Name: 전자 분광 이미징과 결합 miniSOG 태그 DNA 복구 단백질의 시각화 (ESI) (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-09-24T14:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 6 s
Description: 배우세요 전자 분광 이미징과 miniSOG 태그를 이용한 DNA 복구 단백질의 나노미터급 시각화 방법입니다. 손상된 크로마틴의 초미세 구조를 분석하여 유전체 안정성 유지 메커니즘을 규명할 수 있습니다.

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miniSOG 구조를 제공해 주신 Roger Tsien 박사님께 감사드립니다. TEM에 도움을 주신 Xuejun Sun 박사님. Lisa Lem과 Peter Shipple은 산소를 공급해 준 Cross Cancer Institute의 연구원입니다. Hilmar Strickfaden은 Alberta Cancer Foundation에서 박사 후 연구원 과정을 밟고 있으며 Bayrische Forschungsallianz의 지원을 받았습니다. 이 연구는 캐나다 보건 연구소(Canadian Institutes of Health Research)와 앨버타 암 재단(Alberta Cancer Foundation)의 보조금으로 지원되었습니다.

miniSOG 셀 라인의 1 세대 <ol><li> 5 % CO 2의 가습 인큐베이터에서 37 ℃에서 10 % 소 태아 혈청 (FBS)으로 보충된다 저 글루코스 둘 베코 변성 이글 배지 (DMEM) 2 ㎖를 함유하는 35mm 접시에 U2OS (인간 골육종) 세포 성장 분위기입니다. </li><li> 그들은 miniSOG 및 mCherry위한 서열을 포함하는 플라스미드 작 제물이 형질 감염 시약 (19)의 제조자의 프로토콜에 따라 복구 단백질 태그 정제 형질 품질 (A269 / 280 비율 1.8 ~ 2.0)와 리포 펙션에 의해 80 % 컨 플루 언트가 될 때 세포를 형질 감염. miniSOG 발현 플라스미드는 첸 - 연구소에서 주문할 수 있습니다 : <a href="http://www.tsienlab.ucsd.edu/Samples.htm">http://www.tsienlab.ucsd.edu/Samples.htm</a> </li><li> 이틀 후 형질을 정렬 형광 활성화 셀 miniSOG과 mCherry 태그 재조합 단백질을 발현 정렬 세포. 세포를 수집20 과발현되는 셀을 방지하기 위해 중간 형광 강도. </li><li> 배양 10 % FBS 및 G418 선택 에이전트 (네티) 0.6 μg의 / ㎖로 보충 된 DMEM 배지 10ml에 10cm 접시에 양성 세포. </li><li> 눈에 보이는 식민지 판에 등장 한 후, mCherry 긍정적 인 식민지를위한 화면이 거꾸로 형광 현미경을 사용하여 영구 마커 (접시의 바닥에) 그들 주위에 원을 그립니다. 낮은 배율 공기 대물 렌즈 (예를 들어, 10 배)를 사용하여 조심스럽게 무균 1,000 μL 피펫 팁으로 그들을 빨아 천천히 떨어져 식민지를 긁적에 의해 멸균 기술을 사용하여 클론을 선택합니다. </li><li> 선택된 콜로니를 확장 및 10 % 디메틸 설폭 사이드와 보충 단계 1.1에 기재된 성장 배지를 사용하여 이들 부품을 동결. 멸균 18 X 18mm 2 커버 슬립에 그들을 성장에 노출시킴으로써 DRF 형성 세포를 테스트방사선의 2 Gy를. 안정적 miniSOG mCherry 발현 조사 세포 mCherry을 이미징 필터 세트하여 형광 현미경으로 가시화 될 때 복구 단백질 DSBs의 전형적인 패턴 초점 특성을 보여야 태그. </li></ol> 2. 세포 배양 <ol><li> 문화 U2OS 세포를 안정적으로 miniSOG을 표현하고 mCherry 단계 1.1에 설명 된 조건에서 수리 단백질 태그. DMEM 2 ㎖를 함유하는 35mm 직경의 유리 바닥 접시에서 80 % 컨 플루 언시에 셀을 성장한다. 플라스틱 및 사용 된 플라스틱으로 커버 슬립을 부착 접착제가 사용되는 수지 수성 알코올 용액에 대한 내성과 내성이 있는지 확인하십시오! </li><li> 실험을 수행하기 전에, 관심 지역을 식별하기 위해 형광 현미경을 이용하여 무균 다이아몬드 펜으로 긁어서 이소성 단백질을 발현하는 세포가 포함 약 1mm (2)의 작은 영역을 설명합니다. 또한 유리 바닥 접시 (T)를 사용모자는 커버 슬립에 내장 된 사전 에칭 그리드 시스템과 coverslip에 포함되어 있습니다. 참고 : ESI과 형광 현미경 사진 (21)을 결합 고품질의 상호 현미경을 사용하는 경우, 커버 슬립의 두께가 기름 침지 목표와 호환되는지 확인하십시오. 그것은 두께 제 1.5 (0.16-0.18 mm)를 가져야한다. 영역이 에지 근처에서 발생할 수있는 수지의 중합 문제를 방지하기 위해 TEM에서 검사하기 위해 접시의 중앙 부근의 영역을 선택 (점 4.10에서 4.13 사이를 참조). </li></ol> 3. DNA 손상 유도 <ol><li> 감마 방사선을 조사 세포 radiomimetic 약물을 사용하거나, (18, 22 또는 23에 기재된 바와 같이, 예) 공 초점 레이저 현미경에 마이크로 조사에 의한 손상을 유도한다. </li><li> 이 예에서, 405 nm의 졸을 사용하여 세슘 -137 방사선 소스 또는 레이저 microirradiate에서 감마선 조사의 2 Gy를 6으로 셀을 조사0.5 μg의 / ㎖ 훽스트 (Hoechst)와 20 분 동안 세포를 감작 후 공 초점 현미경의 ID 상태 레이저. </li></ol> 4. 샘플 준비 <ol><li> 0.1 M 나트륨 cacodylate 버퍼 또는 어둠 속에서 실온에서 30 분 동안 0.1 M 인산염 완충액 pH 7.4에서 4 % 파라 포름 알데히드주의 1 ㎖로 세포를 고정한다. 주의 : 파라 포름 알데히드 나트륨 cacodylate는 독성이! 장갑을 착용하고 적절하게 독성 물질을 폐기하십시오. </li><li> 0.1 M 나트륨 cacodylate 버퍼 pH 7.4 인산염 완충액 pH 7.4의 4 ㎖로 두 번 세포를 씻으십시오. </li><li> 2 ㎖의 50 mM의 글리신과 고정 세포를 치료, 5mM의 aminotriazole 30 분 동안 0.1 M 나트륨 cacodylate 완충액 0.1 M 인산 완충액 (pH 7.4)에 10 mM의 시안화 칼륨주의 (pH를 체크!) 미 차단하기 위해서 알데히드기 및 백그라운드를 증가시킬 수있는, 헴 그룹에 의해 생성 된 활성 산소 종을 억제. 주의 : 칼륨 시아 나이드는 매우 독성이! W귀 장갑, 후드에서 작동하고 적절하게 독성 물질을 폐기하십시오. 그 pH를 확인하고 정확한 것이 중요하므로, 반응의 pH는 매우 민감하다. </li><li> 상호 현미경이 필요한 경우, 반전 된 형광 현미경에 2D 또는 3D 단계 2.2에서 선택한 영역을 기록한다. </li><li> 2 ml의 마이크로 원심 튜브에 10 mg의 디아 미노 벤지딘 염산염 태블릿을 배치하여 1 ㎎ / ㎖ 디아 미노 벤지딘 염산염주의 용액을 제조 하였다. 증류수 진한 염산 (11.65 M)의 2 O 20 μL의 980 μL를 추가하고 솔루션은 밝은 갈색 반투명 때까지 섞는다. 7.0와 7.6 사이의 pH를 수산화 나트륨으로 pH를 조정하는 동안 1 ㎎ / ㎖의 최종 농도 0.1 M 인산 나트륨, 0.1 M cacodylate 버퍼에서이 용액을 희석 (PH 7.4이 권장된다). 주의 : 미노는 독성이! 장갑을 착용하고 적절하게 독성 물질을 폐기하십시오. </li><li> 광산화, R 용eplace 0.1 M 나트륨 cacodylate 버퍼 또는 인산염 버퍼에 1 ㎎ / ㎖ 디아 미노 벤지딘 염산염 용액 2 ㎖와 버퍼. 빛이 용액을 보호하고, 산소의 용해도를 증가시키기 위해 4 O를 C로 얼음에서 식힌. (용액 내에 삽입하고 산소 병에 연결된 호스를 사용) 용액을 통해 산소를 버블 링함으로써 산소를 포화 용액. 