Name: FRET 유동 세포 계측법과 Proteopathic의 시드 활동의 민감한 검출 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-12-08T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 31 s
Description: 학습하세요 FRET 유동 세포 계측법을 이용하여 프로테오패틱 시드 활동을 민감하게 검출하는 방법을. 이 기술은 신경퇴행성 질환 연구와 치료 효과 평가에 활용됩니다.

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이 작업은 Tau 컨소시엄(M.I.D)의 지원을 받았습니다. 미국 국립보건원(National Institutes of Health) 보조금 1R01NS071835(M.I.D.), 국방부 보조금 PT110816(M.I.D.), 1F32NS087805(J.L.F.), 1F31NS079039(B.B.H.).

주 :이 프로토콜은 FRET의 사용은 마우스 생물학적 시료에서 시딩 활성을 검출하기위한 유세포 강조한다. 또한, 피 브릴과 재조합 인간 생물학적 시료와 호환된다. 마우스를 안락사 뇌 수확은 IACUC 승인 절차에 따라 수행 하였다. 1. 뇌 추출 <ol><li> 이소 플루 란 (2 %)와 깊은 마취를 따르는 것은, 얼음처럼 차가운 PBS는 0.03 %의 헤파린을 포함와 마우스를 관류하고, 게이지 등에 기술 된 사항은 다음 뇌의 압축을 풉니 다. (18) </li><li> 극저온 유리 병에서 추출한 조직을 배치하고 액체 질소에 배치하여 동결 웁니다. 또한, 드라이 아이스에 조직을 동결. 일단 필요한 경우, 장시간 동안 -80 ° C에 저장 조직을 전송 냉동. 참고 :이 프로토콜은 전체 뇌 균질 또는 마이크로 해부 뇌 영역과 호환됩니다. Hagihara 등의 알을 참조하십시오. 자세한 마이크로 해부 프로토콜 19. </li></ol&gt; 생물 종자 소재 2. 준비 <ol><li> 1X의 TBS (10 ㎖ 당 1 정제)에 단백질 분해 효소 억제제를 (무료 EDTA)을 용해하여 균질화 버퍼를 준비합니다. 얼음에 적극적으로 소용돌이 및 저장. 단백질 분해 효소 억제제는 바이오 센서 세포 생존을 유지하기 위해 EDTA가 없어야합니다. </li><li> 일회용 무게 보트에 고정 된 뇌 조직의 무게를 측정하고, 5 ML 원뿔 튜브에 전송할 수 있습니다. 최종 솔루션은 10 % 중량 / 부피가되도록 얼음처럼 차가운 균질화 버퍼를 추가합니다. 일시적으로 얼음에 저장합니다. 조직 덩어리와 후속 균질화 완충액 용적 사용 뇌의 크기 및 / 또는 지역에 따라 달라질 것이다. 여기에, 0.2 g의 무게 성인 마우스 hemibrain은 10 % W / 부피 솔루션 2 ㎖에 일시 중단됩니다. </li><li> 전송 추운 방에 샘플 및 적절한 설정으로 프로브 초음파기를 조정합니다. (여기에 도시 된) 옴니 Ruptor과 초음파 프로브의 경우, 샘플이 OV되지 않도록 약 75 W. 사용하여 펄스 모드에 해당하는 20 %로 전력을 설정할초음파 동안 ER-가열. 약 500 밀리 초에 해당하는 30 % 펄스 발생기를 설정합니다. </li><li> 다시 물, 이소프로판올, 물과 린스 각 솔루션 사이에 프로브를 닦아 프로브 소니 케이의 끝을 청소합니다. 씻어 측면과 실험실 와이프와 프로브의 바닥을 모두 닦아 특정합니다. </li><li> 한번에 하나의 샘플로 작업, 균질화 완충액에 프로브 팁 잠수함 및 초음파기를 시작한다. 전술 한 전력과 펄서 설정을 사용하여 총 25 펄스를 제공한다. 그 조직이 서스펜션에 완전히 확인합니다. 이 단계에서 샘플의 거품을 피하기 위해주의해야합니다. 주 : a) 총 부피가 낮은 또는 B)가 파쇄 예열하면 샘플이 발포에 민감하다. 이 특정 악기로, 250 μL 미만의 볼륨과 초음파 처리하지 않습니다. 샘플이 냉각 유지되도록하기 위해, 튜브는이 단계 동안 얼음 상에 저장 될 수있다. </li><li> 잔류 해물을 멀리 닦아 프로브를 청소 한 다음 비커 오에 (10) 펄스를 제공F 깨끗한 물. 각 단계 사이에 건조 와이 핑 (단계 2.4에서와 같이) 양쪽 다시 물, 이소프로판올, 물과 프로브의 바닥을 헹군다. 오염을 방지하기 위해 철저하게 샘플 사이에 프로브를 헹군다. 주 : 타우 응집체, 우리는보다 엄격한 세척 방법은 샘플 간 오염을 방지하기 위해 필요한 것을 발견되지 않았다. 기타 아밀로이드 그러나, 광범위 문학 (20, 21)에 설명 된 추가 치료가 필요할 수 있습니다. </li><li> 모든 샘플이 처리 될 때까지 얼음 상에 저장 균질. </li><li> 4 ℃에서 15 분 동안 21,300 XG에서 균질 스핀. </li><li> 펠렛을 방해하지 않도록주의하면서 깨끗한 튜브에 뜨는을 전송합니다. 펠렛을 폐기하십시오. 상기 용도 -80 ° C에서 상등액 및 저장 용 해물 나누어지는. 이 시딩 효율을 감소시키기 때문에, 그러나, 균질의 동결 / 해동 사이클을 피하십시오. </li></ol> 3. R​​eplating 바이오 센서 세포 노트:이 분석을 위해 네 개의 세포주를 사용하여 HEK 293T (셀 라인 # 1), RD-P301S-CFP (셀 라인 # 2), RD-P301S-YFP (3 세포주 #) 및 RD-P301S-CFP / YFP ( 세포주 # 4). 분석 각 세포주의 공헌은 표 1을 참조하십시오. <ol><li> 무균 환경에서, 흡 배지. 따뜻한 PBS 및 기음과 세포를 씻어. 를 Trypsinize 셀 3 분간 (트립신 EDTA (0.05 %) 3 mL)를, 따뜻한 배양 배지 (DMEM 9 ㎖, 10 % FBS, 1 % 펜 / 패 혈성, 1 % 루타)로 급냉하고, 즉시에 셀을 전송할 원뿔 튜브. </li><li> 실온에서 5 분 1,000 XG에 원심 분리기 세포. 대기음 매체와 따뜻한 문화 매체에 resuspend 세포 펠렛. </li><li> 혈구를 이용하여 각 세포주에 대한 세포 밀도를 결정한다. 세포 밀도는 수확 및 재 부유 볼륨시 포화 상태에 따라 달라질 수 있습니다. 