Name: 압축 된 콜라겐에 다진 조직 : 단일 무대 재건 복구를위한 세포 함유 Biotransplant (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-02-24T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 43 s
Description: 학습하세요 단일 단계 재건 수술을 위한 생체이식 기법으로, PCL과 자가 조직을 활용한 3D 스캐폴드를 구축하여 체내 조직 확장을 실현하는 방법입니다. 이 기술은 재생의학 연구에 활용됩니다.

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저자는 스웨덴 의학 연구 협회, 프로모빌리아 재단, 로비사 왕세자비 재단, 아동 복지를 위한 프리메이슨 재단, 스웨덴 의학 협회, 솔스티칸 재단, 카롤린스카 연구소, 스톡홀름 시의회에 재정적 지원에 감사를 표합니다.

모든 동물 프로토콜은 동물의 스톡홀름 카운티위원회의 사전 승인을하고, 모든 절차는 동물의 사용뿐만 아니라 관련 연방법의 규정을 따른다. 1. 동물 절차 <ol><li> 수술에 대한 동물 준비 <ol><li> 무균 조건 하에서 작동에 필요한 모든 재료와 도구로 수술 테이블을 준비합니다. 감염의 위험을 감소시키고 생존 수술 조건을 최적화하기 위해 멸균 조건하에 단독으로 수술을 수행한다. </li><li> 수술 전 12 시간 동안 동물을 빠르고 무게를 측정한다. 전 처치 용 된 azaperone의 근육 내 주사 (2 ㎎ / ㎏)을 관리 할 수​​ 있습니다. tiletamine의 차아 염소산 (2.5 ㎎ / ㎏), zolazepam의 차아 염소산 (2.5 ㎎ / ㎏), 메데 토미 (25 μg의 / kg) 및 아트로핀 (/ kg 25 μg의)의 근육 내 주사와 함께 동물을 마취. </li><li> phenobarbiturate을 주입 (15 ㎎ / ㎏) endotrache하기 전에알 삽관 0.8 % -2 %의 이소 플루 란과 전신 마취를 계속합니다. 한쪽 귀에서 주변 정맥 카테터를 삽입하고 동물의 복지를 유지하기 위해 정맥 절차를 수행하는 동안 포도당 (25 ㎎ / ㎖)을 주입. </li><li> 온도, 혈압, 채도 및 말초 맥박을 확인하는 귀 또는 꼬리 모니터링 장치 놓는다. 귀 또는 발굽의 통증 자극에 의​​해 제어 마취. 마취 동안 건조를 방지하기 위해 눈 연고를 적용합니다. </li></ol></li><li> 방광 생검 표본의 절단 <ol><li> 세미 무균 조건 하에서 소변 비우기 요도를보고 요도를 통해 카테터를 삽입 검경 도입에 의해 방광에 10 프랑스어 실리콘 카테터를 사용하여 방광 카테 테르를 꽂다. 20~25cm의 H 2 O, 약 100-300 ml의 압력을 무균 생리 식염수로 방광을 채우고 다음 빈 O H 2 형상 (20) (약 70. 8 ㎖ / 체중 kg). </li><li> 번째로전자 돼지 신중하게, 측면 위치로 회전 클로르헥시딘 글루코 네이트의 응용 프로그램과 함께 피부의 기본 수술 전 소독을 수행합니다. 면도 가위로 털 가죽을 제거한 후 어깨에 투열 요법 판을 적용합니다. </li><li> 앙와위로 조심스럽게 돼지를 켜고 면도 가위를 사용하여 복부 털 가죽을 제거하고 클로르헥시딘 글루코 네이트의 응용 프로그램과 복부 피부의 기본 수술 전 소독을한다. <ol><li> 부드러운 옷을 사지를 포함하면 사지의 관절 과신전 손상의 위험을 최소화합니다. 클로르헥시딘 글루 콘산의 연속 응용 프로그램과 동물의 복부 피부를 소독하고 수술 부위의 주위에 멸균 입체 재단을 배치합니다. </li></ol></li><li> 피부 절개하기 전에, 배꼽 아래의 중간 선에서 프레 노르 핀 (45 μg의 / kg), 카프로 펜 (3 ㎎ / ㎏) 및 리도카인 국소 주입으로 구성된 정맥 진통제를 적용합니다. SK를 잡고 통증 반응 확인집게로한다. 근막을 통해 낮은 중간 선 절개를 확인하고 출혈의 제어를위한 투열 요법을 사용하여 복막. 돼지 완전히 복강 위치가 자유롭게 수술 상처를 통해 동원에 의해 노출 될 수 블래 지역화. </li><li> 집게와 방광의 보류를 타고 멸균 측정 테이프를 측정하고 멸균 펜을 사용하여 세로 방향으로 약 2cm 및 횡 방향으로 1cm, 또는 작은 타원 모양의 생검 표본을 표시 (돼지 방광 크기의 분기 감소를 용인 아주 잘). , 표시된 영역을 절제 메스를 사용하고 무균 조건 하에서 DMEM에서 방광 생검 표본을 배치합니다. </li><li> biotransplant으로자가 이식을 수행하거나 두 개의 층에 5-0 Vicryl로 봉합하여 방광을 닫습니다. 2-0 또는 3-0 Vicryl을 실행 조심스럽게 복부 근막을 닫습니다. 3-0 Vicryl와 피하와 3-0 에틸 론으로 피부를 닫습니다. 상처에 조심스럽게에서 드레싱을 배치이 마취에서 충분히 회복과 고통을 표현하지 않을 때까지 동물 경향이있다. </li><li> 수술 후 관리를위한 조건을 확보하기 위해 동물 보호 시설로 동물을 이동합니다. 가열 램프 하나의 새장에 동물을 넣고 참석 동물 마취에서 완전히 회복 될 때까지 다음 동물이 쌍으로 정체 될 수 있습니다. </li><li> 고통과 웰빙에 관한 사건이 복구를 제공하고 5 일 동안 하루에 한 번씩 사흘 동안 매일 두 번 근육 수술 후 통증 및 trimetoprim (4 ㎎ / ㎏) 및 술폰 아미드 (20 ㎎ / ㎏)에 대한 프레 노르 핀 (45 μg의 / kg)을 관리하고 수술 후 감염의 위험을 줄일 수 있습니다. </li></ol></li><li> 피부 생검 표본의 절단 <ol><li> 필요한 모든 재료와 수술 테이블을 준비합니다. 앞서 설명한 바와 같이 1.1 동물을 마취. 왁스를 사용하여 털 가죽을 제거 씻어 betadine 70 % 알코올로 절개 영역을 소독하고 멸균 입체 재단을 aroun를 배치절개 영역 거라고. </li><li> 0.3 mm 부분 층 피부 생검 표본을 수확 피부 분절을 사용합니다. 2.2에 설명 된대로 닦지 전에 DMEM의 피부 표본을 놓습니다. 지방 연고 및 드레싱 상처 영역을 커버. </li></ol></li></ol> 2. 다진 조직 준비 <ol><li> 방광 점막 <ol><li> DMEM 두 번 방광 조직 검사를 씻으십시오. 위쪽으로 향하게 점막과 멸균 해부 접시에 방광 생검 표본을 놓고 해부 핀을 사용하여 판에 측면 중 하나를 수정합니다. </li><li> 미세 가위와 집게 (그림 3)를 사용하여 배뇨근 근육의 점막 조직을 분리하고 그 위에 식염수 또는 DMEM 떨어지는하여 촉촉한 점막을 유지합니다. </li><li> 점막에 배치하여 닦지 장치를 사용하고, 0.8 mm X 0.8 mm의 다진 조직 조각을 얻기 수동 압력을 적용, 상하 좌우 한쪽에서 다른 장치를 통과 (0.8 mm가 rotatin 간의 거리이다g) 블레이드를 절단. </li></ol></li><li> 피부 <ol><li> 피부 biopsis 경우 두꺼운 : 멸균 해부 접시에 피부를 배치하고 피하 지방과 진피에서 표피를 분리하는 수술 가위를 사용합니다. 표피가 얇고 반투명 (약. 0.3 mm)는 닦지위한 준비가되었을 때. </li><li> 표피에 배치하여 닦지 장치를 사용하십시오. 압력이 0.8 mm X 0.8 mm의 다진 조직 조각을 얻었다 가로 세로 한쪽에서 다른 장치를 통과. </li></ol></li></ol> 플라스틱 압축 PCL / 콜라겐자가 이식 3. 준비 <ol><li> 차가운 유지하기 위해 얼음에 모든 재료를 놓습니다. 필요한기구 : 팔콘 튜브, 10 배 DMEM, 1 배 DMEM, 1 N 수산화 나트륨과 쥐의 꼬리 콜라겐 유형 1. <ol><li> 1. 1 N의 NaOH, 적가 추가 강렬한에서 변경하여 pH를 나타내야 매체 7.4-8 (색의 pH까지 가져 콜라겐 타입 12 ml의 10 배 DMEM (신중 거품을 방지하기 위해) 2 ㎖ 믹스 핀에 노란색케이). 또한, pH가 스트립을 사용한다. </li><li> 조심 1X DMEM 2 ㎖를 추가하고, 용액을 혼합한다. 플레이트 스틸 직사각형 금형 (20x30x10 mm)의 각 웰 콜라겐의 약 2 mL 및 37 부화 10 분 동안 5 % CO 2에서 C를 °. 