Name: 마우스 폐 암 연구에 유용한 점안 및 고정 방법 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-08-31T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 57 s
Description: 학습하세요 마우스 폐암 연구를 위한 점안 및 고정 방법을 통해 정확한 폐 조직 분석 기술을 익히세요. 이 프로토콜은 종양학 및 병리학 연구자들에게 필수적인 실험 재현성을 제공합니다.

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다음 프로토콜은 20-35g 마우스에서 잘 작동하는 시스템을 설명합니다. 방법은 쉽게 간단히 카테터의 크기를 변경하여 더 크거나 작은 마우스에 적응 될 수있다. 모든 동물 프로토콜은 존스 홉킨스 대학 동물 관리 및 사용위원회에 의해 승인되었습니다. 1. 폐 떨어 뜨림 <ol><li> 삽관에 사용하는 상용 1 인치 긴 20g 정맥 캐뉼라를 선택합니다. </li><li> 수동으로도 1에 도시 된 바와 같이 그 선단부에 약간의 곡률을 생성하도록 절곡 카테터 팁을 수정한다. </li><li> IP는 케타민 (100 ㎎ / ㎏)과 자일 라진 (15 ㎎ / ㎏)의 혼합물로 마취 주사 마우스, 반사 및 움직임의 부재를 확인하여 마취. 즉시 마취 후 눈에 수의학 연고를 적용합니다. 마취는 눈에 수의학 연고를 적용하고 이후 수술 및 점안 마취에 대한 카프로 펜 (5 ~ 10 ㎎ / ㎏ SQ)을 얻었다 직후. </li><li> 양해 각서 (MOU)를 배치경 사진 플랫폼에 자체 부정사. 도 2에 도시 된 바와 같이, 봉합 루프와 함께 큰 사무실 바인더 완벽 잘 작동에 녹화. </li><li> 목 청소의 복부 부분을 면도하고 70 % 알코올로 목 영역을 소독. 새로운 라텍스 -와 powder- 무료 장갑, 70 % 알코올로 소독 된 수술 도구를 사용합니다. </li><li> 사용 날카로운 가위는 약 12​​mm 아래 앞니 아래의 목에 작은 수술 절개를합니다. </li><li> 집게 부드럽게 목 피부를 당겨와 기관의 복부 벽을 알 수 미부까지. </li><li> 부드럽게 혀를 철회하고 마우스의 복부 표면을 향해 기울어 구부러진 끝 캐 뉼러를 삽입합니다. 1.4에서와 같이, 목의 피부에 부드럽게 당기와 기관에 캐 뉼러를 삽입합니다. 참고 : 약간의 연습으로, 카테터는 기관을 아래로 이동 볼 수 있습니다. 이 식도로가는 경우, 카테터의 움직임의 시각적 관찰은 없을 것이다. 어떤 절개하지기관에서 만들어진다. </li><li> 카테터는 목의 기관에서 볼되면, 안정적으로 그것을 약 5mm 고급 성대를 통과하지만 여전히 잘 카리나 위. </li><li> 겔로드 피펫 팁 카테터를 통해 주입 액의 50 μL까지 심어 준비합니다. 루어 허브에서 팁을 배치,하지만 마우스의 호흡과 팁 동기에 유체의 움직임을 관찰하기 위해주의 깊게 살펴 주입하기 전에. 그런 다음 instillate를 주입. </li><li> 1 mL의 시린지로 즉시 폐 액체 깊이를 분배하기 위해 카테터를 통해 폐에 공기 0.6 ㎖가 비교적 급속 팽창을한다. 정맥을 제거합니다. </li><li> 정맥을 제거합니다. </li><li> VetBond에 대한 패키지 삽입 지시에 따라 작은 수술 상처를 닫 시아 노 아크릴 레이트 접착제의 작은 금액을 사용합니다. 개별 케이지에 마우스를 놓고 그들이 일어나까지 시각적으로 모니터링하고 discomf의 표시없이 정상적으로 작동오트. </li></ol> 2. 