Name: 마우스 망막 색소 상피의 유전자 치료에 대한 바이러스 벡터의 윤부 접근 - 망막 주입 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-08-07T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 48 s
Description: 배우세요 마우스 망막 색소 상피에 유전자를 전달하는 윤부 주사 기법을 바이러스 벡터를 이용해 수행하는 방법을. 이 기법은 재현 가능하며 안과 유전자 치료 연구에 활용됩니다.

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본 연구는 서울 대학교 연구 그랜트 (800-20140542)에 의해 지원되었다, NRF / 교육 과학 기술부의 개척자 연구 프로그램 (2012-0009544)과 NRF / 교육 과학 기술부의 바이오 신호 분석 기술 혁신 프로그램 (2009-0090895) 과 NRF / 교육 과학 기술부의 그랜트 (2015M3A9E6028949).

동물에 대한 모든 실험은 안과 및 비전 연구에서 동물의 사용에 대한 비전 및 안과 문에 연구를위한 협회에 따라 수행하고, 지침과 규정은 서울 대학교 기관 동물 관리 및 사용위원회와 서울 대학교가 정한했다 대학 병원 바이오 안전성위원회. 1. 주입 키트 및 바이러스 성 벡터를 준비 <ol><li> 에틸렌 옥사이드 가스를 사용하여 멸균 33 G 무딘 바늘을 갖춘 마이크로 리터 주사기를 준비한다. 마이크로 튜브 (즉, 1 × 6 TU / μL)의 적절한 역가에 대한 PBS에서 바이러스 벡터를 희석. 주사기 임의 사강을 제거하는 주사기를 바이러스 벡터로 수회 세척. </li></ol> 바이러스 성 벡터의 2. 망막 주입 <ol><li> tiletami의 혼합물의 복강 내 주사 - (8 주 오래 즉, 6) 성인 쥐를 마취NE 및 zolazepam (1 : 1, 2.25 ㎎ / ㎏ 체중)과 자일 라진 하이드로 클로라이드 (0.7 ㎎ / ㎏ 체중) 또는 다른 적절한 마취 정권. </li><li> 페닐에 0.5 %의 점안제와 동공 팽창 및 0.5 % tropicamide. </li><li> 바이러스 벡터의 2 μL - 1.5로드하여 마이크로 리터 주사기를 준비합니다. </li><li> 눈꺼풀을 열고 편리 주입 적도 노출 및 운영 현미경에 초점을 눈 돌출. 주입 동안 발생할 수있는 바늘의 주입, 또는 변위 마무리까지 돌출 눈 위치를 유지한다. 단단히 안구를 유지하기 위해, 궤도 림 외부에서 손가락을 놓습니다. </li><li> 각막 표면 안과 점탄성 용액 한 방울을 적용한다. </li><li> 망막을 시각화하는 각막의 상단에 작은 원형 커버 슬라이드를 놓습니다. </li><li> 추가적인 망막 주 사용 멸균 1/2 30 G 바늘을 사용 윤부에 약간 후방에 작은 구멍이 천공. FO 구멍이 열등 확인R 우안과 편의상 좌안 우수한. 주 : 구멍 시간적 또는 비강에서 이루어진다면, 그것은 주입 후 눈꺼풀에 의해 커버되기 어렵다. 초기 구멍은 약간 만든 윤부를 따라 실행하고 쉽게 인식 할 수 윤부 혈관을 피하기 위해 윤부에 후부해야합니다. 초기 구멍을하는 동안 바늘로 렌즈를 타격 않도록주의하십시오. 렌즈 구멍을 피하기 위해 바늘의 전체 경사를 삽입하지 마십시오. </li><li> 사전 천공 구멍을 통해 마이크로 리터 주사기의 33 G 무딘 바늘을 놓고 가벼운 저항이 느껴지는 경우 지점까지 망막 하 공간에 바늘을 접근. 참고 : 망막 주사를 들어, 바늘의 가장 좋은 방법 각도는 조리개면에 대해 약 45도이며, 무딘 바늘은 유두 주위 지역을 향해 후방으로 밀어해야합니다. 점선 사각형은 망막 injectio의 유리 체강에서 제안 된 바늘의 경로를 표시그림 1에서 N. 참고 : 그들은 매우 부드럽고으로 관통 (또는 전달) 망막 층 경우에는 저항이 느끼지있을 것이다. 