세포 밀도, 10 ㎖ 배지에서 90 % 컨 플루 언시 10cm 접시에서 수확 재현 탁 된 세포를 약 1 백만 세포 / ml이어야한다. </li><li> 하다세포의 마스터 믹스 + 미디어는 96 웰 플레이트의 각 웰을 130 ㎕의 매질에서 35,000 세포 포함될 것이다 (100 웰위한 마스터 믹스를 만들기 위해, 예를 13 ml의 배지에서 350 만 세포를 재현 탁). 각각의 실험적인 디자인과 일정에 맞게 휴대폰 번호를 수정합니다. 세포 처리를 위해 도금 후 ~ 18 시간은 96 웰 플레이트에 35,000 세포를 추가한다. </li><li> 멀티 채널 피펫을 사용하여 천천히 평평한 바닥의 각 웰에 마스터 믹스 세포 현탁액 130 μl를 피펫, 96 웰 조직 배양 플레이트를 처리. 도금하는 동안, 플레이트의 바닥에 닿지 않으면, 웰의 중심에 피펫 팁을 배치했다. 주 : 도금 포맷이 변경 될 수 있지만, 세포주 접시 당 1-3의 각각에 대해, N = 4 웰을 만드는 것이 권장된다. 플레이트 (N = 84)의 나머지 세포주 # 4 (바이오 센서 셀)를 위해 예약된다. </li><li> 세포가 실온에서 10 분 동안 그대로 접시를 남겨 정착하도록 허용합니다. 37 ° C, 5 % CO 2, 및에서 O / N을 부화# 8805; 80 % 상대 습도. </li></ol> 4. 치료 세포 참고 : 다음 날, 타우 바이오 센서 세포가 다음과 같이 종자 전달 복합체를 제조, 60~65% 합류 있습니다 : <ol><li> 하나의 튜브에서, 마스터 믹스를 만드는 등의 Opti-MEM과 같은 감소 된 혈청 배지와 같은 리포 펙 타민으로, 형질 감염 시약을 결합한다. 당은 물론, 1.25 μL 형질 전환 시약 및 8.75 μL 감소 혈청 미디어를 추가 할 수 있습니다. 톡 튜브 부드럽게 짧게, 혼합 스핀 다운, 그리고 실온에서 5 분 동안 품어합니다. </li><li> 다른 관에서, 감소 된 혈청 미디어 시드 물질 (단계 2.9에서 해물의 분취 량)을 결합한다. 참고 : 씨앗 재료의 볼륨은 개별 실험에 따라 달라질 수 있습니다. 종자 볼륨을 선택할 때, 고려 : 샘플과 잠재적 인 독성 씨의 풍부. 원유 균질 세포에 독성이 될 수 있습니다. 따라서, 원하는 효과를 모니터링 할 수 가장 낮은 볼륨을 사용합니다. 해물 / 웰 범위 FR의 이전 테스트 볼륨5 ~ 20 μg의 총 단백질에 해당하는 톰 1-5 μL. 물론 당 전체 볼륨 (씨앗 + 감소 혈청 미디어) 10 μL 있는지 확인하십시오. </li><li> 적어도 20 분 동안 2 시간까지 실온에서 간단하게, 부드럽게 혼합 4.1 및 4.2, 영화에서 설명하는 두 개의 튜브에서 내용을 결합 (1,000 XG, 5 초)를 스핀 다운, 그리고 품어. </li><li> 부드럽게 개별 바이오 웰의 측면에 전달 복합체의 20 μL 피펫. 세 기술 복제, 가능하면 사용하십시오. 24 ~ 48 시간 동안 인큐베이터에 처리 된 세포를 돌려줍니다. 단계 3.6에 기재된 것과 동일한 조건 하에서 배양한다. 참고 : 인지질의 응용 프로그램이 리포좀 시약에 노출되지 않은 세포를 바이오 센서에 형광 프로파일 상대적으로 약간의 변화를 소개하고 있기 때문에이 설정에 대한 적절한 음성 대조군 조건은 빈 리포좀 (즉, 리포좀 시약 + 감소 혈청 미디어)로 처리 바이오 센서 세포이다. </li></ol> FRET 유동 세포 계측법 5. 수확 세포 <p클래스 = &quot;jove_content&quot;&gt; 참고 : 세포 - 일반적으로 수확하기 전에 24 ~ 48 시간 후 치료가 표준 반전 형광 현미경에 GFP 필터를 사용하여 파종 활동의 예비 판독을 얻을 수 있습니다. 시드 물질로 처리 된 세포가 강렬한 반점과 망상 세포 내 흠 (- B 그림 1A)를 보여줍니다 반면 시드 물질 (즉, 빈 리포좀)없이 처리 된 세포는 확산 형광 표시됩니다. <ol><li> 멀티 채널 피펫을 사용하여 모든 세포 배지 (150 μL)를 대기음. 를 Trypsinize (50 μL)에서 5 분 동안 세포를 150 ㎕의 냉각 된 배양 배지로 켄 칭한다. 이 셀 리프팅과 이후의 세포 손실이 발생할 수 있으므로,이 단계에서 트립신하기 전에 PBS 린스를 포함하지 마십시오. 게이팅 전략을 통해 유동 세포 계측법 중에 오염 죽은 세포와 파편을 제외합니다. </li><li> 즉시 5 마일 1,000 XG에서, 전송 96 웰 둥근 바닥 플레이트 세포와 원심 분리기를 담금질 후실온에서 N. </li><li> 대기음은 세포 펠렛을 방해하지 않도록주의하면서 매체를 버리고. </li><li> 온화하지만 충분히 50 μL를 2 % 파라 포름 알데히드에서 세포 펠렛을 재현 탁하고, 10 분 동안 배양한다. 고정이보다 깨끗하고 일관된 결과를 제공하지만 다른 방법으로, 실행 세포는 살고있다. </li><li> 실온에서 5 분 1,000 XG에 원심 분리기 세포. 대기음은 세포 펠렛을 방해하지 않도록주의하면서, 파라 포름 알데히드를 버리고. </li><li> 온화하지만 충분히 완충액 200 μL 계측법 냉장 유동 세포 펠렛을 재현 탁 (HBSS, 1 % FBS, 1 mM의 EDTA) 및 세포 응집을 피하기 위해 가능한 한 빨리 실행 판. </li></ol> 6. FRET 유동 세포 계측법 참고 : 레이저 라인 필터 세트 (표 2) FRET 호환 장착되어 MACSQuant VYB, 같은 사이토 흐름을 사용합니다. 이 섹션 내에서 각 단계의 경우, 소프트웨어의 96 웰 템플릿을 사용하여 관심의 복지를 클릭 클릭&quot;재생&quot;샘플 이해와 흐름을 시작합니다. &#39;새로운 분석 창&#39;아이콘을 클릭하여 플롯 또는 통계 테이블을 확인합니다. X 또는 Y 축 중 하나의 제목을 클릭하고 적절한 필터를 선택하여 개별 이변 량 플롯에 축 매개 변수를 변경합니다. 세포 집단 또는 형광 신호를 교대로 증가 또는 적절한 필터와 연관된 전압을 감소시킨다. 이 악기로, 정확한 단일 셀 모니터링을 보장하기 위해 &lt;1000 이벤트 / 초를 실행합니다. <ol><li> 세포 인구가 왼쪽 사분면가 될 때까지 사이드 스 캐터 영역 앞으로 캐터 지역 (FSC-A) 이변 량 플롯 대 (SSC-A) 및 셀 라인 # 1 실행으로는, SSC 및 FSC 전압을 조정합니다. 