2015년 8월 28일
이 프로토콜의 목표는 양친매성 블록 공중합체로 구성된 미셀 약물 전달 시스템에서 물리적으로 갇힌 수용성이 낮은 약물의 준비 및 특성화를 설명하는 것입니다.
다음 실험의 전반적인 목표는 관심 있는 질병 상태에서 약물을 평가하기 전에 약물이 적재된 내 세포를 준비하고 특성화하는 단계별 프로세스를 설명하는 것입니다. 이는 연구를 위해 재현 가능한 My 세포를 생성하기 위해 용매 주조 방법에 의한 My 세포를 준비함으로써 달성됩니다. 두 번째 단계로, 내 세포 로딩 안정성과 크기를 평가하며, 이는 내 세포가 임상적으로 관련된 농도를 로드하고 유지하는 능력을 결정합니다.
다음으로, 생체 내 안정성을 평가하기 전에 My 세포가 적절한 체외 방출 특성을 갖는지 확인하기 위해 My 세포의 약물 방출 속도를 결정합니다. 결과는 재현 가능하게 생성된 안정적인 my 세포가 여기에 제시된 평가 기술을 기반으로 다양한 질병 상태에서 약물 전달을 추구할 수 있는 플랫폼을 제공할 수 있음을 보여줍니다. 이 기법 또는 평형 로딩 또는 투석 방법과 같은 기존 방법의 주요 장점은 재현 가능한 약물 로딩 및 크기로 미오신 성분을 훨씬 더 빠르게 준비할 수 있다는 것입니다.
이 기술의 의미는 나노 스케일 의약품이 기존 형태를 넘어 기회를 제공하기 때문에 다양한 질병 상태의 치료 또는 진단으로 확장됩니다., 일반적으로 막 시작하는 개인은 여전히 방출 연구를 할 수 있기 때문에 간단하더라도 이러한 기술에 어려움을 겪을 수 있습니다. 이러한 절차를 시연하는 것은 내 대학원생인 Shaman Duke와 내 공동 연구자인 Deepa가 먼저 이중 약물인 my cells 또는 DDM을 위해 DTX 1mg, EVR 1mg, Peg 4, 000 block PLA 2200 15mg의 무게를 잰다. 무게를 잰 후, 0.5 밀리리터의 아세토 니트릴에 약물과 중합체를 용해시킨 후, 회전 증발기를 사용하여 감압 하에서 약물 고분자 아세토 용액을 증발시킴으로써 용액을 5 밀리리터의 둥근 바닥 플라스크 형태로 얇은 약물 분포 고분자 필름 형태로 옮긴다.
그런 다음 약물 고분자 필름을 0.5 밀리리터의 탈 이온수로 재수화하고 섭씨 50 도의 수조에서 플라스크를 부드럽게 흔들어 마우스 세포를 형성합니다. 용액을 원심분리기 튜브에 넣고 3분 동안 7, 200회 G로 돌립니다. 바늘로 용액을 끌어올리고 생성된 미셀라 용액을 0.2미크론 나일론 필터를 사용하여 새로운 1.5ml 원심분리 튜브에 여과하여 미해결 약물 또는 오염 물질을 제거합니다.이 시점에서 아세틸 I 시험의 이동상으로 섭씨 40도에서 평형을 이룬 C 8개 컬럼으로 역상 HPLC 분석을 수행하고 에이스 눈 시험에서 갓 준비된 마이셀을 물로 희석합니다. 초기 약물 로딩을 결정하기 위해 역상 HPLC로 분석하기 전에 1:100 비율.
희석되지 않은 세포를 실온에서 48시간 동안 보관한 후, 새로운 희석 샘플을 준비하여 역상 HPLC로 재평가하고 48시간 동안 내 세포의 약물 안정성을 확인합니다. 227 및 279 나노미터에서 DTX 및 DVR 피크를 각각 1.7분 및 5.7분의 머무름 시간으로 모니터링합니다. 데이터를 약물 부하의 평균 플러스 또는 마이너스 표준 편차로 제시합니다.