폐 고정 참고 : 모든 실험 절차는 마우스에서 수행되면, 폐는 포름 알데히드 (또는 기타 원하는 정착액)와 고정에 의해 조직 학적 처리를 위해 준비 할 수 있습니다. <ol><li> IACUC 수용 절차에 마우스를 희생. 비디오에 도시 대표 마우스를 들어, 마취 된 쥐의 경추 탈구가 사용된다. </li><li> 수술, 기관의 복부 측면을 노출 작은 컷을하고, 기관에 18 G 스텁 바늘 끝을 삽입하고, 스레드와 함께 매서 (아직 수행하지 않은 경우) 기관 절개술을 수행합니다. </li><li> 조심스럽게, 중간 선 절개로 가슴을 열고 다이어프램을 절단하고, 폐를 노출하는 측면 가슴 벽을 제거합니다. </li><li> 포름 알데히드를 포함하는 링 스탠드에 저수지에 바늘의 루어 끝을 연결합니다. 그림 3을 참조하십시오. </li><li> 25cm 각서의 레벨보다 포름 알데히드의 상면을 설정할그 자체. 그림 3을 참조하십시오. 다음 꼭지의 끝에서 유체를 실행하여 고정 튜브에 공기가없는 있는지 확인하십시오. 저수지 튜브로 기관 캐뉼라의 루어 끝을 연결합니다. 포름 알데히드와 폐를 팽창 할 수있는 꼭지를 엽니 다. 적어도 20 분 동안 압력으로 폐를 남겨주세요. </li><li> 포름 알데히드와 폐를 팽창 할 수있는 꼭지를 엽니 다. 적어도 20 분 동안 압력으로 폐를 남겨주세요. </li><li> 다음으로, 스텁 바늘의 끝을지나 기관을 묶어. 그것은 uncannulated 기관의 더 많은 노출 바늘에 다시 천천히 당겨하는 데 도움이 될 수 있습니다. 안전하게 연결하면, 꼭지를 제거합니다. </li><li> 조심스럽게 폐를 해부하다. </li><li> 하룻밤 포름 알데히드의 폐를 놓습니다. 긴 시간은 괜찮, 일부 얼룩이나 절차는 특정 시간을 지정할 수 있습니다. 또한 Z-수정 같은 다른 액체 고정 제는, 점적 및 침지에 사용될 수있다. </li><li> 또한 조직 학적 처리하기 전에 측정다음에 기술 된 바와 같이 고정 된 폐 용적. </li></ol> 고정 폐 볼륨 3. 측정 <ol><li> .도 4에 도시 된 바와 같이 아르키메데스 원리를 이용한 폐의 부피를 측정 포름 알데히드에서 고정 폐를 제거하고 심장 및 다른 비 - 폐 조직 해부. </li><li> 완전히 수몰 폐를 유지하는 데 사용되는 이전에 구성된 간단한 만든 와이어지지 장치를 사용한다. 참고 :이 장치가 사용되는 중 균형과 호환 할 필요가있다. 도 5에 도시 된 전형적인 플라스틱 피펫 장치는 얇은 (20 G) 와이어로 제조된다. 이 시스템은 비디오에 사용 된 균형이 잘 작동하지만, 가장 쉽게 실험실 저울에 적용 할 수있다. </li><li> 물에 장소에 지원 케이지 균형과 용기에 물 ≈200 ml의 비커를 놓습니다. . 그림 6 참조 금속 케이지를 제거; 물 표면에 폐를두고 물에서 눌러케이지. </li><li> 균형에 무게를 기록한다. 이 수는 물 변위의 양을 반영하고, 따라서 폐 용적의 직접적인 척도이다. 확인 폐 또는 봉합 또는 측면이나 비커의 바닥에 닿지 않도록 와이어 케이지의 어떤 부분을주의하십시오. </li><li> 정확도,이 측​​정을 반복한다. 조직에있는 물에서 폐, 건조를 제거합니다. 다시 자리에 케이지와 비커를 용기와 폐 용적 측정을 반복한다. 두 부피 측정은 다음 평균화한다. 주 : 폐보다 약 일주일 포르말린에 남아있는 경우, 폐에 공기를 액체에 용해 될 것이다. 이 경우, 폐 싱크 것, 그래서 침수 폐 유지도 5에서와 같이 임의의 장치를 사용하는 것이 더 이상 필요하지 않다. 이러한 경우 볼륨은도 4에 도시 된 것처럼 완전히 잠길 때까지 봉합 문자열 중 하나에 의해 폐 유지시킴으로써 간단하게 측정 할 수있다. </li></ol>

