Name: 신경의 분석을위한 성인 마우스 V-SVZ에서 세포의 안정적이고 효율적인 유전자 변형 줄기 세포 자율 및 비 자치 효과 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-02-17T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 48 s
Description: 배우세요 성인 마우스 V-SVZ에서 렌티바이러스 입자를 이용한 신경 줄기세포의 장기 유전자 변형 방법입니다. 이 기술은 세포 자율적 및 비자율적 효과를 분석하여 신경 발생 틈새의 상호작용을 연구하는 데 활용됩니다.

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우리는 MJ 팔롭의 도움말 및 대학교 드 발렌시아의 SCSIE의 기술 지원을 인정합니다. 우리는 또한 도움이 의견과 원고의 논의 안토니아 Follenzi 감사합니다. 그 산탄데르 대학교 글로벌 사업부를 통해 방코 산탄데르에 의해 재단이 보틴,에 의해 Generalitat 발렌시아 (Programa PROMETEO, ACOMP 및 ISIC)과 Ministerio 드 Economìa y를 Competitividad에서 보조금을 지원하는 경우 (MINECO : SAF2011-23331, CIBERNED 및 RETIC 수컷 매) . 이 작품은 또한 (260511- MINECO과 유럽 연구위원회 (ERC) 2012-STG에서 BFU2010-21823 및 RETIC 수컷 매 보조금 지원 PD-HUMMODEL AC BM-P)이다. MINECO의 스페인 FPI의 교제를받는 사람이다.