따라서, 온화한 저항 제 느낌 바늘 이미 RPE 층을 터치하고 바늘의 삽입이 중단되어야 함을 나타낸다. 바늘이 잠재적 인 망막 공간에 배치해야하기 때문에 과도한 압력과 공막 조직에 침투하지 않도록주의하십시오. 바늘이 과도한 전력에 의해 공막 조직을 천공하면, 저항없이 안구 궤도 공간으로 들어간다. (이 단계는 매우 중요하다) </li></ol><img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/53030/53030fig1.jpg" /> 망막 사출 그림 1. 회로도. H &amp; E 표시 망막 주사 바늘 경로와 구조를 묘사 마우스 눈의 스테인드 단면 (점선 사각형). 배율 : 40X, 스케일 바 :<html> 500 μm의. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53030/53030fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <ol start="9"><li> 불필요한 조직 손상을 방지하고 조심스럽게 바늘을 철회 떨림없이 망막 하 공간에 부드럽게 바이러스 벡터 (즉, 1 × 6 TU / μL)를 주입한다. 2.4에 설명 된대로 주입하는 동안 단단히 안구를 잡습니다. </li><li> 더 망막 출혈이없는 것을 확인하기 위해 운영 현미경으로 주사 후 망막 여과포의 형성을 관찰한다. </li></ol><img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/53030/53030fig2.jpg" /> 그림 2. 망막 출혈없이 망막 Belb 형성. 운영 현미경으로 망막 주사 후 망막 belb의 현미경보기 망막 출혈없이 성공적으로 여과포 형성을 보여줍니다.M / 파일 / ftp_upload / 53030 / 53030fig2large.jpg &quot;대상 =&quot;_ 빈 &quot;&gt;이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오. <ol start="11"><li> 부드럽게 자체 밀봉 용 주사 부위를 덮도록 눈꺼풀을 닫을. 홈 케이지에 마우스를 반환하고, 평가까지 살아 유지. 참고 : 연구자가 절차에 익숙해 후, 다음 단계 건너 뛰어 신속한 절차에 반복 가능한 결과를 얻을 수 (2.5, 6, 10) 수 </li></ol> 망막 색소 상피의 유전자 전달의 효능 3. 평가 <ol start="1"><li> CO 2 챔버에서 쥐를 희생. 가위를 사용하여 눈을 명백히하다. </li><li> 며칠에 최소 1 시간 동안 4 ℃에서 4 % 파라 포름 알데히드 용액에서 쳐다. </li><li> 미세 집게로 각막을 잡고 마이크로 가위로 각막에 구멍. 윤부를 따라 가위질 한 후 각막을 제거합니다. 집게로 렌즈를 제거합니다. </li><li> M와 모양체 트림망막 박리를 허용 icro 가위. 조심스럽게 RPE / 맥락막 / 공막 단지에서 전체 망막을 잡아 당깁니다. 평면 실장 용 4~8 잎 있도록 시신경 수회 가까운 중심 둘레로부터 반경 RPE / 맥락막 / 공막 복합체를 잘라. </li><li> 아래 망막 색소 상피면을 만들고, 근육, 결막 및 시신경을 포함하는 공막 측에 남아있는 모든 조직을 손질 할 수있는 RPE / 맥락막 / 공막 복잡한 플립. 나머지 조직은 복잡한 요철 구조를 만들기 때문에이 단계는 플랫 RPE / 맥락막 / 공막 복합체를 확인하는 것이 중요하다. </li><li> (자세한 방법에 대한 내용을 참조, 선택 사항) 특정 연구 목적으로 기본 및 보조 항체 복합체를 품어. 유리 슬라이드에 RPE / 맥락막 / 공막 단지를 플랫 마운트 흡수성 스폰지로 PBS를 흡수한다. </li><li> 장착 솔루션의 30 μl를 추가하고 커버 슬라이드를 배치합니다. 형광 현미경 벡터 전달의 효능에 대한 샘플을 관찰한다. 에 샘플을 유지더 관찰 냉장고. </li></ol>