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</ol>

여기에 설명 된 절차는 여러 가지 장점이있다. 먼저 필요한 장비는 간단하고 저렴하다. 둘째, 삽관 빠르게 거의 오류없이 수행 할 수있다. 셋째로, 고정 폐 용적을 일정한 압력으로 폐를 고정하고 측정하는 능력은 폐 (10)의 구조 또는 셀의 적절한 정량을 허용한다. 삽관에 한 가지 단점은 작은 수술이다. 이것은 2 차 점적 주입이 필요한 경우의 절차를 반복 할 수있는 능력을 제한 할 수있다. 그러나, 접착제의주의 수술과 응용 프로그램과 함께 우리는 정기적으로 또는 두 개의 나중에 제 점안 일주일을 할 수 있었다. 연속 반복 instillations가 필요 또는 반복적으로 폐 기능 검사가 필요한 경우, 다른 삽관 방식은 13,14 더 바람직 할 수있다합니다. 점안을함으로써, 언급해야 몇 가지 실제적인 문제가 있습니다. 그것은 중요 T입니다오 입의 초기 개방의 혀의 움직임...

여러 가지 이유로, 폐암 널리 마우스에서 연구되지 ​​않았다. 그 이유 중 하나는 폐에 대한 액세스가 생체 내에서 매우 곤란하며, 고정 된 폐의 정량 분석은 일반적으로 수행되지 않는다는 것이다. 이 문서에서 설명하는 방법은이 상황을 해결하기 위해 설계되었습니다. 목표는 여기에 크게 폐암 또는 다른 병리와 설정 및 마우스 폐의 분석에 도움이 될 간단한 방법을 설명한다. 이러한 방법 중 어느 것도 완전히 새로운 없지만, 그들은 여기에 설명 된대로 단순화 된 방식으로 독립 실행 형 방법으로 함께 제시되지 않았다. 주로 길이 연구에서 개별 마우스에서 반복 폐 기능 또는 기관지 세척을하는 목적 마우스 폐 삽관 용 방법을 설명 하였다 원고있어왔다. 그 원래의 종이 때문에, MOUS에 다른 접근 방식을 설명했다 몇 가지 다른 논문이 있었다전자 삽관 1 -9. 이들 방법 모두가 성공적으로 사용될 수 있지만, 그들은 일반적으로 상당한 훈련이 필요하며, 사소 실패율없이 종종있다. 또한, 폐 기능의 측정을 수행하기 위해, 캐 뉼러는 공기 누설이 없도록 충분히 밀접 기관 적합해야한다. 그러나, 삽관 용 다른 실용적인 사용은 폐에 직접 특정 에이전트 (암세포 또는 기타 욕설) 또는 치료제를 제공하는 것이다. 이러한 절차는 꽉 피팅 정맥이나 정교한 폐 기능의 장비를 필요로하지 않습니다. 여기에 도시 된 본 방법의 특징은 신규 한 식도를 입력 뉼러의 가능성없이 삽관을 허용 작은 외과 수술을 포함한다. 이 간단한 방법은 비교적 적은 훈련이나 경험이 성공적인 삽관을 할 수 있습니다. 30 개의 마우스 / 시간은 제로에 접근 실패율이 방법을 사용하여 처리 될 수있다. T 일단그는 마우스는 부상 또는 암의 폐 후 조직 학적 및 병리학 적 분석을 위해 제거 할 수 있습니다, 희생 할 준비가되어 있습니다. 그러나, 적절하게 다른 폐과의 비교를 위해 모든 조직 학적 변수를 정량화하기 위해서, 정착 과정을 표준화하고 적절히 고정 폐 용적 (10)을 정량화하는 것이 필수적이다. 이 논문은 상세히 표준화 정착 절차뿐만 아니라 고정 폐 용적을 측정 할 수있는 방법을 허용 간단한 절차를 설명한다. 이러한 체적 측정없이, 단지 상대 밀도가 10을 측정 할 수 있기 때문에, 부피가 조직학의 정량화에 필수적인 메트릭이다. 폐 용적이 알려지면, 그러나, 세포 및 폐의 다른 구조적 측정의 절대 측정은 다음 정량화 할 수있다.