다각형 도구를 클릭하고 세포 인구 (문 P1)을 정의합니다. 모든 게이팅 매개 변수의 그림 2를 참조하십시오. </li><li> FSC-H (높이) FSC-이변 량 플롯 대를 확인하고 그래프 위의 &quot;라이브&quot;를 클릭하고, P1을 선택하여이 음모에 게이트 (P1)을 적용합니다. 세포주 # 1실행, 다각형 도구를 클릭 한 단일 세포 (게이트 P2)를 정의합니다. </li><li> CFP, YFP 및 FRET : 3 히스토그램 플롯, 관심있는 필터의 각 하나를 확인합니다. 그래프 위의 &quot;라이브&quot;를 클릭하고, P2를 선택하여 이러한 플롯의 모든 게이트 (P2)를 적용합니다. 세포주 # 1 실행으로 전압을 조정하도록 CFP, YFP의 중간 세포 인구 및 히스토그램은 405 nm의 레이저로 세포를 자극, CFP과 FRET을 측정하고, 함께 캡처 형광 모든 0과 1이다 FRET 각각 50분의 450 nm의 50분의 525 nm의 필터. YFP를 측정하기 위해, 50분의 525 nm의 필터와 488 nm의 레이저 캡처 형광으로 세포를 자극. 레이저 및 필터 설정은 상기 표 2에 기재되어있다. </li><li> FRET와 YFP 채널로 CFP의 유출에 대한 보상을 수행합니다. 주 : 보상 형광 파급 보정 과정이다. 하나의 형광 색소의 형광 방출은 필터 DESI 내에서 검출 될 때마다 형광 스필 오버가 발생다른 형광 색소에서 신호를 측정 할 수 gned. 적절한 보상, CFP 파급 형광 FRET과 YFP 채널로부터 제거 될 수있다. 참고 : 보상이 모두 형광 양성 및 -negative 세포의 존재를 필요로한다. 따라서, CFP 양성 세포 (셀 라인 # 2), 실행하기 전에 샘플에 추가해야합니다 음성 세포 (1 세포주 #)를 보상합니다. <ol><li> 잘 세포주 # 2 서스펜션의 200 μL에 하나의 세포 라인 # 1 현탁액의 30 μL의 스파이크 보상 직전. </li><li> &quot;장비 설정&quot;아이콘을 한 후 &#39;보상&#39;탭을 클릭하고 보정 테이블을 열 &#39;매트릭스&#39;를 선택합니다. </li><li> 단계 6.3에 설명 된대로, CFP-이변 량 플롯 대 무서워-을 확인하고 게이트 (P2)를 적용합니다. 세포주 1 + 2 실행으로, &#39;상한&#39;아이콘을 클릭하고 같은 형광 -negative 및 양성 집단이 낮은 두 개의 사분면으로 구분됩니다 (빌 게이츠 LL3의 사분면을 그립니다차 LR3, 각각). </li><li> LL3과 LR3 게이트에 대한 FRET의 평균 형광 강도 (MFI)를 표시하는 통계 테이블을 만듭니다. FRET 신호의 MFI가 LL3과 LR3 사이의 동등한 때까지 보상 매트릭스의 FRET 매개 변수를 조정합니다. 이 단계에 이어, FRET 신호의 MFI는 FRET 채널로 스필 CFP의 부재를 시사 흠 세포 및 CFP 양성 세포 사이에서 동일하다. </li><li> 단계 6.3에 설명 된대로, CFP-이변 량 플롯 대 YFP-을 확인하고 게이트 (P2)를 적용합니다. 단계 6.4.3에서 수행 한 것과 유사한 사분면 (LL4과 LR4)를 그립니다. </li><li> LL4과 LR4에 대한 YFP의 MFI를 표시하는 통계 테이블을 만듭니다. YFP 신호의 MFI가 LL4과 LR4 사이의 동등한 때까지 보상 매트릭스의 YFP 매개 변수를 조정합니다. 이 단계에 이어, YFP 신호의 MFI는 YFP 채널에 CFP 스필의 부재를 시사 흠 세포 및 CFP 양성 세포 사이에서 동일하다. </li></ol></li><li> FOLL게이트 설치 및 보상 때문에, 관심의 우물을 선택하고 판의 나머지 부분을 실행합니다. </li><li> 모든 샘플은 &#39;파일&#39;다음 &#39;복사&#39;를 클릭하여, 수출 데이터 파일을 실행 한 후. , &#39;데이터 파일&#39;탭을 선택 실험 폴더를 선택하고 &#39;복사&#39;를 클릭합니다. </li></ol> 7. 데이터 분석 참고 : X 또는 Y 축 중 하나의 제목을 클릭하고 적절한 필터를 선택하여 개별 이변 량 플롯에 변경 축 매개 변수를 설정합니다. <ol><li> 분석 프로그램 유동 세포 계측법에서 열기 FCS 파일. </li><li> 산란 특성들에 기초하여, 유사 제 6 항에 기재된 것과, 빈 리포좀으로 처리 한 세포에서 (FSC-VS FSC-H) 세포 집단 (FSC VS SSC) 및 중항 인구를 정의하는 다각형 게이트를 사용한다. </li><li> CFP 보상을 설치하는 동안 수행 된 경우, 추가 CFP를 조정하지 않습니다. </li><li> YFP의 이변 량 플롯 대 FRET을 만듭니다. 세포주 # 3를 사용하여, FRET 양성 세포 인구의 경사를 따라 실행되는 다각형 게이트를 그려 거짓 무서워 게이트를 정의합니다. 이 게이트는 FRET 필터 내의 신호를 방출 YFP 단일 양성 세포를 제외하고 이전에 외 금지하여 도시 된 것과 유사 그려. 22 </li><li> CFP의 이변 량 플롯 대 FRET에 빈 리포좀 처리 CFP / YFP 세포를 플롯에 의해 무서워 게이트를 정의합니다. 위쪽으로 확장하고 멀리 인구에서 좌측으로 인구의 경사를 따라 다각형 게이트를 소개합니다. 이 게이트는 배경이 세포의 ≥1 %로 FRET 있도록 대부분의 세포 (~ 99 %)을 제외한다. 이 게이트로 이동 모든 이벤트는 FRET 양성 간주됩니다. 참고 : 위에서 설명한 각각의 게이트는 다음 게이트를 구성하기 전에 모든 샘플에 적용됩니다. 분석에 따라, 네 개의 개별 게이트가 정의 (세포 인구, 단일 거짓 무서워, 무서워). </li><li> %의 FRET 양성 및 MFI 등 : 관심의 기록 분석 매개 변수,FRET 양성 세포. 수동 퍼센트 양성 및 MFI의 생성물을 측정함으로써 FRET 집적 밀도를 계산한다. 주 : 집적 FRET 밀도 측정 결과는, 두 개의 개별 요소 미만인 곱을 계산 피하기 위하여 1보다 크거나 같다 및 MFI (단계 7.5에서 정의 된 바와 같이) 설정 배경 FRET로 사용되는 경우. </li></ol>