<ol><li>Maguire, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Safety+and+efficacy+of+gene+transfer+for+Leber%27s+congenital+amaurosis%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Safety and efficacy of gene transfer for Leber's congenital amaurosis.</a> N Engl J Med. 358 (21), 2240-2248 (2008).</li>
<li>Jacobson, S. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+therapy+for+leber+congenital+amaurosis+caused+by+RPE65+mutations%3A+safety+and+efficacy+in+15+children+and+adults+followed+up+to+3+years%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Gene therapy for leber congenital amaurosis caused by RPE65 mutations: safety and efficacy in 15 children and adults followed up to 3 years.</a> Arch Ophthalmol. 130 (1), 9-24 (2012).</li>
<li>Conlon, T. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preclinical+potency+and+safety+studies+of+an+AAV2-mediated+gene+therapy+vector+for+the+treatment+of+MERTK+associated+retinitis+pigmentosa%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Gene+Ther+Clin+Dev%22%5BJournal%5D)">Preclinical potency and safety studies of an AAV2-mediated gene therapy vector for the treatment of MERTK associated retinitis pigmentosa.</a> Hum Gene Ther Clin Dev. 24 (1), 23-28 (2013).</li>
<li>MacLaren, R. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retinal+gene+therapy+in+patients+with+choroideremia%3A+initial+findings+from+a+phase+1%2F2+clinical+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Retinal gene therapy in patients with choroideremia: initial findings from a phase 1/2 clinical trial.</a> Lancet. 383 (9923), 1129-1137 (2014).</li>
<li>Trapani, I., Puppo, A., Auricchio, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vector+platforms+for+gene+therapy+of+inherited+retinopathies%5BTitle%5D)+AND+%22Prog+Retin+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Vector platforms for gene therapy of inherited retinopathies.</a> Prog Retin Eye Res. 43, 108-128 (2014).</li>
<li>Liang, F. Q., Anand, V., Maguire, A. M., Bennett, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intraocular+delivery+of+recombinant+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Med%22%5BJournal%5D)">Intraocular delivery of recombinant virus.</a> Methods Mol Med. 47, 125-139 (2001).</li>
<li>Peyman, G. A., Lad, E. M., Moshfeghi, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravitreal+injection+of+therapeutic+agents%5BTitle%5D)+AND+%22Retina%22%5BJournal%5D)">Intravitreal injection of therapeutic agents.</a> Retina. 29 (7), 875-912 (2009).</li>
<li>Matsumoto, H., Miller, J. W., Vavvas, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retinal+detachment+model+in+rodents+by+subretinal+injection+of+sodium+hyaluronate%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Retinal detachment model in rodents by subretinal injection of sodium hyaluronate.</a> J Vis Exp. (79), (2013).</li>
<li>Wert, K. J., Skeie, J. M., Davis, R. J., Tsang, S. H., Mahajan, V. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subretinal+injection+of+gene+therapy+vectors+and+stem+cells+in+the+perinatal+mouse+eye%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Subretinal injection of gene therapy vectors and stem cells in the perinatal mouse eye.</a> J Vis Exp. (69), (2012).</li>
<li>Eberle, D., Santos-Ferreira, T., Grahl, S., Ader, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subretinal+transplantation+of+MACS+purified+photoreceptor+precursor+cells+into+the+adult+mouse+retina%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Subretinal transplantation of MACS purified photoreceptor precursor cells into the adult mouse retina.</a> J Vis Exp. (84), e50932(2014).</li>
<li>Sahel, J. A., Roska, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+therapy+for+blindness%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Gene therapy for blindness.</a> Annu Rev Neurosci. 36, 467-488 (2013).</li>
<li>Allocca, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+adeno-associated+virus+serotypes+efficiently+transduce+murine+photoreceptors%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">Novel adeno-associated virus serotypes efficiently transduce murine photoreceptors.</a> J Virol. 81 (20), 11372-11380 (2007).</li>
<li>Takahashi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sustained+transduction+of+ocular+cells+with+a+bovine+immunodeficiency+viral+vector%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Sustained transduction of ocular cells with a bovine immunodeficiency viral vector.</a> Hum Gene Ther. 13 (11), 1305-1316 (2002).</li>
<li>Rolling, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+therapeutic+prospects+in+early+onset+of+severe+retinal+dystrophy%3A+restoration+of+vision+in+RPE65+Briard+dogs+using+an+AAV+serotype+4+vector+that+specifically+targets+the+retinal+pigmented+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22Bull+Mem+Acad+R+Med+Belg%22%5BJournal%5D)">Gene therapeutic prospects in early onset of severe retinal dystrophy: restoration of vision in RPE65 Briard dogs using an AAV serotype 4 vector that specifically targets the retinal pigmented epithelium.</a> Bull Mem Acad R Med Belg. 161 (10-12), 497-508 (2006).</li>
<li>Le Meur, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Restoration+of+vision+in+RPE65-deficient+Briard+dogs+using+an+AAV+serotype+4+vector+that+specifically+targets+the+retinal+pigmented+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Restoration of vision in RPE65-deficient Briard dogs using an AAV serotype 4 vector that specifically targets the retinal pigmented epithelium.</a> Gene Ther. 14 (4), 292-303 (2007).</li>
<li>Alexander, J. J., Hauswirth, W. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adeno-associated+viral+vectors+and+the+retina%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Exp+Med+Biol%22%5BJournal%5D)">Adeno-associated viral vectors and the retina.</a> Adv Exp Med Biol. 613, 121-128 (2008).</li>
<li>Puche, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+and+environmental+factors+associated+with+reticular+pseudodrusen+in+age-related+macular+degeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Retina%22%5BJournal%5D)">Genetic and environmental factors associated with reticular pseudodrusen in age-related macular degeneration.</a> Retina. 33 (5), 998-1004 (2013).</li>
<li>Campochiaro, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+transfer+for+neovascular+age-related+macular+degeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Gene transfer for neovascular age-related macular degeneration.</a> Hum Gene Ther. 22 (5), 523-529 (2011).</li>
<li>Park, S. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracellular+amyloid+beta+alters+the+tight+junction+of+retinal+pigment+epithelium+in+5XFAD+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol+Aging%22%5BJournal%5D)">Intracellular amyloid beta alters the tight junction of retinal pigment epithelium in 5XFAD mice.</a> Neurobiol Aging. 35 (9), 2013-2020 (2014).</li>
<li>Shin, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracellular+cleavage+of+amyloid+beta+by+a+viral+protease+NIa+prevents+amyloid+beta-mediated+cytotoxicity%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Intracellular cleavage of amyloid beta by a viral protease NIa prevents amyloid beta-mediated cytotoxicity.</a> PLoS One. 9 (6), e98650(2014).</li>
</ol>