윤리 선언문 :이 프로토콜은 유럽 지침 63분의 2,010 / EU 준수 발렌시아 대학의 동물 관리 지침을 따른다. 연구를 표시 생체에 대한 LV의 1 세대 (그림 1a 참조) 주의 : 여기에 설명 된 절차에 따라서 생물 학적 후드에서 다음의 모든 절차를 수행, 바이오 안전성 레벨 2입니다. 이 연구 담당자가 적절하게 자격을 갖춘 모든 절차 훈련 있는지 확인. 가운, 이중 장갑과 적절한 눈 보호를 포함한 개인 보호 장비를 착용 할 것. 마지막으로, 철저하게 (70 % 에탄올, 10 % 표백제 및 / 또는 고압 증기 멸균으로 닦아) 승인 된 시설의 소독 방법에 따라 바이러스에 접촉되었을 수있는 모든 도구와 표면 오염을 제거. <ol><li> 인간 배아 신장 293T 세포에 LV의 생산 <ol><li> 형질 전환을위한 순수한 DNA를 준비하여이 프로토콜을 시작합니다. 준비 및 이중 협동 학습 대학원 각 플라스미드를 정제ient 원심 분리 또는 독소없는 DNA를 산출 다른 상업적으로 이용 가능한 열 방법. 이 프로토콜에서 우리는 전송 벡터 플라스미드 pRRL-SIN-PPT.PGK.EGFP.Wpre을 사용했다. 추천 코어 포장 플라스미드 pMDLg / pRRE을하고 pRSV.REV하고 플라스미드 pMD2G 13,18,19 봉투. </li><li> 스물 네 시간 형질 감염 전에, Iscove 개변 둘 베코 배지 (IMDM)에서 플레이트 (5) × 106 293T 세포에 대해 약 1/4 1/3 합류 배양을 얻기 위해 10cm 플라스틱 접시 (자재 표 참조) 형질 전환. 5~7%의 CO 2 분위기하에 가습 인큐베이터에서 37 ℃에서 인큐베이션. </li><li> 형질 전환 전에 새로운 배지 2 시간과 매체를 교체합니다. </li><li> 멸균 1.5 ml의 microcentrifuge 관 믹스에서 10 전이 벡터 플라스미드의 μg의 pRSV.REV의 2.5 μg의 및 pMDLg / pRRE을 포장 플라스미드 5 μg의, 3.5 &amp;로 (유전자의 cDNA를 또는 shRNA를을 포함 배달합니다) #181; 봉투 플라스미드 pMD2G의 g. 0.1X TE 완충액 450 μL의 최종 부피 플라스미드 용액 메이크업 / 0 DH 2 (재료의 도표 참조) (2 : 1). 그런 다음 2.5 M 염화칼슘 (2) 50 μl를 추가합니다. </li><li> 최고 속도로 텍싱 동안 2 배 헤 페스 완충 생리 식염수 500 ㎕를 적가하여 침전물을 형성하는 500 ㎕의 DNA-TE-CaCl2를 혼합물 용액 (HBS를, 재료의 표 참조). </li><li> 즉시 293T 세포 침전물을 추가합니다. 부드럽게 섞어 접시를 소용돌이 친다. 인큐베이터로 세포를 반환하고 형질 전환 한 후 매체 14-16 시간을 변경합니다. </li><li> 미디어를 변경 한 후 세포 상층 액 30 시간을 수집합니다. 0.22 μm의 기공 니트로 셀룰로오스 필터를 통해 뜨는을 필터링하고 농도를 진행합니다. </li></ol></li><li> 정맥 주사의 농도 <ol><li> 2 50,000 XG (SW-28의 초 원심 분리기 로터와 19,000 RPM)에서 초 원심 분리에 의해 조절 매체에 집중30 ㎖ 폴리 프로필렌 투명한 원뿔 로터 튜브를 실온 (RT)에서 HR. 참고 : 원뿔 회 전자 튜브를 사용하여 초 원심 분리기 어댑터 (재료의 표 참조). </li><li> 경사 분리하여 상층 액을 버리고 작은 부피 (200 μL 또는 하나의 원심 분리가 수행되는 경우 이하) 포스페이트 완충 염수에 재현 탁 펠렛 (PBS; 자재 표 참조). 그런 다음 최대 피펫 약 20 배 아래로. </li><li> 현탁액을 풀 실온에서 2 시간 동안 50,000 × g으로 (SW-55 초 원심 분리기 로터와 23,000 RPM)에서 또한, 초 원심 분리에 의해 다시 집중한다. 5 ML의 공칭 볼륨과 폴리 프로필렌 투명 회 전자 튜브를 사용하여 (재료의 표 참조). </li><li> 멸균 PBS 매우 소량 (중간의 시작 양의 1/500 또는 1 / 1,000)에 최종 펠렛을 재현 탁하고 실온에서 1 시간 동안 회전 진탕 휠. 작은 분취 량 (5 ~ 20 μL) 및 F로 분할-80 ° C에서 그들을 reeze. </li><li> 폐기하기 전에 10 % 표백제와 모든 빈 튜브를 취급합니다. </li></ol></li><li> 렌티 바이러스 적정 유동 세포 계측법을 사용하여 <ol><li> 전날, 플레이트 (2) 둘 베코의 변형 이글의 중간 (DMEM) 용액에 6 잘 조직 배양 플레이트에 웰 당 5 × 10 4 헬라 세포는 (재료의 표 참조). 24 시간 동안 5~7% CO 2 분위기하에 가습 인큐베이터에서 37 ℃에서 인큐베이션. </li><li> 적정의 날, 바이러스 주식의 분취 량을 해동과 DMEM에서 10-8로 10-3에서 연속 희석을 준비합니다. <ol><li> 이렇게하려면 24 웰 플레이트를 가지고 다음 우물에 제 1 웰에 DMEM 2 ㎖ 및 1.8 ml에 추가 할 수 있습니다. 다음 (: 1,000 10-3 1의 최종 희석) 제 1 웰에 집중 바이러스 주식의 2 μl를 추가합니다. </li><li> 완전히 용액 변경 팁 혼합 10-3 희석액 200 ㎕를 전송 수회 피펫 팅 한 후두 번째 잘합니다. 10-8 희석이 될 때까지 다음 우물에 직렬 절차를 반복합니다. </li></ol></li><li> 인큐베이터에서 전날 도금 헬라 세포를 가져 가라. 조심스럽게 우물에서 매체를 제거합니다. 헬라 세포 함유 우물 8 ㎎ / ㎖ hexadimethrine 브로마이드 1 μL와 함께 각각의 바이러스 희석 한 ML을 추가합니다. 부드럽게 섞어 접시를 소용돌이 친다. 참고 Hexadimethrine 브로마이드 배양 세포에 바이러스 흡착을 증가 첨가된다. </li><li> 인큐베이터로 세포를 반환하고, 감염이 72 시간 동안 진행 할 수 있습니다. 그 후, 매체를 제거 PBS로 한번 세포를 씻어 트립신 EDTA 200 μl를 추가 각도 (재료의 표 참조). </li><li> 37 ° C에서 5 분 후, 튜브 유동 세포 계측법에 각 웰 수확 세포에 PBS 2 ㎖를 추가합니다. </li><li> RT에서 5 분 300 X g에서 원심 분리기와 뜨는을 대기음. </li><li> 고정 soluti 1 ㎖로 펠렛을 재현 탁(PBS에 1 % 포름 알데히드 전자 현미경 등급 2 % 소 태아 혈청)을 다음 튜브 소용돌이. </li><li> 15 mW의 전력에서 488 나노 아르곤 ionlaser를 사용하여 사이토 흐름 세포를 분석 할 수 있습니다. </li><li> 표준 구성 기기 설정 : GFP에 대한 미래 분산 (FS), 측면 산란 (SS) 및 형광 (40분의 525 ㎚). SS 도트 플롯 대 FS의 선택 세포 인구의 게이팅 셀 단위 및 파편을 제외합니다. 로그 스케일에서 형광을 수집합니다. 각 샘플에서 GFP + 세포의 수를 계산한다. </li><li> 다음 식을 이용하여 벡터 역가를 계산한다 : X 희석 인자 감염된 세포 (DF)의 %의 GFP + / 100에서 x = 열 변환 유닛 (TU) / ml로. </li></ol></li></ol><img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/53282/53282fig1.jpg" /> 도 1 : 절차의 서로 다른 부분의 도식 표현 t의 (a) 1 부.그 프로토콜 : 적절한 플라스미드 HEK293T 세포의 형질 감염으로부터 생체 표지 연구 정맥 주사의 발생이 표시된 식을 이용하여 유세포 바이러스 역가의 결정에 정맥 주사를 생성한다. 플라스미드 및 원심 로터의 이름 표시된다. (b와 c) 프로토콜의 제 2 부 : 정맥 주사의 정위 주입. &quot;B&quot;는 버니어 스케일 정위 기기의 일부이고 정밀한 측정을 위해 제공하는 장치의 일례를 도시한다. 예를 들어, 화살표는 4.23 cm를 나타낸다. 버니어 스케일 ((ML) 메디 오 - 측면, 그리고 (왼쪽) 최고 뷰와 같이 배측 - 복부 (DV) 축과 시상 섹션의 안테 - 후방에서 좌표 (AP)를 마우스 오른쪽 결정하는 데 사용됩니다 ) 뇌의. &quot;c&quot;를 시상 및 관상 봉합의 교차점으로 브레 그마의 위치를​​ 나타냅니다. 정맥 주사는 주사기를 사용하여 주입된다. (d)에 도식 도면에서는 뇌 난을 보여주는분석을 위해 처리 s의. 두 반구는 분할되어 각각 두 개의 블록으로 분할된다. (; 참조 Paxinos&#39; 아틀라스를 참조 브레 그마 2.46 mm) 이전 기지국을 포함하는 블록 &quot;은&quot;즉시 telencephalon와 OB 접합에 후부 AP 수준에서 관상 절단에 의해 생성된다. 블록 &quot;B&quot;가 두 관상 인하, 레벨에 하나의 단지 (1.7 mm 브레 그마) 뇌량의 가장 주동이의 측면에 전방 두 측면 심실의 접합의 수준에서 두 번째에 의해 생성된다 (브레 그마 -0.22 mm). GL, 사구체 층; GCL, 과립제 전지 층; 일, 줄무늬; CC, 뇌량; 교류, 전방 접합면; 정맥 주사, 측면 뇌실. V-SVZ / 줄무늬 테두리로 또는 측면 심실로 LV 2. 정위 주입은 (그림 1B) <ol><li> 예비 <ol><li> 플런저 70 % 에탄올로 바늘 본체를 분무하여 33 게이지 바늘을 5 μL 용량 주사기 소독모든 방법을 꺼냈다. 반복적으로 1.5 ml의 microcentrifuge 관에서 에탄올을 기음과 여러 번 모든 방법을 밖으로 배출하고, 그 후 멸균 수로 철저하게 주사기를 씻어. 