다시 pH를 확인하고 필요한 경우 조정합니다. 참고 : pH가 7.0, pH가 7.6 사이에있는 광산화 반응에 매우 중요합니다. </li><li> 조심스럽게 40 배 오일 침수 대물 렌즈가 장착 거꾸로 형광 현미경에 고정 된 세포와 접시를 탑재하고 관심 영역으로 이동합니다. GFP 또는 CFP에 대한 필터 큐브를 사용하여 푸른 빛 miniSOG 태그를 자극. MiniSOG는 473 nm의 10에서 어깨와 448 nm에서 여기 최대 있습니다. </li><li> 심지어 녹색 miniSOG 형광 하 후 조명 계속완전히 사라지고 중합 디아 미노 벤지딘의 갈색 광산화 제품 투과광 채널에서 나올 때까지이야. 산화 생성물은 세포의 대부분에서 볼 때, 광산화 정지 형광 조명을 끄. 참고 : 사진 산화 대물 렌즈, 필터 전송 파장과 효율성 및 조명 소스에 따라 몇 분 정도 걸릴 수 있습니다. </li><li> 후위 0.1 M 나트륨 cacodylate의 pH가 2 % 글루 타르 알데히드 1 ml의 7.4 버퍼 또는 30 분 동안 인산염 완충액 pH 7.4와 세포. </li><li> 0.1 M 나트륨 cacodylate 버퍼 pH 7.4에서 0.1 M 인산염 완충액 pH 7.4에서 20 분 동안 0.1 % -0.5 %의 산화 오스뮴과 세포의 세포막을 고정한다. 주 : 세포막을 안정화하는 데 필요한 산화 오스뮴의 가장 낮은 농도를 사용하는 것이 좋습니다. 중합 DAB 석출물 ESI, 강한 의해 직접 검출 될 수 질소의 높은 밀도를 갖기 때문에오스뮴 염색 miniSOG - 태그 단백질을 확인하고 ESI에 유해 할 수 필요가 없습니다. 산화 오스뮴은 매우 독성이! 흄 후드에서 작업하고 적절하게 유독성 폐기물을 폐기하십시오. </li><li> 30 %, 50 %, 70 %, 90 %, 98 % 100 % 에탄올 단계 (각 5 분)를 이용하여 에탄올 시리즈를 통해 탈수 세포. 계속해서, (1)에 세포를 배양한다 : 100 % 에탄올 및 아크릴 수지 (LR 화이트)의 1 믹스 100에서 적어도 다른 4 시간 동안 세포를 배양하기 전에 세포 내로 침투를 용이하게하기 위해 4 시간 동안 진탕 기 상에 요리를 넣어 % 아크릴 수지 (LR 화이트). </li><li> 수지를 중합하기 위하여, 면도날 및 아크릴 수지 코트 가속기 림으로 표지 된 2 ml의 마이크로 원심 튜브의 뚜껑을 잘라. 가속기는 림을 커버 튜브로 유입되지 않도록하십시오. 그 후, 조심스럽게 약 LR 화이트 수지는 파스퇴르 피펫을 사용하여와 3 분의 2를 튜브를 입력합니다. 수지가 접촉 재치로하지 않는주의H 림에 가속! </li><li> 접시에 세포를 침투 수지를 제거하고 튜브의 폭이 거의 완전히 접시의 유리 덮여 관찰 창을 채우도록 똑바로 서 microcentrifuge 관에 거꾸로 접시를 놓습니다. </li><li> 이어서, 튜브 및 커버 슬립을 밀봉 된 튜브에서 수지 이제 셀을 커버하도록 튜브를 반전 가속기 1 분에 2를 기다려. </li><li> 60 ° C의 오븐에 튜브 접시를 배치하고 12 시간 동안 그것을 경화. </li><li> 블록이 경화 될 때, 오븐에서 부착 수지 채워진 마이크로 원심 튜브 접시를 제거하고 접시로부터 마이크로 원심 분리 튜브. 액체 질소와 뜨거운 물에 동결 해동 사이클에 의해 분리를 용이하게합니다. </li><li> 유리 접시 바닥을 조심스럽게 폐기 블록을 제거하기 위해 면도날 microcentrifuge 관을 오픈. </li><li> 영구 마커 블록 레이블. </li><li> 트라이 위해 면도날을 사용하여이전 다이아몬드 또는 텅스텐 펜으로 표시 영역을 포함 (또는 관심있는 셀 영역을 포함) 1mm 2 영역은 아무것도 남아 있지 않도록 블록 m. </li><li> ,을 Ultramicrotome에서 블록을 탑재 트리밍 칼 블록을 잘라 내고 다이아몬드 칼을 사용하여 약 50 나노 미터의 매우 얇은 부분을 잘라. </li><li> 높은 전송 300 메쉬 그리드에 섹션을 선택합니다. 이 그리드는 매우 작은 격자 바 있고, 따라서 관심의 영역에서 적은 수의 세포를 커버한다. </li><li> 탄소 코팅의 약 0.2 ~ 0.4 nm의 TEM의 전자 비임하에 그들을 안정화하기 위해 탄소 코터와 격자에 섹션. </li></ol> 5. 전자 현미경 <ol><li> 에너지 필터가 장착되어 TEM에 그리드를 넣습니다. 현미경 및 제조자의 지시에 따라 에너지 필터를 조정 한 후, 저배율 모드 부분에 세포 검사 (통상 송신) 및 비교(단계 4.4에서 얻은) 적절한 때 그 데이터를 형광합니다. </li><li> 흥미로운 기능 (DNA 손상 트랙 또는 DNA 수선 병소)와 일단 핵 에너지 필터링 모드로 전환하는 결과와 두께 맵을 기록한다. 주 :이 절차는 제로 손실과 필터링되지 않은 이미지의 기록을 포함한다. 0.3 최대 두께는 자유 경로 (입사 빔의 전자의 30 %가 시료에 의해 산란 얻는다) 좋은 원소 맵을 생성하기에 충분히 얇다을 의미한다. </li><li> 사용되는 현미경의 에너지 필터를 제어하는​​ 소프트웨어를 이용하여 요소의 인 및 질소의 레코드 비율 맵. 20 EV의 슬릿 폭 또한, 120 eV의 에너지 손실을 20 eV의 사전 가장자리 이미지의 슬릿 폭과 175 eV의 에너지 손실의 인지도 포스트 에지 영상을 기록한다. 또한 35 EV의 슬릿 폭과 358 eV의 35 eV의 사전 가장자리 이미지의 슬릿 폭과 447 eV의에서 질소지도, 기록 후 에지 이미지하십시오. 주 : 촬상 소자의 콘텐츠 이후 (phosphorus 및 질소) (약. 1 %), 잡음비 신호가 더 나은 이미지를 생성하기 위해 &quot;3 윈도우 법&quot;을 통해 &quot;비 이미지&quot;(질적 원소 맵) (원소 맵을 정량)을 선택 비교적 낮다. </li></ol> 6. 이미지 처리 <ol><li> (예를 들어, 디지털 현미경 사진)의 획득 된 이미지 파일 형식을 처리 할 수있는 화상 처리 소프트웨어 원소 비율 맵을 연다. 빨강 채널과 RGB 이미지의 녹색 채널에 인지도에 질소 맵을 복사 한 다음 중첩 및지도를 맞 춥니 다. </li><li> 태그가 지정된 이미지 파일 형식 (TIFF) 파일로 합성 이미지를 내 보냅니다. 레이어를 사용하여, 화상 처리 소프트웨어 (예, 포토샵)에 화상을 연다. </li><li> 8 비트 데이터 세트 (0 ~ 255)로 이미지의 최소 및 최대 값을 재조정하여 각 채널의 동적 범위를 조정한다. </li><li> 질소를 이용하여 맵에서 인 함량을 (빼기단백질의 분포를 도시 질적 맵을 생성하기 위해 &quot;레이어&quot;윈도우). </li><li> &quot;인덱스 컬러&quot;에 이전 단계에서 생성 된 핵산 (인)와 단백질 (질소)의 맵을 변환하여 핵산 분포 및 시안 룩업 테이블을 도시 맵 CMYK 색 공간에서 노란색 룩업 테이블을 만들 비 핵 단백질지도를 표시합니다. 색상은 두 원소지도 사이의 최대 대비를 생성하기 위해 선택된다. </li><li> 다른 레이어로 인 단백질의 분포를 보여주는지도를 새로운 이미지를 만들고 가져옵니다. 서로 중첩 양 층을보기 위해 &quot;화면&quot;투명도 모드를 사용한다. </li><li> 단계 5.2에서 획득 한 제로 손실 이미지를 엽니 다. 이 이미지는 기존의 TEM 이미지처럼 보이는 기록 영역의 이미지를 나타내는하지만 시편과 충돌하지 않고 시료를 통과 한 전자를 포함하고 있습니다. 수출TIFF 이미지로이 이미지. </li><li> 사진 편집기에서 내 보낸 제로 손실 이미지를 열고 원소지도를 보여주는 이미지의 최상층에 복사합니다. &quot;화면&quot;투명도 모드를 사용하여 이미지를 맞 춥니 다. </li><li> 선택적으로 임계 값 세그먼트 제로 손실 이미지 miniSOG에서 유래 신호. 상술 한 바와 같이 별도의 레이어로 생성 된 이미지를 추가합니다. </li></ol>