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이 비디오 문서에서는, 우리는 RPE / 맥락막 / 공막 평면 마운트의 대표적인 결과를 상세하게 윤부-접근 망막 주입 기술을 설명했다. 이것은 망막 색소 상피에 바이러스 벡터의 망막 주입을위한 쉽고 편리한 기술이다. 주입시 여과포 형성의 직접 시각화는 초보자를위한 정확한 전달을위한 중요한 단계입니다. 시각 실험 8-10의 저널에 소개 된 일부 망막 사출 기술이있다. 망막 하 공간이 망막과 망막 색소 상피 사이의 잠재적 인 공간이다, 따라서 망막 하 공간에 접근하는 두 가지 경로가있다. 하나는 유리체 및 망막을 통해 망막 공간 내부 방식이고, 다른 하나는 RPE 및 공막을 통한 외부 접근이다. 이 윤부-접근 망막 주입 기술은 유리체 강내 공간과 망막을 통해 이전의 하나입니다. 이 기술은 후자에 비해 더 후방 여과포 형성을 제공하는 장점을 가지고 있기 때문에, 후자pproach은 주변 망막을 통해 이루어져야한다 공막 터널 또는 절개를 통해 외주 측에서 여과포한다. 또한, 간단한 윤부 구멍 망막 침투하지 않고 공...

