Name: 실험 시신경의 탈수 초화의 쥐 모델에서 시각 유발 전위 기록 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-07-29T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 49 s
Description: 학습하세요 쥐 시신경 탈수 초화 모델에서 시각 유발 전위 기록 방법을. 두개골 전극 이식과 lysolecithin 미세주사를 통해 탈수 초화를 유도하고, VEP 지연 시간과 병변 크기의 상관관계를 분석합니다.

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이 연구는 호주 안과 연구소 (오리 아)에 의해 지원되었다. 우리는 처음에 VEP 기록 기술을 개발하기 위해 우리를 도와, 교수 Algis Vingrys 박사 빅뱅 부이, 멜버른 대학 감사합니다.

윤리 문 : 동물과 관련된 모든 절차는 관리 및 과학적인 목적을위한 동물의 사용 및 안과 및 비전 연구에서 동물의 사용에 대한 ARVO 방침의 지침 연습 호주 코드에 따라 수행되었으며, 승인했다 맥쿼리 대학의 동물 윤리위원회. 1. VEP 전극 주입 <ol><li> 복강 내 주사 케타민 (75 ㎎ / ㎏) 및 메데 토미 (0.5 밀리그램 / kg)으로 동물을 마취. 마취의 유도에 따라 수술을 시작하는 표시로 철수 반사 (핀치 검사, 각막과 눈꺼풀 반사 등)과 부재을 준수합니다. 수술 내내 계속 동물을 모니터링하고 반사가 존재하는 경우 추가 마취약 (상위 - 업 케타민 당 초기 용량의 10 %)을 관리. 성인 쥐 (&gt; 12주)는 실험에 사용된다. </li><li> 외과 영역의 피부를 면도.수술 중 체온을 유지하기 위해 온난화 패드 (37 ° C)에서 동물을 놓습니다. 포비돈 - 요오드의 국소 응용 프로그램을 통해 피부를 준비합니다. 수술 입체 재단을 적용합니다. 전신 마취하에 각막 건조를 방지하기 위해 국소 안과 연고를 적용합니다. 멸균 악기를 사용하여 무균을 유지한다. </li><li> 헤드 피부의 중간 선에 길이의 피부 절개를합니다. 두개골의 좋은 노출을 달성하기 위해 결합 조직을 취소합니다. </li><li> 조심스럽게, 수동으로 브레 그마 뒤에 7mm과 중간 선에 3mm 측면에서 마이크로 핸드 드릴을 사용하여 작은 버 구멍을 드릴. </li><li> 약 0.5 mm의 깊이로 피질을 관통하는 피질 (영역 (17))에 두개골을 통해 임플란트 나사 전극. 브레 그마로 정중선 3mm의 입쪽에 기준 나사 전극을 이식. 나사를 싸는하고 해결하기 위해 치과 시멘트를 적용합니다 (항상 필요하지 않음). </li><li> RECO하는 동물을 머리의 피부 봉합 피부에 항생제 연고를 관리 허용버전 온난화 패드에 마취에서. 주 : 대안 적으로, 전극이 노출 남아있을 수 있다는 것을 피부에서 각각의 기록 재개 할 필요가없는, 그래서. 수술 전에 즉시하지만 마취 회복의 정지시에, 비 스테로이드 성 항 염증 약물 (NSAID) (아니라면 사전에 동작 투여) 또는 아편 유사 진통제를 투여. 마취 완전히 외래에서 완전히 회복 될 때까지 지속적으로 동물을 모니터링합니다. </li><li> 동물이 수술의 사전 VEP 기록을 복구하는 적어도 일주 허용합니다. </li></ol> 2. 시신경 주입 <ol><li> , 동물을 마취 피부를 준비하고 (1.1 및 1.2) 이상으로 드레이프 적용됩니다. </li><li> 무작위로 선택된 눈의 궤도 위의 피부에 1 - 1.5 cm의 절개를합니다. 미세 홍채 가위를 사용하여 궤도 캐비티에 도달하기 위해 피하 조직을 엽니 다. 결막을 열고 운영 현미경으로 장부의 캡슐을 전방. </li><li> 안구 후퇴근육과 intraobital 눈물 분비는 시신경의 약 3mm 길이를 노출합니다. 