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ESI는 특별히 인이 풍부 영역을 매핑 할 수 있기 때문에 핵에서 염색질 및 리보의 여러 가지 상태를 조사하기위한 훌륭한 도구 역할을 할 수 있습니다. 이는 근본적으로 전자 현미경에 의해 얻어진 비특이적 대조 방법에 의존하지 수 상세히의 양을 증대시킨다. ESI 하나의 단점은 동일한 가속 전압에서 TEM 종래보다 얇은 부분을 필요로한다는 것이다. 이것은 직렬 섹션 작업 또는 단층 (28)의 방법을 이용하여 극복 될 수있다. 많은 정보는, 인 및 질소의 분포를보고함으로써 얻어 질 수 있지만, 또한, 특정 단백질의 분포를 매핑 할 수있는 관심사이다. 상기 방법은 본 문서에 소개로, 그것은 ESI는 디아 미노 벤지딘의 부위 특이 적 중합에 기반 방법들과 결합 될 수 있음을 입증 하였다. 이 방법은 쿵푸를 추가하지 않지만ESI에 LL 새로운 색상, 그것은 단백질의 분포를 매핑 명확 유용하다. 이 염색질과 상호 작용하는 단백질에 특히 적용됩니다. 연구는 하나 이상의...

최근 몇 년 동안 1 이상의 광학 현미경에서 상당한 발전에도 불구하고, 세포 생물 학자들은 여전히 해상도의 차이로 고통. 이 고분자 복합체 간의 상호 조정을 수반 기본적인 세포 과정의 구조 - 기능 관계의 이해를 제한 (예를 들어, 크로 마틴 리모델링, DNA 수리, RNA의 전사 및 DNA 복제에). 투과형 전자 현미경 (TEM)이 필요한 해상도를 제공이야 있지만, 또한 시각 구조 생화학 적 조성물을 판별 할 수있는 동안 특정 단백질 라벨을 구조적으로 인해 무능력 이러한 프로세스를 정의하는 도전되었다. 핵 구조를 차별화하기 위해, 내부의 막 부재에있어서, 핵은 특히 도전왔다. 전자 분광 영상 (ESI)는 DNA, RNA, 및 PROT의 동시 검출 및 분화를 허용함으로써 이러한 제한 사항 중 일부를 해결핵 구조 2-5 EIN 기반. 전자 분광 영상 : 전자 현미경에서의 높은 감도 및 해상도의 원소 분포를 맵핑하기 위하여, 하나는 비탄 성적 시편 (6) 소자의 내부 쉘 전자와의 상호 작용을 통해 산란 된 전자를 선택 촬상 분광계를 사용할 수있다. 에너지의 원소가 특정 량의 시료 원자의 이온화의 결과로 소실되기 때문에,이 전자를 분리하고, 전자 현미경에 부착 된 분광계를 이용하여 가시화 될 수있다. 따라서, 검체와 상호 작용 한 전자 스펙트럼의 분석 시료 7의 원소 조성에 대한 정량적 정보를 보여준다. 시료를 통과 할 때의 에너지를 잃지 않는 전자는 전자 에너지 손실 &quot;제로 손실의 피크&quot;에서 발견스펙트럼. 이러한 전자 풍부 시험편의 질량, 밀도 및 두께에 관련되고, 시료에 충돌 또는 시험편을 통과하는 동안 에너지를 손실하지 않고 시료를 통과하는 전자가 구성된다. 이 정보는 시료 8의 특정 원소 존재의 원자 수의 절대 정량에 유용 할 수있다. 생물학적 시료는 중금속을 사용하는 대부분의 저조한 TEM 입사 빔 내의 전자를 편향 광 소자, 염색 방법으로 구성되어 있기 때문에 염 샘플 콘트라스트를 생성하기 위해 적용되어야한다. 이들 조영제 및 무능력 대부분 특이성이 가능 하나 이상의 얼룩을 시각화하는 특이성의 결여는 핵의 연구에서, 종래의 전자 현미경의 값을 한정 하였다. ESI 특히 세포 핵의 구조 연구를 위해, 종래의 TEM에 비해 상당한 장점을 갖는다.이는 단백질 복합체로부터 핵 단백질 복합체를 구별하는 핵산들의 밀도에 기초하여 다른 핵 단백질 복합체를 해결하기 위해 DNA- 및 RNA 함유 고분자 복합체 인 풍부한 자연을 활용하는 것이 가능하다. 나머지 생체 물질을 질소의 그 풍부한 기반으로 묘화 될 수있다. 다른 해부학 적 구조 내에서의 분포와 상대 풍요의 매핑 바로이 두 요소와 분석은 핵에 대한 많은 정보를 우리에게 제공한다. 예를 들어, 염색질 및 인을 풍부하게 표현하는 맵 리보솜을 쉽게 식별 할 수있다. interchromatin 공간 핵공 복합체와 핵 체는, 다른 한편으로는, 쉽게 질소 맵 이미지에서 검출 될 수있다. 미니 중항 산소 발생기 시스템 (miniSOG) ESI는 강력한 기술을 나타낸다는 가지고 있기 때문에 현장 크로 마틴 구조에서 공부하기인 및 질소 원소 사이의 조성 비율의 특성의 장점은, 원소 조성은 일반적으로 단백질 복합체의 여러 집단 구별하는데 사용될 수 없다. 나노 미터 범위의 작은 금 입자로 표지 된 항체는 널리 개별 분자의 위치를​​ 매핑하는데 사용되어왔다. 금 입자는 일반적으로 이차 항체에 부착되어 있기 때문에, 차 항체에 의해 검출 에피토프 주위 약 20nm의 원주 내에 표시한다. 매립 후 샘플에서, 항체는 단 부분의 표면에 노출 된 에피토프를 검출 할 수있다. 