안과에서, 유전자 치료는 단일 유전자 상속 망막증의 치료법으로서 등장했다. Leber 씨 선천성 amurosis 1,2, 색소 성 망막염 (3), (4)를 포함 choroideremia 망막 색소 상피 (RPE) 유전자와 연관된 상속 망막 병증이있다. 유전자 치료의 연구 분야는 전임상 연구 및 아데노 -associated 바이러스 (AAV), 렌티 바이러스 (LV) 및 아데노 바이러스 (AD)와 같은 바이러스 벡터를 사용하여 임상 시험 모두에서 확대되고있다 (5). 다른 바이러스 성 벡터는 망막에 다른 친 화성이있다. 안전하고 효과적인 유전자 치료의 경우, 바이러스 벡터 신중 표적 세포와 표적 유전자에 따라 선택되어야한다. 효율적인 유전자 전달이 표적 세포에 대한 유전자 전달의 경로는 따라서 신중뿐만 선택되어야한다, 또한 중요하다. 바이러스 벡터의 인공 전달을위한 가장 일반적인 두 가지 방법이 subret된다원고 판 주입과 유리체 강내 주입 6. 후자 주입술 널리 당뇨 망막 7 습식 노인성 황반변 성 (AMD) 및 황반부 종의 맥락막 혈관 신생을 치료하는 약물 전달을 위해 사용되었다. 유리체 강내 경로 및 내측 망막 바이러스 벡터의 노광을 제공하지만, 외측 망막 벡터의 확산이 제한된다. 한편, 망막 경로 지역화 여과포를 유도, 망막 및 RPE 간의 잠재적 바이러스 벡터 공간으로의 직접 전달을 제공한다. 따라서, 망막 하 주사 현재 시각 세포 및 RPE를 타겟팅보다 효율적인 경로로 간주된다. 수술 방법의 측면에서, 인간 환자 유리체 망막 손상을 방지하기 위해 주입술 안전한 영역으로서 선택된다 갈 거예요. 단순히 쥐에이 방법을 수정하여, 우리는 윤부 접근 방식을 통해 subretinally 또는 intravireally 바이러스 벡터를 주입 할 수있다. 이 비디오에서기사, 우리는 쥐의 망막 색소 상피에 바이러스 벡터의 망막 주사의 쉽고 편리한 방법을 보여줍니다. 30 G 1/2 바늘 윤부에 후방에서 단일 천자 후, 33 G 무딘 바늘 장착 된 마이크로 리터 주사기는 윤부 천자 사이트를 통해 망막 하 공간에 삽입됩니다. 1.5의 바이러스 성 벡터 - 2 μL 볼륨은 망막과 망막 색소 상피가 망막 소포를 유도 사이의 잠재적 인 공간으로 주입된다. 이 절차는 수술 현미경을 사용하는 직접적인 시각화 하에서 수행 될 수있다. 반복 연습도 여과포 형성의 직접 시각화없이 복제 결과를 보장합니다. 이 쥐의 망막 색소 상피에서 망막 유전자 전달에 대한 정확하고 시간을 절약 실험을 수행하는 연구자 도움이 될 것입니다.