<table><tbody><tr><td>실험실 저울</td><td>Ohaus</td><td>Adventurer Pro 모델 AV 313&nbsp;</td><td>범위가 1-300g인 경우 다른 저울을 사용할 수 있습니다</td></tr><tr><td>20g Luer 정맥 카테터</td><td>Insylte</td><td></td><td>다른 여러 가능한 공급업체, 예: , Jelco Optiva</td></tr><tr><td>500ml 실험실 병</td><td>다양한</td><td></td><td>기타 여러 가능한 공급업체</td></tr></tbody></table>

마우스 폐 암 연구에 유용한 점안 및 고정 방법

Instillation and Fixation Methods Useful in Mouse Lung Cancer Research

부상 또는 쥐를 죽이지 않고 직접 폐로 라이브 제제, 세포, 또는 화학 물질을 주입하는 능력은 폐암 연구에서 중요한 도구이다. 폐 기능 측정을 위해 마우스를 삽관하는 방법을 보여주는 게시 된 많은 방법이 있지만, 아무도는 마우스의 큰 동료의 급격한 기관 점안에 대한 잠재적 인 문제없이 없습니다. 본 논문에서는 간단하고 빠른 방법은 효율적인 방식으로 이러한 instillations을 수행하는 연구자있게 것이 기재되어있다. 이 방법은 특별한 도구 나 조명을 필요로하지 않고 약간의 연습을 배울 수 있습니다. 또한, 마우스를 마취 기관을 시각화 목에 작은 절개를 제작 한 후 직접 정맥 카테터를 삽입하는 것을 포함한다. 작은 절개 빠르게 조직 접착제로 폐쇄하고, 마우스를 복구 할 수있다. 숙련 된 학생 또는 기술자는 2 분 / 마우스의 평균 속도로 instillations을 수행 할 수 있습니다. T 일단암이 확립 그는, 폐의 조직 학적 정량 분석​​에 대한 요구가 빈번하다. 전통적으로 고정하는 동안 폐 인플레이션을 표준화 귀찮게하지 않습니다 일반적으로 병리학 및 분석은 종종 매우 주관적 일 수있는 평가 시스템을 기반으로합니다. 이 언젠가 폐 종양의 크기의 추정을위한 총 충분히 적합 할 수 있지만, 폐 세포 구조 또는 임의의 적절한 stereological 정량화 재현성 정착 과정 및 후속 폐 량 측정을 필요로한다. 여기에서 우리는 모두 압력 폐를 고정하고 정확하게 고정 폐 용적을 측정하는 간단한 신뢰할 수있는 절차에 대해 설명합니다. 유일한 요구 사항은 MG-1 300 g의 범위에 걸쳐 정확한 실험 실용 저울이다. 그러므로 여기에 제시된 절차는 크게 마우스에서 폐암을 생성 처리, 및 분석 할 수있는 능력을 향상시킬 수있다.

절차는 그 자체로 어떤 일반화 된 결과로 연결되지 않는 첫 번째 프로토콜에 대해 설명합니다. 단지 직접 기관지 내로 물질을 주입하기위한 수단을 더 믿을만한 설명한다.도 7은 트립 판 블루가 여기에 기재된 방법에 주입시킨 폐의 일례를 도시한다. 기관 또는 마우스 (11, 12)에 주어진 다른 염료 또는 추적자로 볼 된 것과 유사한 염료의 광범위한 분포는있다. 우리는 또한 각각 널리 섬유증이나 폐기종, 결과 폐에 블레오 마이신 또는 엘라 스타 제를 제공하기 위해이 방법을 사용했다. 사후 폐에서 구조적 변화를 정량화 기재된 절차는 25cm의 H 2 O의 압력으로 고정 폐 볼륨에 데이터를 제공 할 이러한 볼륨 측정은 총 수 (10)에 세포 또는 조직 밀도의 후속 편견 조직 학적 측정을 변환하는 것이 필수적이다. 본 논문 만 드매우 정확한 폐 용적을 구하는 수단을 스...