그것은, 얻어진 정보를 항원의 존재를 입증하고 셀의 특정 해부학 적 구조에 관련시키는 것이 가능하지만 에피토프의 대부분이 수지에 의해 가려 때문에, 불완전하다. 걸쳐 항원에 대한 액세스를 허용, 형광 현미경에 사용되는 것과 유사한 프로토콜을 사용하는 기술을 미리 매립시료의 전체 깊이 있지만, 일반적 지질막의 제거를 요구하고 알데하이드에 의해 고정 될 수없는 요소를 제거 항체가 세포에 침투하도록 허용해야 투과성으로 단계. 또한, 미세 구조 보존, 글루 타르 알데히드에 대한 선호 알데히드 정착액은, 일반적으로 그 결과, 파라 포름 알데히드는 일반적으로 필요하며, 항원을 파괴하고. 이 단백질 - 단백질 가교에 덜 효과​​적이다. 금 나노 입자와 함께 표시되어 항체의 또 다른 단점은 금이 약한 콘트라스트가 샘플, 흥미로운 세부 구조를 모호 할 수있는 강한 대비를 생성하는 매우 전자 밀도가 높은 물질 것입니다. 발현 된 단백질 태그와 같은 녹색 형광 단백질 (GFP)의 출현은 세포 생물학의 질문에 대답하기 위해 형광 현미경의 사용을 변형시켰다. 작은 형광 도메인과 단백질에 태그를 지정하면 생체 내에서 유통의 매핑을 할 수 있습니다 </em&gt;의 구조를 변경할 수 투과성으로 절차 없이도. 현미경 일렉트론 세포 단백질 분포를 매핑하는 단백질 태그 사용의 우아한 원리를 번역하기 위해, 시스템은 관심 구조 신호 확대를 제조하고 TEM에 콘트라스트를 생성 할 수 있다는 것을 필요로 하였다. 중합 미노 종종 결합 항체를 검출하기 위해 사용된다 조직학 얼룩이다. 이 얼룩은 일반적으로 이차 항체에 접합 된 양 고추 냉이 퍼 옥시 다제 (HRP)를 사용하여 증착된다. 반응이 안정적인 결과를 생성하지만, HRP는 셀 (9)의 세포질에 촉매 활성이 아니다. 그들의 해상도 nanogold 방법 10보다 더되도록 HRP의 반응 생성물도 생성 부위에서 멀리 확산 될 수있다. 이러한 문제를 우회하기 위해, 플래시 / ReAsH 시스템 (11)을 개발 하였다. 그것은 tetracysteine​​ 모티브를 가지고 재조합 융합 단백질로 구성되어 있습니다. 이 모티브의 결합을 할 수 있습니다biarsenic 형광. 여기 된 때, 결합 또는 플래시 ReAsH는 태그 단백질의 부위에서 즉시 침전 합체에 고도로 반응성 일 중항 산소 따라서 photoconvert 디아 미노 벤지딘 (DAB)를 생성 할 수있다. DAB 중합체는 전자 밀도가되므로 TEM에서 재조합 융합 단백질의 분포를 매핑하는 데 사용할 수있는 산화 오스뮴으로 염색 할 수있다. 2011 년, 슈 등. (10)는 형광 및 448 nm의 푸른 빛으로 흥분 할 때 많은 중항 산소 라디칼을 생성 할 수있는 애기 장대의 flavoprotein에서 파생 된 작은 106 아미노산 융합 태그로 구성 miniSOG 시스템을 발표했다. 그 중항 산소 라디칼에 immunogold 및 표지 항체 (11)보다 상당히 더 가까운 태그 단백질의 표면 근처의 중합체를 형성하기 위해 광을 디아 미노 벤지딘이 산화하는데 사용될 수있다. 플래시 / ReAsH 시스템은 플루오로 데리고가 필요하지만크롬 광을하기 전에 세포에 디아 미노 벤지딘, miniSOG 시스템은 미노와 빛을 필요로하고 추가로 미노를 중합에서 약 두 배의 효과가있다. 여기서, miniSOG는 DNA 복구 병소의 미세 구조를 매핑하기 위해 ESI와 조합하여 사용된다. DNA 수리 초점 (DRF) 그들은 전좌 및 유전 정보의 손실을 초래할 수 있기 때문에 복구되지 않은 DNA 이중 가닥 나누기는 세포에 심각한 위협을 제기. 차례로,이 노화, 암, 세포 죽음으로 이어질 수 있습니다. DNA 이중 가닥 브레이크 수리에 관여하는 많은 단백질은 12 ~ 14을 깰 DNA 이중 가닥 주위에 조립 초점에 축적. 그 기능이 알려져 있지 않지만, 그들은 DNA 이중 가닥 나누기를 포함하고 DNA 이중 가닥 브레이크 수리의 사이트입니다 핵의 위치를​​ 나타냅니다. DNA 수리 FOCI (DRF)는 형광 현미경에 의해 특성화되었다 그들은 DNA 손상 12,15위한 바이오 마커로서 작용한다. 그들은 이중 가닥 브레이크의 크기에 대규모 상대적 최근 슈퍼 해상도 현미경 연구는 각각 16 초점 내 분자의 서브 구획화의 증거를 공개 할 때까지 상대적으로 균일 한 고려되었다. 이러한 사이트가 구성되는 방법을 이해하기 위해서는, 서로에 기초 생물학적 구조의 모든 상대적인 시각화하는 것이 필요하다. 이것은 형광 현미경에 의해 달성되지만 전자 현미경 (17, 18)를 통해 가능하다 할 수 없다. 여기서, 방법은 DNA 이중 가닥 브레이크 수리의 미세 구조를 조사하기 위해,이 접근 방식의 조합의 가능성을 설명하기 miniSOG 방법으로 전자 분광 이미징을 결합한 것이 기재되어있다.