<table><tbody><tr><td>트위저 DUMONT #5 11cm DUMOSTAR 0.1 x 0.06 mm 팁</td><td>WPI</td><td>500233</td><td></td></tr><tr><td>VANNAS 가위 S/S, 105 mm</td><td>WPI</td><td>555583S</td><td></td></tr><tr><td>33 G 블런트 니들</td><td>WPI</td><td>NF33BL-2</td><td></td></tr><tr><td>NanoFil 주사기, 10 마이크로리터&nbsp;</td><td>WPI</td><td>NANOFIL</td><td></td></tr><tr><td>RPE-KIT</td><td>WPI</td><td>RPE-KIT</td><td>간편한 한 손 주입용</td></tr><tr><td>30 G x 1/2 (0.3 mm x 13 mm) BD PrecisionGlideTM Needle</td><td>BD</td><td>305107</td><td>초기 천공 망막 주사용</td></tr><tr><td>현미경 커버 안경 (No. 1 3 mm 직경)</td><td>Warner Instruments</td><td>64-0720&nbsp; (CS-3R)</td><td></td></tr><tr><td>라이카 연산 현미경</td><td>라이카</td><td>LM M80</td><td></td></tr><tr><td>플루오레세인 현미경</td><td>니콘</td><td>이클립스 80i</td><td></td></tr><tr><td>렌티바이러스</td><td>열과학</td>적인 <td>TMO. LV-Ctr</td><td>벡터 묽게 하는 데 사용</td></tr><tr><td>PBS</td><td>Gibco</td><td>10010-015</td><td>벡터 묽게 하는 데 사용</td></tr><tr><td>트로페린(페닐레프린 0.5% - 트로피카미드 0.5%)한</td><td>미</td><td></td><td>팽창용</td></tr><tr><td>프로파라카인 염산염 점안액 USP, 0.5% (멸균)</td><td>Bausch& Lomb</td><td></td><td>국소 마취용</td></tr><tr><td>Healon GV OVD</td><td>Abbott Medical Optics Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zoletil 50 (틸레타민 하이포클로라이드 및 졸라제팜 하이포클로라이드)</td><td>Virbac</td><td></td><td>전신 마취용</td></tr><tr><td>Rompun 주사 (Xylazine HCl)</td><td>Bayer</td><td></td><td>전신 마취용</td></tr></tbody></table>

마우스 망막 색소 상피의 유전자 치료에 대한 바이러스 벡터의 윤부 접근 - 망막 주입

Limbal Approach-Subretinal Injection of Viral Vectors for Gene Therapy in Mice Retinal Pigment Epithelium

눈은 작고 밀폐된 기관으로 유전자 치료에 이상적인 표적입니다. 최근에는 망막과 망막 색소 상피(RPE)에 비바이러스 및 바이러스 유전자 전달을 이용한 망막병증의 유전자 치료에 다양한 전략이 적용되고 있습니다. 망막하 주사는 바이러스 벡터를 RPE 세포에 직접 전달하는 가장 좋은 방법입니다. 유전자 치료제의 임상시험에 앞서 다양한 망막병증의 동물모델에서 치료제의 효능을 검증하는 것은 불가피합니다. 따라서 마우스에 대한 망막하 주사는 안구 유전자 치료의 기본 기술이 됩니다. 이 프로토콜에서는 실험용 마우스에 바이러스 벡터를 망막하 주입하기 위한 쉽고 복제 가능한 기술을 제공합니다. 이 기술은 안과 클리닉에서 널리 사용되는 기술인 유리체강내 주사에서 변형된 것입니다. RPE/맥락막/공막 복합체 플랫 마운트의 대표적인 결과는 이 기술의 효능을 이해하고 유전자 전달의 정도에 따라 바이러스 벡터의 부피와 역가를 조정하는 데 도움이 될 것입니다.

이 프로토콜에 의해 바이러스 성 유전자 전달에 망막 주사의 효능을 평가하기 위해, 우리는 인디케이터 GFP 및 RFP를 모두 표현하는 CMV 프로모터와 시판 LV 벡터를 사용했다. 눈은 연구 목적에 따라 적절한 시간 후에 적출 하였다. 대표적인 결과를 들어, 눈을 10 주에서 망막 주사 후 20 주 적출 하였다. 전술 한 방법을 사용하여 망막의 완전한 제거 후, ​​RPE / 맥락막 / 공막 복합체의 평면 실장 형광 현미경으로 평가 하였다. 대표적인 결과는 그림 3A (망막의 완전한 제거와 좋은 예)와 그림 (b) (그대로 망막와 가난한 예)에 나타내었다. RPE 층 위에 남은 신경 망막 (특히 감광체 외측 부분)의 존재가 RPE에 유전자 전달의 영역을 분석을 방해하지 않았지만, 그것은 GFP / RFP 및 억제 직접 visua의 형광을 차단추가 분석을위한 망막 색소 상피 층의 사용 효율. 따라서, RPE / 맥락막 / 공막 복합체로부터 신경 망막의 완전한 제거가 더...