문화 후드에 안전하게 옆으로 주사기를 놓고는 건조 할 수 있습니다. </li><li> 이 과정에서 모든 폐기물의 침수에 적합한 볼륨에 10 % 표백제와 생물 학적 폐기물 용기를 준비합니다 (일반적으로 500ml의 용기에 200 ㎖). </li><li> 준비하고 물을 밀봉 플라스틱 저장 부대를 작성하고 37 ° C로 예열하여 37 ° C의 물침대를 예열. 이 마우스는 주입 다음 복구 할 수 있습니다. </li><li> 주사를 시작하기 전에 C의 냉동고에 보관 -80 °에서 1 시간을 바이러스 주식을 제거하고 실온에서 회전 바퀴에 병을 놓습니다. 해동 후, 주사의 시간 동안 얼음에 바이러스 재고를 유지한다. LV의 정위 주입하기 전에, 10 (6) TU에 집중 바이러스 주식을 희석 / 문화 후드에 PBS를 사용 μL. </li><li> 70 % 에탄올로 수술을 수행하는 선택된 영역 살균. </li></ol></li><li> LV의 미세 주입 <ol><li> 선택 및 수술 (메스, 드릴, 작은 핀셋)에 필요한 도구를 소독. </li><li> 케타민과 메데 토미의 동물 - 감독 혼합물을 주입 복강 (IP)에 의해 6 ~ 8 주령의 마우스를 마취. 각각의 동물을 체중 및 50-75 mg의 케타민 및 마우스의 체중 kg 당 0.5 mg을 메데 토미 (케타민 100-125 μL 해결 / 메데 토미 마우스 당 용액 작업) 각 선량. </li><li> 발가락, 꼬리 나 귀를 곤란과 동물이 어떤 반응을 보여줍니다하도록하여 마취 비행기를 평가합니다. </li><li> 마우스를 마취되면, 수술 - 후 통증을 최소화하기 위해 마우스 체중 kg 당 0.4-0.5 mg의 최종 투여 량 부토 르파 놀 피하 주사. </li><li> 귀 사이의 영역을 면도 나 요오드 등 iodopovidone 또는 70 % 에탄올을 사용하여 피부를 소독. 멸균면을 사용하여 정화-tipped 어플리케이터. 이 저체온증을 악화시킬 수 있으므로 과도하게 동물을 적시하지 않도록주의. </li><li> 정위 프레임에 발생하기 쉬운 위치에 동물을 배치하고주의 깊게 귀 바, 장치의 미각 지원을 사용하여 머리를 고정합니다. 37 ° C에서 가열 패드 세트와 마우스를 유지하고 눈 안과 윤활제를 적용합니다. </li><li> 종 메스를 이용하여 두피에 1cm 긴 절개를 부드럽게 미세 핀셋을 이용하여 두개골을 노출시키기 위해 피부를 철회. </li><li> 조심스럽게 멸균 면봉와 뼈 표면을 청소합니다. 남아있는 조직의 노출 된 두개골 뼈를 정화. </li><li> 주사기 홀더를 사용하여 정위 장치의 멸균 주사기를 탑재합니다. </li><li> 주사기 바늘의 끝 부분이 정수리, 시상 (종 방향 및 내측) 봉합사는 수직 관상 봉합에 의해 교차되는 결합 점에 위치 할 때까지 (Figur을 주사기 홀더 X, Y 및 Z 축 이동전자 1B). 배측 - 복부 (DV) 축 &quot;제로&quot;위치는 브레 그마의 두개골 표면에 있는지 확인합니다. </li><li> X 및 Y 좌표를 대상으로 주사기를 이동 (표 1 및도 1B 참조). </li></ol></li></ol><table fo:keep-together.within-page="1"><tbody><tr><td rowspan="2"> 주사의 지역 </td><td colspan="3"> 좌표 </td></tr><tr><td> 안테 - 후부 (AP) </td><td> 메디 오 - 측면 (ML) </td><td> 배측 - 복부 (DV) </td></tr><tr><td> SEZ / 줄무늬 테두리 </td><td> 0.6 mm </td><td> 1.2 mm </td><td> -3.0 mm </td></tr><tr><td> 측면 뇌실 </td><td> -0.3 mm </td><td> 1.0 mm </td><td> -2.6 mm </td></tr></tbody></table> 표 1 : 정위는의 좌표용 돌기. AP와 ML 축, x 및 y 좌표의 경우는 브레 그마에서 (mm)에 거리로 제공됩니다. &quot;-&quot; &quot;후방을 향해&quot;을 나타냅니다. DV는 &quot;제로&quot;좌표 정수리 점에서 두개골 표면이며 DV 좌표 다운이 시점에서 (mm)에서의 거리를 나타낸다. <ol start="12" style="margin-left: 40px;"><li> X, Y 및 Z 주석 목적지 나중에 다시 주사 부위에 올 수 있도록하기 위해 버니어 눈금 조정한다. 마크 수술 마커 펜을 사용하여 x 및 y 좌표에있는 뼈. </li><li> 작업 영역에서 멀리 주사기를 이동합니다. </li><li> 전기 드릴 신중하지 두개골에 구멍을 사용하면 뇌가 손상 될 수 있습니다. 이 뇌 표면에 손상을 줄 수 있으므로 pial 표면을 드릴하지 마십시오. </li><li> 10 6 TU / μL 바이러스 솔루션의 1 μL와 주사기를로드합니다. 선단 10 ~ 12 °의 각도가 33 게이지 경 사진 날카로운 바늘을 사용합니다. 90 ° 중앙에 주사기 바늘의 위치를제작 뇌 표면에 대하여. </li><li> 다시 주사 부위에 주사기를 이동하고 끝이 pial 표면에 닿을 때까지 아래로 이동합니다. </li><li> DV 축 좌표 Z에 주사기와 뇌를 침투. </li><li> 천천히 과도한 유체 압력 뇌 조직의 손상을 최소화하기 위해, 0.2 μL / 분의 속도로, 바이러스 현탁액을 해제. </li><li> 바이러스 현탁액의 역류를 최소화하기 위해 5 ~ 10 분 동안 기다린 후 아주 천천히 주사기를 철회. 닦아 실험실을 사용하여 주사기의 수축의 결과로 표면에 표시하고, 표백제 함유 바이오 안전성 폐기물 용기에 즉시 배치 할 수 액체의 초과를시킨다. </li><li> , 정위 세트에서 동물을 따뜻한 패드에 배치, 피부 접착제를 사용하여 상처를 닫습니다. 0.1 ~ 1.0 ㎎ / ㎏ 체중 atipamezole을 사용하여 마취 역방향. </li><li> 피하 0.1 밀리그램 당 kg 마우스 중량 매 12 시간의 마지막 투여 량을 주입 Bupenorphrine,짧은 지속 부토 르파 놀의 진통제의 투여 후 4 시간을 시작. </li><li> 따뜻한 패드 개별 새장에 동물을 배치하고 마우스가 마취에서 회복 될 때까지 긴밀하게 모니터링 할 수 있습니다. 복구 후 동물의 수화물을 돕기 위해 새장에 하이드로 겔의 한 가방을 놓습니다. </li><li> 액체 표백제 생물 학적 처리의 모든 생물 오염 된 폐기물 폐기하십시오. 흡입 및 에탄올의 배출에 의해 주사기를 청소하고 물로 씻어. 지역, 정위 세트와 표백제 및 70 % 에탄올에 사용 된 수술 재료를 소독. </li><li> 그들은 기존의 주거 시설로 전송할 수 있습니다 후 24 ~ 48 시간 동안 바이오 안전성 레벨 2 방에 격리 주입 된 쥐를 유지 </li></ol> 3. 조직 학적 분석 <ol><li> 관류, 조직 수집 및 단면 <ol><li> 깊이 메데 토미와 케타민의 수의학 - 감독 혼합물을 사용하여 쥐를 마취시키다 (t 곤란하여 마취면을 평가OES, 꼬리 나 귀), 전술 한 바와 같이. </li><li> 동일한 속도로 transcardially 17 PB 75 ml의 4 % PFA이어서 식염수 25 ㎖로 쥐를 관류. </li><li> 뇌를 추출하고 16 시간 (증가 후 고정 시간은 어떤 항원의 면역 반응을 감소시킬 수있다)에 대한 PB 차가운 4 % PFA의 10 배 볼륨에 침지하여 포스트 - 수정. PB 충분히 남아 PFA 씻으십시오. </li><li> 그림 1D의 표시 다음 뇌를 잘라 시아 노 아크릴 레이트를 사용하여 vibratome의 홀더에 결과 블록을 붙입니다. </li><li> vibratome를 사용하여 30 μm의 두께 시리얼 코로나 섹션을 수집합니다. 4 ° C에서 PB와 24 멀티 웰 플레이트의 뇌 조각을 저장합니다. 오염을 방지하기 위해 0.05 % 나트륨 아 지드 PB 용액에 첨가 할 수있다. </li></ol></li><li> 면역 조직 화학 <ol><li> 0.05 % 아 지드 화 나트륨, 1 % 글리신, 5 % 정상 염소 혈청 완충액 (PB 블로킹 부동성 섹션을 인큐베이션하고 0.1 % TritX-100) 부드러운가 흔들 플랫폼에서 진탕 실온에서 1 시간에 대한합니다. </li><li> 조심스럽게 버퍼를 차단에 방지 GFP 토끼 차 항체 (재료의 표 참조)의 적절한 희석을 추가, 피펫 차단 버퍼를 제거하고 부드러운 흔들림 4 ° C에서 48 시간 동안이 희석 조직을 품어. </li><li> 차 항체 용액을 PB로 3 회 최소 하나의 세척 매 10 분을 씻으십시오. </li><li> 차단 솔루션에 형광 접합 된 이차 항체의 적합한 희석와 자유 떠있는 부분)을 품어 (RT 부드러운 흔들림에서 1 시간 동안) 재료의 표를 참조하십시오. 배양 중에 직접 빛의 섹션을 보호합니다. </li><li> PB, 3 번에 한번 10 분간 함께 차 항체 용액을 세정하고, 5 분 동안 물에 1 ㎎ / ㎖에서 DAPI (4 &#39;, 6-diamidino -2- 페닐 인돌)을 섹션을 배양하여 조직을 Counterstain과. 두 번 빠르게 재치를 세척하여 DAPI 솔루션을 씻어시간 물. </li><li> 부드럽게 잘 페인트 브러시를 사용하여 현미경 슬라이드에 섹션을 배치합니다. 조직 위에 (자재 표 참조) 형광 제제 매체 장착 몇 방울 붓고 신중 장착 용액 정확하게 전체면에 걸쳐 분산되고, 기포가 없는지 검사 위에 커버 슬립을 놓는다. 부드럽게 매체 장착 과잉 드레인 커버 슬립을 짠다. </li><li> 장착 용액 (2-16 시간)를 마르면 때 488 nm의 레이저와 공 초점 레이저 주사 현미경으로 샘플을 분석한다. </li></ol></li></ol>