이 논문의 목적은 크게 폐암 또는 다른 병리와 설정 및 마우스 폐의 분석에 도움이 될 간단한 방법을 설명하는 것입니다. 우리는 간단하고 확실하게 폐 instillations, 정착, 폐 용적 측정을 수행하는데 3 프로토콜을 제시한다.

The ability to instill live agents, cells, or chemicals directly into the lung without injuring or killing the mice is an important tool in lung cancer ...

여기서 보여주는 절차의 전반적인 목표는 폐암 또는 기타 폐 병변이 있는 마우스의 설정 및 분석에 큰 도움이 될 간단한 방법들을 입증하는 것입니다. 먼저 암세포나 화학적 처리제를 폐에 직접 주입하는 방법을 소개합니다. 이어서 사후 고정 및 폐 용적 측정 방법을 설명합니다.이는 먼저 약간 수정된 정맥 캐뉼라를 사용하여 마우스에 삽입함으로써 수행됩니다. 다음으로, 관심 대상 액체를 캐뉼라를 통해 폐로 주입합니다. 그 후 모든 생체 내(in vivo) 실험이 완료되고 마우스가 사망하면 됩니다.폐를 고정액이 담긴 저장조에 연결합니다. 마지막 단계로 폐를 적출하여 폐 용적을 측정합니다. 최종적으로 고정된 폐 조직의 정량적 형태학적 특성을 실험군 폐 샘플 간에 비교할 수 있습니다.기존 방법과 비교하여 이 새로운 설치 기술의 주요 장점은, 본 방법을 사용하면 캐뉼라를 기관에 잘못 배치할 가능성이 거의 없다는 점입니다. 일정한 압력 하에서 폐를 고정하는 절차는 간단하며, 서로 다른 폐에서도 일관된 고정 결과를 얻을 수 있습니다. 마지막으로, 고정된 마우스 폐 부피를 측정하는 방법은 폐 세포 및 구조적 요소를 정량화하기 위한 적절한 표준화를 가능하게 합니다.이 방법을 사용하십시오. 약물 또는 관심 있는 다른 제제를 폐에 직접 전달하고, 폐를 정확하고 정밀하게 측정하는 것을 보장하십시오. 절차를 시작하기 전에 20 gauge의 상용 1인치 길이 정맥 카뉴라 팁을 수동으로 약간 구부려 주십시오.발가락 집기 자극에 반응이 없는 것을 통해 마취 상태를 확인한 후, 성체 마우스의 눈에 연고를 바르고 대형 사무용 바인더와 봉합 루프를 사용하여 경사 플랫폼 위에 마우스를 배측으로 고정합니다. 목의 복측 부위를 제모하고 70% alcohol로 피부를 소독합니다. 그런 다음 날카로운 가위를 사용하여 아래쪽 절치에서 약 12 millimeters 아래의 목 부위에 작은 외과적 절개를 실시합니다.다음으로, 핀셋을 사용하여 기관의 복측벽이 보일 때까지 목 피부를 조심스럽게 당깁니다. 그런 다음 혀를 부드럽게 젖히고, 끝이 구부러진 캐뉼라를 마우스의 복측 표면 쪽으로 기울여 삽입합니다. 방금 시연한 것처럼 다시 한번 목 피부를 부드럽게 당깁니다.카테터가 기관 내에서 관찰될 때 캐뉼라를 기관에 삽입하고, 카테터를 약 5mm 더 전진시켜 성대를 통과시킵니다. 