주 : 콜라겐의 농도가 2.06 밀리그램 / 0.6 % 아세트산 용액과 콜라겐 1 ㎖ / cm 2의 양이어야한다. </li><li> 콜라겐은 금형에 설정되면, 콜라겐 겔 (20mm X 30mm)의 상단에있는 생체 재료 (PCL)를 배치하고 그 위에 남아있는 콜라겐 (약 6 ml)에 붓는다. 20 분 동안 5 % CO 2에서 37 ℃에서 인큐베이션. </li><li> 콜라겐 젤의 상단에 : 다진 조직 (6 확장 1) 놓습니다. 다음 플라스틱 압축을 사용하여 기계력 구조에서 물을 누르면 (도 3 및도 4). </li><li> 멸균 표면에 거즈 패드의 두꺼운 층을 배치합니다. gauz 위에 하나의 스테인레스 스틸 메쉬 (400 ㎛의 두께)를 놓고전자 패드와 나일론 메쉬 (두께 110 μm의)의 다음 시트. 조심스럽게 나일론 메쉬로 콜라겐 젤 / 다진 조직을 전송하고 조심스럽게 사각형 스틸 몰드를 제거합니다. </li><li> 콜라겐 젤 / 다진 조직의 상부에 나일론 메쉬의 새 레이어를 놓습니다. 나일론 메쉬의 상단에 두 번째 스틸 메쉬를 놓습니다. 위치 5 분 동안 120g (즉, 유리 플레이트)의 최소 계량 압력이나 하중 판을 놓는다. </li><li> 무게, 나일론, 철강 메쉬를 제거합니다. 자가 이식은 이제 전체 두께 피부 상처에 돼지 방광에 봉합 또는 체외에서 배양 할 준비가 된 것입니다. </li><li> 체외 배양를 들어, 12 웰 플레이트 피팅 작은 조각으로 얇은 구조를 잘라. 각질 세포 매체의 1 ML을 추가합니다. 37 ° C 6 주까지 5 % CO 2와 문화의 인큐베이터에서 접시를 놓고 일주일 중 3 번을 변경합니다. </li></ol></li></ol> 자가 이식 4. 봉합 <ol><li> 자가 이식의 봉합과 함께돼지 방광에 다진 방광 점막 <ol><li> 대기 시간 동안 DMEM에 촉촉한 이식술을 유지합니다. 잘 실행 모노 필라멘트 봉합사와 이식술을 봉합. 연구 목적으로 비 흡수성 5-0 에틸 론을 사용합니다. </li><li> 내주 요도 카테터를 통해 생리 식염수로 방광을 작성하여 방수 있는지 확인합니다. 가능하면 더 대망의 층 이식술을 커버. 1.2.6에 설명 된 바와 같이 복벽, 피하 조직, 피부를 닫는다. 상처 드레싱을 적용합니다. </li></ol></li><li> 전체 두께 상처에 다진 피부 표피와 이식술의 봉합 <ol><li> 대기 시간 동안 DMEM에 촉촉한 이식술을 유지합니다. </li><li> 밀접 하부 표면에 부착 이식술 유지 모서리 단속 봉합 의해 이식술의 중간에 권취 피부 전층의 바닥 이식술 봉합사. </li><li> 상처가 촉촉하게 유지하는 플라스틱 드레싱 상처를 커버. </li></ol></li></ol><ol><li> 근육 zolazepam의 차아 염소산의 주입 (2.5 ㎎ / ㎏) 및 메데 토미 (25 μg의 / kg) 이전에 종료 및 귀 또는 꼬리에 감시 장치를 적용와 조용한 동물 펄스와 혈압을 확인합니다. </li><li> 정맥 내 펜토 바르 비탈 나트륨 (60-140 ㎎ / ㎏)의 치사량을 투여함으로써 동물을 안락사. 죽음이 발생 될 때까지 맥박과 혈압을 확인합니다. </li></ol> 6. 체외 문화 주 : 조직 학적 시험 관내 PCL / 콜라겐 구조물은 다진 조직의 진행을 평가하기는 콜라겐 / PCL / 다진 패치 각질 매체를 이용하여 12- 웰 플레이트에서 배양 하였다. <ol><li> 각질 매체의 제조 : <ol><li> 500 ml의 유리 병을 소독. </li><li> (1 혼합물을 4) 햄 F12 100㎖로 DMEM 400ml를 섞는다. 10 % 소 태아 혈청으로 보충 5 μg의 / ㎖ 인슐린,0.4 μg의 / ㎖의 하이드로 코르티손, 21 μg의 / ㎖ 아데닌, 10-10 몰 / L 콜레라 독소, 2 × 10-9 몰 / L의 트리 요오 도티 로닌, / ㎖ 트랜스페린, 10 ng / ml의 상피 세포 성장 인자, 50 U / ㎖ 페니실린 5㎍을 및 / ㎖ 스트렙토 마이신 50 μg의. </li><li> 0.2 μm의 필터를 통해 여과하여 소독 및 멸균 500ml의 병에 여과 액을 수집합니다. </li></ol></li></ol> 7. 면역 조직 화학 참고 : 면역 조직 화학 프로토콜은 일반적으로 다음과 같은 단계로 나뉘어집니다 : (1) 고정 및 파라핀 삽입, (2) 마이크로 절편 5 μm의 조각, 슬라이드, 탈 파라핀과 재수에 배치로는, (3) 항원에 마스크, 염색 및 설치 . 면역 조직 화학 절차의 마지막 단계를 시작하기 전에 세척 버퍼와 항원 마스크를 제거 용액 (별도 자료의 자세한 사항 참조) 준비합니다. 사용하기 전에 ABC 복잡한 솔루션을 최소 30 분을 준비합니다. <ol><li> 정착 아니오TE 다음과 같이 시험 관내 배양의 마지막 패치 FIX : <ol><li> 4 % 버퍼링 포름 알데히드 (PFA)의 1 ㎖의 에펜 도르프 튜브를 준비 (주의 :.. 포름 알데히드는 독성이 화학 물질을 사용하기 전에 물질 안전 보건 자료를 읽어 장갑과 보안경을 착용하고 흄 후드 내부의 용액을 제조하십시오). </li><li> 4 % PFA를 함유하는 에펜 도르프 튜브로 콜라겐 패치 각각 옮긴다. 실온에서 밤새 수정. </li><li> 4 ℃에서의 장기 저장을 위해 70 % 에탄올에 넣어 샘플. 샘플은 현재 탈수에 대한 준비 및 단면 처리하기 전에 파라핀 블록에 포함됩니다. </li></ol></li><li> 재수 <ol><li> 15 분 동안 X-TRA의 SOLV와 염색 항아리에 슬라이드를 놓습니다. X-TRA의 SOLV로 새로운 염색 항아리를 사용하여 반복합니다. 10 분 동안 무수 에탄올과 염색 항아리에 슬라이드를 놓습니다. 무수 에탄올로 새로운 염색 항아리를 사용하여 반복합니다. 95 % 에탄올로 염색 항아리에 슬라이드를 10 분 동안 한 후, 배치10 분 동안 70 % 에탄올로 염색 단지에. 마지막으로 증류수로 5 분 동안 두 번 슬라이드를 씻는다. </li></ol></li><li> 항원 폭로 <ol><li> TE-솔루션 코 플린 항아리에 슬라이드를 넣고 20 분간 끓여 물을 욕조에 병을 넣어. 조심스럽게 물을 욕조 밖으로 항아리를 가져 가라. 30 분 동안 실온으로 냉각시키고, 슬라이드 트리스 완충액에서 5 분 동안 두 번 세척 하였다. 10 분 동안 3 % 과산화수소로 염색 단지에 슬라이드를 놓는다. 트리스 버퍼에 5 분 동안 두 번 슬라이드를 씻으십시오. 펜 마킹 발수를 사용하여 샘​​플 주위에 원을 그립니다. </li><li> 용액을 차단 100-300 μL를 사용하여 항체의 비특이적 결합을 차단. 차단 솔루션을 제거하고 트리스 버퍼에 권장 농도로 용해 차 항체의 100 ~ 300 μl를 추가합니다. 밤새 품어. 항체 용액을 제거하고 5 분 동안 두 번 트리스 버퍼 섹션을 씻는다. </li><li> 객실 temperat에서 1 시간 동안 차 항체와 함께 품어URE. 트리스 버퍼에 5 분 동안 두 번 씻으십시오. ABC 엘리트 키트 (제조업체의 지침에 따라)를 사용하여 30 분을 품어. 트리스 버퍼에 두 번 씻으십시오. </li><li> 제조업체의 지침 (1-7 분 배양은 일반적으로 맑은 보라색의 강도를 생산), 벡터 VIP 키트를 사용하여 따라 항체 반응을 개발할 수 있습니다. 증류수에 슬라이드를 넣습니다. 30 초 동안 마이어의 헤 마톡 실린과 Counterstain과. </li><li> 5 분 동안 흐르는 물에 씻으십시오. 1 분 동안 70 % 에탄올로 염색 항아리에 슬라이드를 놓습니다. 70 % 에탄올로 새로운 염색 항아리를 사용하여 반복합니다. 1 분 동안 95 % 에탄올로 염색 항아리에 슬라이드를 놓습니다. 95 % 에탄올로 새로운 염색 항아리를 사용하여 반복합니다. </li><li> 5 분 동안 X-TRA의 SOLV와 염색 항아리에 슬라이드를 놓습니다. 촉촉한 유지하기 위해 한 번에 하나를 제거합니다. 각 슬라이드의 상단에 장착 매체의 방울을 넣고 위에 덮개 유리 (공기 방울을 피하기 위해 매우 조심스럽게 수행)했습니다. 슬라이드 밤새 건조하자 마이크로에서 슬라이드를 보려면범위. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Rheinwald, J. G., Green, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Serial+cultivation+of+strains+of+human+epidermal+keratinocytes%3A+the+formation+of+keratinizing+colonies+from+single+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Serial cultivation of strains of human epidermal keratinocytes: the formation of keratinizing colonies from single cells.</a> Cell. 6, 331-343 (1975).</li>