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이 분석은 Janssen Pharmaceuticals에 라이선스가 부여되었습니다.

여기에 설명 된 FRET 유동 세포 계측법 시스템은 신속하고 정량적 타우 파종 활동을 평가하기위한 강력한 도구입니다. 그것은 단지 적당한 세포 배양 경험과 FRET에 대한 실무 지식과 유동 세포 계측법을 필요로한다. 베타 시트 구조에 결합하면 형광을 강화 전시 - - 등 Thioflavin T와 같은 다른 시드 분석은, 수고하고 순수한, 재조합 단백질 기판을 필요로한다. 또한, 타우에 대한 시험 관내 시드 분석은 반 정량과 종자 재료 (23, 24)의 subnanomolar 수준으로 일반적으로 문자를 구분하지 않는다. 유동 세포 계측법 프렛 그러나, 재조합 또는 생물학적 중 샘플에서 시드 활동의 양적, 정교하게 민감한 측정을 제공합니다. 또한, 적응 절차는 단백질 응집 질환의 다양한 연구에 유용 할 수있다. 본원에 기술 된 프로토콜은 타우 시드에 집중되지만, 단순 수정은 t 필요O proteopathic 씨의 다른 유형에서 파종 활동을 감시...

세포 내 타우 아밀로이드의 축적은 알츠하이머 질환과 같은 퇴행성 신경을 정의한다. 초기 질병 단계에서, 병리학은 일반적으로 뇌의 이산 지역 언어로 번역되어 있지만, 질병의 진행과 함께, 병리는 변함없이 별개의 신경망 1-5을 따라 확산. 축적 증거가 독성 단백질 응집체의 세포 횡단 전파가 (6-10에서 검토)이 병리의 기초가 제안합니다. 이 모델에서, proteopathic 종자 (예 타우) 공여 세포로부터 방출되고, 주형 형태 변화 11-15 비아 미스 폴딩 형태로 네이티브 타우 단백질을 변형, 인접 셀 입력. 여기에 설명 된 분석은 이러한 민감 시딩 활성을 검출하기 위해 개발되었다. 그것은 재조합 단백질 및 생체 시료와 호환되며 proteopathic 시드 활동 16 분 수준의 정량화 할 수 있습니다. 안정적 타우 반복 D를 표현하는 HEK 293T 세포CFP 또는 YFP 하나에 융합 된 질병 - 관련 돌연변이 P301S 함유 omain (RD)는 시딩 활성의 안정적 바이오 센서로서 기능 (이하 타우 RD-CFP / YFP 셀이라 함). proteopathic 씨의 부재 하에서, 세포는 수용성 단량체로서 타우을 유지하고 뚜렷한 배경 FRET 없다. 세포에 자발적 흡수 또는 타우 씨의 리포좀 - 매개 형질 그러나, 유동 세포 계측법을 통해 단일 ​​세포 내에서 측정 FRET 신호를 생성 RD-CFP 및 RD-YFP 집계, 결과. 이 분석의 다수의 구성 요소는 감도를 향상시키고 변동을 줄일 수 있도록 설계되었다. 1 단일 클론 세포주 : 그것은 최적의 신호를 제공하기 때문에 1 RD-CFP / YFP 발현 비율이 선정되었다 : 소음. 감도를 높이기 위해, 인지질은 세포 내로 직접 도입하는 종자를 사용하는 (흡수 생물학적 메커니즘을 연구하는 있지만, 이는 생략 될 수있다). 마지막으로, 인구 수준 및 단일 셀에서 모니터 FRET 유동 세포 계측법<html> 레벨, 다른 단백질 응집 분석법 달리. 최종 결과 측정, FRET 집적 밀도가 높은 정량하고 응집 세포의 수, 각 집합은 셀 내에서 발생하는 정도 모두를 차지한다. 이러한 최적화는 모든 파라미터 감도 향상 및 재현성을 보장한다. 이 시스템은 최근에 일반적으로 사용되는 타우 병리학 마커 시간 발병과 타우 시드 활동 상대의 진행 (예를 들어, MC1, AT8, PG5 및 ThioflavinS)을 평가 형질 전환 P301S 타우 병증 마우스 (17)의 포괄적 인 연구에 사용 하였다. 시드 활동으로 지금까지 최소한 6 주까지 조직 학적 검색을 이전 평가 타우 병리학의 초기와 가장 강력한 마커입니다. 시드 활동 개시 및 / 또는 신경 퇴행 (16)의 진행에 proteopathic 씨의 인과 적 역할을 제안, 1.5 개월 점진적으로 연령 증가에 나타납니다. e_content &quot;&gt; 생물학적 시료에서 시드 물질의 미세한 수준의 정확한 정량. 초기 질병 진행을 모니터링 연구를 용이하게 할 수있는 시험 기간을 단축하고 어린 동물들의 사용을 가능하게함으로써,이 전임상 동물 실험의 효율성 및 정확성을 증가시킬 수있다. 예를 들면, P301S 마우스 전술 납 화합물은 초기 4~6주만큼 제공 될 수있는, 2-4 주 후에 효능을 모니터링. 분석 정확하게 파종 어떠한 감소를 정량화한다 (또는 시딩 활성의 발병 직전) 활성. 계측법 관내 스크리닝 응용뿐만. 예를 들어, 항 - 타우 시약 (예, 항체, 소분자 등) 중 재조합 타우를 사용하여, 배양에서 직접 유도 시드 차단하는 그들의 능력에 대해 신속하게 시험 될 수있다 흐름 FRET 시드 소스 (그림 5).이 설정으로, 씨앗 재료가 준비되면, 전으로 집계 또는 뇌 유래 해물periment 데이터 분석을 포함, 완료하는 데 사흘이 걸립니다. proteopathic 시딩 활성의 신속한 정량 따라서 신경 퇴행의 많은 연구를 용이하게 할 수있다.