길이 방향으로 안과 블레이드를 사용하여 시신경 주위의 경막과 지주막 물질 층을 엽니 다. </li><li> 세계에 2mm 후방의 거리에서 시신경에 유리 피펫을 삽입합니다. 유리 마이크로 피펫은 해밀턴 주사기에 부착된다. </li><li> 약 30 초에 걸쳐 천천히 신경으로 - (수초에 효과가없는 0.02 % 에반 블루와, 1.0 μL, 0.4), 1 % 리소 레시틴을 주입한다. </li><li> 피부 절개 봉합. 감염을 방지하기 위해 항생제 연고를 적용합니다. 동료의 눈은 전기 생리학 레코딩을위한 내부 통제 역할을 할 수있다. </li><li> 마취에서 회복 온난화 패드에 동물을 놓습니다. </li></ol> 3. VEP 기록 <ol><li> 동물을 마취하고 1.1 및 1.2로 피부를 준비합니다. 참고 : 마취제의 낮은 복용량은 전기 생리 RECO 사용할 수 있습니다rding (케타민 40 ㎎ / ㎏과 0.25 ㎎ / ㎏을 메데 토미). </li><li> 어두운 방에서 쥐를 놓고는 5 어둠에 적응 할 수 - 30 분. 어떤 경우에는 쥐가 각각 포토 픽 VEP 녹음 8 적응 암순응 또는 빛 어두운 적응 O / N이 될 수 있습니다. </li><li> 직장 온도계 프로브 homoeothermic 블랭킷 시스템에 의해 37 ± 0.5 ℃의 체온을 유지한다. </li><li> 1.0 % tropicamide 눈 방울과 학생들을 팽창. 액세스하기 위해 두개골을 통해 피부를 열고 사전 배치 현장 나사 전극에서. </li><li> 자극 눈의 반대편 시각 피질과 앰프에 대한 참조 나사를 통해 나사를 연결합니다. 지상으로 꼬리에 바늘 전극을 삽입합니다. 측정하고 5 kΩ의 아래 전극 임피던스를 유지한다. </li><li> 뛰어난 눈 절연 (7)을 제공하기 위해 눈꺼풀 주위의 피부에 직접 미니 Ganzfeld 자극을 놓습니다. 자극기의 조명이 미리 보정해야광도계에 의해. </li><li> 각각 1 내지 100 Hz의 낮은 및 높은 밴드 패스 필터 설정을 1 Hz의 주파수에서 빛을 깜박 100 회 빛의 자극을 전달한다. 신호 샘플링 레이트는 5 kHz에서이다. 참고 : 신호는 적어도 약 250 샘플링한다 - 더 두 개의 샘플은 각주기 동안 수집되는 것을 보장하기 위해 300 Hz에서. </li><li> 다시 피부를 봉합하고 마취에서 회복하기 온난화 패드에 동물을 유지. 녹화 반복 시간 기간 동안에 기능적 변화를 모니터링하기 위해 각각의 동물에 기록 될 수있다. </li><li> 최종 시점에서, 동물을 안락사 나트륨 펜토 바르비 톤 (100 밀리그램 / kg, IP)의 과다 주사를 관리. 심장 마비, 호흡 정지 및 체온의 감소에 의해 안락사를 확인합니다. </li></ol> 4. 조직 준비 및 조직학 <ol><li> 현미경으로 안락사 동물에서 시신경을 제거하고 1 % 파라 포름 알데히드의 O / N의 조직을 고정합니다. </li> &lt;리&gt; 식염수로 철저하게 조직을 씻으십시오. 자동 조직 프로세서에서 처리하고, 조직을 파라핀에 포함. 회전식 마이크로톰을 사용하여 - (10 μm의 5) 컷 섹션. 참고 : 면역 조직 화학 연구를 들어, 1 % 파라 포름 알데히드에 조직을 고정 식염수로 세척하고 30 % 자당 O / N로 품어. OCT에서 임베드 조직 매체를 포함하고 저온 ​​유지 장치를 사용하여 저온부을합니다. </li><li> 56 ° C에서 같은 룩솔 (95 % 에탄올) O / N으로 0.1 % 빠른 블루 솔루션 섹션을 품어. 다음 다른 30 ​​초 70 % 에탄올을 30 초 동안 0.05 %의 탄산 리튬의 섹션을 차별화하고. 마지막 섹션을 장착하기 전에 30 초 동안 0.1 % 크레 실 바이올렛 용액 Counterstain과. 시신경 5 수초를 식별하기 위해 빠른 파란색 염색을 사용합니다. </li></ol>