<table><tbody><tr><td>35mm 유리 바닥 접시</td><td>MatTek</td><td>P35G-1.5-14-C</td><td></td></tr><tr><td>그리드 35mm 유리 바닥 접시</td><td>MatTek</td><td>P35G-2-14-CGRD&nbsp;</td><td>몰입 목표를 위해 제작되지 않음</td></tr><tr><td>LR White : 아크릴 수지</td><td>emsdiasum</td><td>14381</td><td></td></tr><tr><td>LR White 가속기</td><td>emsdiasum</td><td>14385</td><td></td></tr><tr><td>3,3&prime; - 디아 미노 벤지딘 테트라 하이드로 클로라이드 10 mg 정제</td><td>시그마</td><td>D5905</td><td></td></tr><tr><td>슬림 바 그리드 300 메쉬</td><td>SPI</td><td>1161123</td><td></td></tr><tr><td>텅스텐 포인트 랩 펜</td><td>emsdiasum</td><td>41148</td><td></td></tr><tr><td>오스뮴 테트 록사이드</td><td>emsdiasum</td><td>19100</td><td></td></tr>, <tr><td>Carbon Coater 208, carbon</td><td>Cressington</td><td></td><td></td></tr>, <tr><td>Ultra microtome, Leica EM, UC6</td>, <td>Leica</td><td></td><td></td></tr>, <tr><td>Photoshop, CS5</td>, <td>Adobe</td><td></td><td>는 이전 버전에서도 작동할 수 있습니다</td></tr>: <tr><td>Digital Micrograph V.2.30</td><td>, Gatan은</td><td></td><td>이전 버전에서도 작동할 수 있습니다</td></tr>: <tr><td>Hoechst 33342</td>, <td>Sigma</td><td>H-1399</td><td></td></tr><tr><td>Effectene</td><td>Quiagen</td><td></td><td></td></tr><tr><td>MiniSOG-Constructs</td><td>Tsien-Lab</td><td></td><td><a href="mailto:tsienlab@yahoo.com">tsienlab@yahoo.com</a></td></tr><tr><td>MDC1 miniSOG mCherry</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>53BP1 miniSOG mCherry</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rad52 miniSOG mCherry</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>세슘 137 방사선 소스 "마가복음 1장"</td><td>&nbsp;( J.L. 셰퍼드 & Associated)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ImageJ/FiJi</td><td>오픈 소스</td><td></td><td>http://fiji.sc/Fiji</td></tr><tr><td>2 ml Eppendorf 튜브</td><td>Fisherbrand</td><td>05-408-146</td><td></td></tr><tr><td>다이아몬드 나이프 울트라 35&deg;</td><td>Diatome</td><td></td><td></td></tr><tr><td>트리밍 나이프 울트라트림</td><td>Diatome</td><td></td><td></td></tr><tr><td>나트륨 카코딜레이트 트리하이드레이트</td><td>emsdiasum</td><td>12300</td><td>주의: 독성!</td></tr><tr><td>글루타르알데히드 EM 등급 8%</td><td>emsdiasum</td><td>16020</td><td>주의: 독성</td></tr>!<tr><td>인산 나트륨 이염기성</td><td>emsdiasum</td><td>21180</td><td></td></tr><tr><td>인산 나트륨 일 염기성</td><td>emsdiasum</td><td>21190</td><td></td></tr><tr><td>파라 포름 알데히드</td><td>emsdiasum</td><td>19202</td><td></td></tr><tr><td>오스뮴 테트 록사이드 4 % 용액</td><td>emsdiasum</td><td>19150</td><td></td></tr><tr><td>역 형광 Micoscope Axiovert 200M</td><td>Zeiss</td><td></td><td></td></tr><tr><td>염산</td><td>Fisherbrand</td><td>A142-212</td><td></td></tr><tr><td>수산화나트륨 용액 10M</td><td>Fluka</td><td>72068</td><td></td></tr><tr><td>산소</td><td>Medigas</td><td></td><td></td></tr><tr><td>3-Amino-1,2,4-triazole</td><td>Sigma</td><td>A8056</td><td></td></tr><tr><td>시안화칼</td>륨 <td>시그마</td><td>207810</td><td>주의: 독성</td></tr>!<tr><td>에탄올</td><td>emsdiasum</td><td>15058</td><td>주의: 독성</td></tr>!<tr><td>면도날 : 단일 가장자리 탄소강</td><td>emsdiasum</td><td>71960</td><td>주의 : 날카롭게!</td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Sigma</td><td>D 5546</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Life Technologies</td><td>16000-044</td><td></td></tr><tr><td>G418</td><td>Life Technologies</td><td>11811-023</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma</td><td>D2650</td><td></td></tr><tr><td>투과 전자 현미경 200 kV</td><td>JEOL</td><td>2100</td><td></td></tr><tr><td>GIF Tridiem 863 에너지 필터</td><td>Gatan</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