<table><tbody><tr><td>TBS</td><td>Sigma</td><td>T5912</td><td></td></tr><tr><td>cOmplete 프로테아제 억제제(EDTA 무함유)</td><td>Roche</td><td>4693159001</td><td></td></tr><tr><td>Cryo-vials</td><td>Sarstedt</td><td>72.694.006</td><td></td></tr><tr><td>분석 저울</td><td>Mettler Toledo</td><td>XSE 105DU</td><td></td></tr><tr><td>계량 보트</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-735-743</td><td></td></tr><tr><td>15ml 원뿔형 튜브</td><td>USA Scientific</td><td>1475-0501</td><td></td></tr><tr><td>Omni Sonic Ruptor 초음파 균질화 기</td><td>Omni International</td><td>18-000-115</td><td></td></tr><tr><td>초음파 균질화 기 용 마이크로 팁</td><td>Omni International</td><td>OR-T-156</td><td></td></tr><tr><td>2-Propanol</td><td>Fisher Scientific</td><td>A451</td><td></td></tr><tr><td>노이즈 캔슬링 귀마개</td><td>Fisher Scientific</td><td>19-145-412</td><td></td></tr><tr><td>Kimwipes</td><td>Fisher Scientific</td><td>S47299</td><td></td></tr><tr><td>1.5 ml 튜브</td><td>USA Scientific</td><td><a href="http://www.usascientific.com/Seal-Rite-1.5-ml-tube-sterile.aspx">1615-5510</a></td><td></td></tr><tr><td>마이크로 원심분리기&nbsp;</td><td>Eppendorf</td><td>5424 000.215</td><td></td></tr><tr><td>DPBS</td><td>Life Technologies</td><td>14190-136</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Life Technologies</td><td>11965-084</td><td></td></tr><tr><td>소 태아 혈청</td><td>HyClone</td><td>SH30071.03</td><td></td></tr><tr><td>페니실린-스트렙토마이신</td><td>Life Technologies</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>GlutaMax</td><td>Life Technologies</td><td>35050-061</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA</td><td>Life Technologies</td><td>25300-054</td><td></td></tr><tr><td>50ml 원뿔형 튜브</td><td>Phoenix Research</td><td>SS-PH15</td><td></td></tr><tr><td>25ml 시약 리소스</td><td>VWR</td><td>41428-954</td><td></td></tr><tr><td>다중 채널 피펫</td><td>Fisher Scientific</td><td>TI13-690-049</td><td></td></tr><tr><td>96 웰 플랫 바닥 플레이트</td><td>Corning</td><td>3603</td><td></td></tr><tr><td>Opti-MEM</td><td>Life Technologies</td><td>31985-070</td><td></td></tr><tr><td>리포펙타민 2000</td><td>Invitrogen</td><td>11668019</td><td></td></tr><tr><td>96 웰 라운드 바닥 플레이트</td><td>Corning</td><td>3788</td><td></td></tr><tr><td>16% 파라포름알데히드</td><td>전자 현미경 과학</td><td>RT 15710</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>시그마-알드리치</td><td>P5493</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>시그마-알드리치</td><td>ED2SS</td><td></td></tr><tr><td>HBSS</td><td>Life Technologies</td><td>14185-052</td><td></td></tr><tr><td>Sorvall ST 40 원심분리기</td><td>Thermo Scientific</td><td>75004509</td><td></td></tr><tr><td>BIOLiner 스윙 버킷 로터</td><td>Thermo Scientific</td><td>75003796</td><td></td></tr><tr><td>혈구계</td><td>VWR</td><td>15170-172</td><td></td></tr><tr><td>MACSQuant VYB Flow Cytomter</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-096-116</td><td></td></tr><tr><td>Chill 96 랙</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-094-459</td><td></td></tr><tr><td>Flow Jo 분석 소프트웨어</td><td>Flow Jo</td><td></td><td></td></tr><tr><td>20 &mu; l 피펫 팁</td><td>Rainin</td><td>GPS-L10</td><td></td></tr><tr><td>200 &mu; l 피펫 팁</td><td>Rainin</td><td>GPS-250</td><td></td></tr><tr><td>1 ml 피펫 팁</td><td>Rainin</td><td>GPS-1000</td><td></td></tr><tr><td>200 &mu; l 피펫 팁</td><td>USA Scientific</td><td>1111-1800</td><td></td></tr><tr><td>5 ml 혈청학 피펫</td><td>Phoenix Research</td><td>SPG-606180</td><td></td></tr><tr><td>10 ml 혈청학 피펫</td><td>Phoenix Research</td><td>SPG-607180</td><td></td></tr><tr><td>25 ml 혈청학 피펫</td><td>Phoenix Research</td><td>SPG-760180</td><td></td></tr></tbody></table>