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</ol>

모든 조작은 바이오 안전성 수준이 방에서 이루어졌다. 동물 프로토콜은 발렌시아 대학의 윤리위원회의 승인과 유럽 지침 63분의 2,010 / EU 준수 모든 있었다되었다.

정맥 주사는 성인의 유전자 변형 NSCs의 16, 18에 대한 다른 바이러스 시스템에 비해 중요한 장점을 제공합니다. V-SVZ 틈새 시장에 렌티 바이러스의 정위 배달 레이블 만 세포를 대상으로 여러 세포 분열, 또는 레트로 바이러스 후 희석 등의 BrdU의 같은 다른 일반적으로 사용되는 방법의 한계를 극복 B1-NSCs을 나누어 자주 추적하는 효율적인 방법을 나타냅니다 즉, 응용 프로그램의 순간에 확산된다. 정맥 주사는 함께 아데노 바이러스와 독립적으로 순환 상태의 세포를 감염시킬 수 이것은 성인 NSCs의 16, 18과 같이, 같은 뇌실막 세포로하지주기를 수행하거나 상대적으로 정지하고, 따라서 거의 분열하지 세포에 특히 적합하다. 유전자가 안정적으로 통합 고효율 형질 도입 된 세포 및 그 자손의 형태 학적 특성을 표현할 수있게된다. NSCs의는 이웃 세포와 고도로 전문화 된 틈새에 숨겨된다등의 뇌실막 또는 혈관 세포뿐만 아니라 자신의...

