 가능하도록 실험을 정렬하는 방법을 설명합니다.

교차 실험 비교를 위한 세포 주기 동기화 모델의 특성화 손실을 사용한 동기화된 시계열 데이터의 정렬

이 프로토콜은 효모 세포 주기 정지 및 선택적 방출의 두 가지 방법을 자세히 설명하고 S. cerevisiae에서 세포 주기 의존적 과정을 연구하기 위한 형광 현미경의 사용에 대해 자세히 설명합니다.

발아 효모의 세포 주기 의존적 과정의 조작 및 분석

마우스 testis에서 높은 정화 가능한 meiotic 분수를 얻는 효과적인 방법은 형광 활성 세포 분류 (외과)와 세련된 세포 분리 프로토콜을 결합하는, 설명되어 있습니다. 이 방법은 DNA의 내용과 개별 meiotic 분수의 핵 밀도의 차이 활용합니다.

마우스 Meiotic 셀 유동세포계측법의 정제

배우세요 BrdU를 이용한 세포주기 S기 세포 추적 방법으로, DNA 염료와 항체라벨링을 결합하여 세포 운명을 분석합니다. 이 기법은 세포생물학 및 신경과학 연구에 활용됩니다.

동기화를 필요로하지 않고 유동 세포 계측법을 사용하여 세포주기 진행의 시간적 추적

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