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</ol>

저자 중 누구도 경쟁하는 이해관계나 상충되는 이해관계를 가지고 있지 않습니다.

시신경은 기계적 손상에 매우 취약합니다. 1초 동안 시신경 압착 손상은 2주 동안 RGC의 약 75% 손실로 이어질 수 있습니다10. 따라서 수술을 시행하는 동안 각별한 주의가 필요합니다. 저자의 경험에 따르면, 시신경에 수직 방향으로 관통하는 것보다 신경의 방향을 따라 시신경 주변 조직을 노출시키고 통과하도록 무딘 해부 접근법을 적용하는 것이 훨씬 낫습니다. 또한 경막과 지주막은 RGC 축삭에 대한 축소절개술과 같은 손상을 피하기 위해 세로로 풀어야 합니다. Evan의 파란색은 일반적으로 염료의 존재가 주사 부위의 신경을 연한 파란색으로 만들기 때문에 미세 주사를 용이하게 하는 데 사용됩니다.
VEP 기록의 재현성은 이 실험에 매우 중요합니다. 다양한 유형의 마취제와 마취 깊이가 VEP 파형에 영향을 미칠 수 있습니다11. 이소플루란은 아마도 GABA성 활성으로 인해 뇌파 반응12에 대한 파열 억제로 이어질 수 있으므로...

시신경염은 시신경병증의 가장 흔한 형태 중 하나로, 시력의 완전 또는 부분적 상실을 유발합니다1. 조직학적으로, 그것은 염증성 탈수초화, 망막 신경절 세포 축삭 손실 및 시신경의 다양한 정도의 수초화에 의해 특징지어집니다2. 시신경염은 일반적으로 다발성 경화증의 명백한 발병입니다. VEP(Visual Evoked Potential)는 시각 시스템의 기능을 조사하기 위한 비침습적 도구입니다. 이는 망막에서 1차 시각 피질에 이르는 망막 후 기능을 반영하며, 많은 시신경 질환 상태에 영향을 받습니다3. VEP는 주로 시신경염 환자에서 시각 경로의 무결성을 평가하기 위해 사용되어 왔습니다4. 
시각 경로를 따라 신호 전도의 속도를 반영하는 VEP의 잠복기는 시신경의 수초 관련 변화 수준을 정확하게 측정한 것으로 간주됩니다5; VEP의 진폭은 망막 신경절 세포(RGC)의 축삭 손상과 밀접한 상관관계가 있는 것으로 여겨집니다6. 이 가설은 리솔레시틴 유도 시신경 탈수초화(lysolecithin-induced optic nerve demyelination)5의 랫트 모델을 사용하여 상당히 잘 확립되었습니다. 
여기에서는 설치류의 시신경 미세주입 기술에 대한 포괄적인 프로토콜을 설명하며, 이는 안구 외 근육 및 혈관과 같은 인접 조직뿐만 아니라 신경 자체에 대한 외과적 조작 관련 손상을 최소화할 수 있습니다. 또한, 두개골 전극 이식 수술은 동물의 VEP 기록을 위해 기술되어 있다7. VEP 기록은 탈수초/재수초화 관련 변화와 시신경의 축삭 무결성에 미치는 영향을 평가하기 위해 일정 기간 동안 동물에 대해 반복적으로 수행할 수 있습니다.