망막하 주사는 쥐의 눈에 있는 망막 색소 상피에 효과적인 유전자 전달을 위한 수술 기술입니다. 여기에서는 실험용 마우스에서 망막 색소 상피에 바이러스 벡터를 망막하 주입하는 쉽고 복제 가능한 방법을 설명합니다.

The eye is a small and enclosed organ which makes it an ideal target for gene therapy. Recently various strategies have been applied to gene therapy in ...

본 절차의 전반적인 목표는 살아있는 생쥐의 망막 색소 상피에 표적 유전자를 전달하는 것입니다. 이는 먼저 눈꺼풀을 열고 안구를 돌출시켜 적도를 노출함으로써 수행됩니다. 다음 단계는 각막 가장자리 뒤쪽에 작은 구멍을 만드는 것입니다.뭉툭한 바늘을 사용하여 바이러스 벡터를 망막하 공간에 주입하고 망막하 수포(bleb)가 형성되는지 관찰합니다. 최종적으로, 면역형광 현미경 검사를 통해 주입된 바이러스에 의해 전달된 형광 마커가 망막색소상피에서 발현됨을 확인합니다. 이는 망막색소상피에 바이러스 벡터를 망막하 주입하는 효율적이고 편리한 기법입니다.망막하 주사 테스트는 수행하기 어려우므로 이 방법에 대한 시각적 시연이 매우 중요합니다. 초보자의 경우, 먼저 에틸렌 옥사이드 가스를 사용하여 멸균한 33 gauge 둔탁한 바늘이 장착된 마이크로리터 주사기를 준비하십시오.다음으로, 마이크로 원심분리 튜브에서 바이러스 벡터를 PBS로 희석하여 마이크로리터당 약 100만 타이터 단위가 되도록 준비합니다. 이제 시린지에 용액을 충전할 때, 시린지 내부의 데드 스페이스를 제거하기 위해 용액으로 여러 번 플러싱합니다. 바이러스 벡터 주입을 위해 1.5에서 2µL를 준비합니다.성체 마우스의 복강 내에 diazepam과 생리식염수를 주입하여 마취를 준비하고, 반사 반응이 없는 것을 확인하여 동물이 마취되었음을 검증합니다. 마취가 확인되면 0.5% phenylephrine과 0.5% ide 한 방울을 사용하여 동공을 확장시킵니다. 이제 수술 현미경 하에서 눈꺼풀을 열고 안구를 돌출시켜 적도를 노출시킵니다.안와 가장자리 바깥쪽에 손가락을 배치하여 안구를 이 위치에 고정합니다. 그다음, 각막 표면에 안과용 점탄성 용액을 도포하고 각막 위에 작은 원형 커버 슬라이드를 덮습니다. 이렇게 하면 이제 각막연보다 약간 뒤쪽의 망막을 볼 수 있으며, 오른쪽 눈의 경우 하단에서, 왼쪽 눈의 경우 상단에서 관찰할 수 있습니다.멸균된 30 gauge 반바늘을 사용하여 임시적 또는 비강 쪽에 작은 구멍을 만듭니다. 구멍은 덮기가 어렵기 때문에 적절한 선택이 아닙니다. 천자 시 각막연 혈관이나 수정체를 건드리지 않도록 주의하고, 망막하 주사를 위해 바늘 전체를 삽입하지 마십시오.벡터 주입 바늘을 홍채 평면에 45도 각도로 구멍을 통해 삽입합니다. 바늘을 유두 주변 영역을 향해 후방으로 밀어 넣습니다. 표시된 경로를 따라 유리체강을 가로지릅니다.약한 저항이 느껴질

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Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

이 수술 기법은 마우스 눈의 subretinal 공간으로 유전자 치료 벡터와 줄기 세포의 주입을 보여줍니다.