<li>Fossum, M., Nordenskjold, A., Kratz, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+of+multilayered+urinary+tissue+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering%22%5BJournal%5D)">Engineering of multilayered urinary tissue in vitro.</a> Tissue Engineering. 10, 175-180 (2004).</li>
<li>Salmikangas, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Manufacturing%2C+characterization+and+control+of+cell-based+medicinal+products%3A+challenging+paradigms+toward+commercial+use%5BTitle%5D)+AND+%22Regen+Med%22%5BJournal%5D)">Manufacturing, characterization and control of cell-based medicinal products: challenging paradigms toward commercial use.</a> Regen Med. 10, 65-78 (2015).</li>
<li>Guidelines of 7 March 2013 on Good Distribution Practice of medicinal products for human use (OJ C 343/1, 23.11.2013). 7, Retrieved from:
 <a target="_blank" href="http://ec.europa.eu/health/human-use/good_distribution_practice/index_en.htm">http://ec.europa.eu/health/human-use/good_distribution_practice/index_en.htm</a> (2013).</li>
<li>Fossum, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Minced+skin+for+tissue+engineering+of+epithelialized+subcutaneous+tunnels%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering.+Part+A%22%5BJournal%5D)">Minced skin for tissue engineering of epithelialized subcutaneous tunnels.</a> Tissue Engineering. Part A. 15, 2085-2092 (2009).</li>
<li>Fossum, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Minced+urothelium+to+create+epithelialized+subcutaneous+conduits%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Urology%22%5BJournal%5D)">Minced urothelium to create epithelialized subcutaneous conduits.</a> The Journal of Urology. 184, 757-761 (2010).</li>
<li>Reinfeldt Engberg, G., Lundberg, J., Chamorro, C. L., Nordenskjold, A., Fossum, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transplantation+of+autologous+minced+bladder+mucosa+for+a+one-step+reconstruction+of+a+tissue+engineered+bladder+conduit%5BTitle%5D)+AND+%22BioMed+Research+International%22%5BJournal%5D)">Transplantation of autologous minced bladder mucosa for a one-step reconstruction of a tissue engineered bladder conduit.</a> BioMed Research International. 2013, 212734(2013).</li>
<li>Meek, C. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Successful+microdermagrafting+using+the+Meek-Wall+microdermatome%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Surg%22%5BJournal%5D)">Successful microdermagrafting using the Meek-Wall microdermatome.</a> Am J Surg. 96, 557-558 (1958).</li>
<li>Tanner, J. C., Vandeput, J., Olley, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Mesh+skin+graft%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery%22%5BJournal%5D)">The Mesh skin graft.</a> Plastic and Reconstructive Surgery. 34, 287-292 (1964).</li>
<li>Svensjo, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autologous+skin+transplantation%3A+comparison+of+minced+skin+to+other+techniques%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Surgical+Research%22%5BJournal%5D)">Autologous skin transplantation: comparison of minced skin to other techniques.</a> The Journal of Surgical Research. 103, 19-29 (2002).</li>
<li>Ajalloueian, F., Zeiai, S., Rojas, R., Fossum, M., Hilborn, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((One-stage+tissue+engineering+of+bladder+wall+patches+for+an+easy-to-use+approach+at+the+surgical+table%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering.+Part+C%2C+Methods%22%5BJournal%5D)">One-stage tissue engineering of bladder wall patches for an easy-to-use approach at the surgical table.</a> Tissue Engineering. Part C, Methods. 19, 688-696 (2013).</li>