fret 유동 세포 계측법과 proteopathic의 시드 활동의 민감한 검출

Sensitive Detection of Proteopathic Seeding Activity with FRET Flow Cytometry

알츠하이머병 및 관련 타우병증을 포함한 여러 신경퇴행성 질환에서 병리학의 시작 및 진행을 위한 메커니즘으로 독성 단백질 응집체 또는 단백질요법 씨앗의 세포 간 증식을 지지하는 증거가 증가하고 있습니다. 질병 진행에서 타우 종자(tau seed)가 잠재적으로 중요한 역할을 할 수 있다는 점은 생물학적 시료에서 파종 활성을 쉽게 검출할 수 있는 민감한 분석법의 필요성을 강력하게 뒷받침합니다. 
형광 공명 에너지 전달(FRET)의 특이성, 유세포 분석의 민감도 및 단클론 세포주의 안정성을 결합하여 초고감도 시딩 어세이가 설계되었으며 인간 및 마우스 뇌 균질체를 포함한 재조합 또는 생물학적 샘플의 시드 검출과 호환됩니다. 이 분석은 단백질 응집 시 FRET 신호를 생성하는 CFP 또는 YFP에 융합된 질병 관련 P301S 돌연변이를 품고 있는 tau의 응집이 잦은 반복 도메인(RD)을 안정적으로 발현하는 단클론 HEK 293T 세포를 사용합니다. 단백질요법 타우 씨앗(다른 단백질은 제외)을 바이오센서 세포로 흡수하면 RD-CFP 및 RD-YFP의 응집이 촉진되며, 유세포 분석은 이 응집 유도 FRET를 민감하고 정량적으로 모니터링합니다. 이 분석은 재조합 타우 종자의 펨토몰라 농도(단량체 등가물)를 검출하고, 3배에 걸친 동적 범위를 가지며, 타우오병증 형질전환 마우스 및 인간 타우오병증 피험자의 뇌 균질체와 호환됩니다. 약간의 변형으로, 분석실험은 또한 α-synuclein과 같은 다른 proteopathic seed의 파종 활성을 검출할 수 있으며, 또한 1차 신경 세포 배양과 호환됩니다. FRET 유세포 분석의 용이성, 민감도 및 광범위한 적용 가능성으로 인해 광범위한 단백질 응집 장애를 연구하는 데 유용합니다.

FRET 유동 세포 계측법에 민감한, 양적, 재조합 또는 생물학적 시료에서 파종 작업을 신속하게 검출 할 수 있습니다. 분석 설치가 용이 한 것입니다 : 타우-RD-CFP / YFP을 표현하는 단일 클론 유래 안정적인 세포주는 24 ~ 48 시간 동안 배양, 종자 물질로 형질 도입 및 분석 (그림 1A) 유동 세포 계측법의 대상이된다. 씨의 부재에서, 바이오 센서 셀 가용성, 단량체 형태 (도 1b) 타우를 유지한다. 종자의 존재하에 그러나, 바이오 센서는 유동 세포 계측법으로 셀당 기초 FRET 검출 응답을 생성하는, 응집 된 상태 (도 1C) 타우로 변환한다. 정량적 인 평가는 바이오 센서 셀 시드 물질의 펨토 몰 농도에 반응하고 시딩 활성을 효과적으로 세 오더의 크기 (도 1D)에 걸쳐 측정 될 수 있다는 것을 보여준다. 게이팅 파라미터 (TR)의 검...

단백질 응집체 또는 단백질 요법 씨앗의 세포 간 이동은 신경 퇴행성 질환에서 병리학의 진행의 기초가 될 수 있습니다. 여기에서는 재조합 또는 생물학적 샘플에서 시딩 활성을 특이적이고 민감하게 검출할 수 있는 새로운 FRET 유세포 분석 분석에 대해 설명합니다.

FRET 유동 세포 계측법과 Proteopathic의 시드 활동의 민감한 검출

Increasing evidence supports transcellular propagation of toxic protein aggregates, or proteopathic seeds, as a mechanism for the initiation and ...