<table><tbody><tr><td>케타민 100 mg/ml (Ketamil)</td><td>Troy Laboratories</td><td>AC 116</td><td></td></tr><tr><td>Medetomidine 1 mg/ml (Domitor)</td><td>Pfizer</td><td>sc-204073</td><td></td></tr><tr><td>Tropicamide 1.0% (Mydriacyl)</td><td>Alcon</td><td>sc-202371</td><td></td></tr><tr><td>Homoeothermic blanket system</td><td>Harvard Apparatus</td><td>NC9203819</td><td></td></tr><tr><td>Impedance meter&nbsp;</td><td>잔디</td><td>F-EZM5</td><td></td></tr><tr><td>나사 전극&nbsp;</td><td>마이크로 패스너</td><td>M1.0&times; 3mm Csk 슬롯 M/T 304 S/S</td><td></td></tr><tr><td>피하 바늘 전극&nbsp;</td><td>잔디</td><td>F-E3M-72</td><td></td></tr><tr><td>빠른 수리&nbsp;</td><td>DeguDent GmbH</td><td></td><td></td></tr><tr><td>발광 다이오드&nbsp;</td><td>니치아</td><td>NSPG300A</td><td></td></tr><tr><td>바이오앰프</td><td>CWE, Inc.</td><td>BMA-400</td><td></td></tr><tr><td>CED 시스템</td><td>Cambridge Electronic Design, Ltd.</td><td>Power1401</td><td></td></tr><tr><td>해밀턴 주사기&nbsp;</td><td>해밀턴</td><td>87930</td><td></td></tr><tr><td>리솔레시틴</td><td>시그마</td><td>L4129</td><td></td></tr><tr><td>에반 S 블루&nbsp;</td><td>시그마</td><td>E2129</td><td></td></tr></tbody></table>

실험 시신경의 탈수 초화의 쥐 모델에서 시각 유발 전위 기록

Visual Evoked Potential Recording in a Rat Model of Experimental Optic Nerve Demyelination

VEP(Visual Evoked Potential) 기록은 급성기에서 시신경염의 중증도를 평가하고 추적 관찰 기간 동안 질병 경과를 모니터링하기 위해 임상 실습에서 널리 사용됩니다. VEP 매개변수의 변화는 시신경의 병리학적 손상과 밀접한 관련이 있습니다. 이 프로토콜은 시신경에서 부분적인 탈수초 병변이 생성되는 시신경 미세주입의 설치류 모델에 대한 자세한 설명을 제공합니다. VEP 기록 기술에 대해서도 설명합니다. 두개골 이식 전극을 사용하여 재현 가능한 세션 내 및 세션 간 VEP 추적을 얻을 수 있습니다. VEP는 시신경의 기능적 변화를 종단적으로 평가하기 위해 일정 기간 동안 개별 동물에 기록될 수 있습니다. VEP 기록 프로토콜과 함께 시신경 탈수초 모델은 탈수초화 및 재수초화와 관련된 질병 과정을 조사하기 위한 도구를 제공하며, 잠재적으로 새로운 재수초화 약물 또는 신경 보호 요법의 효과를 평가하는 데 사용될 수 있습니다.

재현성 인트라 셔널 VEP 트레이스는도 1에 도시되어 있으며 대기 N1에서 상당한 지연은 시신경 주입 후에 알 수있다. 탈수 초화의 부분 시신경 병변 룩솔 패스트 블루 염색법을 이용하여 조직 학적 5 절에서 발견 될 수있다. 2 시신경의 중심에 작은 초점 탈수 초 병변 대표적인 부분을 도시한다. 단면은 병변의 총 부피를 대표하지 않습니다. 탈수 초 영역 삼차원 재구성을 사용하여 병소 용적을 추론 신경의 각 연속 단면에서 측정 될 수있다. 우리는 우리의 이전 연구에서이 모델을 사용하여 대기 시간 지연 및 병변 볼륨 사이에 강한 상관 관계를 증명하고 식염수 주입 컨트롤 5에는 VEP 대기 시간 지연이 없었다. 이것은 플래시 조명 다음 초기 VEP 성분보다 안정한 것으로 여겨진다 7 </sup&gt;와 주로 레티노...