<li>Engelhardt, E. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+collagen-poly%28lactic+acid-co-varepsilon-caprolactone%29+hybrid+scaffold+for+bladder+tissue+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">A collagen-poly(lactic acid-co-varepsilon-caprolactone) hybrid scaffold for bladder tissue regeneration.</a> Biomaterials. 32, 3969-3976 (2011).</li>
<li>Brown, R. A., Wiseman, M., Chuo, C. B., Cheema, U., Nazhat, S. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultrarapid+engineering+of+biomimetic+materials+and+tissues%3A+fabrication+of+nano-+and+microstructures+by+plastic+compression%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Funct+Mater%22%5BJournal%5D)">Ultrarapid engineering of biomimetic materials and tissues: fabrication of nano- and microstructures by plastic compression.</a> Adv Funct Mater. 15, 1762-1770 (2005).</li>
<li>Fumagalli Romario, U., Puccetti, F., Elmore, U., Massaron, S., Rosati, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Self-gripping+mesh+versus+staple+fixation+in+laparoscopic+inguinal+hernia+repair%3A+a+prospective+comparison%5BTitle%5D)+AND+%22Surg+Endosc%22%5BJournal%5D)">Self-gripping mesh versus staple fixation in laparoscopic inguinal hernia repair: a prospective comparison.</a> Surg Endosc. 27, 1798-1802 (2013).</li>
<li>Muangman, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complex+Wound+Management+Utilizing+an+Artificial+Dermal+Matrix%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Plastic+Surgery%22%5BJournal%5D)">Complex Wound Management Utilizing an Artificial Dermal Matrix.</a> Annals of Plastic Surgery. 57, 199-202 (2006).</li>
<li>Ajalloueian, F., Zeiai, S., Fossum, M., Hilborn, J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Constructs+of+electrospun+PLGA%2C+compressed+collagen+and+minced+urothelium+for+minimally+manipulated+autologous+bladder+tissue+expansion%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Constructs of electrospun PLGA, compressed collagen and minced urothelium for minimally manipulated autologous bladder tissue expansion.</a> Biomaterials. 35, 5741-5748 (2014).</li>
<li>Orabi, H., AbouShwareb, T., Zhang, Y., Yoo, J. J., Atala, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-seeded+tubularized+scaffolds+for+reconstruction+of+long+urethral+defects%3A+a+preclinical+study%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+Urol%22%5BJournal%5D)">Cell-seeded tubularized scaffolds for reconstruction of long urethral defects: a preclinical study.</a> Eur Urol. 63, 531-538 (2013).</li>
<li>Blais, M., Parenteau-Bareil, R., Cadau, S., Berthod, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Concise+review%3A+tissue-engineered+skin+and+nerve+regeneration+in+burn+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+Transl+Med%22%5BJournal%5D)">Concise review: tissue-engineered skin and nerve regeneration in burn treatment.</a> Stem Cells Transl Med. 2, 545-551 (2013).</li>
<li>Serpooshan, V., Muja, N., Marelli, B., Nazhat, S. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibroblast+contractility+and+growth+in+plastic+compressed+collagen+gel+scaffolds+with+microstructures+correlated+with+hydraulic+permeability%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Mater+Res+A%22%5BJournal%5D)">Fibroblast contractility and growth in plastic compressed collagen gel scaffolds with microstructures correlated with hydraulic permeability.</a> J Biomed Mater Res A. 96, 609-620 (2011).</li>
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이 연구는 수술 테이블에 이식자가 조직과 방광 벽에 ​​패치를 생성하기 위해 사용하기 쉬운 방법을 제공합니다. 패치와 플라스틱의 압축과 함께 외면 다진 조직없이 중간 및 콜라겐 분해성 중합체 편성의 조합에 의해 형성된다. 압축 성형 방법은, 이전에 다른 저자에 의해 기재된 콜라겐 겔 (12, 13)에서 유체의 급속 제적으로 정의 될 수있다. 방광 점막이나 피부 조직 다진이 지지체에 접종하고, 방광, 피부 상피 세포의 형성을 6 주 동안 따라야 할 수있다. 면역 조직 화학적 분석은 정상 조직의 특성 등가물의 형성을 보였다. 이러한 결과는 단지 재 상피화 및 상처 치료 연구를위한 시험 관내 모델을 허용 할뿐만 아니라자가 조직 이식 용 생체 재료를 형성한다. 가장 중요한 목적 비뇨기과, AUTografts 이식 11 전에 체외 문화에 대한 요구없이 설계자가 조직 패치로 재건 비뇨기과에서 조직 공학의 생체 내 응용 프로그램을 사용할 수있다. </p...