다음으로, 갓 준비한 세포와 탈이온수를 1:20 비율로 희석하여 최종 폴리머 농도를 밀리리터당 1.5밀리그램으로 만듭니다. 동적 광 산란 측정을 위해 솔루션을 수의사에게 이송합니다. 산란을 결정하기 위해 173도에서 헬륨 네온 레이저의 강도를 측정합니다.
데이터를 평균 Z, 평균 크기, 표준 편차를 더하거나 뺀 값과 함께 분포의 폴리 분산 지수 또는 PDI로 제시합니다. 앞서 설명한 대로 DDM을 준비한 후, 분자량 컷오프가 몰당 7, 000g인 3밀리리터 투석 카세트에 2.5밀리리터의 세포를 로드합니다. 다음 간격 동안 2.5리터의 10밀리몰 pH 7.4 인산염 완충액에 카세트를 놓습니다.
용액 150마이크로리터를 빼내고 150마이크로리터의 새 버퍼로 교체합니다. 동기화 조건을 보장하기 위해 3시간마다 버퍼를 변경합니다. 역상 HPLC를 사용하여 샘플을 분석하여 약물 농도 곡선을 측정합니다.
통계 소프트웨어 D-T-X-E-V-R을 사용하여 단상 지수 연관성이 있는 간단한 확산 모델을 기반으로 약물 방출 데이터를 적합하고 DDM은 48시간 동안 PEG 2000 블록 PLA 1800 또는 PEG 2000 블록 PLA 2200에서 유사한 안정성을 보여주었습니다. 모든 과정에서 내 세포는 실온에서 48시간 동안 초기 로딩의 97% 이상을 유지했습니다. 동적 광 산란 결과에 따르면 모든 세포에서 PDI 값이 0.2 미만인 단봉 분포를 보였습니다.
데이터에 따르면 개별 마이셀 및 DDM의 DTX 방출은 48시간 동안 약 60%였습니다. 개별 내 세포와 DDM의 EVR 방출은 각각 60%와 50%였습니다. 개별 마이 셀(my cell) 및 DDM에서 약물이 50% 방출되는 데 필요한 시간과 적합도(good of fit) 데이터가 여기에 나와 있습니다.
EVR 개인을 제외한 모든 내 세포에 대한 곡선 피팅의 장점, 내 세포는 0.950 이상이며, 이는 1차 방출의 가정이 개별 내 세포와 DDM에서 약물 방출을 설명하는 좋은 근사치임을 의미합니다. 일단 숙달되면 이러한 기술은 몇 시간에서 일주일 만에 내 세포로 약물 및 폴리머 라이브러리에서 일상적으로 수행할 수 있습니다. 이 절차를 수행하는 동안 이러한 절차에 따라 세포 배양 또는 동물 모델에 접근하기 전에 My Cells를 완전히 특성화하는 것을 기억하는 것이 중요합니다. 리포솜 전달 시스템과 같은 다른 전달 시스템도 치료 효과에서 약물 전달 시스템의 역할에 대한 질문에 답하기 위해 평가되거나 특성화될 수 있습니다.
이 비디오를 시청한 후에는 질병에서 세포를 평가하기 전에 약물 로딩 내 세포를 준비하고 특성화하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다. 관심 상태.
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이 프로토콜은 용매 주조법을 사용하여 약물 로드된 my 세포의 준비 및 특성화를 설명합니다. 이 연구는 다양한 질병 상태에서 효과적인 약물 전달을 위한 my 세포의 재현성과 안정성을 강조합니다.
This protocol enables reproducible preparation and characterization of polymeric micelles for solubilizing hydrophobic drugs, addressing a key bottleneck in early-stage formulation development. By providing standardized methods for assessing drug loading, stability, size, and release kinetics, it supports predictive confidence in preclinical candidate selection. The approach facilitates go/no-go decisions by de-risking formulation variability before investing in costly in vivo studies.
This method fits within the discovery continuum from hit validation to lead optimization, where formulation enables biological assessment of insoluble compounds.