국소 탈수초화는 리솔레시틴 미세주입을 사용하여 시신경에서 유도됩니다. 시각 유발 전위는 생체 내에서 시각 경로를 따라 신호 전도를 검사하기 위해 시각 피질에 이식된 두개골 전극을 통해 기록됩니다. 이 프로토콜은 전극 이식 및 시신경 미세 주입의 기초가 되는 수술 절차를 자세히 설명합니다.

The visual evoked potential (VEP) recording is widely used in clinical practice to assess the severity of optic neuritis in its acute phase, and to ...

다음 실험의 전반적인 목적은 생체 내(in vivo) 시신경의 탈수초화를 관찰하는 것입니다. 이를 위해 먼저 시각 피질 위에 미세 전극을 이식합니다. 그 다음 단계로 시신경에 lyin을 미세 주입하여 국소적인 탈수초화 병변을 유도합니다.그런 다음 시각 유발 전위 기록을 수행할 수 있습니다. 최종적으로, 회귀 분석 결과 시각 유발 전위의 잠복기 지연과 부피 사이에 강한 선형 상관관계가 있음이 나타납니다. 이 영상에서는 쥐의 시각 유발 전위를 기록하는 당사의 기술을 시연하겠습니다.두개골에 삽입된 전극을 사용하여, 미세 주입 기술을 이용한 시신경의 국소 탈수초화 기법을 시연하겠습니다. 모든 실험은 맥쿼리 대학교 의과대학(Macquarie University Faculty of Medicine) 내 저희 연구실에서 진행됩니다. 본 기법은 박사 과정 학생인 Nitin Chichi가 시연할 예정입니다. 우선, 수술을 시작하기 전 성체 쥐(12주령 이상)의 복강 내에 케타민과 메데토미딘을 주입하여 마취시키십시오.회피 반사가 없는지 확인하십시오. 수술 중 동물에게 반사가 다시 나타날 경우에 대비하여 필요에 따라 10% dose의 ketamine을 투여할 수 있도록 준비하십시오. 다음으로, 수술 부위의 피부를 면도한 후 동물을 가열 패드 위에 올려 준비를 완료하십시오.포비돈 요오드로 피부를 세척하고, 동물을 드레이핑한 후 안연고를 도포합니다. 또한, 멸균 기구를 사용하여 무균 상태를 유지하십시오. 수술을 시작하려면 머리 중앙선에 따라 피부를 세로로 절개합니다.그 다음 두개골이 잘 노출되도록 결합 조직을 제거합니다. 이어서 마이크로 핸드 드릴을 사용하여 bgma 뒤쪽으로 7 mm, 정중선에서 외측으로 3 mm 지점에 작은 버(bur) 구멍을 조심스럽게 뚫습니다. 나사 전극을 두개골을 통과하여 피질 내로 약 0.5 mm 깊이까지 삽입합니다.그 다음, 필요에 따라 bgma에서 정중선 방향으로 3mm rostral 지점에 기준 나사 전극을 이식합니다. 치과용 시멘트를 도포하여 나사 전극을 감싸 고정합니다. 마지막으로, 피부를 봉합하여 닫습니다.매 기록 시마다 피부를 다시 절개할 필요가 없도록 전극을 노출된 상태로 둘 수 있습니다. 이제 동물이 마취에서 깨어나기 전에 비스테로이드성 항염증제(nsaid) 또는 오피오이드성 진통제를 빠르게 투여하십시오. 마지막으로 피부에 항생제 연고를 바릅니다.동물을 가온 패드가 있는 회복용 케이지에 넣고 완전히 보행할 수 있을 때까지 지속적으로 관찰하십시오. 