뮤린 심실-뇌실 영역 (V-SVZ)는 선조체 대향 뇌실의 벽에서 매우 활성 종자 영역 인 후각 망울의 지속적인 생산 전구 세포 복제 및 분화 결과 연속 처리 (OB )의 interneurons 및 뇌량의 희소 돌기 아교 세포 (1). , 성상 세포 항원 아교 섬유 성 산성 단백질 (GFAP)을 표현하고 같은 네 스틴, Id1을 같은 세포 마커 줄기, 이러한 세포의 평생 세대는 신경 줄기 세포 (또한 B1 세포라고 NSCs을)이 지역의 존재에 의해 지원 될 것으로 보인다 및 Sox2이 2. B1 세포가 교통 전구를 증폭 전사가 Dlx2 요인 표현 (TAP) 세포 (C 세포) 생성 GFAP 발현 (말초없는 호 메오 박스 2) Ascl1 (포유류 achaete-schute 동족체 1) 그들이 야기하기 전에 신속하게 몇 번 분할 마이그레이션 neuroblasts (세포) 또는 oligodendroblasts 3. prolif 새로 생성하는 다각적 neuroblasts는 세분화 및 차별화 된 억제의 interneurons으로 사구체 층에 통합 OB에 주동이의 철새 스트림 (RMS)을 형성, 전방으로 이동한다. 이주 젊은 oligodendroblasts는 로컬 분할 또는 성숙 myelinating의 희소 돌기 아교 세포 1,4로 분화 계속 미숙 NG2 양성 세포가 CC로 이동합니다. 태아 방사형 신경 교세포에서 파생 B1 세포는, 그들의 전임자의 연장 및 편광 형태를 유지하고 자신의 틈새 고도로 전문화 된 관계를 나타낸다. 그들은 어느 선 심실과 V-SVZ 틈새 시장을 관개 혈관의 네트워크까지 ependyma 사이에 걸쳐. 자신의 기초 과정은 나에이 틈새 결말을 관개 평면 혈관 신경 얼기에 접근하는 긴 거리를 확장하는 반면 multiciliated ependymocytes 중 B1 세포하게 인터의 작은 혀끝의 과정과는 단일 비 운동성이 차 섬모에 종료총 모세관 2,5-8의 ASAL의 얇은 판. 그대로 V-SVZ 틈새에도 GFAP + 아르 비 신경 인성 성상 세포,에서 B1-NSCs을 구별하는 가장 신뢰할 수있는 방법을 기반으로 한 후 3 차원 공 초점 현미경에 의한 심실 측벽의 준비 및 분석을 전체 마운트 GFAP에 대한 면역 염색은 세포막을 묘사하기 위해 얇은 B1-NSC 혀끝의 과정, β-catenin이 레이블, 각 섬모 5,8의 범위를 라벨을 cilial 기초 단체 또는 아세틸 화 α-튜 불린의 마커로 γ-tubulin의 하나입니다. 심실 표면에서 이러한 전체 마운트 관찰 B1과 뇌실막 세포는 하나 또는 여러 개의 GFAP + B1 셀의 uniciliated 혀끝의 프로세스가 multiciliated 뇌실막 세포의 장미에 의해 둘러 쌓여되는 &quot;바람개비&quot;5 배열되어 있음을 지적했다. B1 세포의 특성 형태는 실험적 증거와 상관 관계 전NSCs의 2,6,9-11에 작용하는 수용성 신호의 조절 소스를 구성하며 그 혈관 / 내피 세포를 ndicating 및 뇌척수액 (CSF)를 심실. 심실 표면, 동형 및 뇌실막 및 B1 셀을 포함하는 이형 apico-측면의 상호 작용에 꽉 접합 및 adherens 접합 5,12-을 포함한다. 또한, 이러한 N 헤린 및 V-CAM 등 B1 및 뇌실막 세포 사이의 접합부 복합체에 관여 부착 분자는 V-SVZ 틈새 B1의 고도로 조직화 된 위치뿐만 아니라 조절하는 것으로 알려져 왔지만, 또한 정지 12 13. -B1 뇌실막 세포 단층은 확산 CSF로부터 물 및 작은 분자 조절 플럭스 배리어 허용하지만, 많은 단백질 10,11의 세포 간 통로를 제한하는 역할을 보인다. 실험 증거는 고유 위치 B1 셀 혀끝의 섬모가 CSF 2에 존재하는 폴리 펩타이드 신호의 센서로 역할을 할 수 있음을 나타냅니다5-7. 뇌실막 세포 자체, NSC 동작 14,15의 조절에서 역할 용해성 막 결합 신호 또한 소스이다. 예컨대 브로 모 우리 딘 (BrdU의) 또는 레트로 바이러스 뉴 클레오 시드가 추적 가능한 널리 생체에 포함 NSCs의 전구 세포를 라벨 사용되어왔다. BrdU의 신호가 반복 세포 분열 및 레트로 바이러스를 통해 희석 우선적으로 전달 (16, 17)에 대한 세포 증식 자신의 요구에 의한 세포를 증폭 일시적 대상으로 표시하기 때문에,이 방법은 장기간의 운명 추적을위한 최적되지 않습니다. 틈새 구성 요소와 상호 작용을 포함하여 생체 내에서 NSC의 생리를 조사하기 위해, 라벨 및 B1-NSCs을 크게 대기하고 자신의 주변 뇌실막 세포 생리 학적 조건 3에서 분할 결코로, 거의 구분되지 세포를 추적하는 방법을 설정하는 데 매우 중요합니다. 여기서는 렌티 바이러스 벡터 (정맥 주사)을 고효율 유전자 마크 있도록 보여ING와 능력 형질 도입하고 세포주기 독립적 인 방식으로 표적 세포의 게놈에 통합이 가장 합리적으로 인해 성인 NSCs의 비 분할 뇌실막 세포의 장기 수정. 또한, 우리는 배달 및 바이러스 역가 도움의 경로를 구체적으로하여 NSCs의 틈새 시장에 의존, 뇌실막 효과의 분석을 가능하게 B1 셀을 뇌실막 세포를 형질 도입,하지만하는 방법을 보여줍니다.