피부와 비뇨 기관에 이식에 대부분의 조직 공학 연구는 특별히 장착 된 세포 배양 시설 1, 2의 건강한 조직과 세포의 확장에서자가 세포 수확을 포함한다. 환자 이식술을 수신 할 준비가되었을 때 셀 전개 후, 세포는 일반적으로 나중에 사용하기 위해 저장된다. 질소 냉동고 -150 ° C 이하의 낮은 온도에서의 장기간 저장을 허용한다. 동결 프로세스는 신중하고 세포 손실하지 않도록 제어되어야한다. 세포 사멸의 한 위험 세포막의 파괴로 이어질 수 해동 과정 중 세포 내 물이 결정화된다. 동결 세포는 일반적으로 세포를 소 태아 혈청 및 디메틸 술폭 시드의 고 농도를 사용하여 천천히 제어 냉각 (-11 ° C 당 분)에 의해 수행된다. 해동 후, 세포를 동결 배지를 제거하고 세포 배양 용 플라스틱 또는 배양에 의해 다시 처리 될 필요다시 환자에게 이식하기 전에 생체 재료. 모든 상기 언급 된 단계는 시간 소모, 번잡하고 고비용 3. 또한, 환자의 이식을위한 세포의 모든 체외 처리는 매우 규제하고 잘 훈련 된 공인 인력과 실험실 4 필요합니다. 전부, 기술은 기술적으로 진보 센터 극소수에 설립 될 수 있고, 일반적인 수술 질환을 넓게 사용하기 어렵다, 안전하고 신뢰할 수있는 제조 공정을 조달. 실험실 환경에서 세포 배양의 한계를 극복하기 위해, 생체 내에서 세포 확장 다진 조직 이식의 개념은 바이오 리액터로서 본체 자체를 사용하여 도입된다. 이러한 목적을 위해,자가 이식 우선적 I의 장기의 최종 재구성에 필요한 형상에 따라 3D 금형에 이식 될5-7 nterest. 원래, 다진 상피 세포를 이식의 아이디어는 그가 상피 세포가 상처의 가장자리에서 성장하는 방법을 설명 할 때 1958 년 온순한 제시했다. 그 피부의 작은 조각 (도 1) (8)를 수직 방향으로 두 조각을 절단하여 100 %로함으로써, 셀 확장 가능성을 마진을 증가한다고 입증 하였다. 이론은 피부 이식 9 맞물린 부분 층 피부 이식의 사용에 의해 지원 피부 모델 10 상처 치유되었다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/53061/53061fig1.jpg" width="600" /> 그림 1 :. 온순한 이론은 미크의 이론에 따르면, 상피 세포는 상처의 가장자리에서 성장. 닦지 기술에 의해 노출되는 면적을 증가시킴으로써, 다진 조직은 많은 점에서 상처를 epithelializes. 본 연구는 저자에 기초동일한 원리가 주형 주위 다진 상피 배치하여 피하 조직에 적용될 수 논문. (상기 내부 몸체로부터 이물 (금형) 상처 면적 분리 연속 neoepithelium을 형성하기 위해 상피 세포는 상처 영역 (마이그레이션) 커버 다진 이식 (재구성)로부터 동원 것이고 분할기 (확장) 그림 2). <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/53061/53061fig2.jpg" /> 그림 2. 선량의 이론에 따른 생체 intracorporal 조직 확장 다진 상피 3D 금형 만화 피하 조직에 금형에 배치 한 후 이식 다진 조직을 이용하여 상기 가설은 상피 세포에서 마이그레이션 있다는 다진 조직의 가장자리는 재구성 및 상처 면적 본체 내부에서 이물질 (몰드)을 분리하는 연속 neoepithelium을 형성하도록 확장. 이전의 생체 내 연구는 유망한 결과를 보여하지만 재생 된 상피 더 나은 7 기계적 충격에 견딜 수 있도록, 더 개선은자가 이식을 강화함으로써 달성 될 수있다. 쉬운 영양소와 폐기물의 확산 가능성 금형 3D 방식 외과 취급 용이성 이러한 목적을 위해 성공적인 생체 중요한 전제 같은 확인되었다. 결론이 요구 다진 티슈 복합 생체 재료를 첨가함으로써 충족 될 수 있다고 하였다. 에 다진 조직으로 구성된 인공 지지체의 개발을 목표로 현재 연구 생분해 성 섬유의 보강 코어를 포함하는 콜라겐을 플라스틱 압축. 이러한 방법으로, 실행 가능한 세포는 다진 조직의 입자에서 마이그레이션 수 있고 원래의 상피 (피부 또는 요로 상피)의 형태 학적 기능 특성으로 확산. 플라스틱 압축을 사용하여 비계 감소했다약 420 μm의 다진 입자로에 1cm의 크기 d는 상위 계층 콜라겐에 싸여 있었다. 코어 섬유는 중합체 일 수 있지만, 피복 콜라겐 층 11 인터링크하기 위해 친수성 표면으로 변형 될 필요가 있었다. 이 방법은 다진 방광 점막 또는 돼지에서 다진 피부를 배양하기위한 발판으로 사용하여 두 개의 플라스틱 압축 된 콜라겐 젤 내에서 폴리 (ε 카프로 락톤을)로 구성된 니트 메쉬 (PCL)를 통합하여 향상된 발판 무결성을 제공했다. 구조는 잘 통합 하이브리드 구조물의 위에 층화 다층 요로 상피 또는 피부 편평 상피의 성공적인 형성을 입증하는 시험 관내에서 6 주 동안 세포 배양 조건에서 유지되었다. 구조는 취급이 용이이었고, 방광 확대 술의 목적이나 피부 결점 커버 장소에 봉합 될 수있다. 조직 골격의 모든 부분은 FDA 승인 및 기술되어있다티슈 닦지 수확 플라스틱 압축 및 단일 스테이지 개입 같은 환자에게 다시 이식하여 단일 단계 과정에 이용 될 수있다. 절차는 임의의 외과 부 멸균 조건 하에서 조직 팽창과 복원에 대해 수행 될 수있다.