그 후 최소 일주일 동안 회복 시간을 갖게 합니다. VEP 기록을 하기 전, 이전에 설명한 대로 동물을 수술 준비시키고, 미세 홍채 가위(fine iris scissors)를 사용하여 안구 궤도 위의 피부를 1~1.5cm 정도 절개하십시오.피하 조직을 절개하여 안와강에 접근합니다. 그다음 실체 현미경 하에서 결막과 전건막 낭을 절개합니다. 이어서 외안근과 안와 내 눈물샘을 견인합니다.시신경 주변의 시신경을 약 3mm 정도 노출시키기 위해, 안과용 칼을 사용하여 경막과 지주막 층을 세로 방향으로 절개합니다. 그런 다음 Hamilton 시린지에 연결된 유리 마이크로 피펫을 안구 뒤쪽 2mm 지점의 신경 내로 삽입합니다. 30초에 걸쳐 염료가 포함된 lyin 볼루스를 주입하여 절차를 완료합니다.피부 절개 부위를 봉합합니다. 감염 예방을 위해 항생제 연고를 도포합니다. 동물을 가온 패드로 옮기고 회복될 때까지 관찰합니다.이전과 같이 동물을 마취하고 피부를 준비한 후, 암실로 이동시킵니다. 암실 내에서 모니터링하는 동안 항온 담요 시스템과 온도 프로브를 사용하여 동물의 체온을 37°C의 ±0.5°C 범위 내로 유지합니다. 동물을 5분에서 30분 동안 적응시킵니다.30분 후, 1% tropic IDE 안약을 사용하여 동공을 확장합니다. 그런 다음 가위와 포셉을 사용하여 두개골 위의 피부를 절개하고 미리 배치한 NC two 나사 전극에 접근합니다.나사를 임피던스 측정기에 연결합니다. 그런 다음 전극 임피던스를 측정하여 5 kΩ 미만으로 유지합니다. 이제 자극된 눈의 반대측 시각 피질 위에 나사를 연결합니다.다음으로, 접지를 위해 꼬리에 니들 전극을 삽입합니다. 이제 안구 격리를 개선하기 위해 눈꺼풀 주변 피부에 보정된 미니 ganzfeld 자극기를 배치합니다. 그런 다음, 1Hz의 저역 통과 필터와 고역 통과 필터를 사용하여 1Hz로 100회 플래시의 광자극을 가합니다.100 hertz로 필터링하십시오. 완료되면 피부를 봉합하고, 동물이 마취에서 회복될 수 있도록 가온 패드 위에 두십시오. 일주일에 몇 번에서 몇 주에 한 번꼴로 반복 측정하는 것이 가능합니다.중재 후, VEP 파형은 N1 잠복기에 상당한 지연이 있음을 보여줍니다. 시신경 주입 후, 재현성을 입증하기 위해 매일 기록을 측정하였습니다. luxal fast blue로 염색한 조직 절편에서 탈수초화로 인한 부분적인 시신경 병변을 관찰할 수 있었습니다.병변 부피를 측정한 후, 잠복기 지연과 병변 크기 사이의 상관관계가 분명해졌습니다. 이 기술은 시신경에 병변을 유도하고 이러한 병변을 VP 변화와 상관시키기 위해 사용할 수 있으며, 국소 탈수초성 질환의 모델로 활용될 수 있습니다. 유도된 병변의 크기가 상당히 다양하므로, 변화를 조직학적으로 상관시키는 것이 중요합니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

망막 신경절 세포는 눈의 작업 잠재력의 시퀀스와 뇌로 영상 정보를 전송. 여기, 우리는 하나의 신경절 세포의 활동 잠재력을 기록하는 방법을...