<table><tbody><tr><td>Part 1: Generation of LV for in vivo delivery.</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Equipment:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ultracentrifuge</td><td>Beckman Coulter</td><td>Optima XL-100K</td><td></td></tr><tr><td>Ultracentrifuge rotor</td><td>Beckman Coulter</td><td>SW-28</td><td></td></tr><tr><td>Ultracentrifuge 로터</td><td>Beckman Coulter</td><td>SW-55</td><td></td></tr><tr><td>초원심분리기 튜브&nbsp;</td><td>Beckman Coulter</td><td>358126</td><td>25 mm x 89 mm</td></tr><tr><td>초원심분리기 튜브&nbsp;</td><td>Beckman Coulter</td><td>326819</td><td>13 mm x 51 mm</td></tr><tr><td>초원심분리기 어댑터</td><td>Beckman Coulter</td><td>358156</td><td></td></tr><tr><td>6웰 플레이트</td><td>SPL</td><td>PLC-30006</td><td></td></tr><tr><td>24웰 플레이트</td><td>SPL</td><td>PLC-30024</td><td></td></tr><tr><td>10 cm 접시</td><td>SPL</td><td>PLC-20101</td><td>100 x 20 스타일</td></tr><tr><td>FACS 튜브</td><td>Afora</td><td>DE400800</td><td>12 mm x 75 mm, 5 ml</td></tr><tr><td>컵 멸균 FACS 필터</td><td>BD</td><td>340626</td><td>30 &micro; m</td></tr><tr><td>니트로 셀룰로오스 필터</td><td>Millipore</td><td>SCGPU05RE</td><td>0.22 &mu; 엠&nbsp;</td></tr><tr><td>플로우 사이토미터</td><td>BD</td><td>LSR Fortessa</td><td>블루 레이저 488 nm</td></tr><tr><td>Steritop 필터</td><td>Biofil</td><td>FPE-204-500&nbsp;</td><td>0.22 & 마이크로; m</td></tr><tr><td>시약:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>pMDLg/pRRE 플라스미드&nbsp;</td><td>Addgene</td><td>#12251</td><td>코어 패키징 플라스미드</td></tr><tr><td>pRSV.REV 플라스미드&nbsp;</td><td>Addgene</td><td>#12253</td><td>코어 패키징 플라스미드</td></tr><tr><td>pMD2G 플라스미드&nbsp;</td><td>Addgene</td><td>#12259</td><td>봉투 플라스미드</td></tr><tr><td>pRRL-SIN-PPT.PGK.EGFP.Wpre 플라스미드&nbsp;</td><td>Addgene</td><td>#12252</td><td>전달 벡터 플라스미드</td></tr><tr><td>Dulbecco's Modified Eagle's Medium&nbsp;</td><td>Biowest</td><td>L0101-500</td><td>HeLa 세포 배양용</td></tr><tr><td>Iscove의 변형된 Dulbecco's Medium&nbsp;</td><td>Life technologies</td><td>12440-053</td><td>293T 세포 배양을 위한</td></tr><tr><td>Tris-EDTA (TE)</td><td></td><td></td><td>Tris-HCl (시그마, T5941), 0.1 mM EDTA (시그마, E5134), pH 7.6,&nbsp; DNAse/RNAse-free, 0.2 &마이크로; m, 멸균 여과</td></tr><tr><td>2x HBS</td><td></td><td></td><td>0.28 M NaCl (Sigma, S7653), 0.05 M HEPES (Sigma, H7523), 1.5 mM 무수 Na2HPO4 (Sigma, S7907) in dH2O (바람직하게는 MilliQ가 아님). NaOH 용액(Calbiochem, 567530)으로 pH를 7.0으로 조정합니다.</td></tr><tr><td>소 태아 혈청 (FBS)</td><td>Biowest</td><td>S181B-500</td><td>100x 원액, 10x 최종 농도에서 HeLa 및 293T 배양 배지를 준비하는 데 사용됩니다.</td></tr><tr>200mM의 <td>글루타민</td><td>시그마-알드리치</td><td>G7513-100</td><td>원액은 6mM의 최종 농도에서 HeLa 및 293T 배양 배지를 준비하는 데 사용됩니다.</td></tr><tr><td>나트륨 피루브산</td><td>Life technologies</td><td>11360-039</td><td>100mM의 원액, 1mM의 최종 농도에서 HeLa 및 293T 배양 배지를 준비하는 데 사용됩니다.</td></tr><tr><td>GlutaMAX Supplement</td><td>Life technologies</td><td>35050-061</td><td>최종 농도 1%에서 293T 배양 배지를 준비하는 데 사용됩니다.</td></tr><tr><td>페니실린/스트렙토마이신</td><td>시그마-알드리치</td><td>P4458</td><td>원액에는 페니실린 5,000단위/ml와 스트렙토마이신 5mg/ml가 함유되어 있습니다. HeLa 및 293T 배양 배지를 최종 농도 1%로 준비하는 데 사용됩니다.</td></tr><tr><td>트립신-EDTA</td><td>Life Technologies</td><td>25200-056</td><td>페놀 레드는 2.5g의 돼지 트립신과 0.2g의 EDTA 4Na/L HBSS를 함유</td></tr>하고 있습니다.<tr><td>인산염 완충 식염수&nbsp; (PBS)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D1408</td><td>염화칼슘 및 염화마그네슘 미포함, 10x, 액체, 멸균 여과, 세포 배양에 적합. 세포 배양 등급의 물에서 1x PBS를 준비하는 데 사용되는 원액.</td></tr><tr><td>폴리브레네(헥사디메트린 브로마이드)&nbsp;</td><td>시그마-알드리치</td><td>H9268</td><td>파우더. dH<sub2O</td></tr><tr><td>파라포름알데히드 EM 등급 16%</td><td>EM Sciences</td><td>15710</td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Company</td><td>카탈로그 번호</td><td>Comments</strong에서</td></tr> 8mg/ml로 1,000x 스톡 용액을 준비합니다><tr><td>Part 2: 특별 경제 구역 또는 외측 심실에 LV의 스테로택시 주입.<</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>strong>Equipment:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vernier stereotaxic instrument</td><td>NeuroLab, Leica</td><td>39463001</td><td>http://www.leicabiosystems.com/</td></tr> <tr><td>Cunningham mouse and neonatal rat adaptor</td><td>NeuroLab, Leica</td><td>39462950</td><td></td></tr><tr><td>주사기 홀더</td><td>KD Scientific</td><td>KDS-311-CE</td><td></td></tr><tr><td>33 게이지 주사기</td><td>Hamilton</td><td>P/N&nbsp; &nbsp; &nbsp; 84851/00</td><td>#85RN</td></tr><tr><td>전기 드릴</td><td>파인 사이언스 툴</td><td>98096</td><td></td></tr><tr><td>열 담요</td><td>Ufesa</td><td>AL5512/01</td><td>230-240 V, 100-110 W, C_AL01</td></tr>형 <tr><td>면도기&nbsp;</td><td>자타</td><td>MP373N</td><td>모델: 뷰티, 3V, 300mA, HT-03형.</td></tr><tr><td>시약:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Medetomidine</td><td>Esteve</td><td>DOMTOR&nbsp;</td><td>1 mg/ml의 Comercial solution.&nbsp;</td></tr><tr><td>케타민</td><td>Merial</td><td>Imalgene 500&nbsp;</td><td>50 mg/ml에 Comercial 해결책</td></tr><tr><td>메데토미디나/케타민 혼합물</td><td></td><td></td><td>0.2mg/ml 희석의 최종 농도에서 메데토미딘과 식염수 용액에서 15mg/ml의 최종 농도로 케타민의 작업 혼합물을 준비합니다. 마취제로 사용, 체중 kg 당 0.5-1 mg 메데토미디나와 체중 kg 당 50-75 mg 케타민의 최종 농도를 얻기 위해 볼륨을 주사</td></tr>하는 데 사용합니다<tr>. 10 mg / ml에서<td>Butorphanol</td><td>Pfizer</td><td>Torbugesic</td><td>재고 용액. 식염수에서 1 mg / ml의 진통제로 사용됩니다.</td></tr><tr><td>Atipamezole</td><td>Esteve</td><td>Antisedan</td><td>5 mg/ml의 재고 용액, 마취에서 벗어나기 위해 식염수에 0.5 mg/ml의 최종 농도로 사용됩니다.</td></tr><tr><td>0.9% 식염수 Braun</td><td></td><td>13465412</td><td></td></tr><tr><td>Histoacryl</td><td>Braun</td><td>1050052</td><td>피부 접착제</td></tr><tr><td>하이드로겔</td><td>클리어 H2O</td><td>70-01-5022</td><td></td></tr><tr><td>Kimwipes</td><td>Kimberly-Clark</td><td>34120</td><td>11 cm x 21 cm</td></tr><tr><td>Bleach/Virkon</td><td>Dupont</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Surgical marker pen</td><td>Staedler</td><td>313-9</td><td>퍼머넌트 루모컬러</td></tr><tr><td>안과 윤활제 &nbsp;</td><td></td><td>SICCAFLUID</td><td>0.5g/dosis, 카보머 974P</td></tr><tr><td>포비돈-요오드</td><td>베타딘</td><td>694109.6</td><td>10% 포비돈-요오</td></tr>드<tr><td>Name</td><td>Company></strong</td><td>>카탈로그 번호</strong</td><td>Comments</td></tr><tr><td>Part 3: Histological analysis.</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>장비:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>자동 연동 펌프</td><td>Cole-Parmer Inst. Co.</td><td>HV-07524-55</td><td>Masterflex L/S 가변 속도 이코노미 드라이브, 1.6-100rpm, 230V</td></tr><tr><td>펌프 헤드</td><td>Cole-Parmer Inst. Co.</td><td>HV-07518-00</td><td>정밀 튜빙용 Masterflex L/S Easy-Load 펌프 헤드; PSF 하우징, CRS 로터</td></tr><tr><td>실리콘 튜브</td><td>Cole-Parmer Inst. Co.</td><td>HV-96410-16</td><td>플래티넘 L/S 16</td></tr><tr><td>두피 정맥 세트</td><td>Vygon V-green</td><td>70246.05T</td><td>25 G, 30cm 튜브 길이</td></tr><tr><td>Vibratome</td><td>Leica</td><td>VT1000</td><td></td></tr><tr><td>컨포칼 현미경</td><td>Olympus</td><td>FluoView FV10i</td><td></td></tr><tr><td>핫 플레이트</td><td>Tehtnica</td><td>SHP-10</td><td></td></tr><tr><td>시약:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>인산염 완충액 (PB)</td><td></td><td></td> <td>0.2 M PB : 0.2 M Na2HPO4 (Sigma, S7907) 및 0.2 M NaH2PO4 (Panreac, 141965.1211) in dH2O, pH를 7.2-7.4로 조정</td></tr><tr><td>파라포름알데히드(PFA)</td><td>Panreac</td><td>141451.1211</td><td>매번 신선하게 준비합니다. dH2O를 최대 55&ndash까지 가열; 60 > C: 흄 후드에 놓인 핫 플레이트를 사용하여 PFA 분말을 붓고 저으면서 8% 용액을 얻습니다. 용액은 PFA가 쉽게 용해되지 않기 때문에 탁한 흰색입니다. 용액이 제거될 때까지 1N NaOH를 한 방울씩 첨가합니다. 식히고 Whatman 종이를 걸러내고 0.2M PB의 등가 부피를 추가합니다.</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td>dH2O</td></tr><tr><td>초강력 접착제</td><td>LOCTITE</td><td>의</td> 식염수 0.9% NaCl 767547 <td></td></tr><tr><td>아지드화나트륨</td><td>Panreac</td><td>122712.1608</td><td></td></tr><tr><td>글리신</td><td>시그마-알드리치</td><td>G7126-100</td><td></td></tr><tr><td>일반 염소 혈청</td><td>Millipore</td><td>S30-100</td><td></td></tr><tr><td>트리톤 X-100</td><td>시그마-알드리치</td><td>T9284</td><td>세정제</td></tr><tr><td>Anti-GFP rabbit 항체</td><td>ROCKLAND</td><td>600-401-215</td><td>1:500 희석에서 사용</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 당나귀 Anti-Rabbit IgG (H+L) 항체</td><td>분자 프로브</td><td>A-21206</td><td>1:750 희석에서 사용</td></tr><tr><td>6-Diamindino-2-phenylindole dihydrochloride hydrate (DAPI)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D9542</td><td>형광 핵 염색. ddH2O에서 2mg/ml로 사용합니다. 4°C에서 어두운 곳에 보관하십시오.</td></tr><tr><td>Fluoromount-G</td><td>EM Sciences</td><td>17984-25</td><td>형광 제제용 마운팅 매체</td></tr></tbody></table>