이제 50 µL의 주입액이 채워진 젤 로딩 피펫의 팁을 카테터의 루어 허브에 배치합니다. 팁 내부의 액체가 생쥐의 호흡과 동기화되어 움직이는지 확인합니다.그 후 1 mL 주사기를 사용하여 주입물을 주입합니다. 액체가 고르게 분포되고 폐가 확장될 수 있도록 카테터를 통해 즉시 0.6 mL의 공기를 주입하여 폐를 팽창시킵니다. 그런 다음 캐뉼라를 제거합니다.소량의 시아노아크릴레이트 접착제로 수술 부위를 폐쇄하고, 완전히 회복될 때까지 모니터링하며 마우스를 개별 케이지에 배치합니다. 마지막 실험 시점이 지난 후, 동물의 목 부위를 작게 절개하여 기관의 복측을 노출시킵니다. 그런 다음 18게이지 스터브 바늘 팁을 기관에 삽입합니다.실을 사용하여 바늘을 기관에 묶고, 정중선 절개를 통해 흉강을 조심스럽게 엽니다. 그 다음 횡격막을 절단하고 측면 흉벽을 제거하여 폐를 노출시킵니다. 다음으로, 스톱콕 끝으로 포름알데히드를 흘려보내 고정 튜브 내에 공기가 없는지 확인합니다.그런 다음 포르말린 용액이 담긴 저장조와 충전 튜브를 기관절개 바늘의 유인단에 직접 연결합니다. 포르말린의 상단 표면을 입 높이보다 25cm 위에 설정하고 스톱콕을 열어 고정액으로 폐를 팽창시킵니다. 폐를 최소 20분 동안 압력 상태로 둔 후, 바늘 끝부분 너머의 기관을 묶으면서 바늘을 천천히 뒤로 당겨 캐뉼라가 삽입되지 않은 기관 부위를 더 노출시킵니다.기관을 단단히 묶은 후, 스톱콕을 제거하고 폐를 조심스럽게 적출합니다. 그런 다음 폐를 포름알데히드에 넣고 하룻밤 동안 둡니다. 여기서는 플라스틱 피펫과 얇은 20 gauge 와이어로 만든 고정 폐 용적 유지용 전형적인 장치를 보여주며, 이를 사용하여 먼저 고정 폐 용적을 측정한 뒤 심장 및 폐 이외의 다른 조직을 폐에서 적출합니다.다음으로 와이어 지지 장치가 장착된 약 200 milliliters의 물이 담긴 비커를 저울 위에 올리고 장비의 무게를 뺍니다(tare). 그 후 장치를 제거합니다. 폐를 수면에 놓고 장치를 사용하여 조직을 물속으로 누릅니다.폐 봉합사나 장치의 어느 부분도 비커의 측면이나 바닥에 닿지 않도록 주의하며, 저울로 무게를 측정합니다. 이 수치는 배제된 물의 부피를 반영하므로 폐 부피의 직접적인 측정값이 됩니다. 그런 다음 와이퍼로 폐를 닦아 말린 후, 장치로 비커를 다시 떼어내고 폐 부피 측정을 반복합니다.그 다음 두 번의 부피 측정값을 여기서 평균 내어야 합니다. 방금 시연한 것과 같이 trypan blue를 주입한 폐의 예시가 표시되어 있습니다. 마우스 기관에 직접 투여한 다른 염료 추적자들에서 관찰된 것과 유사하게, 염료가 광범위하게 분포되어 있음에 유의하십시오. 이 절차를 수행할 때, 캐뉼라 삽입 시 주의하고 팁의 배측(ventral side)이 위를 향하게 유지하는 것이 중요합니다.여기서 설명한 기술들은 폐암 연구에 유용하지만, 마우스의 다른 대부분의 폐 질환 모델에도 적용 가능합니다.