전자 분광 이미징과 결합 minisog 태그 dna 복구 단백질의 시각화 (esi)

Visualization of miniSOG Tagged DNA Repair Proteins in Combination with Electron Spectroscopic Imaging (ESI)

광학 해상도 및 투과 전자 현미경에서 특정 단백질 집단을 식별 도전 제한은 세포 생물학에서 장애물왔다. 많은 현상 시스템의 단순화 된 시험 관내 분석에 의해 설명과 완전하게 이해되기 위하여, 특히 1 nm 내지 0.1 ㎛의 범위 사이에, 반응계 내에서 추가 구성 정보를 필요로 할 수 없다. 여기서, 전자 분광 이미징, 단백질 및 핵산의 분포의 동시 맵핑을 허용 투과 전자 현미경 기법 및 식 태그 miniSOG은 DNA 이중 가닥 브레이크 수리 병소의 구조 및 조직을 연구하기 위해 결합된다.

ESI 종래의 TEM 이미지로 핵 (도 1)의 ESI 이미지를 비교 (예를 들어,도 7-1)은 쉽게 구별 될 수 해부학 적 구조에서 극적인 증가를 보여준다. 염색질 능선은 노란색으로 표시하고 마우스 세포에서 chromocenters를 확인하는 것은 매우 쉽습니다. 사전 조립 리보솜 이미 인이 풍부 RNA에 더하여, 질소 풍부 단백질의 다량을 함유 보낸 핵소체 쉽게 그들의 원형 구조와 다른 색으로 염색질 구별 될 수있다. 핵 및 핵 구멍 테두리에 얇은 층이 주변 염색질 인터럽트 질소가 풍부한 구조로 볼 수있는 바와 같이, 주변 염색질이 존재한다. 종종 박판 염색질은 주변의 외부 매우 얇은 청색 층으로 볼 수있다. 세포질에서, 인이 풍부 많은 작은 입자 수볼 수. 이들은 외부 핵 크기, 풍부와 위치에 따라 리보솜으로 식별 될 수있다. interchromati...

전자 분광 이미징은 나노미터 해상도로 핵산과 단백질을 이미지화하고 구별할 수 있습니다. 이 시스템은 투과 전자 현미경 샘플에서 태그가 지정된 단백질을 특이적으로 라벨링할 수 있는 miniSOG 시스템과 결합할 수 있습니다. 이중 가닥 파단 복구 초점을 예로 들어 이러한 기술의 사용을 설명합니다.

전자 분광 이미징과 결합 miniSOG 태그 DNA 복구 단백질의 시각화 (ESI)

The limits to optical resolution and the challenge of identifying specific protein populations in transmission electron microscopy have been obstacles in ...