<table><tbody><tr><td>실리콘 카테터 10-French</td><td></td><td></td><td>수술 준비, 섹션 1</td></tr><tr><td>DMEM 10x</td><td>Gibco</td><td>31885-023</td><td>플라스틱 압축 섹션 4</td></tr><tr><td>24 웰 플레이트</td><td>Falcon</td><td>08-772-1</td><td>플라스틱 압축 섹션 4</td></tr><tr><td>3',3',5-트리요오드티로닌</td><td>시그마-알드리IRMM469</td><td></td><td>시험관내 배양; 섹션 5</td></tr><tr><td>4% PFA</td><td>Labmed Solutions</td><td>200-001-8</td><td>면역세포화학; 섹션 6</td></tr><tr><td>: 70 % 에탄올</td><td>Histolab</td><td></td><td>면역 세포 화학; Section 6</td></tr><tr><td>ABC Elite 키트: 비오틴-스트렙타비딘 검출 키트</td><td>Vector</td><td>PK6102</td><td>면역세포화학; 섹션 6</td></tr><tr><td>절대 에탄올</td><td>Histolab</td><td>1399.01</td><td>면역세포화학; 섹션 6</td></tr><tr><td>아데닌</td><td>시그마-알드리치</td><td>A8626</td><td>체외 배양; 섹션 5</td></tr><tr><td>아트로핀 25 &mu; g/kg</td><td>Temgesic, RB 제약, 영국</td><td></td><td>수술을 위한 동물 준비, 섹션 1</td></tr><tr><td>Azaperone 2&thinsp; 마그네슘/킬로그램&nbsp;</td><td>Stresnil, Janssen-Cilag, Pharma, Austria</td><td></td><td>수술을 위한 동물 준비, 섹션 1</td></tr><tr><td>생물안전성 레벨 2 후드&nbsp;</td><td></td><td></td><td>플라스틱 압축; 섹션 4</td></tr><tr><td>차단 솔루션:&nbsp; 에서 2차 2차 항체와 동일한 종의 정상 혈청이 생성되었다.</td><td>벡터</td><td>차단 용액은 &nbsp; 첫 번째 항체</td><td>면역세포화학의 기원에 따라 달라집니다. 섹션 6</td></tr><tr><td>부프레노르핀 45 &mu; g / kg</td><td>아트로핀, Mylan Inc, Canonsburg, PA</td><td></td><td>수술을 위해 동물을 준비, 섹션 1</td></tr><tr><td>Carprofen 3 &thinsp; 마그네슘/킬로그램&nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>Rimadyl, Orion Pharma, 스웨덴</td><td></td><td>수술을 위해 동물을 준비, 섹션 1</td></tr><tr><td>클로르헥시딘 글루코네이트&nbsp;</td><td>히비스크럽 40&thinsp; mg/mL, Regent Medical, England</td><td></td><td>수술을 위한 동물 준비, 섹션 1</td></tr><tr><td>콜레라 독소</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C8052</td><td>체외 배양; Section 5</td></tr><tr><td>Coplin jar: 끓는 것을 위한 염색 용기</td><td>Histolab</td><td>6150</td><td>Immunocytochemistry; 섹션 6</td></tr><tr><td>스테인레스 몰드 (33 mm x 22 mm x 10 mm) 맞춤형</td><td></td><td></td><td>플라스틱 압축; 섹션 4</td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Gibco</td><td>3188-5023</td><td>플라스틱 압축 섹션 4. 얼음 위에 계속&nbsp; 플라스틱 압축</td></tr><tr><td>표피 성장 인자</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E9644</td><td>In vitro 배양에 사용할 때; 섹션 5</td></tr><tr><td>Ethilon (피부 봉합용 비흡수성 모노필라멘트)</td><td>Ethicon</td><td></td><td>Surgery, 섹션 1</td></tr><tr><td>소 태아 혈청 (FBS)</td><td>Gibco</td><td>10437-036</td><td>플라스틱 압박 섹션 4</td></tr><tr><td>집게 (이빨이 있는 아디슨)</td><td></td><td></td><td>수술 준비, 섹션 1</td></tr><tr><td>거즈 (Gazin Mullkompresse)&nbsp;</td><td></td><td></td><td>동물의 수술 준비, Section 1</td></tr><tr><td>Ham's F12</td><td>Gibco</td><td>31765-027</td><td>Plastic compression section 4</td></tr><tr><td>Hematoxylin</td><td>Histolab</td><td>1820</td><td>Immunocytochemistry; 섹션 6</td></tr><tr><td>습도 챔버</td><td>DALAB</td><td></td><td>면역 세포 화학; 섹션 6</td></tr><tr><td>하이드로코르티손</td><td>시그마-알드리치</td><td>H0888</td><td>체외 배양; 섹션 5</td></tr><tr><td>과산화수소 용액 30%</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H1009</td><td>면역세포화학; 섹션 6</td></tr><tr><td>인슐린</td><td>시그마-알드리치</td><td>I3536</td><td>체외 배양; 섹션 5</td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Isoflurane, Baxter, Deerfield, IL</td><td></td><td>수술을 위한 동물 준비, 섹션 1</td></tr><tr><td>Lidocaine 5 mg/ml</td><td>Xylocaine, AstraZeneca, Sweden</td><td></td><td>수술을 위한 동물 준비, 섹션 1</td></tr><tr><td>Lucose 25&thinsp; mg/ml</td><td>Baxter, Deerfield, IL</td><td></td><td>수술을 위한 동물 준비, 섹션 1</td></tr><tr><td>마커 펜 pap pen</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Z377821-1EA</td><td>면역세포화학; 섹션 6</td></tr><tr><td>메데토미딘 25 &mu; g/킬로그램&nbsp;</td><td>Domitor, Orion Pharma, 스웨덴</td><td></td><td>수술을 위한 동물 준비, 섹션 1</td></tr><tr><td>다진 장치</td><td>Applied Tissue Technologies LLC</td><td></td><td>다진 조직 준비, 섹션 2</td></tr><tr><td>Monocryl(흡수성 모노필라멘트)</td><td>Ethicon</td><td></td><td>수술, 섹션 1</td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S7653</td><td>면역세포화학; 섹션 6</td></tr><tr><td>NaOH 1&nbsp; N</td><td>Merck Millipore</td><td>106462</td><td>플라스틱 압축 섹션 4 및 세포 배양</td></tr><tr><td>나일론 메쉬, 110 &mu; M 두께 모공 크기 0.04&nbsp; sqmm</td><td></td><td></td><td>플라스틱 압축; 섹션 4</td></tr><tr><td>Oculentum simplex APL: 눈 보호를 위한 연고</td><td>APL</td><td>Vnr 336164</td><td>수술, 섹션 1</td></tr><tr><td>PBS</td><td>Gibco</td><td>14190-094</td><td>플라스틱 압축 섹션 4</td></tr><tr><td>페니실린-스트렙토마이신</td><td>Gibco</td><td>15140-122</td><td>플라스틱 압축 섹션 4</td></tr><tr><td>페노바르비투르산염 15&nbsp; mg / kg</td><td>Pentobarbital, APL, 스웨덴</td><td></td><td>수술 준비, 섹션 1</td></tr><tr><td>PCL 니트 직물</td><td></td><td></td><td>플라스틱 압축; 섹션 4</td></tr><tr><td>쥐꼬리 콜라겐</td><td>First LINK, Ltd, UK</td><td>60-30-810</td><td>플라스틱 압축 섹션 4, 얼음 유지</td></tr><tr><td>메스 블레이드 - 15</td><td></td><td></td><td>수술을 위한 동물 준비, 섹션 1</td></tr><tr><td>면도 가위</td><td></td><td></td><td>동물 수술 준비, 섹션 1</td></tr><tr><td>스테인리스 스텔 메쉬, 400&nbsp; &뮤; M 두꺼운 기공 크기</td><td></td><td></td><td>플라스틱 압축; 섹션 4</td></tr><tr><td>멸균 장갑</td><td></td><td></td><td>수술을 위한 동물 준비, 섹션 1</td></tr><tr><td>멸균 가운</td><td></td><td></td><td>수술을 위한 동물 준비, 섹션 1</td></tr><tr><td>멸균 커튼</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sterilium</td><td>Bode Chemie HAMBURG</td><td></td><td>수술을 위한 동물 준비, 섹션 1</td></tr><tr><td>봉합사 실 Ethilon</td><td></td><td></td><td>동물 수술 준비 수술, 섹션 1</td></tr><tr><td>TE-용액 (항원 언마스킹 용액)은 10 mM Tris와 1 mM EDTA, pH 9.0</td><td></td><td></td><td>10 mM Tris/1 mM EDTA로 구성되며, pH를 9.0</td></tr><tr><td>틸레타민 하이포클로라이드 2.5&nbsp; mg/kg</td><td></td><td></td><td>수술을 위한 동물 준비, 섹션 1</td></tr><tr><td>트랜스페린</td><td>시그마-알드리치</td><td>T8158</td><td>시험관 배양; 섹션 5</td></tr><tr><td>Trizma Base, H2NC&nbsp;</td><td>시그마-알드리치</td><td>T6066</td><td>면역세포화학; 섹션 6</td></tr><tr><td>벡터 VIP 키트: 효소&nbsp; 과산화효소 기질 키트</td><td>Vector</td><td>SK4600</td><td>면역세포화학; 섹션 6</td></tr><tr><td>Vicryl (흡수성 브레이드)</td><td>Ethicon</td><td></td><td>수술, 섹션 1</td></tr><tr><td>Tris 완충액 pH 7.6 (세척 버퍼)</td><td></td><td></td><td>TE 용액 : 60.6 g Tris (Trizma Base, H2NC (CH2OH) 3, M = 121.14g / mol), 증류수 800ml를 넣고 pH를 7.6까지 조정하고 NaCl 87.7g을 넣고 증류수를 1,000ml에 채 웁니다. 증류수로 1x까지 희석합니다.</td></tr><tr><td>X-tra solv (solvent)</td><td>DALAB</td><td>41-5213-810</td><td>면역세포화학; 섹션 6. 흄 후드 아래 사용</td></tr><tr><td>Zolazepam hypochloride</td><td>Zoletil, Virbac, France</td><td></td><td>수술을 위한 동물 준비, 섹션 1</td></tr><tr><td>제모 왁스 스트립</td><td>Veet</td><td></td><td>수술을 위한 동물 준비, 섹션 1</td></tr><tr><td>펜토바르비탈 나트륨</td><td>Lundbeck</td><td></td><td>종결, 섹션 3</td></tr></tbody></table>