instillation-and-fixation-methods-useful-in-mouse-lung-cancer-research

Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

Intratracheal instillations 직접 폐에 solutes을 제공합니다. 이 절차는 폐암의 말초 지역에 instillate의 전달을 대상으로하고, 따라서 종종 폐포를 공부하기위한 연구에 통합됩니다. 우리는 생쥐에서 intratracheal instillations을 수행하기위한 세부적인 생존 프로토콜을 제공합니다.

마우스 폐에 Solutes 직접 Tracheal 떨어뜨림

본 연구에서보고 된 소설 프로토콜 결합에 의한 마우스의 단일 셀 해상도로 폐 metastases의 선택적 검출 할 수...

복합에 의한 마우스의 싱글 셀 해상도에서 폐 Metastases의 향상된 시각화<em&gt;에서 시츄</em폐 조직 및 X-걸의 착색의&gt; 재관류<em&gt; lacZ</em&gt; 태그 종양 세포

이 동영상은 섬유증 유발제인 블레오마이신(bleomycin)으로 기도를 사전 조정하여 쥐 폐에 폐 선암 세포를 생착시키는 방법을 설명합니다. 이 방법은 폐암 세포의 쥐 폐로의 이소소 생착을 크게...

선암종 생착: 암세포를 쥐의 폐에 이식하는 방법

이 비디오는 폐 점안, 고정 및 폐 용적 측정을 위해 기관에 액체를 주입하는 간단하고 신뢰할 수 있는 방법을 설명합니다.

폐 주입 및 고정: 기관에 액체를 주입하고 폐를 고정하여 고정된 폐 용적을 측정합니다.

본 논문은 폐 기능 측정 또는 쥐가 복구 나중에 시간에 공부를 할 수 있습니다 폐 기지에 대한 쥐를 intubating의 striaghforward하고 효율적인 방법을 설명합니다. 절차는 직접 기관을 비춰 저렴한 fiberoptic 광원을 포함한다.

마우스 폐 삽관 법의 간단한 방법

상해 항공을 미리 조절 하 여 murine 폐에 폐 암 세포의 orthotopic engraftment를 크게 향상 하는 방법을 설명 합니다. 이 방법은 또한 폐 microenvironment, 전이성 보급, 폐 암 공동 morbidities stromal 상호 작용 연구에 적용 될 수 있습니다 그리고 파생 xenografts 환자를 보다 효율적으로 생성 하.

Orthotopic 폐 암 세포 Engraftment의 효율성 증가 사전 조건 Bleomycin와 쥐의 기도

여기에 제시된 폐 고정을 위한 유용한 프로토콜은 기종의 마우스 모델에서 폐 견본의 조직학적 평가를 위한 안정한 조건을 만드는. 이 모델의 주요 장점은 폐 붕괴 또는 디플레이션없이 동일한 일정한 압력으로 많은 폐를 고정 할 수 있다는 것입니다.

마우스에 있는 기종의 평가를 위한 일정한 압력의 밑에 폐 고정

쥐에서 실험제의 INTracheal (IT) 투여는 종종 말단 폐에 비대칭 전달을 초래한다.  이 보고에서는, 우리는 살아있는 마우스에 있는 각 폐를 비 작동가능하게 캐뉼기 위하여 직접적인 기관내 (IB) 접근을 기술합니다.  이러한 접근법은 하나의 폐에 제제를 선택적으로 투여하기 위해 사용될 수 있거나 또는 두 폐에 대한 대칭에이전트 전달을 개선하기 위해 적응될 수 있다.

마우스 폐 내 선택적 에이전트 침착을 개선하기 위한 직접 기관내 투여

이 방법의 목적은 폐 종양 병리학의 검사 및 폐에 전이의 평가를 위한 마우스 폐의 관류, 인플레이션 및 고정을 위한 간단하고 효율적인 방법을 제시하는 것입니다.

종양 연고학을 위한 마우스 폐의 관류 및 인플레이션

우리는 형광 현미경을 통한 분석을 위해 폐 기도에서 곰팡이 포자의 자연스러운 위치를 보존하는 곰팡이 발병 모델에 대한 방법을 제시합니다.

기도에서 곰팡이 포자의 공간 역학을 보존하는 쥐 폐를 이미징하는 효율적인 방법

폐암에 대한 새로운 치료법 개발의 주요 과제에는 국소 질환이 전이성 질환으로 진행됨에 따라 종양 미세 환경을 모델링하는 것이 포함됩니다. 여기에서는 시간이 지남에 따라 질병의 생체 내 추적을 가능하게 하는 폐암의 동소 동계 모델을 확립하는 간단한 방법을 설명합니다.

폐암의 동계 동소 마우스 모델을 생성하기 위한 최소 침습적 방법

학습하세요 마우스 폐암 연구를 위한 점안 및 고정 방법을 통해 정확한 폐 조직 분석 기술을 익히세요. 이 프로토콜은 종양학 및 병리학 연구자들에게 필수적인 실험 재현성을 제공합니다.

마우스 폐 암 연구에 유용한 점안 및 고정 방법

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