신경의 분석을위한 성인 마우스 v-svz에서 세포의 안정적이고 효율적인 유전자 변형 줄기 세포 자율 및 비 자치 효과

Stable and Efficient Genetic Modification of Cells in the Adult Mouse V-SVZ for the Analysis of Neural Stem Cell Autonomous and Non-autonomous Effects

상대적으로 대기 체세포 줄기 세포는 대부분의 성인 조직에서 평생 세포 재생을 지원합니다. 성인 포유류 뇌의 신경 줄기 세포는 두 가지 특정 신경 인성 틈새로 제한됩니다 해마의 치아 이랑과 심실-뇌실 영역의 subgranular 영역, 측면의 벽 (V-SVZ는 subependymal 영역 또는 SEZ라고도 함) 심실. 장기 줄기 세포에서 원하는 유전자의 발현 및 유래 자손 결과 성체 줄기 세포 집단에 대한 생체 내 유전자 전달 전략의 개발 (즉, 포유 동물의 뇌들)은 현재 생물 의학 및 생명 공학 연구에서 중요한 도구이다. 여기서, 직접 생체 내 방법은 정맥 주사에 의한 세포주기 독립적 감염 V-SVZ 틈새 고도로 전문화 cytoarchitecture 활용 성인 마우스 V-SVZ 세포의 안정한 유전 적 변형을 위해 제공된다. 구체적으로는, 현재 프로토콜을 포함V-SVZ 자체 하나에 특정 유전자의 발현 카세트를 인코딩 빈 정맥 주사 (제어) 또는 정맥 주사의 주입은 뇌실막의 타겟팅, 생체 내 틈새에있는 세포의 모든 유형의 타겟팅, 또는 측면 뇌실 루멘으로,이야 세포 만. 발현 카세트는 허용, 또한 정맥 주사에​​ 의해 코딩되는 형질 세포 및 형광 단백질의 게놈 내로 통합되는 표지화 된 세포 및 세포 자율 및 비 - 자율 틈새 의존적 효과 분석 형질 세포의 검출 그들의 자손.

LV - 매개 유전자 전달 시스템은 증식, 이동 및 분화 중에 그들의 추적 및 유전 적 변형을 허용 성인 마우스 V-SVZ 세포의 생체 내 전달에 장기간 사용할 수있다. 감염과 표현은 매우 효과적이며, 기자가 포함의 식으로 다른 감염되지 않은 세포들 사이를 쉽게 구별 할 수있는 다수의 세포를 얻을. 우리는 지금까지 보편적으로 발현 포스 포 키나제 프로모터에 의해 구동 GFP 형광 리포터 형질 세포를 시각화했지만, 다른 리포터 나 표지 단백질이 또한 사용될 수있다. 우리는 일상적으로 대신이 강한 형광 신호를 산출으로 기자 방출의 직접 검출에 의존 GFP에 대한 항체를 사용합니다. 또한, 뇌 신선한 해부 및 정착에 몰두하지만, 훨씬 더 나은 결과를 transcardial 관류에 의해 얻어진다 될 수있다. 정제, 농축 벡터 주식은 내가 천천히입니다줄무늬와 한계에 V-SVZ에 정위지도하에 njected (도 2a, b)에 나타낸다. 두 ...

여기에서는 신경 줄기세포에 대한 세포 자율 및 비자율적, 틈새 의존적 효과를 별도로 분석할 수 있는 성인 심실-심실하 신경인성 틈새에서 신경 줄기 세포 및/또는 인접한 뇌실막 세포의 장기 유전자 변형을 위한 렌티바이러스 입자의 사용을 기반으로 하는 절차를 설명합니다.

신경의 분석을위한 성인 마우스 V-SVZ에서 세포의 안정적이고 효율적인 유전자 변형 줄기 세포 자율 및 비 자치 효과

Relatively quiescent somatic stem cells support life-long cell renewal in most adult tissues. Neural stem cells in the adult mammalian brain are ...