이 절차의 전반적인 목적은 재조합 또는 생물학적 기원의 단백질 병성 시딩 활성을 검출하여, 단백질, 응집체 및 시료를 민감하게 검출하는 것입니다. 이 방법은 신경퇴행성 질환 분야의 핵심적인 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 예를 들어, 질병 동물 모델에서 치료적 개입 이후의 시딩 활성 변화를 어떻게 정량적으로 평가할 수 있을 것인가와 같은 질문입니다.이 기술의 장점은 낮은 수준의 단백질 응집체에 대한 높은 특이성입니다. 또한 매우 뛰어난 특이성과 사용 편의성, 그리고 높은 처리량을 자랑합니다. 오늘 이 실험 절차의 시연은 저와 공동 저자인 Brandon Holmes가 진행하겠습니다.생물학적 시드 물질을 준비하려면 먼저 일회용 웨이 보트(whey boat)에 냉동 뇌 조직의 무게를 잽니다. 그다음 조직을 원심분리 튜브(conical tube)로 옮기고, 최종 용액의 부피가 10%가 되도록 얼음처럼 차가운 균질화 완충액을 추가한 후 샘플을 얼음이 담긴 저온실로 옮깁니다. 이어서 프로브의 표시기를 적절한 설정으로 조절하고 프로브의 측면과 바닥을 헹굽니다.안내된 대로 지시약 팁을 세 번 세척하며, 각 용액 사이마다 프로브를 닦아냅니다. 프로브가 준비되면, 팁을 한 샘플의 균질화 완충액에 담그고 총 25회의 펄스를 전달하여 초음파 처리를 시작합니다. 조직이 완전히 현탁되면, 균질액을 원심 분리하여 상층액을 깨끗한 튜브로 옮깁니다.구개부에 무리가 가지 않도록 주의하십시오. 다양한 다른 균질화 기술을 사용할 수 있지만, 생물학적 시료에서 소량의 Protio pathic 종자를 분리하는 데는 프로베이션(probation) 방식이 더 우수합니다. 기계적 해리를 통해 조직을 일관되고 효율적으로 분해하여 이후 종자를 추출할 수 있습니다.그 다음 상층액을 분주하고 용해물을 -80 °C에서 보관하십시오. 멸균 조건에서 바이오센서 세포를 재배양하려면, 각 세포주를 따뜻한 PBS로 세척한 후 trypsin EDTA로 3분간 배양하십시오. 세포가 탈착되면 따뜻한 배양 배지로 반응을 중단시키고 즉시 세포를 원심분리관으로 옮기십시오.세포 현탁액을 원심분리하고, 펠렛을 신선한 배지에 현탁합니다. 그런 다음 세포 수를 측정하고, 배지 13 milliliters당 3,500,000개의 세포가 포함되도록 마스터 믹스 세포 희석액을 조제합니다. 멀티 채널 피펫을 사용하여 세포 130 microliters를 조직 배양 처리된 평저 96웰 플레이트의 각 웰에 천천히 분주하며, 이때 피펫 팁이 플레이트 바닥에 닿지 않도록 웰의 중앙에 위치시켜 주의 깊게 처리합니다.세포를 플레이팅한 후, 상온에서 10분 동안 그대로 두어 안정화시킨 다음, 37 °C, 5% carbon dioxide 및 80% 이상의 relative humidity 조건의 배양기에서 하룻밤 동안 배양합니다. 다음 날 바이오센서 세포의 밀도가 60~65% confluent 상태가 되면, reduced serum medium, liposome reagent, biological seed source를 혼합하여 transduction complexes를 제조합니다. 그 다음, 각 바이오센서 well의 벽면을 따라 20 µL의 transduction complex를 조심스럽게 피펫팅하여 넣고, 수확 전까지 처리된 세포를 배양기에 넣어 24~48시간 동안 추가로 배양합니다.처리되지 않은 세포는 확산된 형광만을 나타냅니다. 그러나 tau seed 물질을 처리한 세포는 밝은 응집체를 나타냅니다. 1~2일 후 세포를 수확하기 위해, 세포 배양액을 50 µL의 trypsin EDTA로 교체하여 반응을 중단시킵니다. 냉각된 배양액 150 µL로 5분간 처리한 후, 세포를 즉시 96-well round bottom plate로 옮겨 세포를 펠렛화하고, 펠렛이 흐트러지지 않게 상층액을 흡입하여 제거한 다음, 2% paraformaldehyde 50 µL에 세포를 부드럽지만 철저하게 재현탁하여 10분간 방치합니다.그런 다음 세포를 다시 원심 분리하고, 가능한 한 빨리 냉각된 유세포 분석 버퍼 200 µL에 펠릿을 재부유합니다. 고정 후, 플레이트를 fret 호환 유세포 분석기에 로드하고 변이 플롯에 따라 side scatter area 대 forward scatter area 그래프를 생성합니다. 다음으로, 셀 라인 1을 실행하면서 세포군이 왼쪽 하단 사분면에 위치할 때까지 side scatter 및 forward scatter 전압을 조정합니다.그 다음 다각형 도구를 사용하여 세포 집단을 P1 게이트로 정의합니다. 이제 전방 산란광 높이(forward scatter height) 대 전방 산란광 면적(forward scatter area)의 이변량 플롯(bivariant plot)을 만들고 P1 게이트를 적용합니다. 다음으로 단일 세포를 P2 게이트로 정의하고 각각 하나의 히스토그램을 생성합니다.C-F-P-Y-F-P 및 fret 필터의 경우, 보정을 위해 C-F-P-Y-F-P 및 fret 필터 각각에 대해 두 세 개의 서로 다른 히스토그램에 게이트 P를 적용하십시오. 셀 라인 1 현탁액 30 µL를 셀 라인 2 현탁액 200 µL에 첨가합니다. 그런 다음 기기 설정 아이콘을 클릭하고 보정 탭을 선택한 뒤, 매트릭스를 체크하여 보정 표를 엽니다.fret 영역 대 CFP 영역의 변량 플롯(variate plot)을 생성하고 게이트 P2를 적용합니다. 그런 다음 세포주 1과 세포주 2를 실행한 상태에서 쿼드런트 아이콘을 클릭하고, 형광 음성 및 양성 집단이 하단 두 쿼드런트에 의해 분리되도록 쿼드런트를 그립니다. 이제 LL3 및 LR3 게이트의 fret 중앙 형광 강도(MFI)를 표시하는 통계 표를 생성하고, LL3와 LR3 간의 fret 신호 MFI가 거의 동일해질 때까지 보정 매트릭스에서 fret 파라미터를 조정합니다.다음으로, 사분면이 표시된 변수 플롯을 통해 YFP 면적 대비 CFP 면적 그래프를 생성합니다. 각 사분면 사이에서 YFP 신호의 MFI가 거의 동일해질 때까지 보정 행렬(compensation matrix)의 YFP 파라미터를 조정합니다. 이는 이전에 FRET 유세포 분석(FRET flow cytometry)에 대해 설명한 것과 유사한 과정입니다.주요 형광 스필오버(spillover)는 CFP가 FRET 검출 채널로 방출될 때 발생하며, 이는 단일 색상 양성 대조군 세포를 이용한 형광 보정을 통해 교정할 수 있습니다. 모든 게이트 설정과 CFP 신호 보정이 완료되면, 분석하고자 하는 웰을 선택하고 플레이트의 나머지 부분을 실행하여 데이터를 분석합니다. 먼저, 유세포 분석 설정 시와 동일한 파라미터를 사용하여 세포 및 단일 세포를 정의합니다.다음으로, 세포주 3을 사용하여 YFP 단일 양성 세포를 fret 대 YFP 변이 도표로 플롯합니다. YFP 스필오버가 fret 필터로 유입되는 것을 배제하기 위해, fret 양성 세포군으로 이어지는 기울기를 따라 그리고 그로부터 멀어지도록 다각형 게이트를 그려 가짜 fret 게이트(false fret gait)를 정의합니다. 모든 샘플에 가짜 fret 게이트를 적용한 후, 빈 리포좀 처리된 C-F-P-Y-F-P 세포를 fret 대 CFP 변이 도표로 플롯하고, 세포군의 기울기를 따라 위쪽과 왼쪽으로 세포군에서 멀어지도록 확장되는 다각형 게이트를 설정합니다.이 게이트로 이동하는 모든 이벤트는 FRET 양성으로 간주되며, 세포의 백분율은 처리 시 사용된 시드 타이터(seed titer)와 상관관계를 갖게 됩니다. 마지막으로, FRET 양성 백분율과 FRET 양성 세포의 중앙값 형광 강도(MFI)를 포함하여 관심 있는 분석 파라미터를 기록합니다. 그런 다음 양성 백분율과 MFI의 곱을 측정하여 통합 FRET 밀도를 수동으로 계산합니다.tau 응집체 또는 시드가 없는 상태에서 tau는 일관된 확산형 및 fret 음성 형광 신호로 나타나는 것과 같이 가용성 단량체 상태로 유지됩니다. 바이오센서 세포에 tau 시드를 도입하면 내인성 tau가 응집된 fret 양성 상태로 전환되어 fret 정량이 가능해집니다. 유세포 분석을 통해 재조합 tau의 펨토몰 농도로도 검출이 충분함을 확인했습니다.다양한 연령대에서 희생된 타우병증(tauopathy) 마우스의 뇌줄기 조직은 1.5개월령의 어린 개체부터 동물 간에 일관된 시딩 활성(seeding activity) 검출을 보여주는 대표적인 뇌 영역으로 활용됩니다. 본 실험에서 알츠하이머병 환자의 뇌 균질액은 강력한 시딩 활성을 나타낸 반면, 연령이 일치하는 대조군 및 헌팅턴병 환자의 샘플에서는 이러한 활성이 나타나지 않아 타우 응집체에 대한 분석 특이성이 입증되었습니다. 타우 CFP 및 타우 YFP 렌티바이러스 구조체가 도입된 처리 전 일차 신경세포 배양물은 재조합 타우 시드 처리 시 확산된 형광 신호를 나타냈습니다.하지만, 내인성 tau는 리포좀 매개 형질전환이 없는 상태에서도 fret 유세포 분석법으로 검출 가능한 거대 응집체를 형성합니다. 헤파린과 같이 tau 섭취를 억제하는 약물로 시드 소스를 사전 배양하고 리포좀 없이 처리하면, 재조합 fis 및 tau병증 마우스 뇌 샘플 모두에 포함된 시딩 활성을 차단할 수 있습니다. 숙달되면.이 기술은 3일 동안 완료할 수 있으며, 매일 1~2시간의 실험대 작업만 필요합니다. 이 절차를 시도할 때, 특정 단계에서는 자체적인 최적화가 필요하다는 점을 기억하는 것이 중요합니다. 예를 들어, 다양한 생물학적 기원의 프로토파틱 시드(protio pathic seeds)로부터 유효 역가를 결정할 때가 이에 해당합니다.이 영상을 시청한 후에는 재조합 및 생물학적 소스에서 유래한 단백질 병적 시딩 활성을 검출하기 위한 FRET 유세포 분석 실험의 설정, 수행 및 분석 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