마우스 눈에 유전자 치료 벡터와 줄기 세포의 Subretinal 주입

출처: Park, SW, et al. 생쥐 망막 색소 상피에서 유전자 치료를 위한 바이러스 벡터의 윤부 접근법-망막하 주사. J. Vis. 경험. (2015년)이 비디오는 마우스 모델에서 망막 색소 상피(RPE)에 바이러스 벡터를 망막하 주입하는 방법을 설명합니다. 마취 및 눈 준비부터 정확한 렌티바이러스 벡터 전달에 이르기까지 RPE에서 유전자 통합 및 발현을 보장하는 절차를 자세히 설명합니다.

마우스 모델에서 망막 색소 상피에 바이러스 벡터의 망막하 주사

여기에서 우리는 쥐와 생쥐에 RPE 세포 덩어리를 망막하 주입하기 위한 멀티미디어 형식의 커뮤니티 승인 프로토콜을 제시합니다. 이 접근 방식은 망막 변성의 동물 모델에 이식할 때 이식된 RPE 세포의 구조 가능성, 안전성 프로필 및 생존 능력을 결정하는 데 사용할 수 있습니다.

서스펜션에 망막 색소 상피 세포를 제공하기 위해 설치류에서 망막 주사를 수행

망막하 주사는 단백질 및 바이러스 벡터와 같은 큰 치료제를 광수용체와 망막 색소 상피에 전달하는 가장 일반적인 기술입니다. 최소한의 부수적 손상과 빠른 회복 시간으로 망막하 공간을 성공적으로 표적으로 삼는 마우스의 대체 방법이 여기에 설명되어 있습니다.

망막 하 공간에 액세스하기위한 대안의 검증 사출 방법<i&gt;를 통해</i&gt;를 Transcleral 후방 접근

여기를 사용 하 여 고해상도 스펙트럼 도메인 광학 일관성 단층 촬영 (HR-SD-10 월) subretinal 공간으로 유전자 치료 대리인의 납품을 지원, 그 영역 범위를 평가 하 고 포토 리셉터 활력을 특성화 새로운 접근 방식을 설명 합니다.

초고 해상도 마우스 광학 일관성 단층 촬영 망막 유전자 치료 연구에서 안 구내 주사를 돕기 위해

이 원고에서 결막 하 주사는 주입 / 회수 주사기 펌프와 미세 주입 바늘과 결합 된 기밀 제거 가능한 주사기로 구성된 주사 시스템을 사용하여 마우스의 안구 조직에 대한 유효한 벡터 전달 방법으로 입증됩니다. 이 주사 시스템은 다른 안내 내 투여 경로에도 적용 가능합니다.

작은 동물 모델에서 아데노 관련 바이러스 벡터의 결막하 투여

유리체 내 주사는 망막에 바이러스 매개 유전자 요법을 전달하기 위해 양 눈에서 수행되었습니다.

난소 눈의 유리체 내 주사

이 프로토콜은 망막 변성이 있거나 없는 마우스 수용자에서 수술 합병증 발생률이 낮은 망막하 세포 이식편을 안전하고 정확하게 전달하기 위한 동공 시야 유도 경공막 접근법을 제시합니다.

망막 변성 마우스 모델에서 망막하 이식편의 Transpupillary-Guided Trans-Scleral Transplantation

동결 보존 후 hESC 유래 광수용체 전구 세포의 제조 및 rd10 마우스에서 이러한 세포의 망막하 전달에 대한 자세한 프로토콜을 설명합니다.

rd10 마우스에서 인간 배아 줄기 세포 유래 광수용체 전구체의 망막하 전달

망막하 주사는 광수용체 및 RPE 질환에 대한 치료제의 전임상 개발에 없어서는 안 될 기술입니다. 우리는 수술 중 성공률을 향상시키고 망막 손상을 최소화하는 마우스에서 최적화된 경공막 망막하 주사 기술을 설명합니다.

마우스에서 최적화된 최소 침습 경공막 망막하 주사 기술

배우세요 마우스 망막 색소 상피에 유전자를 전달하는 윤부 주사 기법을 바이러스 벡터를 이용해 수행하는 방법을. 이 기법은 재현 가능하며 안과 유전자 치료 연구에 활용됩니다.

마우스 망막 색소 상피의 유전자 치료에 대한 바이러스 벡터의 윤부 접근 - 망막 주입

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