단일 유닛 생체내에서</em암흑의 광학 Chiasm에서> 레코딩

이 비디오는 망막 건강과 시력 경로 무결성을 연구하기 위한 쥐 모델의 준비를 보여줍니다. 시각적 유발 전위 및 전기 망막검사 참조 및 활성 전극을 쥐에 연결한 다음, 고르게 망막 조명을 위해 플랫폼을 Ganzfeld 그릇 앞의 쥐와 정렬하고 외부 간섭을 피하기 위해 패러데이 케이지를 닫습니다.

전기생리학 설정을 사용하여 시각적 경로 무결성을 평가하기 위한 RAT 모델 준비

이 비디오는 빛 자극에 대한 반응으로 뇌의 시각 피질에서 나오는 전기 신호를 기록하는 미리 이식된 두개골 전극으로 어둡게 적응하고 마취된 쥐에서 시각적 유발 전위 또는 VEP를 측정하는 과정을 보여줍니다.

쥐 모델의 두개골 전극을 통한 시각적 유발 전위 기록

이 비디오는 의식이 있는 쥐의 망막전도(ERG)와 시각 유발 전위(VEP)를 기록하는 방법을 보여줍니다. 외과적으로 전극을 이식한 쥐는 먼저 어둠에 적응한다. 확장 점안액을 적용한 후, 동물을 구속기에 넣고 Ganzfeld 그릇에 넣습니다. 그런 다음 ERG 및 VEP 신호가 기록됩니다.

쥐의 망막전도 및 시각 유발 잠재력 기록

이 비디오는 마취된 동물의 시신경에 외과적으로 접근하여 국소 탈수초를 유도하기 위해 리솔레시틴을 정확하게 전달하여 추가 연구를 위한 신경 병리학적 조건을 만드는 절차를 보여줍니다.

리솔레시틴(Lysolecithin)을 이용한 시신경의 국소 탈수초화(local demyelination) 유도

이 프로토콜은 마취된 쥐에서 망막전도와 시각적 유발 전위를 동시에 측정하는 것을 설명합니다.

전위도의 동시 녹화 및 마취 된 흰쥐의 비주얼 사건 관련 전위

우리는 녹음이 마취 교란없이 실시하고 있습니다 인간의 조건에 더 유사하다 눈 (전위도) 및 의식 쥐의 뇌 (시각 잠재적 유발)에서 시각 전기 생리 신호를 측정하는 수술 주입 및 녹음 과정을 보여줍니다.

의식 쥐에 주입 및 무선 막전위의 기록 및 Visual 사건 관련 전위

우리는 비-침략 적, 변형, 그리고 재사용 가능한 드라이 타입 16 채널 EEG 센서를 설계. 이 종이 생산 신호 비주얼 갖는 잠재력 (VEP)의 처리를 제안 된 뇌 파 전극 건조 비-침략 적 다중 채널 EEG 센서를 사용 하 여 마우스 두 피 측정 신호 전체 프로세스를 설명 합니다.

드라이 비-침략 적 멀티 채널을 사용 하 여 마우스에 비주얼 갖는 잠재적인 녹음 두 피 뇌 파 센서

여기에서 우리는 시신경과 그 뉴런의 구조와 기능을 이해하기 위하여 염소와 rhesus 원숭이에서 생체 내 시험 (플래시 시각적 으로 불러일으킨 잠재력, 패턴 전기 전세노그램 및 광학 일관성 단층 촬영)에서 몇몇을 염판합니다.

인 비보 큰 동물의 망막 신경 세포 및 시신경 기능 및 구조를 평가하는 방법

이 논문은 표준 안과 수술 기법을 사용하여 토끼 모델에서 시신경 압착을 수행하기 위한 자세한 지침을 제시합니다.

토끼 모델에서 시신경 파쇄를 위한 외과적 접근 방식

학습하세요 쥐 시신경 탈수 초화 모델에서 시각 유발 전위 기록 방법을. 두개골 전극 이식과 lysolecithin 미세주사를 통해 탈수 초화를 유도하고, VEP 지연 시간과 병변 크기의 상관관계를 분석합니다.

실험 시신경의 탈수 초화의 쥐 모델에서 시각 유발 전위 기록

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