이 절차의 전반적인 목표는 특정 DNA 구조체를 운반하는 고역가 렌티바이러스 입자의 적은 양을 성체 마우스의 심실-하심실 구역에 전달하여 모든 세포 유형을 감염시키거나, 외측 뇌실에 전달하여 뇌실막 세포만 영향을 주도록 하는 것입니다. 이 방법은 성체 심실-하심실 니치의 신경줄기세포가 인접한 뇌실막 세포와 맺는 상호작용에 관한 핵심 질문들에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 렌티바이러스 벡터가 세포 주기와 무관하게 표적 세포의 게놈에 통합되어, 드물게 분열하는 세포들의 장기적인 분화를 가능하게 한다는 점입니다. 대학원생 Beatriz Mart가 이 절차의 시연을 도와줄 것입니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Developmental Biology

발생생물학

체세포 줄기 세포의 확장을 제어하는​​ 것은 자신의 연구와 치료에 사용 hampering 결정하는 주요 요인입니다. 여기 시간적 마우스 뇌에서 생성 된 뉴런의 수를 증가하는 데 사용할 수있는 개발 및 성인기 동안 신경 줄기 세포 확장을 제어 할 수있는 시스템을 설명합니다.

의 배아와 성인 신경 줄기 세포의 확장<em&gt; 자궁에</em&gt; Electroporation 또는 바이러스 성 Stereotaxic 주입

출처: Porlan, E., et al. 신경줄기세포 자율 및 비자율 효과 분석을 위한 성체 마우스 V-SVZ 세포의 안정적이고 효율적인 유전자 변형. J. Vis. 경험. (2016년)이 비디오는 마우스 모델에서 바이러스 운반 치료 유전자의 정위 주입을 통해 심실-뇌실하 영역(V-SVZ)에서 신경 줄기 세포(NSC)의 안정적인 유전자 변형을 보여줍니다. 바이러스는 NSC에 들어가 역전사를 거쳐 게놈에 통합되어 신경치료 응용을 위한 안정적이고 효율적인 유전자 변형을 가능하게 합니다.

마우스 모델에서 안정적인 유전자 변형을 위한 바이러스의 정위 주사

바이러스 성 벡터는 타겟 유전자 조작을 위해 수 있습니다. 우리는 등쪽 뿔에 바이러스 벡터의 stereotaxic 주입, 기본 somatosensory afferents 및 중추 신경계의 뉴런 사이의 시냅스 접촉의 눈에 잘 띄는 사이트를 사용하여 조건부 유전자 발현 또는 마우스 척추 절제하는 방법을 보여줍니다.

마우스 척추 조건부 유전자 조작을위한 바이러스 성 벡터의 Stereotaxic 주입

여기서 우리는 subventricular 영역과 개인 성인 쥐의 치아 이랑 (dentate gyrus)에서, 부착 단층 또는 neurosphere를 하나로서, 신경 전구 세포 배양의 동시 발생에 대한 자세한 프로토콜을 설명합니다.

하나의 마우스, 두 문화 : 분리 및 성인 신경의 문화가 개인 마우스의 두 신경 인성 영역에서 줄기 세포

우리는 성체 쥐 뇌의 뇌실하부(SVZ)에서 신경줄기세포(NSC)와 그 자손을 분리하기 위한 FACS(Fluorescent Activated Cell Sorting) 기반 방법을 보고합니다. FUCCI(Fluorescence Ubiquitination Cell Cycle Indicator) 형질전환 마우스에 적용되어 라이브 이미징을 통한 세포 주기 진행을 연구할 수 있습니다.

셀 성인 마우스 뇌실 영역에서 신경 줄기 및 전구 세포의 정렬과 세포주기 역학의 라이브 이미징

우리는 신생아 마우스 두뇌의가에 microinjecting 시 약에 대 한 수 제 머리 고정 장치 stereotaxic 수술의 프로토콜을 설명합니다. 이 기술은 신생아 마우스 두뇌의 특정 영역의 신경 세포에서 유전자 조작...

신생아 마우스 두뇌의 Striatal 세포에서 유전자 조작에 대 한 stereotaxic 수술

여기에서는 배아 줄기 세포를 사용하여 유전자 변형 마우스 모델, 특히 대형 DNA 녹인 (KI)을 개발하기위한 프로토콜을 제시합니다. 이 프로토콜은 CRISPR/Cas9 게놈 편집을 사용하여 조정되어 기존의 상동 재조합 매개 선형화된 DNA 표적화 방법에 비해 KI 효율이 크게 향상되었습니다.

유전자 조작 마우스 모델 개발을 위한 배아 줄기 세포에서 CRISPR/Cas9 매개 고효율 유전자 표적화

살아있는 쥐의 뇌에서 신경 줄기 세포와 희소돌기아교세포 전구 세포를 분리하는 방법이 여기에 실험적으로 자세히 제시되어 있습니다. 그것은 그들의 웰빙을 손상시키지 않고 동일한 동물로부터 이러한 세포를 여러 번 수집할 수 있습니다.

살아있는 쥐에서 신경 줄기 세포와 희소돌기아교세포 전구 세포를 분리하기 위한 "뇌 착유" 방법

여기에서는 성체 쥐 뇌실 영역에서 분리된 확장된 신경 줄기 세포(NSC)에서 유전자 전달 효율성을 향상시키도록 설계된 핵절충 시스템에 대해 설명합니다. 이 연구 결과는 이 방법이 NSC의 유전자 섭동을 크게 개선하여 기존 transfection 프로토콜의 효과를 능가하고 세포 생존율을 향상시킨다는 것을 보여줍니다.

Isolation, Expansion, and Nucleofection of Neural Stem Cells from Adult Murine Subventricular Zone

여기에서는 화학적으로 재프로그래밍된 줄기세포를 엔지니어링하여 이러한 세포를 도파민성 전구세포로 분화하고, 파킨슨병의 마우스 모델에 이식하고, 이식된 세포의 성공적인 통합 및 기능적 효과를 확인하기 위해 행동 및 전기생리학적 결과를 평가함으로써 정확한 신경 조절을 달성하기 위한 프로토콜에 대해 설명합니다.

신경퇴행성 질환 치료에서 재프로그래밍된 줄기세포 유래 전구세포의 화학유전학적 조절

배우세요 성인 마우스 V-SVZ에서 렌티바이러스 입자를 이용한 신경 줄기세포의 장기 유전자 변형 방법입니다. 이 기술은 세포 자율적 및 비자율적 효과를 분석하여 신경 발생 틈새의 상호작용을 연구하는 데 활용됩니다.

신경의 분석을위한 성인 마우스 V-SVZ에서 세포의 안정적이고 효율적인 유전자 변형 줄기 세포 자율 및 비 자치 효과

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