압축 된 콜라겐에 다진 조직 : 단일 무대 재건 복구를위한 세포 함유 biotransplant

Minced Tissue in Compressed Collagen: A Cell-containing Biotransplant for Single-staged Reconstructive Repair

조직 공학 목적의 세포 확장 및 자가 세포 이식을 위한 기존 기술은 특별히 갖춰진 인간 세포 배양 시설에서 이루어질 수 있습니다. 이러한 방법에는 단일 세포 현탁액에서 세포를 분리하는 방법과 환자에게 다시 이식하기 전에 여러 가지 힘들고 시간이 많이 걸리는 이벤트가 포함됩니다. 이전 연구에서는 환자에게 이식하기 전에 조직과 세포의 생체 외 조작을 최소화하기 위해 신체 자체가 세포 확장 및 조직 재생을 위한 생물 반응기로 사용될 수 있음을 시사합니다. 이 연구의 목적은 조직 적출, 연속 상피의 분리, 상피를 작은 조각으로 다지고 이를 3층 생체 물질에 통합하는 방법을 입증하는 것이었습니다. 그런 다음 3층으로 된 생체 물질은 전달 매개체 역할을 하여 외과적 취급, 이식 전반에 걸친 영양 교환 및 제어된 분해를 가능하게 했습니다. 생체 물질은 콜라겐의 두 개의 바깥 층과 기계적으로 안정적이고 천천히 분해되는 폴리머의 코어로 구성되었습니다. 다진 상피는 이식 전에 콜라겐 층 중 하나에 통합되었습니다. 상피 조직을 작은 조각으로 다지음으로써, 그 조각들이 퍼질 수 있었고, 그로 인해 세포의 증식이 자극되었다. 이식의 초기 복용 후 세포 확장 및 재편성이 일어나고 세포 외 기질이 성숙하여 모세 혈관과 신경이 성장하고 세포 외 기질이 더 성숙할 수 있습니다. 이 기술은 생체 외 조작을 최소화하고 세포 수확, 자가이식 준비 및 간단한 1단계 중재로 환자에 대한 이식을 가능하게 합니다. 미래에는 환자의 특정 요구에 따라 신체 자체 내부의 3D 주형을 중심으로 조직 확장이 시작될 수 있습니다. 또한 이 기술은 정교한 세포 배양 시설 없이 일반 수술 환경에서 수행할 수 있습니다.

이 연구는 콜라겐과 다진 조직의 플라스틱 압축을 사용하여 이식 생체 재료를 생산하는 방법을 보여줍니다 방법을 제시한다. 방광 점막 및 피부는 수확 후 기계적으로 작은 입자 (그림 3)에 다진 할 수 있습니다. 플라스틱 압축하여 다진 입자 콜라겐 겔 (도 4)의 외층 내에 기계적으로 강한 중앙 배치 생분해 성 고분자로 이루어지는 복합체 지지체 내에 포함된다. 6 팽창율 : 다진 티슈 입자 일 수 있도록 구분 될 수있다. 콜라겐의 수분 함량을 누름으로써,자가 재건 수술 biotransplant가 완성된다. Biotransplants 더욱 시험 관내 연구를 위해 통상의 세포 배양 환경에서 생체 조사 연구 또는 배양 용 동물자가 이식에 사용될 수있다. 티<html> 그는 잡고 봉합 할 수 ...

조직 공학은 종종 조직 재생을위한자가 이식을 만들기 위해 체외 확장에 포함되어 있습니다. 본 연구에서는 조직 확장 재생 및 생체 내에서 재구성하기위한 방법이 체외 세포 및 생체 물질의 처리를 최소화하기 위해 개발되었다.

압축 된 콜라겐에 다진 조직 : 단일 무대 재건 복구를위한 세포 함유 Biotransplant

Conventional techniques for cell expansion and transplantation of autologous cells for tissue engineering purposes can take place in specially equipped ...

다음 절차의 전반적인 목표는 재건 수술 중 조직 확장을 위해 자가 조직을 이식하는 것입니다. 이는 먼저 관심 조직에서 생검 조직을 채취함으로써 수행됩니다. 그다음, 생검 조직을 잘게 다져 플라스틱 압축 폴리카프로락톤(polycapro-lactone, PCL) 콜라겐 자가 이식편을 제작합니다.그 다음 PCL과 자가 다진 조직을 통합하여 3D 스캐폴드를 제작합니다. 본 실험에서는 1:6의 확장 비율을 사용하였습니다. 이후, 스캐폴드를 피험자에게 다시 이식합니다.최종적으로, 자가 이식된 조직의 재생은 스캐폴드와 세절된 조직 입자 내 세포의 증식 및 재구성에 대한 면역조직화학 분석을 통해 평가할 수 있습니다. 이 방법은 동물 모델, 피부 및 요로상피에서 시연될 것입니다. 이 기술의 함의는 심각하게 기형인 조직의 치료나 외상 후 수술적 복구에 필요한 조직이 심각하게 부족한 경우의 치료로 확장됩니다.in vitro 배양과 같은 기존 방법과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은 단일 단계의 수술 절차로 수행할 수 있다는 점입니다. 조직 채취부터 이식까지의 모든 단계가 무균 상태에서 수행되어야 하므로, 이 방법의 시각적 시연이 매우 중요합니다. 돼지 방광 생검 표본을 얻으려면, 먼저 포셉으로 방광을 잡고 멸균된 줄자를 사용하여 조직의 크기를 측정하십시오.다음으로, 멸균된 펜을 사용하여 2x1 cm 크기의 타원형 생검 부위를 표시하고, 1~6배의 확장률을 목표로 합니다. 그런 다음, 메스로 표시된 조직을 절제하고, 멸균 조건 하에서 방광 생검 검체를 DMEM에 넣습니다. 피부 생검 검체를 채취하려면, 더마톰(dermatome)을 사용하여 0.3 mm 두께의 부분 층 검체를 채취합니다.그런 다음, 조직을 DMEM에 넣고 상처 부위를 드레싱으로 덮습니다. 다음으로, 방광 생검 조직을 DMEM으로 두 번 세척하고, 점막이 위를 향하도록 하여 멸균된 해부 플레이트로 조직을 옮깁니다. 해부 핀을 사용하여 검체의 한쪽 면을 플레이트에 고정하고, 미세 가위와 포셉을 사용하여 점막 조직을 배뇨근으로부터 분리합니다.그 다음, 점막 위에 다지기 도구를 놓고 조직의 한쪽 끝에서 다른 쪽 끝까지 수직 및 수평으로 움직여 0.8 by 0.8 millimeter 크기의 다져진 조직 조각을 얻습니다. 이때 다지기 도구를 조직 위에서 움직이는 동안 조직을 눌러줘야 함에 유의하십시오. 플라스틱 압축 콜라겐 자가이식편을 준비하려면, 먼저 배지가 진한 노란색에서