다음 실험의 전반적인 목표는 나노 규모에서 DNA 이중 가닥 절단 부위 주변의 DNA 복구 단백질 분포를 매핑하는 것입니다. 이는 전자 분광 이미징을 사용하여 복구 과정에 있는 손상된 염색질의 초미세 구조를 연구하기 위함입니다. 이를 위해 형광 단백질과 mini SOG 태그를 사용하여 DNA 손상 응답 단백질의 융합 단백질을 코딩하는 DNA 발현 구조체를 생성합니다.두 번째 단계로, transfection을 통해 컨스트럭트를 세포 내로 도입한 후 레이저 또는 감마선을 조사하여 세포에 손상을 줍니다. 그다음, 조사 및 고정된 세포를 전자현미경 시료 준비 단계에 따라 처리하여 mini SOG가 태깅된 복구 단백질의 분포가 전자현미경에서 관찰되도록 합니다. 이를 통해 얻은 전자 분광 이미징(electron spectroscopic imaging)은 크로마틴의 초미세 구조와 특정 단백질 및 DNA 복구 초점(repair foci) 간의 관계를 분석할 수 있는 상세한 이미지를 제공합니다.ImmunoGold 라벨링과 같은 기존의 다른 기술과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은 항체 접근성에 의존하지 않으며, 관심 구조를 매우 조밀하게 라벨링한다는 점입니다. 일반적으로 이 방법에 익숙하지 않은 연구자들은 광산화가 pH, 빛의 세기 및 산소 포화도에 매우 민감하기 때문에 어려움을 겪을 수 있습니다. 광산화, 산소 포화도 및 조명 단계가 매우 작은 변화에도 민감하므로, 이 방법을 재현하기 위해서는 방법이 어떻게 수행되는지 시각적으로 보여주는 것이 매우 중요합니다.제 연구실의 박사후 연구원인 Hilmar Fadden 박사가 배양 방법을 시연할 것입니다. 첨부된 텍스트 프로토콜에 기술된 대로 mini SOG 및 M cherry 태그가 붙은 복구 단백질을 안정적으로 발현하는 인간 골육종 세포를 사용하십시오. 10 cm 디쉬에서 세포를 분할한 후, 세포 밀도가 80%가 될 때까지 배양하십시오.다음으로, 세포를 형광 현미경 아래에 두고 멸균된 다이아몬드 펜을 사용하여 이소성 단백질이 발현되어 표시된 세포들이 포함된 약 1mm²의 작은 영역을 표시합니다. 그다음 용액에 herx를 첨가하여 최종 농도가 0.5µg/mL가 되도록 세포를 감작시킨 후, 37°C 인큐베이터에서 20분 동안 배양합니다. 이후 공초점 현미경의 405nm 고체 레이저를 사용하여 세포에 레이저 미세 조사를 실시함으로써 DNA 손상을 유도합니다. DNA 손상 유도 후, 암조건에서 실온의 0.1M sodium cate buffer 내 4% paraform aldehyde 1mL를 사용하여 30분 동안 세포를 고정합니다.pH 7.4의 0.1 molar sodium Cate 완충액 4 mL로 세포를 두 번 세척합니다. 다음으로, 고정된 세포를 50 millimolar glycine, 5 millimolar amino triazole 및 10 millimolar potassium cyanide가 포함된 pH 7.4 용액 2 mL로 30분 동안 처리합니다. 완충액을 동봉된 텍스트 프로토콜에 설명된 대로 준비한 pH 7.4의 광산화 완충액 2 mL로 교체합니다.그런 다음 용액에 산소를 버블링하여 산소 포화 상태를 유지하면서, 샘플을 얼음 위 암소에서 배양하십시오. 다음으로, 고정된 세포가 담긴 디쉬를 40 x 오일 침강 렌즈가 장착된 도립 형광 현미경에 조심스럽게 거치하고, 앞서 표시해 둔 관심 영역으로 이동하십시오. 녹색 형광 단백질용 필터 큐브를 사용하여 청색광으로 mini SOG 태그를 여기시키십시오.녹색 mini SOG 형광이 완전히 사라진 후에도 조명을 계속 유지하십시오. 중합된 diaminobenzidine의 갈색 광산화 생성물이 투과광 채널에 나타날 때까지 지속합니다. 그 다음, pH 7.4의 0.1 M sodium citrate buffer에 희석된 2% glutaraldehyde 1 mL를 사용하여 세포를 30분 동안 고정하십시오.다음으로, pH 7.4의 0.1 molar sodium Cate 완충액에 0.1~0.5% 오스뮴 테트록사이드를 사용하여 20분 동안 세포막을 고정합니다. 고정이 완료되면, 일련의 에탄올 세척 과정을 통해 세포를 탈수시킵니다. 그 후, 100% 에탄올과 아크릴 수지를 1:1 비율로 혼합한 용액에 세포를 넣고 쉐이커에서 4시간 동안 배양합니다.다음으로, 혼합물을 제거하고 샘플에 100% acrylic resin을 추가하여 4시간 동안 더 반응시킵니다. 레진을 중합시키기 위해, 라벨이 부착된 2 mL 마이크로 원심분리 튜브의 뚜껑을 면도날로 잘라내고 테두리에 acrylic resin accelerator를 도포합니다. 파스퇴르 피펫을 사용하여 튜브의 약 3분의 2까지 LR white resin을 조심스럽게 채웁니다.레진이 테두리에 있는 촉진제와 접촉하지 않도록 주의하십시오. 디쉬 내의 셀로 침투한 레진을 제거하고, 튜브의 너비가 디쉬 웨이트의 유리 덮개 관찰창을 거의 완전히 채울 수 있도록 디쉬를 수직으로 세운 마이크로 원심분리 튜브 위에 뒤집어 놓으십시오. 촉진제가 튜브와 커버슬립을 밀봉하는 데 1~2분이 소요됩니다.그 다음 튜브를 뒤집어 튜브 안의 레진이 세포를 덮도록 합니다. 튜브가 담긴 디쉬를 60 °C 오븐에 넣고 12시간 동안 경화시킵니다. 블록이 경화되면, 레진이 채워진 마이크로 원심분리 튜브가 부착된 디쉬를 오븐에서 꺼내 마이크로 원심분리 튜브를 디쉬에서 분리합니다.글라스 바텀 디쉬를 폐기하고, 면도날을 사용하여 마이크로 원심분리 튜브를 조심스럽게 절개하여 블록을 꺼냅니다. 면도날을 사용하여 다이아몬드 펜 또는 텅스텐 펜으로 이전에 표시해 둔 영역이 포함된 1mm² 부위만 남도록 블록을 다듬습니다. 다음으로, 블록을 울트라 마이크로톰(ultra microtome)에 장착하고 트리밍 나이프(trimming knife)를 사용하여 세포층에 도달할 때까지 블록을 다듬습니다.그 다음 다이아몬드 나이프로 교체하여 세포를 가로지르는 약 50 nanometers 두께의 초박절편을 절단합니다. 절편을 고투과 300 mesh 그리드로 수집합니다. 그런 다음 그리드를 카본 코어에 넣고 절편에 약 0.2 to 0.4 nanometers 두께의 카본을 코팅하여 투과전자현미경의 전자빔 하에서 안정성을 높입니다.에너지 필터가 장착된 투과전자현미경에 그리드를 로딩합니다. 저배율 일반 투과 모드를 사용하여 섹션 상의 세포를 검사하고, 이전에 촬영한 형광 이미지와 비교합니다. DNA 손상 궤적이나 DNA 복구 foci가 있는 핵이 발견되면, 에너지 필터링 모드로 전환하고 두께 맵(thickness map)과 함께 샘플을 기록합니다.다음으로, 슬릿 폭 20 electron volts 조건에서 175 electron energy loss의 인(phosphorus) 맵 post edge 이미지를 기록합니다. 또한 질소(nitrogen) 맵 기록을 위해 슬릿 폭 20 electron volts 조건에서 120 electron volts energy loss의 pre-edge 이미지를 기록합니다. 슬릿 폭 35 electron volts 조건에서 447 electron volts의 post edge 이미지와 358 electron volts의 pre-edge 이미지를 기록합니다.또한 슬릿 폭을 35 electron volts로 설정합니다. 이와 같은 이미지 처리 소프트웨어에서 원소 비율 맵을 엽니다. 질소 맵을 RGB 이미지의 red 채널에, 인 맵을 green 채널에 복사합니다.그런 다음 맵들을 중첩하고 정렬합니다. 합성된 이미지를 TIFF(tagged image file format) 파일로 내보낸 후, 레이어 기능을 사용할 수 있는 이미지 처리 소프트웨어에서 해당 이미지를 엽니다. 다음으로, 이미지의 최소값과 최대값을 8비트 데이터 세트로 재조정하여 각 채널의 동적 범위(dynamic range)를 조정합니다.그런 다음 레이어 창 내에서 질소 맵에서 인 함량을 뺍니다. 이미지를 인덱스 색상으로 변환하고, 핵산 분포를 보여주는 맵에는 CMYK 색 공간의 노란색 룩업 테이블을, 비크로마틴 단백질 맵에는 시안색 룩업 테이블을 생성합니다. 그 후 새 이미지를 생성하고 인과 비크로마틴 단백질의 분포를 보여주는 맵들을 서로 다른 레이어로 가져옵니다.두 층을 서로 겹쳐서 보기 위해 화면 투명도 모드를 사용하십시오. 여기에는 RGB 색 공간에서 두 비율 맵을 서로 겹쳤을 때 세포 핵 내부의 인과 질소의 위치를 나타내는 전자 분광 비율 맵이 표시되어 있습니다. 이 이미지와 같은 이미지가 이 과정에서 얻어집니다.노란색 구조는 인과 질소의 존재를 나타내는 핵 단백질을 의미합니다. 여기서는 U2 OS 세포에 감마선을 조사한 후 초점 구조의 변화를 관찰하기 위해 전자 분광 이미징이 사용되었습니다. 첫 번째 줄의 M cherry 태그가 부착된 복구 단백질을 안정적으로 발현하는 세포들은 조사되지 않은 세포들의 이미지입니다.두 번째 행은 방사선 조사 3시간 후에 고정된 세포를 보여줍니다. 세 번째 행은 방사선 조사 6시간 후에 고정된 세포를 보여줍니다. 전자 분광 이미징 결과, 질소 신호의 증가로 나타나는 foci 내 53 BP1 단백질의 상대적 양은 증가하는 반면, 인 신호로 나타나는 염색질은 더 주변부로 위치하게 됨으로써 foci의 구조가 시간이 지남에 따라 재구성되는 것으로 나타납니다.본 영상을 시청한 후, 전자 분광 이미징을 이용하여 DNA 복구 초점 내 크로마틴의 초미세 구조를 분석하기 위해, DNA 복구 단백질을 발현하는 조사된 세포를 준비하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다. sodium cacodylate 완충액, potassium cyanide 및 osmium oxide를 사용하는 작업은 매우 위험할 수 있으므로, 본 절차를 수행하는 동안 항상 흄 후드 내에서 작업하고 장갑을 착용하는 등의 예방 조치를 취해야 함을 잊지 마십시오.