sensitive-detection-proteopathic-seeding-activity-with-fret-flow

Research

연구

JoVE Journal

Bioengineering

생명공학

유전 공학 또는 큰 샘플 크기를 요구하지 않고, 고유의 단백질 - 단백질 상호 작용의 구분, 강력하고, 생화학 평가를 허용하는 IP - FCM 방식은 제공됩니다.

IP - FCM : 유동세포계측법에 의해 감지 Immunoprecipitation

이 비디오는 in vivo adjuvant-induced cytotoxic T lymphocyte 또는 CTL 생산을 모니터링하는 면역학적 방법을 보여줍니다. 마우스에는 유전자 조작된 증식성 염료 염색 공여체 CD8+ T 림프구가 사전 주입됩니다. 보조제와 함께 오브알부민을 피하 주사하면 세포독성 CD8+ T 림프구가 생성되며, 이는 면역염색 및 유세포 분석을 통해 수확 후 확인됩니다.

보조 매개 세포독성 T 림프구 생성을 모니터링하기 위한 면역학적 기술

이 비디오는 생물학적 샘플에서 분리된 단백질 응집체의 파종 활성을 감지하기 위한 FRET(Fluorescence Resonance Energy Transfer) 유세포 분석 분석을 보여줍니다. 타우 리포터 단백질을 발현하는 포유류 세포는 타우 씨앗을 함유한 리포좀 형질도입 복합체와 함께 배양됩니다. 이 씨앗은 리포터 단백질의 응집을 매개하여 유세포 분석기에서 FRET 양성 신호를 생성합니다.

Tau-Seed 유도 Reporter 단백질 응집을 검출하기 위한 FRET 유세포 분석 기법

여기서 설명하는 것은 감지하고 유세포 짐승 조직으로부터 분리 및 분석 미토콘드리아 immunolabeling 의해 미토콘드리아 외막 단백질을 정량하는 방법이다. 이 방법은 미토콘드리아 개체군의 기능적 측면을 평가하기 위해 확장 될 수있다.

고립 된 미토콘드리아의 유동 세포 계측법에 의해 외부 막 단백질의 면역

많은 다른 방법은 유동 세포 계측법 (FCM)를 사용하여 세포 외 소체 (전기 자동차)의 측정을 위해 존재한다. 사용하기에 가장 적절한 방법을 결정할 때 여러 측면이 고려되어야한다. 측정 전기 자동차에 대한 두 프로토콜은 개별 감지 또는 비드 기반의 접근 방식을 사용하여,되게됩니다.

유동 세포 계측법을 사용하여 세포 외 소포의 분석을위한 기술

침입하는 대 식세포가 순환하는 전구체로부터 성인 조직으로 지속적으로 모집되는 동안, 상주하는 대 식세포는 발달 중에 그들의 조직을 뿌리고, 전구체로부터의 더 이상의 입력없이 유지된다. 상주 대 식세포의 전구 세포는 최근 확인되었다. 여기, 우리는 상주 macrophage progenitors의 유전 적 운명 매핑 방법을 제시한다.

Flow Cytometry에 의한 마우스 태아의 적혈구 전구 세포 (Erythromyeloid Progenitors)와 그 자손의 동정

여기에 제시된 것은 염료 희석을 이용한 항원 단백질 또는 펩티드에 반응하여 증식CD4+ T 세포를 측정하기 위한 프로토콜이다. 이러한 분석종은 희귀 항원 특이적 T 세포에 특히 민감하며 항원 특이적 세포의 복제를 용이하게 하기 위해 변형될 수 있다.

카르복시플루아세인 수치니미딜 에스테르를 이용한 증식 인간 항원 특이적 CD4+ T 세포의 정량화

본 문서는 S. 세레비시아 및 HEK293T 세포 모두에서 단백질 자가 조립을 정량화하는 FRET 기반 유동 세포 분석 프로토콜에 대해 설명합니다.

유세포분석으로 생체내 단백질 자가 조립 검출 및 특성화

항암 앱타머 개발에 필요한 단계는 표적에 대한 결합을 테스트하는 것입니다. 우리는 이 결합을 연구하기 위한 유세포 분석 기반 분석을 시연하며, 특정 단백질에 대해 음성 대조군 압타머와 양성 또는 음성 암세포를 포함하는 것의 중요성을 강조합니다.

항암 압타머의 선택성 및 특이성을 평가하기 위한 유세포분석 기반 세포 표면 단백질 결합 분석

이 프로토콜은 인간 호중구에서 β2 인테그린 활성화를 억제하는 저분자 약물을 식별하기 위한 유세포 분석 기반의 고처리량 스크리닝 방법을 설명합니다.

인테그린 억제 약물 스크리닝을 위한 유세포 분석 기반 고처리량 기법

여기에서는 인류 세포 분석 기반 방법을 사용하여 마우스에 이종 이식하고 골수 흡인에서 얻은 급성 인간 골수성 백혈병 세포에서 mTORC1, JAK/STAT5 및 MAPK 경로의 다운스트림 신호를 분석합니다. p-STAT5, p-4EBP1, p-RPS6 및 p-ERK1/2 수준은 고감도의 차세대 스펙트럼 유세포 분석기를 사용하여 동시에 측정됩니다.

급성 골수성 백혈병 환자 유래 이종이이식의 세포내 인류 세포분석

학습하세요 FRET 유동 세포 계측법을 이용하여 프로테오패틱 시드 활동을 민감하게 검출하는 방법을. 이 기술은 신경퇴행성 질환 연구와 치료 효과 평가에 활용됩니다.

FRET 유동 세포 계측법과 Proteopathic의 시드 활동의 민감한 검출

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