minced-tissue-compressed-collagen-cell-containing-biotransplant-for

Research

연구

JoVE Journal

Bioengineering

생명공학

임베디드 세포와 어떤 표면을 포함하는 모듈 불리는 원통형 콜라겐 젤을 사용하여 마이크로 조직의 생성은 내피 세포로 코팅됩니다.

콜라겐의 모듈을 사용하여 미세 조직의 제조가 포함 세포를 젤

이 보고서에서, 우리는 분리 시스템 및 마우스 유선에서 문화 기증자 세포를 증명하고, orthotopically stromal 분석받는 마우스에서 이러한 세포를 이식 : 내유 종양 개발하는 동안 상피 상호 작용합니다.

C57BL/6J 마우스의 Stromal 셀 및 암종 세포 이식 내유

인간 perivascular 줄기 세포는 (PSCs) mesenchymal 줄기 세포 (MSCS)와 유사한 골격 조직 재생을위한 소설 줄기 세포 클래스입니다. PSCs는 표준 지방 흡입 절차 동안 조달 지방 조직에서 FACS (형광 활성 세포 분류)에 의해 격리 수 있습니다 다음, 뼈 형성을 달성하기 osteoinductive 비계와...

뼈 재생을위한 인적 Perivascular 줄기 세포의 이용

현재 줄기 세포 치료에서 주요 장애물은 호스트 조직으로 이들 세포를 전달하는 가장 효과적인 방법을 결정합니다. 지방 파생 줄기 세포들이 multipotency을 유지할 수 있도록하면서 여기에서, 우리는 효과적이고 접근 간단 키토산 기반의 전달 방법을 설명합니다.

줄기 세포 - 로드된 키토산 Microspheres의 배달을 위해 콜라겐 히드로겔을 구축

이 모델 시스템은 비파괴 방식으로 내생 콜라겐 (재) 조직 리얼 타임으로 공부하는 데 사용할 수있는 근섬유 채워진 섬유소 젤에서 시작됩니다. 모델 시스템은 서로 다른 세포 소스, 중간 첨가제와 함께 사용할 수있는, 매우 조정할 수 있으며, 특정 요구에 쉽게 적용 할 수 있습니다.

엔지니어링 섬유소 기반 조직의 면역 조직 및 제약 조건의 적용에서 생성하고 세포와 콜라겐 (재) 조직을 유도하는 스트레인

전방 십자 인대 (ACL)의 부분적인 눈물을 복구하는 패치 향후 애플리케이션의 경우, 인간의 ACL 유래 세포는 체외에서 확장 및 조직 공학적 지지체에 성장 재건 과정 중에 얻은 조직에서 분리되었다. 세포 접착 및 형태학이어서 지지체 표면에 생체 적합성을 확인하기 위하여 실시 하였다.

외과 검색, 분리 및<em&gt; 체외</em&gt; 조직 공학 응용 프로그램에 대한 인간의 전방 십자 인대에서 파생 된 세포의 확장

이 연구에서는 콜라겐, 평활근 세포 및 내피 세포를 직접 배양하여 살아있는 혈관 조직을 신속하게 만드는 기술을 제시합니다. 또한 엔지니어링된 혈관 조직의 기계적 특성화를 위한 새로운 프로토콜이 설명됩니다.

혈관 조직 재생을위한 엔지니어링 3D Cellularized 콜라겐 젤

새로운 프로토콜에있어서 인간의 조직들을 분해하고, 콜라겐 스폰지와 함께, 피부 병변의 치료에 사용할 준비 인간 생체 복합체를 야기 미세자가 이식편을 만들 설명. 또한,이 시스템은 기계적 세분화 한 후 다른 시간에 마이크로 이식편의 세포 생존율을 유지.

피부 마이크로 이식 세대를위한 새로운 세분화 방법 후 조직 특성

우리는 macroporous microcarriers에 셀 확장 프로토콜 및 decellularized 조직 매트릭스를 시드하 관류 생물에서 배달 시스템으로 그들의 사용을 제안 합니다. 우리는 또한 세포 증식 및 microcarriers에 경작 하는 세포의 생존 능력을 결정 하기 위해 다른 기술을 포함 합니다. 또한, 생물 반응 기 배양 후 세포의 기능을 설명합니다.

재조합 콜라겐 나 세포 확장과 생물에 셀 납품 시스템으로 그들의 잠재적인 사용에 대 한 펩 티 드 Microcarriers 모델

이 논문에서는 엔지니어링 콜라겐 이식으로 작성하여 최대 1.5cm의 힘줄 간격을 복구하기 위해 시험관 내 및 현장 프로토콜을 제시합니다. 이것은 접목이 숙주 조직으로 성숙할 때까지 기계적 부하를 취하는 변형된 봉합사 기술을 개발함으로써 수행되었다.

큰 힘줄 결함을 복구하는 조직 엔지니어링 콜라겐 이식과 새로운 테노르래피 봉합사 기술

간 질환은 섬유증이나 간경변증을 촉진하는 많은 원인에 의해 유도됩니다. 이식은 건강을 회복하기위한 유일한 옵션입니다. 그러나 이식 가능한 장기의 희소성을 감안할 때 대안을 모색해야합니다. 우리의 연구는 동물 모델에서 간 조직에 콜라겐 비계의 이식을 제안한다.

간 재생 전략으로 3차원 콜라겐 매트릭스 스캐폴드 이식

학습하세요 단일 단계 재건 수술을 위한 생체이식 기법으로, PCL과 자가 조직을 활용한 3D 스캐폴드를 구축하여 체내 조직 확장을 실현하는 방법입니다. 이 기술은 재생의학 연구에 활용됩니다.

압축 된 콜라겐에 다진 조직 : 단일 무대 재건 복구를위한 세포 함유 Biotransplant

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