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

우리는 2 차원 아가로 오스 겔 - 분석 UV 방사선 다음 발생하는 복제 중간체의 구조를 식별하는 데 사용될 수있는 절차를 제시한다.

에서 UV - 유도 복제 중간체의 시각화 E. 대장균 2 차원 아가로 오스 겔 - 분석을 사용하여

이 비디오에서는 방사선 조사된 세포핵의 이중 가닥 DNA 절단 부위에서 DNA 복구 단백질 γH2AX 및 53BP1의 국소화를 시각화하기 위한 면역형광 방법에 대해 설명합니다.

DNA 복구 단백질 상호 작용의 면역형광 기반 시각화

여기에서는 뉴클레오티드 절제 복구 시스템을 예로 들어 단일 분자 AFM 이미징을 통한 다양한 DNA 병변 인식 접근 방식에 대한 연구를 시연합니다. DNA 및 단백질 시료 준비 절차와 AFM 실험을 위한 실험 및 분석 세부 사항에 대해 설명합니다.

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여기에서는 유전 독성 스트레스에 노출 된 현탁 세포 배양 물에서 ATM과 p53 사이의 직접적인 단백질 - 단백질 상호 작용을 검출하고 시각화하기 위해 현장에서의 근접 연결 분석 (PLA)이 어떻게 사용될 수 있는지 보여줍니다.

Proximity Ligation Assay를 이용한 현탁 세포 배양에서의 DNA 손상 유발 단백질 복합체의 검출 및 가시화

레이저 microirradiation는 살아있는 세포에서 DNA 수리의 연구에 대 한 유용한 도구입니다. 다양 한 DNA 병 변 유발 하 UVA 레이저의 사용에 대 한 방법론 접근 표시 됩니다. 우리 지역 microirradiation; 정상적인 세포 주기를 유지 하는 방법을 최적화합니다 따라서, 비친된 세포 유사 분열을 통해 진행합니다.

고급 단백질 단백질 상호 작용 및 DNA 병 변에서 속도 론 연구에 Confocal 현미경 검사 법 기술

DNA 손상 복구 속도 론을 공부 하 고 정의 된 하위 핵 지역에서 병 변 유발 하는 시스템이 필요 합니다. 레이저 검사 confocal 현미경 405 nm 레이저 장비를 사용 하 여 지역화 된 이중 가닥 나누기를 만들고 이러한 병 변에서 수리 요인의 역학을 계량 하는 자동화 된 절차를 제공 하는 방법을 설명 합니다.

단백질 DNA 장애 405 Nm 레이저 마이크로 방사선 조사를 사용 하 여 채용의 조사

이중 가닥 DNA 틈의 수리 후 병 변 해결 뿐만 아니라 휴식, 하지만 또한 그들의 해상도에 선 단지의 형성을 필요로 역동적인 과정 이다. 여기, 사용 면역 형광 검사 현미경 검사 법 과도 하 고 오래 견 딘 더블-좌초 휴식을 위한 도구로 서이 게놈 유지 관리 메커니즘을 해 부 합니다.

면역 형광 검사 현미경 검사 법에 의해 변이 및 긴-지속 이중 가닥 DNA 틈에 DNA 복구 과정을 특성화

DNA 손상에 따라 인간 세포는 게놈의 무결성을 회복하기 위해 필수적인 수리 경로를 활성화합니다. 여기서, 우리는 DNA 복구 단백질을 검출하고, 그들의 공간 및 측두모집을 분석하고, DNA 손상의 사이트에서 단백질 단백질 상호 작용을 심문하는 것을 돕는 수단으로 간접적인 면역 형광의 방법을 기술합니다.

면역형광에 의한 DNA 수리 단백질 상호작용의 시각화

이 기사에서는 면역 염색 및 크로마틴 면역 침전의 필수적인 단계를 소개합니다. 이 프로토콜은 일반적으로 DNA 손상 관련 세포 프로세스를 연구하고 DNA 복구에 연루된 단백질의 모집을 시각화하고 정량화하기 위하여 이용됩니다.

엔도누블레스 기반 사이트 별 DNA 손상을 시각화하고 정량화

본 프로토콜은 환자 유래 난소암 오가노이드에서 DNA 손상 복구 단백질을 평가하는 방법을 설명합니다. 여기에는 포괄적인 도금 및 염색 방법과 상세하고 객관적인 정량 절차가 포함됩니다.

면역형광 분석을 통한 환자 유래 난소암 오가노이드의 DNA 손상 복구 단백질 시각화

다음 프로토콜은 세포주기 동기화 후 RPA2 면역형광 염색을 사용하여 세포주기의 G1 단계에서 단일 가닥 DNA 병소를 검출하는 방법을 제시합니다.

세포 주기의 G1 단계에서 단일 가닥 DNA 병소 시각화

배우세요 전자 분광 이미징과 miniSOG 태그를 이용한 DNA 복구 단백질의 나노미터급 시각화 방법입니다. 손상된 크로마틴의 초미세 구조를 분석하여 유전체 안정성 유지 메커니즘을 규명할 수 있습니다.

전자 분광 이미징과 결합 miniSOG 태그 DNA 복구 단백질의 시각화 (ESI)

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